АКАДЕМИЯ и А у к СССР
ЗООЛОГИЧЕСКИЙ ИНСТИТУТ
В ПОМОЩЬ РАБОТАЮЩИМ ПО ЗООЛОГИИ
В ПОЛЕ И ЛАБОРАТОРИИ
М. Н. ДУБИНИНА
ПАРАЗИТОЛОГИЧЕСКОЕ
ИССЛЕДОВАНИЕ ПТИЦ
ИЗДАТЕЛЬСТВО АКАДЕМИИ НАУК СССР
МОСКВА
1955
ЛЕНИНГРАД
АКАДЕМИЯ НАУК СССР
ЗООЛОГИЧЕСКИЙ ИНСТИТУТ
/? ПОМОЩЬ РАБОТАЮЩИМ ПО ЗООЛОГИИ
Г) ПОЛЕ И ЛАБОРАТОРИИ
2
М. н. ДУБИНИНА
ПАРАЗИТОЛОГИЧЕСКОЕ
ИССЛЕДОВАНИЕ ПТИЦ
ИЗДАТЕЛЬСТВО АКАДЕМИИ НАУК СССР
Москва 1955 Ленинград
Главный редактор акад. Е. Н. Павловский
Редакционная коллегия: И. Иванов, О. Л. Крыжановский.
А. С. Мончадский (редактор выпуска), А. А. Стрелков
ВВЕДЕНИЕ
Исторические решения XIX съезда КПСС, сентябрьского
Пленума ЦК КПСС и последующие постановления партии
и правительства выдвинули перед работниками сельского
хозяйства и учеными-биологами задачу значительного повы-
шения продуктивности сельскохозяйственного производства.
Пленум ЦК КПСС от 31 января 1955 г. призывает нас при-
ложить все усилия к успешному выполнению намеченной им
программы дальнейшего увеличения производства продуктов
животноводства, в том числе и птицеводства.
Осуществление пятого пятилетнего плана, предусматри-
вающего обводнение засушливых районов путем организации
там крупных водохранилищ, а также многочисленных прудов
и водоемов, создает возможность большего развития высоко-
продуктивного совхозного и колхозного птицеводства.
Однако для того чтобы птицеводство как отрасль народ-
ного хозяйства было высокопродуктивным и экономически
выгодным, необходимо, наряду с мероприятиями по улучше-
нию содержания птиц и созданию прочной кормовой базы,
обратить особое внимание на выращивание здорового пого-
ловья птиц, свободного от паразитарных, бактериальных и
других заболеваний.
Паразитарные заболевания домашних птиц, наиболее рас-
пространенными из которых являются спирохетоз кур (пере-
носчики заболевания — клещи, паразитирующие на этих же
птицах), кокцидиоз кур и гусей, аскаридиоз кур, амидостомоз
уток, различные цестодозы (заболевания, вызываемые ленточ-
ными червями) водоплавающих и сухопутных птиц, чесотко-
подобные заболевания куриных и др., сильно влияют на упи-
танность и яйценоскость птиц, а главное на успешное выращи-
вание и прирост молодняка. Молодые птицы в большей степени
подвержены различным паразитарным заболеваниям, поэтому
1*	з
их содержанию и воспитанию должно быть уделено особое
внимание.
В этом отношении большое значение приобретают паразито-
логические исследования, направленные на выяснение фауны
паразитов домашних и диких птиц (включая перелетных)
в различных районах Советского Союза, и изучение, подчас
очень сложных циклов развития паразитов, их биологии ц
экологии, положенных в основу разработки эффективных мер
профилактики и борьбы с паразитами.
При проведении подобных исследований нельзя ограничи-
ваться изучением паразитофауны лишь у домашних птиц,
не учитывая фауны паразитов диких и особенно перелетных
птиц, играющих важную роль в расселении паразитов. Это
особенно касается птицеводческих хозяйств в районах, где
создаются новые водоемы, привлекающие к себе водоплаваю-
щих диких птиц, равно как и хозяйств с широким применением
полевого содержания домашней птицы. В этих условиях осу-
ществляется более тесный контакт между домашними и дикими
птицами, происходит обмен паразитами, причем тем сильнее,
чем больше скученность домашней птицы.
Кроме того, некоторые дикие птицы, являясь окончатель-
ными хозяевами паразитов, личинки которых развиваются
в промысловых рыбах, поселяясь на новых водоемах, могут
заражать разводимых там хозяйственно ценных рыб. К числу
таких птиц нужно прежде всего отнести чаек, распространяю-
щих среди промысловых карповых рыб ленточных червей —
ремнецов, и цапель, заражающих мальков карповых рыб
возбудителем чернопятнистой, или чернильной, болезни (ли-
чинка сосальщика Neascus).
В настоящее время в связи с задачей всемерного развития сель-
ского хозяйства, а в том числе и высокопроизводительного обще-
ственного птицеводства, особенно остро встает вопрос о проведе-
нии широких исследовательских работ по изучению паразитарной
ситуации отдельных районов, о своевременном выявлении особо
вредных паразитов и о разработке эффективных мер борьбы
с ними. Подобные исследования могут дать правильную оценку
паразитологической ситуации каждого района только в том
случае, если они будут охватывать всю паразитофауну домаш-
них и основных (массовых) видов диких птиц с учетом кон-
кретных условий среды, окружающей хозяина. Изучение пара-
зитофауны птиц должно производиться в экологическом ас-
пекте, т. е. с учетом ее зависимости от времени года (сезона),
пищи, возраста, перемещения птиц (миграции, кочевки), об-
раза жизни и других биологических особенностей окончатель-
ных (птиц) и промежуточных (рыб, беспозвоночных и других
животных) хозяев в обследуемом районе.
4
Только такой экологический подход к изучению паразито-
фауны позволит познать объективные биологические законо-
мерности, на основании которых можно разработать действи-
тельно эффективные меры борьбы с паразитами и профилак-
тические мероприятия, предохраняющие выращиваемых до-
машних птиц от паразитарных заболеваний.
В связи с необходимостью широкого проведения подобных
паразитологических работ особенно ощущается необходимость
в наличии единого руководства по методике исследования
птиц в целях ее стандартизации и получения однотипных
сравнимых материалов.
Предлагаемое пособие. составленное автором на опыте мно-
голетней экспедиционной и стационарной работы по изучению
паразитов птиц, рекомендует единую методику полного пара-
зитологического обследования птиц в последовательном порядке.
Пользуясь данным пособием, можно также ориентироваться
в том, какие группы паразитов, в каких органах и-у каких отря-
дов птиц могут быть встречены и как их отличить друг от друга.
Точное определение всех паразитов до вида должно про-
водиться в лабораторных условиях по специальной литера-
туре, основной список которой приводится в конце работы.
НЕОБХОДИМЫЕ СВЕДЕНИЯ ПО АНАТОМИИ ПТИЦ
II ЛОКАЛИЗАЦИИ ПАРАЗИТОВ
Средой обитания паразита является организм хозяина:
определенные участки его оперения, различные ткани и ор-
ганы, протоки органов, отдельные полости, клетки и т. д.
Для того чтобы правильно понять взаимоотношения, скла-
дывающиеся между хозяином и паразитом, необходимо в первую
очередь точно знать место локализации (расположения) пара-
зита — его непосредственную среду обитания. Поэтому при
паразитологическом обследовании для точной регистрации
места расположения паразита каждый исследователь обязан
знать основные морфологические особенности и анатомию
исследуемого животного.
Настоящий раздел знакомит читателей с основами анатомии
птиц и некоторыми морфологическими особенностями их ор-
ганов и тканей, которые обычно могут быть заселены различ-
ными паразитами.
Скелет и мускулатура не рассматриваются; в костях птиц,
как правило, паразиты не встречаются, мускулатура же хотя
и заселена паразитами, но локализацию в ней последних ука-
зывают не для каждой мышцы в отдельности, а для ряда мышц
определенной части тела в целом («мышцы груди», «мышцы
крыльев», «мышцы ног» и т. д.).
5
Наружное строение
Кожа п ее производные. Кожа птиц лишена каких-либо
желез (кроме копчиковой) и состоит из эпидермиса и лежащего
под ним соединительнотканного пласта, или собственно кожи
(кориум).
Эпидермис образован многими слоями эпителиальных кле-
ток. Более глубокие слои его состоят из живых клеток, обра-
зуя так называемый мальпигиевый слой. Поверхностные слои
эпидермиса ороговевают, и клетки его превращаются в мертвые
чешуйки, которые слущиваются с поверхности кожи и заме-
няются новыми. Совокупность таких клеток образует роговой
слой эпидермиса. Под ороговевшими чешуйками эпидермиса
и в толще его у домашних и некоторых диких птиц встречаются
мелкие паразитические клещи (относящиеся к группе перье-
вых клещей), вызывающие кожеедную чесотку.
Соединительнотканный пласт кожи подразделяется на более
плотный и лежащий под ним более рыхлый подэпителиальные
слои. Последний является местом наибольшего накопления жи-
ровых отложений, а, кроме того, у крупных и хорошо летающих
птиц (веслоногие и др.) в нем находятся многочисленные воз-
душные пространства, соединяющиеся с воздушными мешками.
Этот рыхлый слой кожи вместе с лежащей под ним подкожной
клетчаткой и является основным местом локализации различ-
ных подкожных паразитов — личинок перьевых клещей (дейто-
нимф), взрослых эндопаразитических клещей (роды Cytoli-
chus и Laminosioptera), своеобразных сосальщиков (Collyric-
lum faba), круглых червей (филярий), а также некоторых ли-
чинок сосальщиков и круглых червей.
Ороговевшими придатками кожи являются перья, клюв,
когти, шпоры и роговые чешуи или пластинки, находящиеся
на пальцах, плюсне и части голени у большинства птиц.
Перья в зависимости от их местоположения и функции
имеют различное строение. Различают контурные (маховые,
рулевые, кроющие), нитевидные, щетинковпдные, пуховидные
перья и пух.
Наиболее прочное, а вместе с тем и сложное строение
имеют маховые (на крыле) и рулевые (на хвосте) контур-
ные перья (стация обитания большинства перьевых кле-
щей), образующие несущие поверхности, которые обусловли-
вают возможность полета. Такое же строение имеют и кроющие
контурные перья тела (стация обитания пухоедов и некоторых
перьевых клещей), которые придают птице обтекаемую форму,
уменьшают теплоотдачу и защищают ее тело от силь-
ных внешних воздействий (ветра, воды, солнечных лу-
чей).
6
a
Рис. 1. Контурное перо,
а — опахала; б — ствол;
в — очин.
Контурное перо (рис. 1) состоит из стержня и опахал. Осно-
вание стержня, сидящее в перьевой сумке и лишенное опахал,
называется очином пера, а большая,
выступающая над кожей часть, не-
сущая опахала, — стволом.
Очин пера имеет внутреннюю
полость, соединяющуюся с внешней
средой небольшим щелевидным отвер-
стием на нижней стороне пера,
у основания опахал. Полость очина
пера имеет дужку, представляющую
собой столбик из вставленных друг
в друга роговых колпачков, образую-
щихся во время роста пера. В по-
лости • очина у водоплавающих птиц
могут быть найдены некоторые виды
перьевых и хищных клещей.
Опахала пера состоят из бородок
двух порядков. Бородки 1-го по-
рядка, отходящие под углом с двух
сторон ствола, представляют собой
роговые пластинки, достигающие у
разных видов птиц различной длины
и ширины; они несут меньшего раз-
мера бородки 2-го порядка. Послед-
ние в зависимости от вида птицы,
функционального назначения пера
п от местоположения в опахале
имеют различное строение (Дубинин,
1951). Бородки 2-го^порядка состоят
из более или менее гладкого упло-
щенного основания и суженной кон-
цевой части, снабженной различными
выступами и крючочками или тон-
кими желобками. С одной .(обращен-
ной к основанию пера) стороны каж-
дой бородки 1-го порядка распола-
гаются мелкие бородки 2-го порядка
с крючочками, с другой стороны,
обращенной к вершине пера, — бо-
родки с желобками. Ряды бородок
с крючочками, перекрещиваясь с
соседними рядами бородок с желоб-
ками, сцепляются между собой, при-
давая опахалу пера большую прочность (рис. 2). В зависимости
от образа жизни у некоторых птиц изменяется строение бородок
7
1-го и 2-го порядков, образующих на нижней стороне опахал пер-
востепенных маховых перьев крыла сложную сеть воздушных
полостей, полузакрытых или закрытых коридорчиков, в кото-
рых обитают некоторые виды перьевых клещей.
У основания опахал контурного пера бородки 1-го порядка
сужаются, а бородки 2-го порядка становятся нитевидными,
без крючковидных отростков, в результате чего они теряют
между собой связь и приобретают характер строения бородок
пухового пера. Эта часть контурного пера бывает населена
особыми видами перьевых клещей.
Рис. 2. Сцепление бородок в контурных перьях.
(По В. Дубинину, 1951).
Пуховые перья, основной функцией которых
является сохранение тепла птицы, устроены значительно
проще. На слабом, коротком стержне пухового пера находятся
мелкие бородки, которые представляют собой узкие пластинки
с отходящими от них в обе стороны нитевидными отростками,
лишенными крючочков, так что сцепление между их рядами
отсутствует.
Пух представляет дальнейшее упрощение пухового пера;
в нем отсутствует ствол, а пучком расположенные бородки
1-го порядка иногда вовсе лишены бородок 2-го порядка.
Нитевидные перья имеют тонкий ствол с отхо-
дящими от него недоразвитыми бородками, расположенными
на его конце.
Перья у большинства птиц (исключая пингвинов и бески-
левых) растут на определенных участках кожи, так называе-
мых птерилиях, между которыми находятся пространства,
8
лишенные перьев, — аптерии (рис. 3). Последние и являются
основным местом прикрепления к коже птиц различных крово-
сосуШих паразитов — иксодовых, аргасовых, гамазовых и
краснотелковых клещей, а также некоторых блох и мух-крово-
сосок.
Пух менее правильно распределяется на коже и у различ-
ных групп птиц может расти как на птерилиях, так и на апте-
риях.
При паразитологическом обследовании нужно различать
следующие группы перьев.
Рис. 3. Птерилии и аптерии у кур. (Из Хол ва-
ковского, 1914).
Перья крыла (рис. 4). 1) Маховые перья. По месту
их прикрепления к скелету разделяются на первостепенныег
т. е. прикрепленные к кистевому отделу крыла, и второстепен-
ные, т. е. прикрепленные к локтевому отделу. Опахала перво-
степенных маховых перьев асимметричны. Более узкое опахало,
обращенное при полете к встречным струям воздуха, назы-
вается наружным, противоположное ему широкое опахало —
внутренним. Маховые перья располагаются так, что наружное
опахало каждого пера черепицеобразно налегает на внутрен-
нее опахало впереди лежащего пера. Обычно первостепенных
маховых перьев бывает 10—12, а второстепенных, в зависи-
мости от вида птицы, — от 6 до 37.
2)	Верхние кроющие перья крыла. Расположены правиль-
ными рядами над маховыми перьями; они состоят из одного
ряда больших кроющих перьев, лежащего над ними ряда сред-
них кроющих и следующих за ними нескольких рядов малых
кроющих перьев.
3)	Нижние кроющие перья крыла. Расположены так лее,
но с нижней стороны крыла. Интересной их особенностью яв!
ляется то, что большие и средние кроющие перья своей верхней
стороной обращены к коже крыла, в то время как малые крою-
щие ориентированы нормально.
4)	Группа перьев крылышка, находящихся у переднего
края кисти на первом пальце. По структуре напоминает перво-
степенные маховые перья, но меньшего размера; количество
их у разных птиц варьирует от 3 до 6.
Рис. 4. Перья крыла.
а — первостепенные маховые: б — второстепеЬные махо-
вые; в — большие кроющие; г — средние кроющие;
д — малые кроющие; е — перья крылышка.
(Иэ Шульпина, 1940).
Перья хвоста. 1) Рулевые перья, прикрепленные
кожно-мышечной тканью к слившимся между собой последним
хвостовым позвонкам (пигостилю); количество их у разных
видов птиц варьирует от 8 до 28; боковые рулевые перья имеют
асимметричные опахала (узкое наружное и широкое внутрен-
нее); 2) верхние кроющие и 3) нижние кроющие перья хвоста,
покрывающие основание рулевых перьев с верхней и нижней
-сторон.
Перья головы и тела. Обычные кроющие перья
располагаются на птерилиях; их, как и пух, различают ио
частям тела — кроющие перья головы, шеи, спины, груди,
•бедер, плечевые перья и т. д. Лишь у очень немногих птиц
голова и шея лишены перьев.
У всех птиц периодически наступает линька, т. е. выпадение
ютарых перьев и замена их вновь отрастающими. Обычно она
начинается со смены маховых и рулевых, затем линяют перья
10
туловища и в последнюю очередь — головы. У разных видов
птиц линька протекает по-разному и в разное время.
Для большинства птиц обязательной является осенняя, пос-
пегнездовая линька, когда происходит последовательная смена
рСсх перьев. У многих птиц наблюдается двукратная линька —
осенью и весной; последняя из них, предбрачная, ограничи-
вается лишь сменой мелкого пора или части его. Некоторые
птицы линяют 3 и даже 4 раза в году; в этом случае образуются
специальные летний п зимний наряды, которые представляют
существенно различные стации обитания паразитов.
В период, предшествующий линьке, и во время последней
происходят существенные изменения в локализации наружных
паразитов — перьевых клещей и пухоедов, что необходимо
учитывать при паразитологическом обследовании птиц.
Ноги птиц, в их нижней части, лишенной перьев, покрыты
слоем роговых щитков, которые, кровлеобразно налегая друг
на друга, покрывают у большинства птиц все пальцы, плюсну
и иногда часть голени. Под щитками и в толще рогового слоя
кожи ног (главным образом у кур и некоторых воробьиных
птиц) могут паразитировать мелкие перьевые клещи, вызываю-
щие заболевание под названием «известковые ноги».
Органы чувств головы. Основание верхней части клюва
у некоторых птиц покрыто тонкой кожицей — восковицей,
служащей органом осязания. У основания клюва находятся
парные, чаще щелевидные, носовые отверстия, которые через
носовую полость соединяются с внутренними носовыми отвер-
стиями (хоанами), открывающимися, на нёбе, между двумя
продольными складками слизистой оболочки. В носовой полости
у некоторых видов птиц могут паразитировать гамазовые клещи
сем. Rhinonyssidae и крупные сосальщики сем. Cyclocoelidae.
По бокам головы находятся глаза, снабженные тремя ве-
ками: верхним, нижним и мигательной перепонкой. Последняя
прикрепляется во внутреннем углу глаза, очень подвижна и
служит для очищения роговицы. Под веками глаз, как и в но-
совой полости птиц, паразитируют крупные сосальщики сем.
Cyclocoelidae и круглые черви сем. Thelaziidae.
Позади и несколько ниже глаз на голове находятся округ-
лые слуховые отверстия, обычно прикрытые перьями. Слуховое
отверстие ведет в неглубокий слуховой канал или наружное
ухо, на дне которого лежит барабанная перепонка. За барабан-
ной перепонкой следует барабанная полость, или среднее ухо,
соединяющаяся с ротовой полостью узкой общей евстахиевой
трубой. Непарное отверстие евстахиевых труб открывается
в нёбе, у заднего конца нёбных складок. Вокруг слухового
отверстия, в наружном ухе, вокруг глаз и у основания клюва,
где оперение развито слабо, обычно паразитируют различные
11
кровососущие паразиты — блохи, клещи и мухи-кровососкщ
Сюда же после смерти птиц наползают в большом количество-
пухоеды, хотя обычным местом их локализации являются
перья.
Внутреннее строение
Для паразитологического исследования внутренних органов
птиц разрезают брюшную стенку тела по средней линии, от-
ступя на 1 см выше отверстия клоаки, перерезают грудную
кость и ключицу и ведут разрез до головы. После этого края
разреза с силой разводят в стороны, открывая лежащие в по-
лости тела внутренние органы (рис. 5). При такой операции
неизбежно повреждают воздушные мешки, которые рекомен-
дуется осматривать в первую очередь после исследования
кровеносной системы.
В раскрытой полости тела прежде всего видна массивная
печень, между долями которой, у переднего их края, нахо-
дится сердце с отходящими от него крупными сосудами. За
сердцем видны отдельные участки легких, от которых вперед,
вдоль грудной полости и шеи, тянется трахея. С правой сто-
роны трахеи и немного позади ее проходит пищевод. У птиц,
имеющих зоб (расширение пищевода), последний выдается
вперед и закрывает собой в этом месте трахею.
Из-под заднего края печени выступают мышечный желу-
док и многочисленные петли тонкой кишки, которые все вместе
образуют клубок брюшных органов. Обследование внутрен-
них органов проводят в той последовательности, в какой дано
дальнейшее описание.
Кровеносная система (рис. 6). Сердце птиц, окружен-
ное тонкой околосердечной сумкой, находится в середине
грудной полости и внешне представляет собой короткий мы-
шечный конус, ориентированный основанием вперед, а вер-
шиной назад. Оно четырехкамерное, состоит их двух тонко-
стенных буровато-красных предсердий, лежащих в основании
конуса, и двух толстостенных, более светло окрашенных же-
лудочков. Сплошная мышечная перегородка разделяет по-
лость сердца на правую (венозную) и левую (артериальную)
половины. Предсердия сообщаются с соответствующими им
желудочками через атрио-вентрикулярные отверстия, снаб-
женные перепончатым (левое) и мускулистым (правое) кла-
панами.
В мышцах сердца и на поверхности околосердечной сумки
у птиц могут быть найдены личинки сосальщиков и круглых
червей, а также взрослые круглые черви подотряда Filariata и
некоторые эндопаразитические клещи. В крови птиц встре-
12
чаются спирохеты, различные простейшие (споровики, жгу-
тпконоспы) и некоторые черви (сосальщики и личинки круг-
Рис. 5. Вскрытый голубь.
а — пищевод; б — зоб; в — железистый желудок; г — мышеч-
ный желудок; д — двенадцатиперстная кишка; е — тонкая
кишка; эгс — слепые кишки; з — прямая кишка; и— клоака;
к — печень; л — поджелудочная железа; м — фабрициева
сумка; н — желудочки сердца;	о — предсердия сердца;
п — селезенка; р — трахея; с — нижняя гортань; т — легкое;
у—почка; ф— семенник. (По Холодковскому, 1914).
пых червей). Одни из них (кровяные споровики) находятся
в эритроцитах, другие (спирохеты, жгутиконосцы и черви) —
непосредственно в плазме крови. Кровяные сосальщики (сем.
13
Schistasoinatidae) обычно встречаются в крупных венозных
сосудах печени, кишечника и других органов, в то время как
Рис. 6. Схема кровеносной системы
птиц.
з(. 02 — предсердия; б — желудочки; д. а. —
дуга аорты; б. о. — безымянная артерия; о. с.
о. — общая сонная артерия; п. а. — под-
ключичная артерия: е. а. — грудная арте-
рия; сп. а. — спинная аорта; ч. а — чревная
артерия; п. б. а. — передняя брыжеечная
артерия; бд. а. — бедренная артерия; с. а —
седалищная артерия; пд. а. — подвздошная
артерия; в. б. а. — задняя брыжеечная арте-
рия; хв. а. — хвостовая артерия; я. в. —
яремная вена; п. в. — подключичная вена;
е. в. — грудная вена; п. п. в. — передняя
полая вена; а. п. в. — задняя полая вена;
печ. «. — печеночная вена; пд. в. — подвздош-
ная вена; б. в. — бедренная вена; к. б. в. —
копчиково-брыжеечная вена; в. в. п. —'ворот-
ная вена почек. (По Паркеру, 1898).
все остальные паразиты
могут быть найдены в лю-
бом месте кровяного русла.
Для 4 точного определе-
ния мест локализации пе-
речисленных паразитов
следует знать расположе-
ние основных артериаль-
ных и венозных сосудов
у птиц.
j	_
Сосуды артери ci .\ь-
ной с и с т е м ы. Из левого'
желудочка сердца берет на-
чало дуга аорты (правая), а
из правого—легочные артерии.
От начальной части дуги аорты
отходят два крупных сосуда —
безымянные артерии, которые
идут вперед и в стороны. До-
стигнув боковых сторон шеи,
безымянные артерии разде-
ляются на общие сонные арте-
рии, идущие вдоль боковых
сторон шеи в голову, и под-
ключичные артерии, которые
являются непосредственным
продолжением безымянных.
Подключичные артерии в свою
очередь очень скоро распа-
даются на плечевые артерии,
идущие в крылья, и крупные
грудные артерии, идущие к
мышцам груди.
Правая дуга аорты после
отхождения от пее безымян-
ных артерий тянется немного
вперед, затем круто заворачи-
вает па спинную сторону и
переходит в спинную аорту,
посылающую ряд сосудов к
внутренним органам. От спин-
ной аорты отходят: кишеч-
ная артерия, идущая к желе-
зистому и мышечному желуд-
ку, передняя брыжеечная ар-
терия — к большей части ки-
шечника, почечные артерии —
к почкам, бедренные и седа-
лищные — в задние конеч-
ности, подвздошные — к тазу
и задние брыжеечные арте-
14
рпи — к прямой кишке и клоаке. Конечная часть спинной артерии
переходит в короткую хвостовую артерию.
Легочные артерии, заслоненные с брюшной стороны безымянными,
начинаются общим стволом, который вскоре разветвляется на два сосуда,
идущие сначала вперед, а затем направляющиеся на спинную сторону.
Сосуды венозной системы. В правое предсердие впа-
дают два крупных сосуда — передние полые вены, располагающиеся
кнаружи от правой и левой безымянных артерий. Каждая из этих вен обра-
зуется от слияния трех сосудов: 1) яремной, или переднекардинальной,
вены, направленной от головы к боку шеп и принимающей боковые ве-
точки от зоба и зобных желез; 2) плечевой вены, идущей от крыла, н
3) грудной вены, отходящей от больших грудных мышц. Последние две
вены параллельны одноименным артериям.
В яремную вену позади зобных желез, по выходе их из мускулатуры
шеи, впадает позвоночная вена. Кроме передних полых вен, в правое пред-
сердие вливается очень крупный сосуд —• нижняя, или задняя, полая
вена, которая на уровне печени принимает в себя парные печеночные
вены.
Нижняя полая вена образуется от слияния двух подвздошных вен,
выходящих из передних долей почек. В подвздошные вены, на границе пе-
редних и средних долей почек, в свою очередь впадают крупные бедренные
вены, несущие кровь из ног. С брюшной стороны почек проходят продоль-
ные почечные вены, направленные вперед и сливающиеся с подвздошными
венами в месте соединения последних с бедреннымп. В печени между двумя
желчными протоками находится крупный сосуд — приносящая воротная
вена, которая делится на две ветви, идущие к долям печени.
Приносящая воротная вена получается от слияния следующих вен:
1) желудочно-кишечной, образованной сосудами, идущими от правой
стороны мускульного желудка и двенадцатиперстной кишки, 2) передне-
брыжеечной, возникающей от слияния многочисленных сосудов бры-
жейки и тонкой кишки, и 3) копчиково-брыжеечной, образующейся от
слияния сосудов задпей части тонкой и прямой кишок и клоаки.
Копчиково-брыжеечная вена берет начало от воротной вены по-
чек, идет по брыжейке, подвешивающей прямую кишку и заднюю часть
тонкой кишки к спинной стороне полости тела, и впадает в принося-
щую воротную вену печени на уровне переднего края поджелудочной же-
лезы. Здесь она встречается с желудочно-кишечной и передне-брыжееч-
ной венами. Из печени кровь через выносящую воротную вену поступает
в нижнюю полую вену.
В левое предсердие впадают сосуды легочных вен.
Селезенка. Селезенка птиц сравнительно мала, имеет
округлую, овальную или вытянутую форму и лежит с правой
стороны желудка, на границе перехода его железистого от-
дела в мускулистый.
У большинства птиц, как правило, в селезенке паразитов
не находят. Лишь очень редко, при условии сильного зара-
жения других внутренних органов (печени, стенок кишеч-
ника и др.) личинками паразитических червей (сосальщиков и
круглых), последние могут быть найдены в небольшом ко-
личестве и в селезенке.
Дыхательная система. Дыхательная система птиц со-
стоит из дыхательных путей, легких и воздушных мешков.
15
Во всех перечисленных отделах могут быть найдены паразиты,
а поэтому детальный осмотр их обязателен.
В ротовой полости птиц у основания языка расположена
гортанная щель, которая ведет в верхнюю гортань,
образованную рядом хрящей. Верхняя гортань переходит
в трахею — длинную трубку, в стенках которой находятся
хрящевые кольца. На уровне сердца трахея делится на два
коротких бронха, впадающих в легкие с их брюшной сто-
роны. Трахея в месте перехода ее в бронхи расширяется, об-
разуя вместе с начальными частями последних нижнюю,
или «певчую», гортань.
В гортани, трахее и бронхах у многих видов птиц (осо-
бенно у куриных и воробьиных) могут паразитировать хо-
рошо адаптированная к ним группа круглых червей (сем.
Syngatnidae) и некоторые клещи — перьевые (род Cytolichus)
и гамазовые (сем. Rhinonyssidae). Последние клещи встречаются
также в легких и воздушных мешках птиц.
Парные легкие птиц розовато-красного цвета,
упруги и имеют губчатое строение. Они сравнительно невелики,
.лежат непосредственно под позвоночником, плотно приле-
гая к нему спинной стороной, и заполняют межреберные про-
странства. С брюшной стороны легкие покрыты легочной
плеврой. Главный ствол бронхов, вступая в легкое, лишается
хрящевых полуколец и проходит через все легкое к заднему
его концу, давая по пути два ряда боковых ответвлений —
вторичных бронхов. Большинство вторичных бронхов, раз-
ветвляясь и соединяясь между собой, остается в пределах
легких, но три из них так же как и главный ствол, выходят
за пределы легких и образуют воздушные мешки.
В радушные мешки развиваются за счет разраста-
ния слизистых оболочек бронхов и плевры, они очень тонки,
прозрачны и почти лишены капилляров и нервных оконча-
ний. Насчитывают 9 воздушных мешков (рис. 7) — один не-
парный и четыре категории парных. По месту их расположе-
ния различают: 1) межключичный мешок — непарный (об-
разованный слиянием двух, первоначально разделенных вы-
пячиваний ключичных бронхов), имеющий внутригрудной от-
дел, находящийся между ключицами и окружающий сердце,
и внегрудной отдел, дающий ряд выростов в полости плече-
вых костей; 2) шейные мешки — берут начало из вентраль-
ных шейных бронхов и находятся кзади от трахеи и пище-
вода; от них берут начало воздухоносные ходы, идущие в шею
к шейным позвонкам и в грудной отдел к грудным позвонкам
и ребрам; 3) передние грудные мешки — отходят от брон-
хов средней части легких и находятся под последними, про-
ходя назад до последних ребер; 4) задние грудные мешки —
16
в, крупные сосальщики сем.
Рис. 7. Схема расположения воз-
душных мешков.
а — межключичный;	б — шейный ;
в — переднегрудной; е — заднегрудной ;
0 - брюшной; е — легкое.
развиваются из бронхов заднего участка главного ствола, они
располагаются у печени, желудка и кишечника и плотно при-
легают к брюшным мешкам; 5) брюшные мешки — берут на-
чало от заднего конца главного бронха и отличаются боль-
шими размерами; они свободно лежат в полости тела, давая
многочисленные выросты, заходящие в поясничные и крест-
цовые позвонки и в кости таза и бедер.
В воздушных мешках у многих птиц часто паразитируют,
кроме клещей, упомянутых вы
Cyclocoelidae и некоторые круг-
лые черви подотряда Filariata.
Кроме того, на поверхности
воздушных мешков и легких
могут быть найдены многочи-
сленные личинки круглых чер-
вей и сосальщиков, находя-
щиеся в соединительнотканных
капсулах, и личинки перьевых
клещей (дейтонимфы).
Пищеварительная система
л фабрициева сумка. Пище-
варительная система птиц, как
и других животных, заселена
паразитами значительно силь-
нее всех других систем. Кроме
многочисленных паразитиче-
ских червей (сосальщиков, лен-
точных, круглых и скребней),
обитающих во всех отделах пи-
щеварительного тракта, в пече-
ни, в ее желчных протоках,
в некоторых отделах кишечника
и в желчном пузыре могут
встречаться некоторые простейшие (амебы, жгутиконосцы и
кокцидии), вызывающие серьезные заболевания птиц. Боль-
шинство видов червей и простейших приурочено к определен-
ным участкам пищеварительной системы.
Пищеварительная система птиц начинается ротовой по-
лостью, ограниченной верхней и нижней челюстями, вы-
стланными слизистой оболочкой. Челюсти птиц лишены зу-
бов, но у некоторых групп (гусиные) по краю их распола-
гаются многочисленные роговые пластинки, служащие для
процеживания воды при захвате пищи и для раздробления
последней.
На дне ротовой полости между ветвями нижней челюсти
лежит язык, имеющий у разных видов птиц различную форму.
2 М. Н. Дубинина
17
У некоторых (пеликан, . кедровка, некоторые чистики) цОд
языком находится сильно растянутый подклювный мешок, об-
разованный стенками ротовой полости и служащий для вре.
менного хранения пищи. У пеликана в подклювном мешке
могут паразитировать очень крупные, питающиеся кровью
пухоеды (Telrophthalmiis titaii).
У основания языка между двумя продольными складками
слизистой оболочки находится гортанная щель, ведущая в тра-
хею. За гортанной щелью начинается глотка, отграничен-
ная от ротовой полости рядом глоточных сосочков. На сли-
зистой оболочке ротовой полости и глотки могут паразити-
ровать некоторые виды сосальщиков и пиявки (у водопла-
вающих птиц), а в соединительнотканном слое под слизи-
стой — круглые черви.
Глотка переходит в сильно складчатый пищевод, ко-
торый у зерноядных и дневных хищных птиц на уровне осно-
вания шеи имеет выдающийся вперед мешковидный зоб, играю-
щий роль временного хранилища пищи. За пищеводом сле-
дует желудок, заметно разделяющийся на железистый и
мускулистый отделы. Железистый желудок имеет сравнительно
тонкие стенки с большим количеством сложных желез, группи-
рующихся в железистые поля. В железах этой части желудка
паразитируют своеобразные самки круглых червей сем. Tet-
rameridae, самцы которых находятся на слизистой желудка.
Дентин, хитин, кератин и отчасти кости не перевариваются
в желудке птиц и у некоторых (хищные птицы, чайки и др.)
выводятся обратно через рот в виде «погадок».
Мускулистый желудок у птиц, питающихся преимуще
ственно животной пищей, представляет собой сравнительно
тонкостенный, мускулистый, легко растяжимый мешок, где
происходит переваривание пищи за счет секрета, стекающего
сюда из железистого отдела. У растительноядных птиц муску-
листый отдел желудка является толстостенным, мускулистым
образованием, выстланным изнутри толстой кутикулопо-
добной оболочкой, постоянно нарастающей по мере ее снаши-
вания. Основная функция мышечного желудка последнего типа
сводится в дополнительному раздроблению и размельчению
пищи для дальнейшего ее переваривания в двенадцатиперстной
кишке. Под кутикулой мышечного желудка паразитируют неко-
торые круглые черви и своеобразные ленточные черви рода Арога.
Кишечник начинается двенадцатиперстной
кишкой, отходящей от передней части мышечного желудка.
Она представляет собой удлиненную петлю, охватывающую под-
желудочную железу. В начальную часть двенадцатиперстной
кишки открываются протоки печени, желчного пузыря и
поджелудочной железы.
18
Печень птиц, имеющая относительно крупные раз-
меры, разделена на две доли, выпуклая поверхность которых
обращена к брюшной стороне, а вогнутая плотно прилегает
к желудку и части кишечника. От каждой доли печени от-
ходит самостоятельный печеночный проток; правый из них
имеет расширение — желчный пузырь. Последний у птиц, пи-
тающихся мясной пищей, достигает больших размеров; у го-
лубя он отсутствует.
За двенадцатиперстной следует собственно тонкая
кишка, образующая многочисленные, часто прилегающие
друг к другу петли. На границе перехода тонкой кишки в пря-
мую находятся слепые отростки, направленные вершинами впе-
ред и соединенные брыжейкой с прилегающим участком тонкой
кишки. У гусиных и куриных птиц слепые отростки парные и
достигают большой длины, у большинства других птиц они
рудиментарны или вообще отсутствуют. Сравнительно короткая
прямая кишка проходит вдоль позвоночника назад и
открывается в клоаку. Последняя представляет собой рас-
ширенную часть задней кишки, поделенную попереч-
ными складками на три сообщающихся друг с другом отдела.
В первый отдел клоаки открывается задняя кишка, во вто-
рой — парные мочеточники и протоки половых желез и
в третий, со спинной стороны, открывается толстостенное
образование — фабрициева сумка. За немногим
исключением (страусы) фабрициева сумка функционирует
только у молодых птиц, редуцируясь к периоду достижения
половой зрелости.
В фабрициевой сумке паразитирует ряд сосальщиков, ко-
торые с ее редукцией исчезают совсем, так что у взрослых
птиц отсутствуют.
Половая система. В половой системе птиц паразиты встре-
чаются значительно реже, чем в других системах органов. Од-
нако и здесь могут паразитировать некоторые сосальщики и
круглые черви, которые в отдельных случаях вызывают
кастрацию.
Мужская половая система представлена
двумя овальными семенниками, двумя семяпроводами, откры-
вающимися в клоаку, и копулятивным органом (у гусиных).
Семенники лежат с брюшной стороны переднего и сред-
него отделов почек (см. стр. 20), прикрепляясь короткой
брыжейкой к задней стенке тела. Как правило, левый семенник
развит сильнее правого. От внутренней поверхности каждого
семенника отходит по одному семявыносящему канальцу —
семяпроводу. Оба семяпровода в виде тонких белых трубочек
(прямых у молодых и сильно извитых у старых птиц) прохо-
дят к клоаке, открываясь в ее средний отдел, с боковых его
2*
19
сторон. У некоторых видов птиц семяпроводы перед впаде-
нием в клоаку образуют небольшое расширение — семенной
пузырек. Копулятивный орган хорошо развит у уток и зна-
чительно слабее у гусей; он представляет собой складку брюш-
ной стенки клоаки со спирально проходящим по ней семен-
ным желобком.
Женская половая система представлена не-
парным левым яичником, лежащим над верхними долями ле-
вой почки (см. ниже), и яйцеводом, проходящим от яичника
к клоаке. Правый яичник, как правило, рудиментарен, од-
нако у некоторых дневных хищных птиц он развивается до
полного функционирования; образующиеся при этом яйца
из-за отсутствия правого яйцевода проходят через ле-
вый.
Зрелый яичник имеет вид гроздевидного тела. Он состоит
из большого количества пузыревидных, различной величины
яйцевых клеток, богатых питательным желтком. К яичнику
плотно прилегает передняя расширенная часть яйцевода —
воронка. Зрелые яйцевые клетки поступают через воронку
в яйцевод, где оплодотворяются и покрываются оболочками.
Яйцевод в период размножения представляет собой широкую,
толстостенную, сильно извитую трубку, проходящую назад и
•открывающуюся в средней части клоаки. В период покоя он
сильно сжимается, становится тонкостенным и уменьшается
в размерах.
Выделительная система. Парные почки птиц лежат в углуб-
лениях подвздошных костей таза, по бокам позвоночника, и
являются вторичными почками. Они темнокрасного цвета,
двумя поперечными бороздами заметно разделяются на три
доли — переднюю, среднюю и заднюю. На границе передней и
средней долей с брюшной стороны каждой почки отходит по
мочеточнику — тонкая прямая трубочка, идущая назад и от-
крывающаяся в среднем отделе клоаки. Мочевого пузыря
у птиц нет. Над почками, непосредственно под семенниками
у самца и под яичником у самок, находятся небольшие и пло-
ские желтоватые надпочечники.
Паразиты, встречающиеся в почках птиц, главным образом
находятся в мочеточниках (сосальщики семейств Eucotyli-
dae, Renicolidae) и кровеносных сосудах (кровяные сосаль-
щики сем. Schistosomatidae). В ткани же почек могут встре-
чаться лишь личиночные формы сосальщиков и круглых чер-
вей, находящиеся в соединительнотканных цистах, и изредка
кокцидии.
Головной и спинной мозг. Головной мозг птиц
состоит из пяти отделов: переднего, промежуточного, среднего,
мозжечка и продолговатого мозга (рис. 8).
120
Наибольшую часть головного мозга занимает передний, или большой,
мозг, разделенный продольной бороздой на два гладких полушария. В пе-
редней части полушария, ближе к их нижней стороне, находятся неболь-
шие обонятельные доли, от которых берет начало пара обонятельных
нервов, идущих к носовым полостям. К заднему краю большого мозга при-
мыкает малый мозг, или мозжечок, поверхность которого покрыта попереч-
ными бороздками. По бокам из-под него выступают зрительные доли сред-
него мозга, центральная часть которого покрыта сверху мозжечком. Впе-
реди среднего мозга под большими полушариями располагается проме-
жуточный мозг, верх которого срастается с оболочкой большого мозга.
Нижние стенки промежуточного мозга утолщены и образуют зрительные
Рис. 8. Головной мозг голубя.
1 — сверху (из Павловского, 1938); 2 — сбоку (из Шульпина, 1940).
ч - передний мозг; б — средний; в — мозжечок; г — продолговатый
mi зг; д — спинной мозг; е — обонятельные доли; э/с — область
зрительного бугра; а— гипофиз; и— воронка гипофиза; к— голов-
ные нервы; л — глаза.
бугры, между которыми находится третий желудочек. От дна промежуточ-
ного мозга отходят парные зрительные нервы, образующие в своем осно-
вании перекрест и направляющиеся к глазам.
Позади перекреста зрительных нервов задняя стенка промежуточ-
ного мозга образует выступ — воронку, ко дну которой прикрепляется
мозговой придаток — гипофиз. Позади ножки гипофиза от мозга отходят
глазодвигательные нервы. Под мозжечком располагается продолговатый
мозг, переходящий непосредственно в спинной. От продолговатого мозга
отходит основная масса черепных нервов.
Спинной мозг, проходящий в позвоночном канале,
имеет цилиндрическую форму с глубокими брюшной и спин-
ной бороздами. На своем протяжении он образует два круп-
21
ных утолщения — шейное, откуда идут нервы к крыльям,
и поясничное, или крестцовое, дающее нервы к ногам. На всем
протяжении спинного мозга от него отходит большое коли-
чество различных нервов и нервных сплетений, иннервирующих
различные органы, мышцы, кожу и отдельные клетки туло-
вища птиц.
МЕТОДИКА СБОРА ПТИЦ ДЛЯ ПАРАЗИТОЛОГИЧЕСКОГО
ИССЛЕДОВАНИЯ
Для паразитологического исследования могут быть исполь-
зованы птицы, добытые различным способом. Наиболее про-
стым и надежным способом добычи диких птиц является от-
стрел их дробовым или мелкокалиберным ружьем. При этом
нужно иметь в виду, что сильно разбитая выстрелом из дро-
бового ружья птица мало пригодна для паразитологического
обследования, так как при нарушении целостности внутренних
органов паразиты могут быть перемещены в несвойственные
им места. Кроме того, разбитая птица скоро портится^ опере-
ние ее, сильно смоченное кровью, слипается, что очень затруд-
няет его осмотр и сбор наружных паразитов. Поэтому при от-
стреле средней и крупной птицы лучше пользоваться мелко-
колиберным ружьем, а при отстреле мелких птиц — дробо-
вым, применяя мелкую дробь или уменьшая заряд (на % или
г/4). Указания о номерах дроби для добычи птиц разной вели-
чины, о правильном расчете заряда, о количестве боеприпа-
сов, необходимых для добычи определенного количества птиц,
приводятся в книге Новикова (1953), которую полезно иметь
каждому полевому исследователю и для других целей, в част-
ности для знакомства с техникой снятия шкурки с птиц, с тех-
никой промеров, проведения наблюдений за птицами в при-
роде и т. д.
Для отлова живых птиц можно пользоваться различными
самоловными приспособлениями (сети, силки, самоловы и др.),
указанными в специальной литературе (Новиков, 1953).
Молодых нелетающих птиц и птенцов разного возраста
обычно берут из гнезд. Труднее добывать птенцов у вывод-
ковых птиц (куриные, кулики, пастушки, поганки, чайки),
у которых самка сводит своих птенцов с гнезда сразу же после
их вылупления. В этом случае нужно выслеживать взрослых
птиц с птенцами и, упорно преследуя птенцов, вылавливать
их живыми или убивать из ружья.
При паразитологическом обследовании домашних птиц для
скорейшего выявления наиболее вредных паразитов в пер-
вую очередь отбирают наиболее слабых и больных особей,
а затем уже для контроля и устанбвления степени зараже-
22
пця всего стада обследуют выборочно некоторое количество
здоровых птиц средней упитанности.
Для выяснения причин и условий, в которых происходит
заражение различными паразитами, очень важно обследовать
птиц разного возраста.
Определение возраста у домашних птиц не вызывает за-
труднений. Птенцов диких птиц по характеру оперения
условно разбивают на три возрастные группы: 1) пуховые
птенцы, 2) пуховые птенцы с появляющимися маховыми
перьями и 3) вполне оперившиеся птенцы.
При работе с колониальными птицами более точное опре-
деление возраста птенцов, с точностью до нескольких дней,
можно производить, ориентируясь по размерам и оперению
птенцов этого же вида птиц из контрольных гнезд; последние
желательно наметить заранее и ежедневно наблюдать за ро-
стом и развитием в них птенцов.
Лётных птенцов и молодых птиц прошлого года отличают
от взрослых по окраске и по наличию у них фабрициевой
сумки.
Добытых живых птиц для вскрытия хлороформируют, за-
крывая их носовые отверстия ватой, хорошо смоченной хлоро-
формом; вату накрывают куском кальки и голову птицы плотно
заматывают полотенцем. Смерть наступает через 10—15 ми-
нут. Мелких птиц удобнее умерщвлять, помещая их в закры-
тую банку с комком ваты, смоченной хлороформом.
При отсутствии хлороформа птиц убивают и другими спо-
собами. У мелких птиц и птенцов сжимают большим и указа-
тельным пальцами правой руки грудную клетку в области
сердца до тех пор, пока оно не перестанет биться. Крупных
и средней величины птиц лучше убивать ударом по голове
или переламывая им шею.
Каждую убитую на охоте птицу сразу же помещают в от-
дельный, плотно завязывающийся мешочек, устраняя этим
возможность переползания наружных паразитов с одной
птицы на другую и ухода с тела мертвой птицы особо по-
движных паразитов (блох, кровососок).
Приступая к обследованию, нужно знать видовую принад-
лежность данной птицы. Однако прежде чем приступить к оп-
ределению, необходимо, вынимая птицу их мешочка, собрать
с нее особо подвижных наружных паразитов (см. стр. 25),
затем сделать необходимые для определения измерения, взве-
сить птицу и результаты этого записать в дневник (см. стр. 96).
В дневник записывают следующие измерения: 1) общую длину
(от кончика клюва до конца хвоста; рис. 9, 7,а); 2) длину
крыла (измеряется на сложенном крыле, от кистевого сочле-
нения до кончика самых длинных маховых перьев; рис. 9, 7,6);
23
3) размах крыльев (растянув птицу, как показано на рис. 9,2,
измеряют по спине расстояние от вершины одного крыла до вер-
шины другого); 4) длину хвоста (от основания средних д0
конца самых длинных рулевых перьев; рис. 9, 3); 5) длину
цевки (от впадины сустава у задней поверхности ее верхнего
конца до соединения ее передней поверхности с основанием
среднего пальца; рис. 9,4); 6) длину клюва (сверху по прямой
линии от основания до конца; рис. 9, 5).
Все сделанные измерения записываются в дневник в мил-
лиметрах, а не в сантиметрах.
Взвешивание лучше производить на чашечных весах с точ-
ностью до 1 г. При отсутствии таких весов крупных и средних
Рис. 9. Измерение частей тела птиц.
1: а—общая длина, б — длина крыла; 2— размах крыльев; 3 — длина хвоста,
4 — длина певки; 5 — длина клюва. (;. 2 — из Новикова, 1949; 3—5 — по Демен-
тьеву и Гладкову 1951).
птиц взвешивают на безмене, а мелких — на аптекарских ве-
сах. Вес птиц записывают в дневнике в граммах, а не в деся-
тых и сотых долях килограмма.
Определяют птиц по специальным определителям (Бутур-
лин и Дементьев, 1934—1941; Дементьев, Гладков, Птушенко
и Судиловская, 1948; Иванов, Козлова, Портенко и Тугари-
нов, 1951, и др.). Записанные в дневнике промеры в дальней-
шем служат проверкой правильности полевого определения
птиц. Кроме того, в случаях сомнений в точности определения
нужно по возможности снять и сохранить шкурку (Новиков,
1953) или оставить от птицы ногу, голову и крыло.
Количество птиц, необходимое для того или иного парази-
тологического исследования, определяется задачами послед-
него.
24
Для общей характеристики паразитофауны наиболее рас-
пространенных видов птиц определенного района минималь-
ным количеством обследованных особей будет 15—20; ред-
кие же виды птиц вскрываются в доступном количестве. Ука-
занное число вскрытий обосновано тем, что при большом видо-
вом составе птиц исследуемого района трудно осмотреть и
вскрыть за один сезон больше 15—20 экземпляров каждого
вида. Данное же число вскрытий дает возможность выяснить
основную фауну паразитов.
При обследовании одного или нескольких видов хозяй-
ственно важных диких или домашних птиц число вскрытий не-
обходимо по возможности увеличить, причем для удобства
сравнения результатов это число должно быть приблизи-
тельно одинаковым в разные сезоны работы. Этого же нужно
придерживаться и при проведении других эколого-парази-
тологических работ, прослеживающих изменения (динамику)
паразитофауны птиц, связанные с возрастом, местом обита-
ния, миграцией и другими биологическими особенностями
хозяина.
НАРУЖНЫЙ ОСМОТР ПТИЦ И СБОР ЭКТОПАРАЗИТОВ
В начале паразитологического обследования в мешочек
с птицами, принесенными и охоты, во избежание расползания
быстро передвигающихся насекомых (блох и кровососущих
мух) помещают комок ваты, смоченной эфиром или хлоро-
формом. Через несколько минут мешочек развязывают и из-
влекают птицу над белым листом бумаги или над эмалирован-
ной ванночкой достаточной величины. Паразитов вытряхивают
из мешочка на белую бумагу и собирают по систематическим
группам в различные солонки или пробирки с фиксатором,
помещая туда этикетки (см. стр. 104), а затем уже приступают
к непосредственному осмотру оперения птиц, перебирая их
перья пинцетом.
1.	Блохи. Чаще встречаются в гнездах птиц и реже на их
теле. В своем развитии они проходят полный метаморфоз:
яйцо—личинка—куколка—взрослое насекомое. Яйца белые,
овальные, достигают 0.5 мм в длину. Тело личинки (рис. 10, 2)
белое, червеобразное (до 2—4 мм в длину), лишено ног и по-
крыто длинными волосками. Куколки окружены паутинным
коконом овальной формы.
Все фазы развития птичьих блох можно обнаружить в под-
стилке гнезда многих диких и домашних птиц или в сухом
мусоре курятников, где встречаются и взрослые особи. При
необходимости полного сбора блох нужно обследовать и гнезда
интересующих птиц (Мулярская, 1953).
25
Живых блох среди перьев птиц легче ловить тонким пин-
цетом или кисточкой, смоченной спиртом.
На птицах и в их гнездах (особенно в наземных гнездах
воробьиных, чаек, уток, куликов и др.) обитают главным об-
разом блохи рода Ceralhophyllus и значительно реже предста-
вители других родов (например род Myoctenbpsylla в гнездах
арктических птиц).
Определение птичьих блох до вида производят по рабо-
там Иоффа и Тифлова (1938) и Дарской (1950); определение
до рода — по определительной таблице, составленной Иоф-
Рис. 10. Некоторые блохи птиц.
1 — Cerathophyllvs gal lira0; 2 — личинка С. gallinae; 3 — Echidnophaga galli-
nacea. (По Павловскому, 1948).
фом для руководства по паразитологии Е. Н. Павловского
(1948).
Широко распространенными и важными в хозяйстве ви-
дами являются: Cerathophyllus gallinae (рис. 10,1) — обыч-
ная блоха кур, часто встречающаяся и в гнездах других птиц,
и Echidnophaga gallinacea (рис. 10,3) — паразит домашних
птиц и животных, а иногда и человека, часто встречающийся
на ежах и других диких животных. Последний вид блохи
прыгает плохо и обычно плотно прикреплен ротовыми орга-
нами к коже хозяина в окружности его глаз, на голове и на
затылке.
Находясь в гнездах или курятниках, блохи непрерывно
нападают на птиц, сосут их кровь и особенно беспокоят птен-
цов, тормозя их рост и развитие.
26
На птицах и в их гнездах, кроме специфичных им видов
блох, нередко встречаются чуждые им блохи грызунов. Эти
случаи чаще наблюдаются у птиц, имеющих тесный контакт
с грызунами (хищные птицы, питающиеся грызунами и прино-
сящие их в гнездо для птенцов) или с их норами (различные
воробьиные, строящие наземные гнезда близ нор или исполь-
зующие старые норы для постройки гнезд.)
Таким образом, в некоторых районах птицы могут способ
ствовать расселению блох грызунов, среди которых встречаются
вады, имеющие большое эпидемиологическое значение.
2.	Кровососущие мухи. При исследовании редко встре-
чаются на взрослых птицах, так как крылатые виды только
периодически нападают на птицу и, напившись крови, поки-
дают се, а бескрылые или плохо летающие виды больше связаны
с гнездом и птенцами.
Сбор кровососущих мух производят сразу после добычи
птицы, внимательно осматривая ее тело и главным образом
места с более редким оперением. У птенцов с развивающимся
оперением, у которых особенно часто встречаются бескрылые
кровососущие мухи — Camus haemapterus (рис. 11, 7), из-
любленным местом обитания последних являются участки
тела, лишенные оперения: подкрыловые впадины, складки кожи
между основаниями ног и телом, на кистевом суставе крыла и
реже на аптериях спины и шеи. Развитие мух, как и блох,
проходит с полным превращением и у С. haemapterus тесно
связано с гнездом, где обитают его личинки и находятся ку-
колки в блестящих красно-коричневых ложнококонах (пу-
парий), достигающих 2 мм в длину и 0.7 в ширину. Взрослые
мухи по вылуплении из пупария имеют вполне развитые
крылья, которые, однако, быстро обламываются, сохраняясь
у самцов несколько дольше, чем у самок (рис. 11,7). С. hae-
mapterus является широко распространенным паразитом, встре-
чающимся главным образом на птенцах воробьиных, хищных,
аистообразных и других птиц и только в гнездовой период.
Среди крылатых кровососущих мух (Hippoboscidae) для
птиц специфичными видами являются: Ornithoponus ardeae
(рис. 11,2) — паразит цапель; Lynchia тайга — южный па-
разит голубей (чаще встречается на птенцах); Stenopteryx
hirundinis (рис. 11,3), с узкими, не приспособленными к по-
лету крыльями, — паразит ласточек и их птенцов; Oljersiae
spintfera — паразит крупных дневных хищных птиц.
Менее специфичными видами являются: Omithomyia jrin-
gillina (рис. 11,5), обнаруженная на многих воробьиных, на
пастушках и куликах; О. chloropus—на скворцах и многих
других птицах; О. avicularia — на воробьиных, кукушках,
дятлах, голубях, цаплях, дневных хищных птицах и совах;
27
Рис. И. Различные кровососущие мухи птиц.
1 — Camus haemapterua (а — самец, б—самка); 2 —Ornithnponus ardeae (самка);
3— Stenopteryx hirundinis (Самка); 4 — Ornithoica iurdi (самка); 5—Ornithomyia
fringillina (самец); 6 — Ornitheia wetallica (самка). (I — по Сэгюи, 1929; 2—6 — no
Фалкоц, 1926).
Рис. 12. Личинка
мухи Protocalli-
phora coerulea.
(По Сэгюи, 1929).
Orrrithoica turdi (рис. 11,4), — на каменном дрозде и серой
мухоловке; Ornitheza metallica (рис. 11,6) — на сойке и серой,
цапле.
Кроме перечисленных взрослых кровососущих двукрылых,
личинки которых ведут свободный образ жизни, питаясь ор-
ганическими остатками гнезда, на птенцах различных воробь-
иных птиц встречаются личинки мух семейства тахин (род
Protocalliphord), питающихся кровью и ведущих паразити-
ческий образ жизни. Наиболее распространенным видом на
территории Советского Союза является Р. coerulea (рис. 12),
паразитирующая на птенцах ласточек, воробьев, жаворонков
и других воробьиных. Значительно реже на
этих же птицах может встречаться A azurea.
Сбор всех кровососущих мух и их ли-
чинок с птиц производят мягким пинцетом,
концы которого при ловле быстро бегаю-
щих С. haemapterus предварительно смачи-
вают в спирту. Все стадии развития кровосо-
сущих мух обычно хранят в 70°-м спирте,
однако взрослых мух можно сохранять в
сухом виде, пользуясь обычной энтомоло-
гической методикой (Рихтер, 1951).
Ложнококоны кровососущих мух, собран-
ные из гнезд птиц, рекомендуется оставлять
нефиксированными в сухих пробирках до
момента вылупления из них насекомых.
Кровососущие мухи могут быть перенос-
чиками некоторых кровепаразитов — спи-
рохет, споровиков, филярий и др., поэтому
сборы их представляют большую ценность.
Определение кровососущих мух< произво-
дят по книге Штакельберга (1933).
3.	Пухоеды. Являются постоянными наружными пара-
зитами птиц и встречаются на последних во всех фазах
развития (яйцо, личинка, взрослое насекомое). Они состав-
ляют крупную группу парангов, большинство представи-
телей которой, как правило, обитает на различных группах
перьев и реже на коже, питаясь преимущественно частями
пера и слущивающимися чешуйками эпидермиса. Многие пухо-
еды могут питаться и кровью, выступающей при повреждении
кожи птиц, однако к активному питанию кровью способны
из них лишь очень немногие. Пухоедами заражены почти все
виды птиц, очень рано заражаются ими и птенцы. На одном
виде хозяина одновременно могут встречаться несколько ви-
дов пухоедов, которые строго приурочены к определенным
участкам оперения (рис. 13). Такая специализация отдельных
. 29
видов к характеру оперения определенных частей тела хозя-
ина обязывает при сборе материала условно различать видц
и точно указывать места их обитания.
Яйца пухоедов белые, более или менее овальные, с плотноц
наружной оболочкой, гладкой или имеющей точечную или сетча-
тую скульптуру. Длина их достигает 0.5 2.5 мм. ria верхнем
полюсе яйца находится крышечка (рис. 14, 1,2), а нижним
полюсом оно приклеивается к перу. Отдельные виды пухое-
Рис. 13. Схема мест обитания раз-
личных видов пухоедов на теле
каравайки. (По Дубинину, 1938).
дов прикрепляют своп яйца
к различным частям опере-
ния как на контурных перьях
между бородками (рис. 15),
или в пуховой части опахал,
так и в основании пуховых
перьев, при этом по одному
(рис. 14,7) или большими
скоплениями (рис. 14,2). Ли-
чинки пухоедов похожи на
взрослых насекомых, отли-
чаясь от них меньшими раз-
мерами, более светлой окра-
ской и непропорционально
большой головой.
Пухоеды, как и другие
наружные паразиты, при ох-
лаждении убитой птицы поки-
дают ее, выползая на поверх-
ность перьев и на стенки ме-
шочка, в котором она нахо-
дится.
Сбор пухоедов с птицы
производят начиная с голо-
вы, отгибая пинцетом не-
большое количество перьев
и тщательно осматривая их
нижнюю сторону и открытую верхнюю сторону нижеле-
жащих перьев. Последовательно перебирая таким образом
перья (от головы по верхней стороне шеи и спине, за-
тем по нижней стороне шеи, груди, живота, бедер и далее
верхние и нижние кроющие перья крыла), осматривают все
оперение птицы и найденных паразитов пинцетом собирают
в солонку или пробирку с 70°-м спиртом.
Пухоедов из различных мест оперения одной птицы при
фаунистическом обследовании можно собирать в общую про-
бирку, но для целей последующей экологической обработки
необходимо их собирать и фиксировать отдельно. В обоих
зо
случаях очень важно как можно точнее отмечать места лока-
лизации разных видов. Необходимо также указывать места
массовой откладки яиц, часть которых вместе с пером фикси-
руют в одной пробирке с пухоедами, собранными с данного
участка оперения.
Рис. 14. Кладки некоторых пухоедов.
1 — яйцо Мепороп plegadis на пуховом пере каравайки;
2 — кладка М. gallinae на контурном пере куры; 3 — отдель-
ное яйцо М. gallinae.
Число видов пухоедов, найденных на одной птице, может
достигать 5 и более, и определение их в полевой обстановке
не представляется возможным. Однако при сборе нужно раз-
личать пухоедов по общему типу наружного строения, которое,
31
на первый взгляд, может быть сходным у представителей не-
скольких близких родов.
Наиболее распространенные роды пухоедов, встречающиеся у мно-
гих диких и домашних птиц, но внешнему строению могут быть разбиты
на несколько типов.
Рис. 15. Яйца пухоедов — Eslhioplerimthebraeurnua пле-
чевых перьях серого журавля. (Фото В. Дубинина).
I т и п включает сравнительно мелкие, округлые, быстро подвижные
формы; голова у них овальная, поперечно вытянутая, ноги бегательного
типа. Встречается па перьях тела. Сюда относятся следующие пухоеды.
Род Мепороп (рис. 16, 1) — содержит большое количество видов, па-
разитирующих на пластинчатоклювых, куликах, чайках, пастушках,
аистообразных, куриных и хищных птицах; встречается в пуху и па мел-
32
id
Рис. 16. Различные виды пухоедов (самки).
г— Menopon gaUinae: 2 — Menaranthus stramineus; 3 — Colpocephalum pectin ireiilrs;
4 — Tnnoton (ins^rinum; 5 — I.iveurus cat onis; 6 — Anaticola dnsrria; 7 — De^erlilin
delicata; 8 — Anatoecus dentatus; 9 — Gnwodes	10 — Goniocoles gioas. .11 *
Благовещенскому, 1940, 1951).
ких перьях тела, реже на крупных и жестких кроющих перьях. рОд
Menacanthus (рис. 16, 2) — менее многочисленный род, близкий к предьь
дущему; встречается в той же части оперения у диких и домашних кур^
ных и воробьиных. Род Сolpocephalum (рис. 16, 3) — похож на MenopQri
ио отличается наличием глубокой выемки в области глаза (орбитальпый
синус); многочисленные представители паразитируют па ряде диких
(пластинчатоклювых, аистообразных, дневных хищных) и домашних гу.
синых птиц; встречается на крупных маховых и рулевых перьях и па мел-
ких кроющих перьях крыла и хвоста, реже на перьях тела. Род Лс/ог.
nithophilus — близок к предыдущему; представители его паразитируют
на куликах и чайках. Род Neocolpocephalum — близок к Сolpocephalum
встречается на соколиных, куликах, домашних и диких голубях, на труб’,
коносых и альбатросах.
II тип включает представителей рода Trinolon (рис. 16, 4). Довольно
крупные, удлиненно-овальные пухоеды с треугольной головой и массив-
ными ногами бегательного типа. Очень подвижные виды, встречающиеся
в различных частях оперения диких и домашних пластинчатоклювых.
III тип объединяет длинных плоских малоподвижных пухоедов
с вытянутой в длину треугольной головой; с тонкими длинными ходиль-
ного типа ногами. Держатся на длинных кроющих контурных перьях
спины и крыла. Сюда относятся следующие роды.
Род Lipeurus (рис. 16, <5) — на диких и домашних куриных; род Anali-
cola (рис. 16, 6) — па диких и домашних пластинчатоклювых; род Аг-
deicola — па апстообразных; род Columbicola — на голубях.
IV тип включает богатый видами род Degeeriella (рис. 16, 7), пред-
ставители которого по удлиненной форме тела и головы легко могут быть
спутаны с представителями предыдущего типа. Отличительной их особен-
ностью являются более короткие ноги хватательного типа. Чаще всего
они, как и Мепороп, встречаются на мелких перьях тела, реже — на круп-
ных кроющих.
V тип включает пухоедов различной величины, с округлым те-
лом и сравнительно большой головой в форме равностороннего треуголь-
ника с притупленной вершиной; ноги у них короткие, толстые, хвататель-
ного типа. Формы малоподвижны, чаще встречаются прикрепленными
к перьям головы и шеи. К типу относятся следующие роды.
Род Analoecus (рис. 16, 8) — содержит мелкие виды, встречающиеся
на пластинчатоклювых; род Philoplerus — богат видами, паразитирую-
щими на куликах, чайках, кукушках и воробьиных; род Ibidoecus—
на ибисах и совах.
VI тип объединяет пухоедов различной величины, с большой и
широкой головой и широко овальным телом; ноги у них хватательного
типа. К типу относятся следующие роды.
Род Goniodes (рис. 16, 9) — на диких и домашних куриных и голу-
бях; род Goniocotes (рис. 16, 10) — на куликах, диких и домашних кури-
ных и голубях.
Перечисленные, условно выделенные 6 типов пухоедов не
исчерпывают всего многообразия форм, паразитирующих на
птицах, однако это подразделение позволяет распознавать наи-
более часто встречаемых представителей разных родов. При
сборе пухоедов не надо стремиться определять их до рода;
в полевой обстановке вполне достаточно будет, если исследо-
ватель, собирающий материал, на основании вышеуказанных
или других признаков сможет отличать роды пухоедов друг
от друга, обозначая их условно буквами алфавита, которые
34
закрепляются за каждым родом на все время полевого иссле-
дования. Определение пухоедов до рода и вида производят
в лаборатории по специальным работам (Благовещенский,
1940, 1948, 1951, и др.).
4.	Иксодовые клещи. Являются кровососущими времен-
ными паразитами, главным образом млекопитающих и значи-
тельно реже птиц и рептилий. Кроме непосредственного вреда,
который они приносят хозяину, повреждая его кожу, выса-
сывая кровь и причиняя сильное беспокойство, иксодовые
клещи имеют большое эпизоотологическое и эпидемиологиче-
ское значение как переносчики возбудителей ряда опасных
заболеваний человека и животных (туляремия, клещевой эп-
Рис. 17. Голова молодого грача с нимфами Hyalomnta
plumbe ит.
цефалит и др.), к которым оказываются восприимчивыми и
некоторые птицы.
В своем развитии клещи проходят фазы личинки, нимфы
и взрослого клеща (рис. 18). Личинки имеют 3 пары нсг.
Нимфы, как и взрослые клещи, имеют 4 пары ног, но отли-
чаются от последних меньшими размерами и отсутствием по-
лового отверстия. У самцов обе поверхности тела покрыты
щитками, у самок же имеется лишь небольшой спинной щи-
ток в передней части тела.
На птицах чаще встречаются личинки и нимфы и значи-
тельно реже взрослые особи. Обычным местом прикрепления
клещей к птице является голова, а именно места, слабо защи-
щенные перьями: на веках, вокруг ушных отверстий, на ниж-
ней мягкой части клюва и в углах его (рис. 17). Кроме того,
отдельные особи могут встречаться на шее, в складках кожи
3*	35
под крыльями и у основания ног. При осмотре птиц на пухо-
едов одновременно обнаруживаются и клещи, которых соби-
рают в отдельную пробирку. При сосании крови клещи прочно
прикрепляются к коже и снимать их нужно очень осторожно
чтобы не оторвать хоботок.
В том случае, если птица убита, присосавшихся клещей
лучше вырезать с участком кожи, с которой и фиксировать
в зависимости от дальнейших целей в соответствующем фикса-
торе (см. стр. 99). Плотно прикрепленных взрослых клещей и
нимф рекомендуют предварительно смазать маслом или ке-
росином, чтобы закупорить дыхальца и вызвать удушье, после
чего клещи ослабевают и легко снимаются с кожи хозяина
неповрежденными (Павловский, 1928). Личинок же можно
осторожно соскрести скальпелем с кожи птицы, не повреждая
их хоботка. При сборе необходимо различать фазы развития
клещей, отмечая в дневнике найденное количество каждой
фазы.
Напившихся нимф клещей рекомендуется 'оставлять жи-
выми, чтобы они превратились в самцов или самок, что важно
для последующего определения их.
Для специальных исследований часть клещей оставляют
живыми. С этой целью их особенно осторожно снимают и по-
мещают в банку или пробирку с несколькими полосками фильт-
ровальной бумаги, закрытую ватным тампоном. Необходимо
увлажнять тампон или фильтровальную бумагу несколькими
каплями воды. Приемы содержания живых клещей, методы
их выведения и исследования указаны в специальных работах
Павловского (1928), Сердюковой (1940), Олсуфьева (1941).
На птицах встречается 18 видов иксодовых клещей, в том
числе виды, имеющие большое эпизоотологическое и эпидемио-
логическое значение. Из видов рода Ixodes обнаружены в фазе
личинок и нимф на птицах, ведущих преимущественно назем-
ный образ жизни (некоторые куриные, воробьиные и др.), —
7. ricinus (рис. 18) — переносчик возбудителя клещевого эн-
цефалита, туляремии и пироплазмоза крупного рогатого скота,
и I. persulcatus — переносчик клещевого (весенне-летнего) эн-
цефалита. Кроме того, из представителей этого рода во всех
фазах развития на птицах встречаются: I. redikorzevi — па-
разит мелких млекопитающих и птиц, главным образом во-
робьиных (пеночка, чекан, дрозд, жаворонок и др.) и реже
куриных (кеклик); I. apronophorus — переносчик возбудителя
туляремии, паразит грызунов и птиц (водяная курочка, дрозд);
I. frontalis — на многих воробьиных, коростеле и сером гусе;
I. berlesei — на диких и домашних голубях, на многих во-
робьиных (скворец, дрозд, горихвостка) и камчатской кре-
четке; I. semenovi — на алтайской завирушке; /. signatus —
36
Рис. 18. Ixodes ricinus.
i —- личинка- 2 — нимфа; з — взрослая самка; 4 — взрослый самец (а— со спинной стороны:
О — с брюшной стороны). (2, 2 — по Галузо. 1949; 3, 4 — по Померанцеву, 1950).
на бакланах; /. putus — на островных морских птицах (пинг-
вины, бакланы, чайки).
Из видов рода Haemaphysalis в фазе личинок и нимф ветре»
чаются на птицах: Н. punctata (рис. 19, 7) — на куриных
(куры, фазаны, куропатки) и воробьиных (грач, галка, скво-
рец и др.); Н. sulcata — переносчик возбудителя бруцеллезу
крупного рогатого скота, редкий паразит птиц, гнездящихся
в норах (сизоворонка, чекан, поползень и др.) или вьющих
гнезда на земле (жаворонок и др.); Я. otophila — на степном
жаворонке; Н. numidiana — на фазане, цесарке, куропатке
и кеклике; Н. pavlovskyi — единично на фазанах; Н. concinna —
переносчик риккетсий клещевого сыпного тифа и Н. japonica
dou°lasi — на воробьиных птицах.
Из представителей других родов иксодовых клещей на пти-
цах зарегистрированы: Rhipicephalus turanicus — паразит до-
машних и диких млекопитающих, единичные взрослые клещи
найдены на курах, и Hyalomma plumbeum (рис. 19, 2) — па-
разит домашних животных и диких млекопитающих (пере-
носчик возбудителя нутталлиоза и, возможно, пироплазмоза
лошадей), в фазе личинок и нимф особенно часто встречаю-
щийся на степных и реже на других птицах (серая куропатка,
дрофа, жаворонок, воробей, грач, кулик-авдотка, сыч, домаш-
ние куры, утки, индейка).
Определение клещей до вида производят в лаборатории
по определителю Померанцева (1950).
5.	Аргасовые клещи. Внешне отличаются от иксодовых
отсутствием спинного щитка и смещением ротовых органов
у взрослых особей на брюшную сторону. Эти клещи, хотя и
являются обычными паразитами птиц, но на самих хозяевах
встречаются реже, чем иксодовые. Последнее объясняется тем,
что аргасовые клещи чаще нападают на хозяина и сосут его
кровь ночью, причиняя птицам большое беспокойство. Обыч-
ными местами их локализации являются голова, шея, внут-
ренняя сторона бедер и область под крыльями. Насосавшиеся
клещи покидают птиц и тогда их можно обнаружить в местах,
лишенных света, — в сухих расщелинах и трещинах в земле,
в стенах хозяйственных построек, где обитают животные (птицы,
домашний скот), в насестах и под корой деревьев, на которых
ночуют птицы.
Личинки, нимфы и отдельные взрослые клещи могут за-
держиваться на нелетающих птицах (курах) и на птенцах
диких птиц в течение нескольких дней, прячась от света под
крылья, где их чаще и обнаруживают при осмотре
птиц.
Техника осмотра птиц на аргасовых клещей та же, что
и на иксодовых клещей.
38
Рис. 19. Некоторые иксодовые и аргасовые клещи,
паразитирующие на птицах.
Л — Нaemaphysalis punctata; 2 — Hyalomma plumbeum; 3 — Argos persicus;4 — Orni
inodorus papillipet, (1 — по Померанцеву, 1950; 2—4— по Лотопкому).
Обычными южными видами являются: Argas persicus
(рис. 19, 3) — переносчик спирохетоза домашних птиц, встре-
чается на курах, утках, гусях, а также на грызунах и неко-
торых диких птицах (воробей, голубь и др.), живущих близ
жилья человека; A. rejLexus — переносчик спирохетоза птиц,
встречается на голубях, курах и других домашних птицах,
а также в гнездах воробьев; Ornithodorus papillipes (рис. 19, 4) —
паразит диких и домашних млекопитающих (преимущественно
грызунов), изредка нападающий на человека и домашних
птиц (куры); встречается в норах различных млекопитающих
и хозяйственных постройках, где содержатся животные; от-
дельные особи его обнаруживаются в норовых гнездах птиц
(сизоворонка, сизый голубь). О. papillipes имеет большое эпи-
демиологическое значение как переносчик возбудителя кле-
щевого возвратного тифа человека.
6.	Гамазовые клещи. Мелкие (0.3—2.7 мм длиной), под-
вижные клещики, присасывающиеся к хозяину на короткий
срок (исключая носовых клещей сем. Rhinonyssidae) и посто-
янно переходящие с места на место. На птицах встречаются
представители трех семейств: Dermanyssidae и Liponyssidae—
обитающие на теле птиц, и Rhinonyssidae — паразиты носо-
вой полости, а иногда трахей, легких и воздушных мешков.
Немногие виды одновременно могут встречаться и на теле птиц
и в их гнездах.
При осмотре птицы на пухоедов, блох, кровососущих мух
одновременно на теле и перьях могут быть найдены и гама-
зовые клещи. Сбор их производят тонкой кисточкой, концом
пинцета, препаровальной иглой или заостренной деревянной
палочкой, предварительно смачиваемой в 70°-м спирте.
Носовые полости птиц, где обитают гамазовые клещи сем.
Rhinonyssidae, осматривают позже, после внутреннего обсле-
дования (см. стр. 86).
При сборе гамазовых и других клещей желательно, чтобы
исследователь умел различать личинок, нимф и взрослых кле-
щей и в дневнике вел подсчет каждой фазы в отдельности (Бре-
гетова, 1952). Это позволит еще в полевой обстановке разо-
браться в цикле развития клещей и сезонности их паразитиро-
вания на хозяине. Сбор гамазовых клещей с тела и из носовых
полостей производят в разные пробирки с 70°-м спиртом.
Кроме непосредственного вреда, который причиняют гама-
зовые клещи птицам при сосании их крови, некоторые из них
имеют большое эпизоотологическое и эпидемиологическое зна-
чение как переносчики различных трансмиссивных заболева-
ний. Важным в хозяйственном отношении представителем
сем. Dermanyssidae является куриный клещ Dermanyssus
gallinae, переносчик возбудителя энцефаломиэлита лоша-
40
дей (в США) и, возможно, энцефалитов, естественным резер-
вуаром которых являются птицы.
D. gallinae (рис. 20, 1) по образу жизни является гнездо-
вЬ1м паразитом (тесно связанным с жилищем хозяина), питаю-
щимся кровью преимущественно кур и других домашних (фа-
Рис. 20. Различные гамазовые клещи (самки) птиц.
1 — Dnrmanyssus qallinae* 2 — Bd^llonyssus sylviarum; 3 — Stprnostoma tra-
cheacoium', 4 — Sternostomum rhinolethrum, (/ и 2 — по Хирсту, 1922;
3 — по Лоуренс, 1948; 4 — ориг.).
зан, индейка*, голубь) и диких (голубь, воробей, галка, ворона,
ласточка) птиц. Изредка нападает на человека и некоторых
домашних животных, содержащихся в одном помещении с пти-
цей. Как правило, клещи нападают ночью и, напившись крови,
прячутся в щелях насестов, пола и стен курятников или в гнез-
дах диких птиц. Отдельные особи могут быть найдены на теле
41
птиц, под крыльями и в складках кожи с внутренней стороны
ног.
Из сем. Liponyssidae, представители которого паразити-
руют на мелких млекопитающих, птицах и пресмыкающихся,
широко распространенным на птицах видом является птичий
клещ — Bdellonyssus sylviarum (рис. 20, 2).
Представители сем. Rhinonyssidae характеризуются корот-
кими толстыми ногами, снабженными массивными якореобраз-
ными коготками, которыми они плотно прикрепляются к сли-
зистой оболочке носовой полости птиц. Обычным представи-
телем этого семейства в пределах Советского Союза является
Sternostomum rhinolethrum (рис. 20, 4) — паразит носовой по-
лости диких и домашних гусей. Клещи этого семейства встре-
чаются и у других гусиных, а также у чистиковых, гагаровых,
куликов, пастушков, дроф, чаек, крачек, аистообразных, сов,
козодоев, сизоворонок, стрижей и некоторых воробьиных птиц.
Интересным представителем является Sternostoma tracheacolum
(рис. 20, 3), паразитирующий в трахее, легкий и воздушных
мешках у некоторых воробьиных (канарейка, деревенская ла-
сточка, дроздовидная камышевка).
Определение клещей, паразитирующих в носовых полостях
птиц, производят по работе Брегетовой (1951).
7.	Краснотелковые клещи. Паразитируют только в фазе
личинок на коже млекопитающих (главным образом грызу-
нов) и реже птиц. Половозрелые клещи и нимфы ведут сво-
бодный образ жизни.
Паразитические личинки краснотелок, имеющие как и у дру-
гих клещей три пары ног, отличаются красной, оранжевой
или розовато-белой окраской тела и достигают не более 0.22—
0.45 мм в длину. Обычным местом их локализации на птицах
является нижняя часть тела — оперенная часть ног, бедра,
живот, область анального отверстия, реже грудь и голова
(вокруг глаз). Личинки группами прикрепляются к коже хо-
зяина и при сильном заражении вызывают ее покраснение
в этих местах.
При осмотре птиц на других наружных паразитов легко
обнаруживаются и личинки краснотелок. Сбор их производят
мягким пинцетом, перенося паразита с тела в пробирку или
солонку с фиксатором (см. стр. 99).
Строгой приуроченности личинок краснотелок к какому-
либо хозяину, как правило, не наблюдается. Они могут встре-
чаться на птицах, грызунах и других млекопитающих.
Личинки краснотелок известны с куриных птиц (кура,
фазан, тетерев, куропатка, перепел), некоторых воробьиных
(воробей, сорока, ворона), с цапель, кукушек, козодоев, рак-
шеобразных и попугаев. Характерными представителями яв-
42
Рис. 21. Личинки краснотелковых иклещей, паразитирующие на\птицах.
1 — Trombicula autumnalis; 2 — Neoschoengaslia phasianica. (По Шлугер)<
ляются: Trombicula autumnalis (рис. 21, 1) — личинки пара-
зитируют на грызунах и птицах (фазан, перепел и воробей),
и Neoschoengastia phasianica (рис. 21, 2) — личинки обнару-
жены только на птицах (фазан, перепел и сорока).
8.	Перьевые клещи. Являются высоко адаптированными
паразитами птиц, живущими главным образом между бород-
ками крупных маховых и кроющих перьев крыла и хвоста,
реже на перьях тела или в очинах перьев. Некоторые группы
перьевых клещей паразитируют на коже под чешуйками эпи-
дермиса или роговыми чешуйками ног (сем. Epidermoptidae),
вызывая чесоткоподобные заболевания, а также в подкожной
клетчатке (клещи рода Cytolichus, рис. 24, 4) и дыхательных
путях.
Эти мелкие клещики являются постоянными паразитами
птиц, встречающимися на хозяине во всех фазах развития —
в фазах яйца, личинки, протонимфы, телеонимфы и взрослых
клещей. У некоторых видов (семейства Plerolichidae и Procto-
phyllodidae) в развитии обнаруживается дополнительная ста-
дия дейтонимфы (рис. 22), ведущая эндопаразитический образ
жизни в подкожном рыхлом соединительнотканном слое, где
происходит наибольшее накопление жировых отложений.
Перьевые клещи встречаются почти на всех птицах. Самцы,
как правило, резко отличаются от самок по форме и размерам
тела и ног, а также по наличию различных вторично-половых
придатков.
Отдельные виды, а иногда и роды перьевых клещей оказы-
ваются строго приуроченными к определенным группам или
видам птиц и отдельным участкам их оперения. Одни роды
клещей (Zachwatkinia, Microspalax, Michaelichus, Frey ana и
др.) обычно паразитируют на первостепенных маховых перьях,
а другие (Alloptes, Rwoltasia, Proctophyllodes и др.) на второ-
степенных маховых перьях крыла. Своеобразные виды родов
Syringobia, Dermoglyphus, Thecarthra обычно обитают в очи-
нах маховых и кроющих перьев крыла, а представители ро-
дов Knemidocoptes, Epidermoptes, Rivoltasia и др. (сем. Еро-
dermoptidae) — на коже и на пуховых перьях тела, иногда
же под роговыми чешуйками ног.
Однако эта строгая локализация паразита может сильно
изменяться в зависимости от физиологического состояния
хозяина (миграция, гнездовой период, линька и т. д.) и под
влиянием различных факторов внешней среды. Так, осенью
и зимой границы микроареала клещей на теле птиц сильно
сокращаются и паразиты переходят в нижние части пера, ближе
к телу птицы; при линьке хозяина клещи с выпадающих ма-
ховых перьев временно переходят на другие участки опере-
ния или даже на кожу хозяина, и т. д. Изменение мест локали-
44
зации и расползание клещей по оперению птицы можно на-
блюдать вскоре после ее смерти, вследствие чего осмотр птиц
на перьевых клещей рекомендуют производить не позднее, чем
через 1—2 часа после их отстрела. Осмотр птиц на перьевых
клещей легче всего производить путем последовательного вы-
дергивания перьев и просмотра последних в проходящем свете
на столике штативной лупы при малом увеличении. При этом
клещи имеют вид мелких темных точек, расположенных по-
Рис. 22. Дейтонимфы перьевых клещей.
1 — Ardeacarus ardea с цапли; 2 — Gabucinia nisi с ястреба-перепелятника;
3 — Falculifer rostratus с голубя. (1 — по Дубинину, 1951; 2— по Фитцуму, 1933;
3 — по Хирсту, 1922).
одиночке или рядами между бородками опахал (рис. 23, 7).
Темные и толстые маховые перья некоторых птиц (бакланы,
крупные хищные птицы и др.) следует дополнительно осмат-
ривать при падающем свете, направленном под некоторым
углом к внутренней поверхности опахал. Клещи при этом
выглядят белыми, желтыми или коричневыми (в зависимости
от их окраски) точками на темном фоне опахал. Если нижняя
часть стержня пера — очин, оказывается непрозрачным, его
следует расщепить скальпелем и осмотреть, нет ли внутри
перьевых (подсем. Dermoglyphinae) или хищных (сем. Chey-
letidae) клещей.
Мелкие перья и пух рассматривают в проходящем свете,
для чего заключают небольшой пучок их между двумя стек-
лами.
Осмотр оперения птицы на перьевых клещей следует на-
чинать с маховых перьев крыла, где обычно находится боль-
шое количество этих паразитов. Осмотр производят в следую-
Рис. 23. Перьевые клещи — Pteronyssus gracilis.
1 — клещи, сидящие на мпхоипм пере большого пестрого дятла;
2 — самец; 5 — самка. (/ — по Дубинину, 1951;
2, 3 — по Берлезе, 1896).
щем порядке: 1) маховые перья 1-го и 2-го порядков, после-
довательно начиная с вершины крыла; 2) большие верхние
кроющие перья крыла, в той же последовательности; 3) перья
крылышка; 4) остальные ряды крупных верхних и нижних
кроющих перьев крыла; 5) рулевые перья хвоста; 6) верхние
и нижние кроющие перья хвоста; 7) крупные контурные перья
тела (плечевые); 8) остальные перья и пух. Оперение тела можно
осматривать не всё, а выборочно, по несколько пучков из раз-
личных мест. При обследовании крыльев каждой птицы можно
ограничиться осмотром оперения и сбором паразитов только
с одного крыла, так как видовой состав клещей и распределе-
46
ние их на обоих крыльях более или менее одинаковы. Кожу
птиц обследуют по мере выдергивания перьев; кроме непосред-
ственного осмотра ее с помощью ручной лупы, необходимо
с различных участков кожи сделать соскобы эпителия и про-
смотреть их под штативной лупой или бинокуляром на присут-
ствие в них мелких клещей сем. Epidermoptidae, Особое вни-
мание нужно обратить на места утолщений эпидермиса, имею-
щих вид наслаивающихся корочек, расположенных обычно
около очинов контурных перьев головы, шеи, груди и в дру-
гих местах тела.
Если шкурка птицы нужна для коллекции и ее нельзя
ощипать, осмотр оперения на присутствие перьевых клещей
производят следующим образом: развернув одно из крыльев
птицы, берут его в левую руку в виде веера и, повернув против
источника света, с помощью ручной лупы (находящейся в пра-
вой руке) последовательно осматривают с внутренней стороны
все маховые перья. Мешающие при этом нижние кроющие
перья отгибают книзу. Так же осматривают рулевые перья
хвоста. Все остальное оперение птицы обследуется с помощью
ручной лупы или невооруженным глазом, при этом последо-
вательно отгибают пинцетом небольшое количество перьев и
осматривают их с нижней стороны.
Прежде чем производить сбор, необходимо подсчитать перье-
вых клещей, обнаруженных на каждом маховом пере, и дан-
ные записать в дневник в определенном порядке (см. стр. 97),
с указанием, на какой части пера (ближе к стержню или к краю,
на верхушке или на пуховой части),сосредоточивается большее
количество клещей.
Сбор клещей с перьев лучше всего производить тонкой
препаровальной иглой, проводя ею вдоль бородок пера и под-
цепляя клещей острым концом. Конец иглы каждый раз
должен быть смочен фиксатором или водой, благодаря чему
клещи прилипают к смоченной поверхности и без потерь пере-
носятся в солонку или пробирку с фиксатором.
Для изучения способов прикрепления клещей к бородкам
пера и распределения различных фаз их развития и яиц на пере
сильно пораженные перья фиксируют целиком с паразитами
в больших химических пробирках.
Для выяснения приуроченности отдельных видов перьевых
клещей к определенным участкам оперения нужно зафикси-
ровать отдельно материал из различных частей оперения,
хотя бы с 2—3 экземпляров птиц одного вида.
Разнообразие в строении перьев на крыле птиц определяет
наличие на нем большего или меньшего количества видов
клещей. Так, у дневных хищных птиц, чаек, утиных, куриных,
дятлов, врановых и других птиц, у которых первостепенные
47
перья по строению и функции резко отличаются от второстепен-
ных, паразитируют 2—3, а иногда и 5 видов перьевых клещей,
и наоборот, у цапель, сов и большинства воробьиных птиц,
у которых разница в строении между первостепенными и вто-
ростепенными перьями не велика, обычно встречаются 1—
2 вида клещей.
Рис. 24. Некоторые перьевые клещи.
/ — Knemidocoptes mutant, самка; 2 — Epiderm^tes bilobalus, самец; 3— то же, самка;
4 — Kn&mxdQcoptet lawis, самка; 5 — Cytolichus nudus, самка; 6 — Laminosioptes
cysticola, самка. (По Хнрсту, 1922).
У птиц фауны Советского Союза в настоящее время уста-
новлено около 900 видов паразитических перьевых клещей, что,
конечно, лишает возможности даже специалиста-паразито-
лога производить определение видов в полевой обстановке.
При обследовании птиц на перьевых клещей нужно пра-
вильно собрать и тщательно записать материал, что позволит
позже, в лабораторных условиях, успешно его определить.
Определение перьевых клещей производят по работам
Дубинина (1951, 1953).
48
Перьевые клещи сем. Epidennoplidae имеют большое хо-
зяйственное значение, так как некоторые представители его, па-
разитирующие на домашних птицах, вызывают чесоткопо-
цобные заболевания, влияющие на упитанность и яйценоскость
птиц.
Широко распростра-
ненными и важными в хо
зяйственном отношении
клещами являются сле-
дующие виды: К пе mi do-
copies mutans (рис. 24,1) —
мелкие клещи, паразити-
рующие под роговыми
щитками ног у различных
пород кур, индеек, цеса-
рок, павлинов, фазанов,
серых куропаток, голубей
п у многих комнатных
птиц (снегирь, щегол, ка-
нарейка, волнистый по-
пугайчик и др.), вызывает
заболевание под назва-
нием «известковые ноги»
(рис. 25); К. laevis(pnc. 24,
4)— паразитирует на коже
в ее складках у перьевых
влагалищ и под чешуй-
ками эпидермиса на теле
различных птиц (кур, фа-
занов, голубей, гусей и
некоторых воробьиных),
Рис. 25. Тяжелое поражение ног петуха
клещом Knemidocoptes mutans — «изве-
стковые ноги». (Из Дубинина, 1954).
чаще встречается в оперен-
ных частях таза, бедер, шеи и головы, вызывает кожную че-
сотку птиц, при сильном заражении наблюдается выпадение
перьев; Epidermoples bilobatus (рис. 24, 2 и 3) — паразитирует,
как и предыдущий вид, на коже различных пород кур, вы-
зывая кожеедную чесотку; первоначально поражает кожу
шеи и груди, позже переходит на голову, гребень и сережки.
Другие виды клещей этого семейства встречаются на коже
и в оперениителау многих диких птиц, особенно у воробьиных.
ПАРАЗИТОЛОГИЧЕСКОЕ ВСКРЫТИЕ ПТИЦ И СБОР ВНУТРЕННИХ
ПАРАЗИТОВ
После наружного осмотра птицы и сбора с нее эктопара-
зитов приступают к обследованию ее внутренних органов и
тканей на вскрытии. Если шкурка птицы нужна для коллек-
4 M. H. Дубинина
49
ции или последующего определения, ее необходимо снять
(Новиков, 1953) и в первую очередь обследовать подкожную
клетчатку, а затем приступить к вскрытию полости тела и
к осмотру внутренних органов.
Если шкурку снимать не надо, обследование подкожной
клетчатки откладывают на последнюю очередь и сразу же
приступают к вскрытию.
Методика обследования внутренних органов
Полное паразитологическое обследование предполагает
осмотр всех органов и тканей животного на присутствие в них
различных паразитов, начиная от простейших, населяющих
кровь, кишечник и другие органы, и кончая личинками и
взрослыми паразитическими червями, встречающимися во
всех органах и тканях хозяина.
Существует несколько методов обследования внутренних
органов и тканей животных, из которых наиболее распростра-
ненными являются: 1) метод полного гельминтологического
вскрытия животных, разработанный акад. К. И. Скрябиным
(1928), и 2) метод полного паразитологического обследования
животных, разработанный чл.-корр. АН СССР В. А. Доге-
лем (1933).
Первый метод имеет своей целью обследование животных
только на паразитических червей, тогда как второй ставит более
широкие цели — обследование животных на всех паразитов,
в том числе и на паразитических червей. Широко применяемый
при гельминтологическом вскрытии «мокрый способ», или
метод сливов (который сводится к последовательному промы-
ванию в специальных цилиндрах содержимого кишечника и
других полостей, а также размятых тканей и органов и про-
смотра промытого осадка под лупой), не пригоден для полного
паразитологического исследования, так как он исключает
возможность обнаружения мелких паразитов и особенно простей-
ших. Кроме того, метод сливов изолирует паразита от непосред-
ственного места его обитания в хозяине, вследствие чего
точная локализация отдельных видов оказывается невыяс-
ненной.
Более надежным в этом отношении является компрессор-
ный способ обследования органов (сжатых между двумя стек-
лами), предлагаемый при гельминтологическом вскрытии для
обследования мелких птиц и птенцов или в комбинации с ме-
тодом сливов для обследования других животных.
Компрессорный способ положен в основу полного парази-
тологического обследования; он применяется при просмотре
внутренних органов и тканей животных, позволяет не нро-
50
пускать мелких паразитов и точно устанавливать место и ха-
рактер их расположения в органах. Компрессорный способ
сводится к следующему: берут маленькие куски ткани или
органа, помещают на большое, так называемое препароваль-
ное стекло (см. стр. ИЗ) и после прибавления нескольких ка-
пель воды или физиологического раствора покрывают другим
стеклом и сдавливают до прозрачности. Необходимо следить,
чтобы обследуемые кусочки органа или пробы содержимого
кишечника нс были бы слишком велики и при сдавливании не
выходили за края препаровальных стекол.
При просмотре в проходящем свете в штативную лупу или
бинокуляр, а затем и в микроскоп сдавленных подобным спо-
собом органов и тканей можно легко разглядеть всех находя-
щихся в них паразитов.
Не снимая верхнего стекла, паразитов подсчитывают и
число их записывают в дневник, после чего приступают к их
сбору. Осторожно.сдвпгая верхнее стекло по отношению к ниж-
нему п смотря в лупу, собирают паразитов препаровальными
иглами в одно место на стекле и затем, добавив к ним неболь-
шое количество воды или физиологического раствора, пипет-
кой переносят в солонку. Необходимо следить, чтобы отдель-
ные паразиты пе остались на стейках пипетки и впоследствии
не были бы занесены в материал, собираемый из другого органа
или даже из другой птицы. Паразитов с препаровального стекла
в солонку можно переносить и препаровальной, иглой, осто-
рожно поддевая их на острый конец, или влажной кис-
точкой.
При обследовании следующей части того же органа берут
чистую пару препаровальных стекол пли вымывают прежние.
Всех паразитов, найденных во внутренних органах, кроме
простейших, прежде чем фиксировать помещают в физиологи-
ческий раствор или воду, где промывают от приставших к ним
слизи и тканей (см. стр. 100). Из содержимого кишечника,
в котором обнаружены цисты и активные простейшие, и из
крови делают мазки (см. стр. 52 и 60).
Порядок обследования внутренних органов
Приступая к обследованию внутренних органов, прежде
всего делают мазок крови (см. стр. 52). Так как кровь очень
быстро свертывается, мазок лучше делать сразу после смерти
птицы, до сбора эктопаразитов, беря кровь из ранки или про-
калывая препаровальной иглой подкрыловую вену. Если ма-
зок крови сразу после смерти птицы сделать не удалось, его
делают позже, при вскрытии полости тела, беря кровь непо-
средственно из сердца.
4*
51
После изготовления мазка исследуется кровеносная си-
стема — сердце и отдельные крупные кровеносные сосуды
(см. ниже).
Дальнейший порядок исследования внутренних органов
зависит от состояния птицы. Если у нее выстрелом поврежден
кишечник и другие органы, нужно сразу же, чтобы предотвра-
тить переход паразитов из поврежденного органа в полость
тела или другие органы, изолировать друг от друга все си-
стемы органов, последовательно вырезая их из полости тела
и раскладывая отдельно в чашки Петри, кристаллизаторы,
эмалированные подносы или кюветы. При этом необходимо
внимательно осматривать окружающие внутренние органы
воздушные мешки, целость которых будет нарушена при изо-
ляции органов.
Разобрав внутренности по системам органов и просмотрев
серозную оболочку полости тела, приступают к обследованию
отдельных органов, а затем уже и подковной клетчатки, муску-
латуры и т. д.
Если кишечник и другие органы убитой птицы почти не
повреждены, лучше всего обследование производить после-
довательно по системам органов, не вынимая их всех сразу
из полости тела.
Дальнейшее изложение построено в той последовательности,
в которой необходимо производить паразитологическое обсле-
дование птиц.
Обследование кровеносной системы
и мышцы сердца
Кровь птиц является средой обитания многих кровепара-
зитов. В крови диких и домашних птиц могут быть встречены
спирохеты, паразитические простейшие (жгутиконосцы, спо-
ровики) и паразитические черви (сосальщики и круглые
черви).
Для обнаружения простейших и спирохет в полевой обста-
новке из крови делают мазки, которые позже в лаборатории
обрабатывают и изучают под большим и иммерсионным уве-
личением микроскопа. Небольшую каплю крови из сердца
наносят на чистое обезжиренное предметное стекло на
расстоянии 1.5—2 см от его узкого края. Если кровь для
мазка берут из ранки, то края последней тщательно вытирают
гигроскопической ватой и поверхностью предметного стекла
едва прикасаются к выступающей из ранки капле крови.
Стекло с каплей крови держат большим и указательным паль-
цами левой руки. Правой рукой осторожно подводят к капле
под углом в 45° (рис. 26) другое предметное стекло с отшлифо-
52
ванным краем и отломанным углом (для того чтобы оно было
, немного уже первого стекла). В силу капиллярности кровь
растекается по линии соприкосновения обоих стекол, после чего
стекло с отшлифованным краем быстро проводят вдоль первого
(капля тянется за стеклом), оставляя на нем тонкий мазок,
в котором кровяные клетки располагаются в один слой. Ма-
зок нужно делать очень быстро, чтобы капля крови не успела
свернуться. Если мазок получился плохой, нужно сделать
новый, так как от этого будет зависеть дальнейший успех ис-
следования кровепаразитов.
Мазок высушивают (бе-
речь от мух!), выцарапывая
на нем препаровальной иглой
номер обследуемой птицы
(или пишут его накраю стекла
тушью), фиксируют метило-
вым спиртом (см. стр. 104)
и, завернув в бумагу, хранят
до дальнейшей обработки
(см. стр. 124). Если зафик-
сировать мазок сразу не
удается, то фиксацию его
можно отложить, но не более
чем па 10—15 дней. Удобно
и экономно в смысле вре-
мени и расхода материала
фиксацию всех мазков крови,
изготовленных в течение
недели, производить в конце
последней, в свободное от Рис. 26. Изготовление мазка крови,
вскрытия птиц время
Кроме мазка крови, для обнаружения паразитов, главным
образом малярии, берут так называемую толстую каплю, нанося
на чистое предметное стекло 2—3 капли крови и размазывая
их иглой до размера 1—2 см в диаметре. Толстые капли
после высушивания должны быть сразу же окрашены
(см. стр. 124).
На мазках могут быть обнаружены следующие кровепа-
разиты:
1)	Спирохеты (род Treponema) — в плазме крови у кур,
домашних и диких уток, гусей (рис. 27) и других птиц;
вызывают опасное заболевание, нередко оканчивающееся
смертью птиц. Переносчиками являются аргасовые клещи
(см. стр. 38).
2)	Жгутиконосцы (род Trypanosoma) — в плазме крови
у некоторых домашних (куры, голуби) и диких (цапли, совы,
53
Рис. 27. Спирохеты — Treponema anse-
rina в мазке крови гуся.
(По Якимову, 1931).
воробьиные) птиц. Встречаются сравнительно редко и мас-
совых заболеваний среди домашних птиц не вызывают.
3)	Различные кровяные споровики, из^ которых наиболее
опасным является возбудитель малярии птиц — малярий-
ный плазмодий {Plasmodium ргаесох), встречающийся в кро-
вяных тельцах преимущественно у диких (воробьиные, ку-
риные, цапли и др.) и реже у домашних (голуби, утки, куры)
птиц. В красных кровяных тельцах различных птиц могут
быть обнаружены также споровики рода Haemoproteus, пара-
зитирующие главным образом у диких птиц (голуби, аисто-
образные, совы, многие
дневные хищные и воро-
бьиные птицы), и рода
Leucocytozoon, встречаю-
щиеся в эритроцитах и ве-
ретенообразных клетках
крови у диких (пластин-
чатоклювые, цапли, совы,
хищные и воробьиные) и
домашних (куры, утки,
гуси и др.) птиц. Предста-
вители последних родов
могут отрицательно влиять
на развитие молодняка и
в отдельных случаях вы-
зывать его гибель. Пере-

носчиками паразитов яв-
ляются кровососущие му-
хи сем. Hippoboscidae —
эктопаразиты многих птиц
(см. стр. 27).
После изготовления мазка приступают к исследованию
кровеносной системы, в которой могут быть найдены довольно
крупные (от 2—3 до 165 мм длины) раздельнополые сосаль-
щики сем. Schistosomatidae и очень мелкие личинки круглых
червей подотряда Filariata — микрофилярии. Последние при
сильном заражении обнаруживаются и па мазках крови.
Кровяные сосальщики встречаются главным образом в круп-
ных венах кишечника, клоаки, брыжейки и воротной вены
печени, значительно реже находят их в артериях. Поэтому
прежде всего просматривают крупные венозные сосуды, ко-
торые отпренаровывают ножницами и пинцетом от задней и
прямой кишок, от клоаки, брыжейки и т. д.; воротную вену
печени и почек осматривают позже, при обследовании пере-
численных органов. Вырезанный сосуд сдавливают между пре-
паровальными стеклами и просматривают в проходящем свете
54
штативной лупы. Сосальщики, находящиеся в сосудах, имеют вид
прозрачных нежных лент, посредине и в задней части тела ко-
торых проходит темноокрашенный, зигзагообразный кишечник.
Рис. 28. Некоторые сосальщики крови птиц.
1 — Bilharziella polonica; 2 — Ornilh^bilharzia intermedia, a — самец,
б — самка. (Из Скрябина. 1951).
Как правило, самки всегда более узкие, чем самцы; бла-
годаря наличию в их матке зрелых коричневых или черных
яиц они легко могут быть отличимы от самцов даже под лупой.
Кровяные сосальщики обычно встречаются у диких птиц
и очень редко у домашних гусипых (гусь, утка). Наиболее
55
распространенными видами являются: Bilharziella polonica
(рис. 28, I), паразитирующая во многих диких пластинчато
клювых и цаплях и реже в домашних гусях и лебедях, Orni-
thobilharzia intermedia (рис. 28, 2) — в чайкАх, и Gigantobilhar-
zia acotylea — в чайках и крачках. Другие виды кровяных со-
сальщиков встречаются у куликов, некоторых воробьиных
(овсянка, ворона), цапель и поганок. При обнаружении в со-
судах сосальщиков верхнее стекло осторожно сдвигают, пре-
паровальными иглами разрывают сосуд и освободившихся
паразитов пипеткой или иглой переносят в солонку с водой
или физиологическим раствором. Кровяных сосальщиков, как
и круглых червей, нельзя оставлять долго в воде, так как они
быстро набухают и лопаются. Поэтому их сразу фиксируют,
предварительно слегка сполоснув в воде (см. стр. 101).
Несколько кровяных сосудов, наполненных кровью (или
кровь из них), необходимо просмотреть под малым увеличением
микроскопа для обнаружения микрофилярий. Наличие микро-
филярий в крови указывает на присутствие* в теле птиц взрос-
лых филярий, которые могут быть найдены при исследовании
других органов (полости тела, мускулатуры и подкожной клет-
чатки). После просмотра сосудов обследуют мышцу сердца,
для чего отдельные ее куски или сердце целиком, если оно ма-
ленькое (у воробьиных), сдавливают между препаровальными
стеклами и внимательно просматривают под лупой. В мышце
и оболочках сердца могут быть найдены личинки различных
сосальщиков и круглых червей, находящиеся в соединитель-
нотканных капсулах, и значительно реже взрослые круглые
черви (Splendidojilaria pawlowskyi у воробьиных птиц и Des-
midocercella numidica у цапель). Техника выделения личинок
червей из цист излагается на стр. 101.
Обследование печени и желчного пузыря
После просмотра сердца приступают к исследованию пе-
чени и желчного пузыря, которые отделяют от кишечника,
перерезая их протоки, открывающиеся в начальной части две-
надцатиперстной кишки. Изолированную печень помещают
в чашку Петри или большое часовое стекло и осторожно нож-
ницами и пинцетом отделяют от нее желчный пузырь. Если
последний невелик (у мелких воробьиных), его помещают на
препаровальное стекло, прорезают стенку и вылившуюся
желчь просматривают под лупой; если пузырь большой и со-
держит много желчи, его помещают на часовое стекло и, про-
резав стенку, просматривают в проходящем, а затем в падающем
свете в лупу. Стенки пузыря осматривают, сдавив их между
стеклами.
56
В желчном пузыре и на его стенках могут быть найдены раз-
личные сосальщики (см. ниже) и, значительно реже, круглые
черви. Паразитов иглой или, что еще лучше, тонкой, остро
отточенной деревянной палочкой (можно спичкой) вылавливают
из желчи и переносят в физиологический раствор или воду,
в которой, как и кровяных сосальщиков, быстро промывают
[/фиксируют (см. стр. 101).
Печень исследуют по частям. В первую очередь вырезают
тс отделы, где проходят главные желчные протоки и крупные
кровеносные сосуды. Вырезанный кусочек с небольшим коли-
чеством воды (3—5 капель) сдавливают между препаровальными
стеклами и просматривают под лупой.
В полости кровеносных сосудов печени могут быть найдены
раздельнополые сосальщики сем. Schistosomatidae, а в желчных
протоках и в желчном пузыре — гермафродитные сосальщики
семейств Dicrocoeliidae, Opisthorchidae и Pachytrematidae.
Из сем. Dicrocoeliidae в птицах Советского Союза встре-
чаются представители нескольких родов, из которых наиболее
распространены роды Lyperosomum и Brachylecithum.
Представители рода Lyperosomum встречаются чаще в желч-
ном пузыре и реже в протоках печени у многих воробьиных
и некоторых куриных и пастушковых птиц. Характерным пред-
ставителем является L. longicauda (рис. 29, 7), паразитирую-
щий в желчном пузыре и протоках печени у врановых, сквор-
цовых и дроздовых птиц.
Представители рода Brachylecithum, наоборот, чаще встре-
чаются в желчных протоках печени и реже в желчном пузыре
у воробьиных и хищных птиц, у кукушек, цапель, некоторых
куликов и куриных (кеклик). Характерным представителем
является В. filum (рис. 29, 2), паразитирующий в желчных
протоках печени у воробьев. Кроме представителей указанных
родов, у воробьиных могут встретиться некоторые виды родов
Dicrocoelum, Skrjabinus и др.
Из сем. Opisthorchidae наиболее распространены роды
Opisthorchis и Metorchis.
Представители рода Opisthorchis встречаются в протоках
печени и редко в желчном пузыре у многих хищных птиц,
цапель, веслоногих и диких уток. Наиболее распространенными
видами являются О. longissimus (рис. 29, 3), паразитирующий
у некоторых цапель и уток, и О. simulans — паразит желчных
ходов печени хищных птиц и некоторых диких и домашних
уток.
Виды рода Metorchis встречаются в желчном пузыре у хищ-
ных птиц, некоторых сов, диких и домашних уток и веслоно-
гих (пеликаны и бакланы). В пределах Советского Союза най-
дены М. xanthosomum (рис. 29, 4) — у диких и домашних уток
57
и поганок, М. intermedins — у домашних кур, веслоногих (ба-
кланы и пеликаны) и других птиц.
Из сем. Pachytrematiclae в желчном пузыре чаек, крачек,
некоторых куликов и врановых паразитируют представители
Рис. 29. Некоторые сосалыцики печени и желчного пузыря птиц.
I — Lyperosomum longicauda- 2 — Brachylecithum filum; 3 — Opisthorchis longissi-
mus; 4 — Metorchis xanth^s'tmum; 5 — Pachytrema compositum.
(Из Скрябина, 1950, 1952).
рода Pachytrema'. P. compositum (рис. 29, 5) у крачек и Р. trin-
gae у кулика-чернозобика и др.
В тканях печени могут встречаться личинки различных
сосальщиков и круглых червей (подотряда Spirurata), а на по-
ле
верхности печени взрослые круглые черви сем. Filariata. Всех
паразитов с помощью препаровальных игл освобождают от
тканей органа, собирают и фиксируют (см. стр. 99). При на-
личии в печени каких-либо заметных патологических измене-
ний пораженные кусочки ее вырезают и фиксируют ценкер-
формолом или 4%-м формалином для дальнейшего гистологи-
ческого исследования.
Обследование поджелудочной железы и селезенки
Поджелудочная железа находится в петле двенадцатипер-
стной кишки, соединяясь с последней протоками, открывающи-
мися в начальной части кишки.
Поджелудочную железу, как и печень, отделяют от кишеч-
ника, перерезая ее протоки и брыжейку, и по частям, сдавли-
вая между двумя стеклами, просматривают под лупой. Так же
обследуют и селезенку, находящуюся с правой стороны желудка
на границе перехода его железистого отдела в мускулистый.
У большинства птиц поджелудочная железа и селезенка
свободны от паразитов и лишь очень редко в протоках первой
встречаются сосальщики сем. Dicrocoeliidae (Brachylecithum
у чаек и цапель и Corrigia у кеклика). Однако при сильном за-
ражении внутренних органов личинками сосальщиков и круг-
лых червей последние могут встречаться и в поджелудочной
железе и в селезенке.
Обследование пищеварительного тракта
В пищеварительном тракте птиц почти всегда можно обна-
ружить большее или меньшее количество паразитов, преиму-
щественно паразитических червей (сосальщиков, ленточных,
круглых и скребней) и простейших (амеб, жгутиконосцев и
кокцидий). Так как большинство червей (особенно ленточных
и сосальщиков) паразитирует в тонкой и толстой кишках,
а простейшие чаще обнаруживаются в слепых отростках ки-
шечника и в толстой кишке, паразитологическое исследование
пищеварительного тракта следует начинать с задней кишки,
а не с пищевода, как обычно рекомендуют при анатомическом
исследовании птиц.
Если прямая кишка сильно наполнена содержимым, то,
прежде чем ее отрезать от клоаки, часть содержимого выдав-
ливают через клоаку наружу и небольшими порциями с при-
бавлением нескольких капель воды или физиологического рас-
твора сдавливают между стеклами и просматривают под лупой.
Затем заднюю часть прямой кишки отрезают от. клоаки и для
исследования простейших из ее содержимого делают влажный
59
мазок. Для изготовления мазка небольшое количество содер-
жимого кишечника и соскоба слизи с кишечной стенки нано-
сят препаровальной иглой на чистое покровное стекло и осто-
рожно, быстрыми круговыми движениями, размазывают тонким
слоем по стеклу, чтобы он не успел подсохнуть до перене-
сения мазка в фиксатор. Сделанный мазок фиксируют жидко-
стью Шаудина, иодируют (см. стр. 104) и, снабдив этикеткой,
помещают в стаканчик с 70°-м спиртом, в котором и храпят до
лабораторной обработки.
Кроме мазка из содержимого задней кишки делают мазки
(особенно у домашних птиц) из слепой кишки и средней части
тонкой кишки. К каждому мазку необходимо приложить эти-
кетку, в которой должно быть указано место кишечника, откуда
взят данный мазок (см. стр. 108).
В содержимом кишечника птиц на мазках могут быть най-
дены :
1)	Одноядерные амебы рода Entamoeba, встречающиеся
очень редко в кишечнике кур (США) и уток '(Африка). В Совет-
ском Союзе до сих пор не найдены.
2)	Жгутиконосцы родов Oicomonas, Tetrachilomastix, Tri-
trichomonas и Trichomonas, обитающие главным образом в сле-
пых отростках кишечника и в задней кишке у кур п других
домашних и диких куриных, гусиных, голубей, некоторых сов
и других птиц. Кишечные жгутиконосцы только у молодых
кур, гусей и голубей могут вызывать серьезные заболевания,
иногда оканчивающиеся смертью. На мазках жгутиконосцы
встречаются как в свободном, так и в инцистированном состоя-
нии.
3)	Кокцидии — наиболее распространенные и патогенные
простейшие, приносящие большой ущерб птицеводческим хо-
зяйствам, вызывая эг эотию, особенно среди молодых домаш-
них птиц. Кокц хдии обычно встречаются в слепой кишке и
в концевой части тонкой кишки, однако при сильном зараже-
нии они поражают весь кишечник, а иногда и печень, куда они
проникают через желчные протоки.
На мазках, полученных от птиц, больных кокцидиозом,
обычно встречаются еще незрелые ооцисты, определить которые
невозможно. Отдельные зрелые ооцисты, по которым возможно
определение вида, могут быть найдены лишь на мазках из со-
держимого прямой кишки. Если при просмотре содержимого
кишечника под микроскопом обнаружится большое количество
незрелых ооцист, то часть содержимого кишечника помещают
в пробирку с 4%-м раствором двухромовокислого калия, ко-
торый ускоряет спорообразование ооцист и предохраняет их на
длительный срок от разложения. В таком виде материал со-
храняют до лабораторной обработки.
60
У птиц наиболее распространены кишечные кокцидии рода
Eimeria, характеризующиеся наличием в их ооцистах 4 спор
с 2 спорозоитами в каждой (рис. 30, 1, 2). Эти кокцидии встре-
чаются главным образом у кур и других домашних (индейка,
фазан, павлин) и диких (куропатка, рябчик, фазан) куриных,
а также у гусей, уток, голубей, некоторых пастушковых и во-
робьиных птиц. Широко распространенными видами являются:
Е. tenella, встречающийся у кур и других куриных, Е. bonasae
~i
Рис. 30. Различные ооцисты кокцидии из кишечника птиц.
J — Eimeria angusta п 2 — Е. bonasae из кишечника диких куриных (по Оли-
геру, 1940); 3 — Isospora rodhaini из врановых и 4 — Caryospora henry! из
дневных хищных птиц (по Якимову и Мачульскому, 1936, 1938). а— незрелые
ооцисты, б — ооцисты со спорами.
(рис. 30, 2) — у диких куриных (куропатки, рябчики), Е. ап-
seris — у гусей. Все указанные виды особенно часто поражают
молодых птиц, нередко вызывая их гибель.
Кроме кокцидий рода Eimeria, в кишечнике птиц встречаются
виды родов Isospora, Caryospora и др.
Род Isospora характеризуется наличием в ооцистах 2 спор
с 4 спорозоитами в каждой (рис. 30, 3). Виды этого рода встре-
чаются в кишечнике воробьиных, дневных хищных птиц и сов.
61
В ооцистах рода Caryospora имеется лишь одна спора с 8 спо-
розоитами (рис. 30, 4). Его представители паразитируют в ки-
шечнике дневных хищных птиц и сов.
После изготовления мазка из содержимого прямой кишки
приступают к обследованию кишечника, начиная от прямой
кишки и кончая ротовой полостью. Конец кишечника отре-
зают от клоаки, вытягивают из полости тела вскрытой птицы и
кладут на чистое препаровальное стекло. С помощью ножниц
и пинцета делают продольный разрез кишечника, начиная
от его свободного конца, на расстояние 2—4 см (в зависимости
от толщины участка кишечника и степени ого наполнения);
края разреза развертывают и тупой стороной скальпеля (не
сильно нажимая) соскабливают содержимое этого участка на
препаровальное стекло. Вскрытый конец кишечника переносят
на другое чистое стекло, а к соскобленному содержимому на
первом стекле прибавляют несколько капель чистой воды или
физиологического раствора, сдавливают вторым стеклом и
просматривают под лупой и малым увеличением микроскопа.
Обнаруженных между стеклами паразитов подсчитывают, за-
писывают в дневник и затем, сдвигая стекла, собирают препаро-
вальными иглами или пипеткой в солонку с водой.
Окончив обследование содержимого концевого участка ки-
шечника, отрезают его стенки и обследуют их, сдавив между
двумя препаровальными стеклами. Обследовав такими неболь-
шими участками содержимое и стенки задней кишки (которая
граничит с тонкой кишкой в месте впадения в нее протоков
слепых отростков), приступают к последовательному просмотру
содержимого п стенок слепых отростков кишечника, а затем
и топкой кишки. Если слепые отростки невелики, их обследуют
целиком, прорезая стенку по всей длине отростка и соскабли-
вая содержимое (из которого предварительно нужно сделать
влажный мазок для обнаружения простейших) на одно стекло.
При обследовании тонкой кишки для уточнения локализации
паразитов ее условно разделяют на три отдела: задний, сред-
ний и передний (двенадцатиперстная кишка, петля которой сле-
дует сразу за желудком).
Паразитов из разных отделов кишечного тракта (прямой
кишки, слепых отростков, заднего, среднего и переднего от-
делов средней кишки, мышечного и железистого желудков и
пищевода) необходимо собирать в. отдельные солонки и после
фиксации, снабдив соответствующими этикетками, сохранять
в отдельных пробирках. Очень желательно также паразитов
разных групп (сосальщиков, ленточных, круглых червей и т. д).
из определенного участка кишечника собирать и фиксировать
отдельно, тем более что фиксация разных паразитов имеет свои
особенности (см. стр. 99).
62
При наличии большого количества паразитов такой сбор
требует много посуды, в частности пробирок, которых необхо-
димо иметь в достаточном числе. Если пробирок не хватает,
т0 лучше паразитов разных групп из определенного участка
кишечника, зафиксировав соответствующим образом, сохра-
нять в одной пробирке, чем смешивать вместе паразитов одной
группы из разных отделов кишечника. Это имеет большое зна-
чение нс только для выяснения мест .обитания отдельных видов
червей, но и для выяснения локализации различных возрастных
групп червей одного вида.
Указанная методика исследования позволила выяснить, что
молодые стадии многих сосальщиков сем. Strigeidae и некоторых
из сем. Echinostomidae, попадая в кишечник птиц, под действием
желудочного сока пассивно сносятся в задний отдел кишеч-
ника, где временно закрепляются; по мере же созревания
они активно поднимаются вверх к месту их окончательной
локализации. Личинки круглых червей рода Coritracaecum
обнаруживаются у цапель и бакланов в пищеводе, а взрослые
половозрелые черви в желудке, и т. д. Для установления по-
добных отношений, складывающихся между хозяином и пара-
зитом, правильный сбор материала в полевой обстановке имеет
решающее значение.
При исследовании желудка следует различать мускулистую
я железистую его части, так как состав населяющих их пара -
зитов различен. У птиц, питающихся преимущественно живот-
ной пищей (чайки, голенастые, веслоногие, хищные птицы),
мускулистый желудок сравнительно тонкостенный и техника
исследования его та же, что п кишечника, т. е. сначала сдавли-
вают между двумя стеклами и просматривают содержимое же-
лудка, а затем и его стенки, которые можно, если они толстые,
с помощью скальпеля и пинцета расщепить на наружный и вну-
тренний слои.
У птиц, питающихся преимущественно растительной пищей
(куриные, голуби, пастушки, кулики, пластинчатоклювые,
большинство воробьиных и т. д.), мускулистый желудок имеет
толстые мышечные стенки и выстлан изнутри толстой кутику-
лоподобной оболочкой. При обследовании мускулистого же-
лудка такого типа сначала, как обычно, просматривают его
содержимое, а затем, сдирая пинцетом выстилающую его обо-
лочку, просматривают ее и лежащую под ней слизистую обо-
лочку.
При исследовании желудка особое внимание должно быть
уделено составу пищи, которую нужно, прежде чем сдавливать
содержимое между стеклами, рассортировать, по возможности
определить и записать в дневнике (см. стр. 98). Если самостоя-
тельно определить состав пищи (остатки насекомых, отдельные
63
кости, чешуя рыб, различные зерна растений и т. д.) невозможно,
последнюю нужно собрать, зафиксировать любым фиксатором,
приложить этикетку и сохранить до лабораторной обработки,
когда можно будет обратиться за помощью по определению
пищи к соответствующему специалисту.
Все сведения, собранные по питанию птицы параллельно
с паразитологическим исследованием, имеют исключительно
большое значение для понимания характера заражения птиц
паразитами в различные сезоны в условиях данной мест-
ности.
Исследуя железистый желудок, нужно очень тщательно
просмотреть под лупой и малым увеличением микроскопа
(сдавливая между стеклами) соскобленную с его поверхности
слизь, в которой встречаются очень мелкие самцы круглых
червей сем. Tetraineridae\ затем исследуют стенки желудка,
в железах которых находятся самки этих червей (см. ниже). По-
следние вследствие темнокрасной окраски тела хорошо заметны
с внутренней стороны желудка, просвечивая в виде темных
пятен. Сдавливая стенки желудка между стеклами и обнару-
живая просвечивающее темное пятно, расположенное в ткани
железы, верхнее стекло в этом месте сдвигают и препароваль-
ными иглами осторожно разрывают стенку железы, из которой
появляется темнокрасный паразит. Освобожденного червя
препаровальной иглой или влажной кисточкой переносят в со-
лонку. Техника исследования пищевода не отличается от тех-
ники исследования кишечника. При наличии зоба (у хищных
и зерноядных птиц) и в случае его сильного наполнения содер-
жимое помещают в чашку Петри и, прибавив немного воды, по-
следовательно разбирают его препаровальными иглами под
лупой.
Как и при исследовании желудка, содержимое зоба (зерна,
насекомые, другие беспозвоночные животные, мелкие позво-
ночные, их кости и т. д.) определяют, записывая данные в днев-
нике, или собирают и сохраняют для последующего опреде-
ления.
Заканчивая просмотр пищеварительного тракта, пищевод
отрезают у ротовой полости, которую осматривают позже
(см. стр. 85). Клоака у взрослых птиц обследуется сразу после
кишечника; у молодых птиц прежде осматривают фабрициеву
сумку — небольшой толстостенный мешок, открывающийся
со спинной стороны клоаки, а затем и саму клоаку.
Кроме паразитических простейших (см. стр. 60 и 61), в раз-
личных отделах пищеварительного тракта птиц обитает большое
количество паразитических червей, из которых наиболее рас-
пространенными являются сосальщики, ленточные и круглые
черви; значительно реже встречаются скребни.
64
Сосальщики и круглые черви могут встречаться во всех
отделах пищеварительного тракта птиц, начиная с глотки и
кончая клоакой; ленточные черви и скребни, как правило,
чаще встречаются в тонком и толстом отделах кишечника, реже
в слепых отростках и очень редко в желудке (у уток).
К случаям обнаружения в желудке хищных нтиц большого
количества ленточных червей следует относиться критически,
так как не исключена возможность попадания их в желудок
из съеденного птицей животного.
Из сосальщиков в кишечнике птиц могут быть обнаружены
представители многих семейств, из которых широко распро-
странены Echinostomatidae, N otocotylidae, Strigeidae, Diplosto-
inatidae, Plagiorchidae, Brachylaemidae, реже Mycrophallidae
и ДР-
Систематическими признаками различных семейств сосаль-
щиков являются: форма тела, расположение и форма присосок,
наличие или отсутствие кутикулярного вооружения, строение
половой системы (взаиморасположение семенников, яичника,
желточников, матки и половых отверстий, наличие или отсут-
ствие и относительные размеры половой бурсы, половой при-
соски, цирруса) и т. д.
Виды сем. Echinostomatidae характеризуются ротовой при-
соской, окруженной кутикулярным воротничком, который во-
оружен хитиновыми шипиками (рис. 31, 2). Черви встречаются
в кишечнике, клоаке и в фабрициевой сумке у многих птиц
(куриные, голуби, утки, гуси, поганки, веслоногие, чайки,
крачки, хищные птицы и др.). Широко распространенный вид —
Echinop ary phium recurvatum (рис. 31, 1) — паразитирует в ки-
шечнике у домашних кур, уток и у некоторых диких птиц
(утки, чайки, кулики).
Виды сем. N otocotylidae отличаются отсутствием брюшной
присоски .и наличием на брюшной стороне червя особых присо-
скоподобных железистых образований (рис. 31, 2) или желези-
стых валиков (рис. 31, 3), которые особенно хорошо заметны
на живых червях. N otocotylidae обычно встречаются в слепых
отростках и в прямой кишке, реже в других отделах кишечника
и в фабрициевой сумке у домашних (утки, гуси, куры) и диких
(утиные, кулики и пастушки) птиц. К широко распространен-
ным видам относятся Notocotylus attenuatus (рис. 31, 2) и Са-
tatropis verrucosa (рис. 31, 3).
Виды сем. Strigeidae имеют тело, разделенное перетяжкой
на два отдела: передний — бокаловидный или лопастной,
несущий обе присоски и особый железистый орган, и задний —
цилиндрический, где располагаются половые железы червя,
открывающиеся на заднем конце тела в половую клоаку. Виды
этого семейства широко распространены среди утиных, гага-
5 М. H. Дубинина
65
Рис. 31. Некоторые сосальщики кишечника птиц
1	— Echinoparyphium recurvatum; 2 — Notocofylus atlenualus; 3 — Ca'atropis verru-
cosa; 4 — Cotylurus cornutus; 5 — Leucochloridium rnacrostorrurn; 6 — Poslh-Gdipiuslo-
mum cvticola (a—взрослая, 6—молодая); 7— Spelotrema pygmaeum; 8 — Pros-
togonimus cuneatus (По равным авторам).
ровых, чаек, куликов и хищных птиц. Хозяйственно важным
видом, встречающимся у домашних уток и у диких утиных и
куликов, является Cotylurus cornutus (рис. 31, 4). При силь-
ном заражении (рис. 32) он может вызывать гибель птиц.
Представители сем. Diplostomatidae близки к сем. Slrigeidae
и внешне отличаются от последних обычно плоским, листовид-
ным передним отделом тела. Паразитируют они в кишечнике
Рис. 32. Сосальщики — Cotylurus cornutus,
прикрепленные к стенкам кишечника крас-
ноголового нырка. (По Быховской, 1954).
у многих птиц (хищные, кулики, чайки, аистообразные, весло-
ногие и др.). Как правило, молодые черви со слабо развитым
задним отделом тела (рис. 31, 6,6) встречаются в задних отде-
лах кишечника и по мере созревания половых желез, а вместе
с этим и с увеличением заднего отдела тела поднимаются к ме-
сту своей окончательной локализации в переднюю часть средней
и в двенадцатиперстную кишку. Характерным и хозяйственно
важным видом является Posthodiplostomum cuticula (рис. 31, 6),
паразитирующий во взрослом состоянии в кишечнике у ца-
5*
67
пель, а в стадии личинок (адолескарий) в коже у карповых рыб,
вызывая среди их молоди опасное заболевание — чернильную
болезнь.
Представители сем. Plagiorchidae чаще встречаются в фабри-
циевой сумке и в яйцеводах и реже в кишечнике у воробьиных,
утиных, куликов, чаек и хищных птиц. Для этих сосальщиков
характерно расположение полового отверстия впереди брюпь
ной присоски и чаще рядом с ротовой присоской. Типичным,
широко распространенным представителем, паразитирующим
у многих птиц, является Prosthogonimus cuneatus (рис. 31, 8).
Из сем. Brachylaemidae в птицах особенно часто встречаются
виды рода Leiicochloridium. Эти черви имеют широко овальное
тело с крупными ротовой и брюшной присосками; половые отвер-
стия их находятся на заднем конце тела. Паразитируют они
в задней кишке и клоаке у многих воробьиных, куликов, пастуш-
ков и голубей. Типичный вид — L. macrostomum (рис. 31, 5) —
паразитирует у голубей и многих воробьиных.'
Представители сем. Mycrophallidae отличаются мелкими раз-
мерами (до 0.7 мм длиной), сравнительно длинным Пищеводом,
укороченными ветвями кишечника и расположением половых
желез в задней части тела. Встречаются они у птиц, живущих
на морских побережьях (уток, чаек, куликов). Широко распро-
страненный вид Spelotrema pygmaeiim (piic. 31, 7) паразитирует в
кишечнике у гаги и других утиных, некоторых*куликов и чаек.
Из ленточных червей в кишечнике птиц чаще всего встре-
чаются виды с головками, вооруженными крючьями; большин-
ство их относятся к семействам Davaineidae, Hymenolepididae
и Dilepididae. При определении ленточных червей обычно ру-
ководствуются характером вооружения головки (форма и ве-
личина крючьев, их расположение па хоботке, форма и
величина присосок) и строением половой системы (количество
и расположение семенников, расположение яичника и желточ-
ииков, строение и длина цирруса, расположение половых отвер-
стий и т. д.).
У сем. Davaineidae хоботок головки вооружен большим
количеством мелких крючочков, имеющих вид молоточков
(рис. 33, 7). Большинство видов этого семейства паразитирует
в кишечнике у сухопутных (куриные, воробьиные, дятлы, го-
луби) и реже у водоплавающих (домашние утки) и болотных
(кулики, хищные) птиц. Широко распространенным ц важным
в хозяйственном отношении видом является Davainea proglot-
tina (рис. 33, 7) — небольшой червь (3 мм длиной), пара-
зитирующий в двенадцатиперстной кишке кур.
Виды сем. Hymenolepididae отличаются головкой, вооружен-
ной 8—10 (реже большим числом) крючьями, члениками стро-
билы с небольшим количеством (1—4) семенников (изредка
68
Рис. 33. Некоторые вооруженные ленточные черви птиц.
1 — Dariainra, proglotlina; 2—Dr panidotaenia lanceolafa; 3 — Fimbriaria fasciolaris:
4 — Chf ano taenia infundibulum, a — стробила увеличенная; б—стробила в нату-
ральную величину; в — сколекс; г — крючья хоботка; д — зрелый членик; е — чле-
ник с маткой; э/с — передняя часть стробилы — псевдосколекс. Шо разным
авторам).
их больше) и односторонним расположением половых отвер-
стий. Большинство их паразитирует у птиц, ^обитающих около
водоемов (гуси, утки, веслоногие, аистообразные, некоторые
воробьиные, чайки), и реже у сухопутных (большинство во-
робьиных, голубей, хищных птиц и др). Большое хозяйствен-
ное значение имеют Drepanidotaenia lanceolata (рис. 33, 2) из
кишечника гусей, вызывающая при сильном заражении падеж
молодняка, и Fimbriaria fasciolaris (рис. 33, 3), паразитирую-
щая у диких и домашних утиных и реже у кур. По своей лока-
лизации интересна А рог a dogieli, паразитирующая под кути-
кулой мышечного желудка диких утиных.
У представителей сем. Dilepididae головки, как правило,
вооружены однорядной или двурядной короной крючьев,
число которых сильно варьирует. Половая система отличается
большим количеством семенников и расположением половых
отверстий с одной стороны (роды Dilepis, Lateriporus, Grypor-
hynchus и др.) или неправильным чередованием с обеих сторон
(роды Anomotaenia, Choanotaenia, Paricterotaenia и т. д.). Явля-
ются обычными паразитами кишечника куликов, воробьиных,
чаек, дятлов, хищных птиц, пастушков, веслоногих, цапель
и др. Широко распространенный вид — Choanotaenia infundi-
bulum (рис. 33, 4) — встречается у многих диких и домашних
куриных птиц.
Из невооруженных ленточных червей в кишечнике птиц
встречаются виды семейств Diphyllobothriidae, Paruterinida^
(включает и вооруженные виды) и изредка Anoplocephalidae.,
Tetrabothriidae и др.
У представителей сем. Diphyllobothriidae на переднем конце
тела имеются особые щелевидиые вдавления — ботрии, играю-
щие роль прикрепительных органов; половые отверстия рас-
полагаются на брюшной стороне стробилы. Немногие виды —
Diphyllobothrium dendriticum (рис. 34, 2), Schistocephalus soli-
dus (рис. 34,2), Ligula colymbi (рис. 34,3) и др. — встречаются
в кишечнике рыбоядных птиц, главным образом чаек и поганок.
Сем. Paruterinidae объединяет виды, имеющие особый око-
ломаточный орган. Голова у них несет присоски и может быть
снабжена хоботком с крючьями (роды Paruterina, Biuterina
и др.), или последний отсутствует (роды Anonchotaenia, Rhab-
dometra и др.). Черви эти встречаются в кишечнике воробь-
иных, дятлов, стрижей, козодоев, щурок, удодов, сов и ку-
риных птиц. У куриных птиц широко распространена Rhab-
dometra tomica (рис. 34,4) и др.
Немногие виды сем. Anoplocephalidae паразитируют у го-
лубей. Представители сем. Tetrabothriidae встречаются в арк-
тических птицах, кормящихся на побережье морей (гаги,
чайки и др.).
70
Во всех отделах пищеварительного тракта птиц особенно’
'часто встречаются круглые черви. Они представлены большим
количеством разнообразных семейств, родов и видов. Отли-
чительными признаками их являются: количество и форма губ,
окружающих рот; наличие или отсутствие ротовой капсулы;
наличие на головном конце чувствительных сосочков, кути-
кулярных лопастей, шипиков и других образований; строе-
Рис. 34. Некоторые невооруженные ленточные черви птиц.
1 — Di phyllobothrium dendriticum; 2 — Schistocephalus solidus; 3 — Ligula colymbi;
4 — Rhabdometra tomica. a — снолекс, 6 — зрелый членик.
ние половой системы, расположение полового отверстия у
самок; строение заднего конца тела, наличие половой бурсы,
количество и форма половых сосочков и спикул у самцов.
В полевых условиях необходимо ориентироваться хотя бы
в подотрядах этих паразитов, для чего может быть исполь-
зована приведенная ниже упрощенная определительная таб-
лица.
ОПРЕДЕЛИТЕЛЬНАЯ ТАБЛИЦА ПОДОТРЯДОВ КРУГЛЫХ
ЧЕРВЕЙ ПТИЦ
I (2). Пищевод червей состоит из одного или двух рядов крупных желе-
зистых клеток с ядрами .........................Trichocephalata.
2	(1). Пищевод иного строения.
71
3	(4). Пищевод в задней части расширяется в бульбус . . . Оху u rata.
4 (3). Пищевод без бульбуса.
5	(8). Самцы с хорошо развитой половой бурсой.
6	(7). Бурса самцов имеет кутикулярное строение, поддерживается реб-
рами. Спикул две или одна...........................Strongylata.
7	(6). Бурса самцов мышечная, без ребер. Спикула одна...........
............................................Diocthophymata.
8	(5). Самцы лишены половой бурсы; хвостовой конец самца с кутику-
лярными крыльями или без них.
9	(10). Рот окружен 3 губами.........................Ascaridata.
10	(9). Рот с 2, 4, 6 губами или без них.
И (12). Имеется хорошо развитая глотка; пищевод разделен на перед-
нюю мышечную и заднюю железистую части. Половое отверстие
самок находится в средней или задней, редко в передней части тела.
Самцы с двумя спикулами ..............................Spirurata.
12 (И). Глотка отсутствует. Половое отверстие самок находится в перед-
ней части тела. Самцы с двумя спикулами. Паразиты замкнутых
полостей и тканей.......................................Filariata.
Из подотряда Strongylata в пищеварительном тракте птиц
обычно паразитируют виды сем. Amidostomidae и значительно
реже сем. Тrichostrongylidae. Первые встречаются под кутику-
лой мышечного желудка и под слизистой пищевода у домашних
и диких пластинчатоклювых, у куликов и пастушков. Харак-
терными видами этого семейства являются Amidostomum (inse-
rts (рис. 35, 2) и Epomidiostomum orispinus, паразитирующие
под кутикулой мышечного желудка у диких и домашних гу-
сей и уток. В птичьих хозяйствах A. anseris встречается очень
часто и при сильном заражении может вызывать заболевание
и быть причиной гибели птиц (рис. 36).
Из представителей сем. Trichoslrongylidae могут быть встре-
чены Trichostrongylus tenuis — в слепых отростках кишечника
диких и домашних гусей, уток, фазанов, кур, и несколько
видов рода Ornithostrongylus — в кишечнике голубей и дроф.
Из подотряда Ascaridata в кишечнике птиц обычно пара-
зитируют виды сем. Anisakidae и реже Ascaridae.
Сем. Anisakidae представлено рядом видов родов Contra-
caecum и Роггосаесиш, встречающихся в желудке, кишечнике и,
реже, пищеводе преимущественно рыбоядных птиц (веслоногих,
аистообразных, чаек, некоторых уток, поганок, чистиковых,
некоторых сов, дневных хищных птиц, куликов и воробьи-
ных). Эти роды легко отличаются друг от друга строением
передней части пищеварительного канала. Широко распростра-
нены из них виды: Contracaecum spiculigerum (рис. 35, 2), пара-
зитирующий у уток, чаек, веслоногих, поганок и чистиковых
птиц, и Porrocaecum angusticolla (рис. 35, 3) — у дневных хищ-
ных птиц.
Сем. Ascaridae в птицах представлено одним родом As-
caridia, виды которого паразитируют в кишечнике преимуще-
ственно у сухопутных птиц — диких и домашних куриных,
72
голубей, кукушек, попугаев (в зоосадах) и домашних гусей
я уток. Широко распространена Ascaridia galli (рис. 35, 4),
встречающаяся в кишечнике у домашних кур, фазанов, уток»
гусей и диких куриных.
Рис. 35. Различные круглые черви из желудка и кишечника птиц.
I — Amidistomum anseris; 2 — Contracaecum sticuligerum; 3 — Porrocaecum
angusticolla; 4— Ascaridia galli; 5— Heteraki* gailinaz. a—передний конец
тела с пищеводом; б — головной конец; в—боковая губа; г — срединная
губа; д — хвостовой конец самки; е — хвостовой конец самца. (По разным
авторам).
Из подотряда Oxyurata в птицах паразитируют только виды
рода Heterafcis, которые встречаются в слепых отростках и
в средней кишке у домашних и диких куриных и, реже, ути-
ных. По строению заднего конца тела самцов, наличию пре-
73
клоакальной присоски (рис. Зо, о) и другим признакам они
очень близки к видам рода Ascaridia (рис. 35,^), но отличаются
от них строением пищевода, имеющего хорошо выраженный
бульбус. Типичным, широко распространенным видом является
Heterakis gallinae (рис. 35, 5) из слепых отростков многих
домашних (куры, цесарки, индейки, павлины, фазаны) и ди-
ких куриных и сравнительно редко утиных птиц. При сильном
заражении кур видом Н. gallinae наблюдается заболева-
ние, нередко оканчивающееся
смертью.
Из подотряда Spirurata
в птицах паразитируют пред-
ставители нескольких се-
мейств, из которых наиболее
распространены Spiruridae,
Теtrameridae, Physalopteridae
и Acuariidae'.
У видов сем. Spiruridae
ротовое отверстие окружено
двумя губами, на поверх-
ности которых могут нахо-
диться различные сосочки
пли зубцы; глотка чаще ци-
линдрическая, хитинизиро-
ванная; длинный пищевод
разделен на короткую мы-
шечную и длинную желези-
стую части. Черви паразити-
руют в железистом желудке
желудка (реже в пищеводе
куриных, дроф, дневных
кукушек и некоторых аисто-
Рпс. 36. Мышечный желудок гуся,
пораженный Amidostomum anseris.
(По Скрябину, 1937).
и под кутикулой мышечного
ц средней кишке) у диких
хищных птиц, сов, сизоворонок,
образных. Широко распространенный вид Habronema leplo-
plera (рис. 37, 1) встречается в железистом желудке у многих
хищных и некоторых воробьиных птиц.
Представители сем. Tetrameridae отличаются резко выра-
женным половым диморфизмом. Самцы у них мелкие, ните-
видные, часто покрытые рядами шипиков, паразитируют в про-
свете железистого желудка; самки имеют округлое красное
тело с вытянутыми передним и задним концами, паразити-
руют в стенках железистого желудка у домашних (утки, куры,
индейки, голуби) и диких (утиные, веслоногие, аистообразные,
чайки, кулики, пастушки, хищные и воробьиные) птиц. Ши-
роко распространенный вид Tetrameres jissispina (рис. 38)
встречается у диких уток, цапель, пастушков п домашних
птиц (уток, кур, индеек и голубей).
74
Рие. 37. Некоторые круглые черви (подотряда Spirurata) из же-
лудка и кишечника птиц.
4 — Echinur^uncinata^l- St^Scara^rass^auda^ 3 A?uaria anthuris;
— передний конец тела: б_XBocTnBnttaS!iSIlrfa’ 4 * 6 — Synhimanhis laticeps.
сам.<£ (n'TlrZS3' «-«войной
Сем. Phy Salop ter idae в птицах представлено одним родом
Physaloptera, отличающимся строением губ'(две боковые губы
вооружены с внутренней стороны зубами), отсутствием глотки
и наличием широких хвостовых крыльев у самцов. Черви
встречаются в желудке, реже в пищеводе п средней кишке
у хищных птиц и некоторых воробьиных. Широко распро-
страненный вид Physaloptera alata (рис. 37, 2) паразитирует
Рис. 38. Tetrameres jissispina.
I — внешний вид самки; 2 — передний
конец тела самки; з — передний конец
тела самца. {1 — орпг-» 2 и 3 по Сеура,
1920).
в желудке и кишечнике у хищ-
ных птиц.
Сем. Acuaridae в птицах
представлено большим количе-
ством родов. Характерным при-
знаком этого семейства яв-
ляется наличие на переднем
конце тела особых кутикуляр-
ных канатиков или гомологич-
ных им эполётовидных образо-
ваний. Рот с двумя боковыми
губами. Глотка имеется. Зад-
ний конец самцов с хвостовыми
крыльями. Многие представи-
тели семейства паразитируют
в пищеводе, железистом и мы-
шечном желудке и под его ку-
тикулой у многих диких (воро-
бьиные, сизоворонки, дятлы,
хищные, совы, куриные, аисто-
образные, кулики, веслоногие,
поганки, чайки, утиные и чи-
стиковые) и, реже, домашних
(куры, утки, голуби) птиц. Ши-
роко распространены виды:
Acuaria anthuris (рис. 37, 3), паразитирующая под кутикулой
мышечного желудка многих воробьиных; Echinuria uncinata
(рис. 37, 4) — в железистом желудке диких и домашних утиных;
Streptocara crassicauda (рис. 37, 5) — в желудке утиных, по-
ганок и некоторых куликов; Synhimanthus laticeps (рис. 37,6) —
в пищеводе и железистом желудке многих хищных птиц (най-
ден также у куры).
Из подотряда Trichocephalata в птицах обычны виды сем.
Capillariidae, имеющие нитевидное тело; паразитируют они
в ротовой полости, зобе, средней кишке и в слепых отростках
диких и домашних куриных и утиных птиц, голубей, воробь-
иных, дневных хищных птиц,, куликов, чаек и поганок.
Подотряд Dioctophymata представлен родами Eustrongyli-
des и Hystrichis, которые обычно паразитируют в соединительно-
76
тканных капсулах стенок пищевода и желудка (рис. 39, 1)
веслоногих, голенастых, поганок, чистиковых, некоторых ку-
ликов, уток и лебедей. Широко распространен вид Eustron-
<fylides mergorum (рис. 39, 2—4), встречающийся у аистообраз-
яьтх, некоторых утиных, поганок, куликов и чистиков.
Фауна скребней птиц, сравнительно с другими группами
червей, однообразна и бедна. Скребни обнаруживаются да-
Рис. 39. Euslrongylides mergorum.
1 — желудок "баклана, л пораженный E.^mvrqorum (а — бляшки с парази-
тами); 2 — передний конец тела; 3 — хвостовой конец самки; 4 — хвосто-
вой конец самца. (1 — орпг.; 2—4 — по Егершельду, 1909).
леко не у всех видов птиц; причем у одного вида хозяина встре-
чается не более 1—2, очень редко 3 вида скребней. Однако
распространены скребни довольно широко, встречаясь у ди-
ких и домашних пластинчатоклювых, чаек, веслоногих, по-
ганок, аистообразных, куликов, пастушков, дневных хищных
птиц, сов, воробьиных, сизоворонковых, кукушек, дроф и ку-
риных. В частности, широко распространены Polymorphus mi-
17
nulus (рис. 40, 2) и Filicollis anatis (рис. 40, 2), встречающиеся
в кишечнике уток, лебедей, некоторых пастушков, домашни^
уток и кур.
Рис. 40. Некоторые скребни кишечника птиц.
1 — Polymorphus minutus; 2 — Filicollis anatis» a — самец; б— хоботок самца;
о— хоботок самки. (1—по Петроченко, 1950; 2 — из Скрябина, 1937).
Обследование фабрициевой сумки
Фабрициева сумка развита только у молодых птиц. Она
обследуется одновременно с клоакой, так как очень часто в нее
заползают паразиты последней и, наоборот, паразиты фабри-
циевой сумки встречаются в клоаке. В фабрициевой сумке
обычно паразитируют лишь сосальщики различных семейств.
Из сем. Stomylotrematidae, "большинство видов которого па-
разитируют в клоаке и кишечнике, некоторые встречаются и
в фабрициевой сумке. К таким видам относятся, например,
Stomylotrema spasskii (рис. 41, 7), паразитирующий у бекаса
(кулик), и Laterotrema vexans (рис. 41, 2), паразитирующий
у воробьиных.
Из сем. Echinostomatidae в фабрициевой сумке у аисто-
образных, веслоногих (баклан) и дневных хищных птиц пара-
зитируют виды рода Episthmium. Типичным и широко распро-
страненным видом этого рода является Е. bursicola (рис. 41, 3).
Из сем. Strigeidae в фабрициевой сумке, в клоаке и, реже,
в задней кишке у чаек, крачек, поморников, гагар, поганок
некоторых чистиков и дневных хищных птиц встречается
Cotylurus platycephalus (рис. 41, 4).
78
Из сем. Plagiorchidae в фабрициевой сумке куриных, до-
машних и диких утиных, пастушков, воробьиных и других'
Рис. 41. Различные сосальщики из фабрициевой сумки птиц.
1 — Stomylotrema spasski.i (по Соболеву, 1943); 2 — Laterotrema vexan&
(по Семенову, 1928); 3 — Episthmium bursicola (по Дубининой); 4— Coty-
luius platycephalic (по Дюбуа, 1932^; 5 — Prosthogonimus ovatus
(по Скрябину, 1931).
могут паразитировать виды рода Prosthogonimus, в частности
Р. ovatus (рис. 41, 5).
79
Обследование дыхательной системы
При паразитологическом вскрытии полос’ти тела птиц обычно
нарушается цельность воздушных мешков (см. стр. 16), ко-
торые при этом необходимо сразу же осмотреть хотя бы нево-
оруженным глазом. Более подробно воздушные мешки
осматривают позже, после обследования всех внутренних ор-
ганов, трахей, бронхов и легких.
Обследование дыхательных путей начинают с гортани, ко-
торую отрезают от ротовой полости и трахеи, прорезают вдоль
на две половины и осматривают их с внутренней стороны
в лупу. Таким же способом последовательно просматривают
трахею и бронхи. Легкие же обследуют компрессорным спо-
собом, сдавливая небольшие куски их между двумя стеклами
и осматривая под лупой. У мелких воробьиных птиц гортань,
трахею, бронхи и легкие вынимают из грудной полости цели-
ком, сдавливают между препаровальными стеклами и про-
сматривают под лупой. После обследования легких необхо-
димо внимательно (пользуясь окуляром штативной лупы)
осмотреть остатки порванных воздушных мешков, находящихся
в полости тела, и серозную оболочку последней.
Найденных в дыхательной системе паразитов различных
групп собирают в отдельные солонки, записывают в дневник,
точно указывая место их локализации, фиксируют и т. д.
В дыхательных путях птиц могут паразитировать различ-
ные сосальщики семейств Cyclocoelidae и Orchipedidae, круг-
лые черви семейств Syngamidae (подотряд Strongylata, см. оп-
ределительную таблицу на стр. 71), Desmidocercidae (под-
отряд Spirurata), Filariidae и некоторые эндопаразитический
перьевые (сем. Cytolichidae) и гамазовые (сем. Rhinonyssidae)
клещи. Кроме того, в воздушных мешках изредка могут
встречаться язычковые «клещи», относящиеся к особому
классу Pentastomida.
Сосальщики сем. Cyclocoelidae отличаются отсутствием при-
сосок (ротовая развита слабо, а брюшная бывает лишь у мо-
лодых червей), цикличным кишечником (ветви кишечника
в задней части тела сливаются вместе) и наличием в матке
зрелых яиц с уже сформированными мирацидиями. Предста-
вители этого семейства встречаются в дыхательных путях,
легких и воздушных мешках у куликов, пастушков, уток,
гусей, лебедей, некоторых аистообразных, фламинго, журавли-
ных и воробьиных. Широко распространенный вид Cyclocoe-
hun mutabile (рис. 42,1) паразитирует преимущественно у кули-
ков и пастушковых птиц.
Сосальщики сем. Orchipedidae (с большим количеством се-
менников) встречаются исключительно в трахее у водных
80
птиц — пастушков (лысуха), веслоногих (пеликан), аистооб-
разных (колпица, аисты) и журавлиных (серый журавль).
Обычный вид — Orchipedum turkestanicum (рис. 42,2) встре-
чается у колпиц.
Из круглых червей большое хозяйственное значение имеет
сем. Syngamidae, многие представители которого паразити-
Рис. 42. Некоторые паразиты дыхательной системы птиц.
1 — Cyclocoelum mutahile; 2 — Orchipedum turkestanicum, 3, 4 — Syngamus trachea
(3 — самец, 4 — самка); 5 — Desmidocerca aerophila. a — передний конец тела,
б — задний конец тела. (По разным авторам).
руют в трахее у домашних (куриные, голуби, гуси) и диких
(куриные, воробьиные, кулики, веслоногие, совы, дятлы) птиц.
Самцы и самки Syngamidae постоянно находятся в спаренном
состоянии. Типичным и широко распространенным видом
является Syngamus trachea (рис. 42,3, 4), паразитирующий
в трахее домашних и диких куриных, голубей, воробьиных
(преимущественно врановых) и дятлов.
в М. Н. Дубинина
81
Очень мелкие черви сем. Desmidocercidae паразитируют
в'трахее и воздушных мешках аистообразных (цапли) и весло-
ногих. Типичным % видом является Desmidocerca aerophila
(рис. 42,5), встречающийся в воздушных мешках цапель и
бакланов.
Рис. 43. Язычковый «клещ» — Reighardia sternae
из воздушных мешков чаек и крачек.
1 — общий вид; 2 — головной конец; 3 — строение
конечностей. (По Мегитт, 1883).
Из эндопаразитических гамазовых клещей сем. Rhinonys-
sidae в трахее, легких и воздушных мешках некоторых воробьи-
ных паразитирует Sternostoma tracheacolum (рис. 20,3).
Из эндопаразитических перьевых клещей сем. Cytolichidae
на слизистой оболочке дыхательных путей у домашних и ди-
82
них куриных может быть найден Cytolichus nudus (рис. 24, 5),
который, однако, чаще встречается в подкожной клетчатке.
Язычковые «клещи» (класс Pentastomida), по форме тела напо-
минающие паразитических червей, у птиц представлены одним
видом—Reighardia sternae (рис. 43), паразитирующими воздуш-
ных мешках чаек и крачек.
Обследование половой системы
При обследовании половой системы прежде всего осматри-
вают половые пути, а затем и сами железы. Толстый яйце-
вод, так же как и кишечник, вскрывают небольшими кусками,
5—6 см длиной. Отрезок яйцевода помещают на препароваль-
ное стекло, вскрывают вдоль и, соскоблив с внутренней по-
верхности слизь, рассматривают ее под лупой. Стенки яйце-
вода и семяпровода осматривают, сдавливая между-стеклами.
При обследовании семенников и фолликулов яичника необ-
ходимо прежде всего осмотреть их снаружи под лупой, а затем,
сдавливая отдельные куски между стеклами, обследовать с по-
мощью лупы в проходящем свете.
Мужские половые железы и семяпроводы обычно не бывают
зараженными. Очень редко на поверхности их, как и на яич-
никах, могут встретиться инцистированные личинки сосаль-
щиков и круглых червей, которые одновременно обнаружи-
ваются и на других внутренних органах того же хозяина.
В яйцеводах некоторых домашних птиц могут паразитировать
немногие виды сосальщиков подсем. Prosthogoniminae (Prostho-
gonimus ovatus, рис. 41,5). Представители этого семейства
встречаются у многих диких птиц (уток, пастушков, некоторых
чаек, куликов, поганок и воробьиных) в фабрициевой сумке
и клоаке, а у домашних (особенно у кур и уток) в яйцеводах,
вызывая при сильном заражении воспаление женских половых
путей и нарушение нормальной яйценоскости.
Обследование почек и мочеточников
Почки и мочеточники вынимают из углублений подвздош-
ных костей таза, подводя под них конец пинцета или ручку
скальпеля. От почек отделяют мочеточники и исследуют их под
лупой, сдавливая между стеклами. При наличии в них парази-
тов — очень нежных сосальщиков — осторожно сдвигают верх-
нее стекло, разрывают препаровальными иглами стенки мо-
четочников и вымывают паразитов струей воды из пипетки.
Почки обследуют по частям, сдавливая их между стеклами.
У домашних гусей и значительно реже у диких гусиных
почки могут быть поражены кокцидиями, вызывающими опас-
6*
83
ное заболевание. При сильном заражении почки оказываются
увеличенными; по ходу мочевых канальцев' обнаруживаются
беловатые очажки, в которых находятся кокцидии на разных
стадиях развития.
Пораженные кусочки почек вырезают скальпелем и по-
мещают в пробирку с 4%-м раствором двухромовокислого
Рис. 44. Некоторые сосальщики почек птиц.
1 — Eucotyle zdkharovi; 2 — Tanaisia fedtschenkoi; 3 — Tamerlania zarudnyi;
4 — Renicola lari. (Из Скрябина, 1947).
калия, в котором кокцидии развиваются до стадии ооцист.
Определение ооцист можно производить значительно позже,
при лабораторной обработке материала.
Кроме кокцидий, в ткани почек у различных птиц могут
быть встречены личинки некоторых сосальщиков и круглых чер-
вей. В мочевых канальцах и в мочеточниках обычно парази-
тируют сосальщики семейств Eucotylidae и Renicolidae. У сем.
84
Eucotylidae, как и у Cyclocoelidae, отсутствует брюшная при-
соска (рудимент сохраняется у рода Tamerlanid) и задние концы
кишечника соединены друг с другом (кроме рода Eucotyle),
У представителей рода Eucotyle головной конец отделен от
остального тела мышечным валиком (рис. 44,1). Виды сем.
Eucotylidae паразитируют в мочеточниках гагар, поганок,
уток (Eucotyle zakharovi, рис. 44,1), широко распространены
среди чаек, куликов, пастушков, некоторых аистообразных
(Tanaisia jedtschenkoi, рис. 44,2) и редко у воробьиных, не-
которых домашних и диких куриных (Tamerlania zarudnyi,
рис. 44, 3). Представители сем. Renicolidae обычно встречаются
попарно в мочевых канальцах у гагаровых, веслоногих, чисти-
ковых, чаек, некоторых утиных, воробьиных и дневных хищ-
ных птиц. Широко распространена Renicola lari (рис. 44,4),
паразитирующая у различных чаек и крачек; однако нужно
иметь в виду, что у этих птиц могут паразитировать и другие,
близкие виды рода Renicola,
Осмотр полости тела
Осмотр полости тела производят по мере освобождения ее
от внутренних органов. После того как все внутренние органы
будут удалены, следует еще раз с помощью лупы внимательно
осмотреть полость тела, так как в ее серозной оболочке могут
быть найдены паразиты.
В полости тела могут быть обнаружены паразиты воздуш-
ных мешков (сосальщики сем. Cyclocoelidae, круглые черви
сем. Desmidocercidae, перьевые клещи сем. Cytolichidae —
рис. 24, 5) и круглые черви подотряда Filariata.
На серозной оболочке полости тела могут находиться ли-
чинки сосальщиков и круглых червей, одновременно встре-
чающихся в различных внутренних органах.
Обследование глаз, ротовой и носовой полостей
При обследовании глаз нужно прежде всего, отгибая пин-
цетом верхнее и нижнее веки и мигательную перепонку, ос-
мотреть их с внутренней стороны. Затем глаз вырезают и ос-
матривают глазную впадину. Глаз помещают на стекло, раз-
резают ножницами и все части его (хрусталик, стекловидное
тело и др.) рассматривают под лупой.
Ротовая полость обычно обследуется невооруженным гла-
зом. Открыв широко клюв птицы, внимательно осматривают
слизистую оболочку ротовой полости, вытягивая язык, от-
гибая нёбные складки и растягивая пальцами слизистую между
ветвями нижней челюсти. При наличии на слизистой непра-
85
ВИЛЬНО извитых или другой формы выпуклостей их оболочку
надрывают острой препаровальной иглой и сдирают пинцетом,
для того чтобы рассмотреть, не является яш эта выпуклость
местом локализации паразитов. Паразитирующие под сли-
зистой оболочкой круглые черви подотряда Filariata и, реже,
Trichocephalata очень нежны и извлекать их нужно осторожно.
Носовые полости птиц можно обследовать двумя способами.
Если шкурка птицы не нужна для коллекции, в носовые щели
Рис. 45. Паразиты орбиты глаз птиц.
1 — Philophthalmus palpebrarum (из Скрябина, 1947); 2 — Thelazia stereura:
а — передний конец тела, б — хвостовой конец самки. (По Скрябину, 1922).
вводят конец ножниц и вырезают наружную стенку носовой
полости по кусочкам, которые помещают на предметное стекло
в каплю воды и осматривают под лупой. Вскрытые таким спо-
собом носовые полости сначала рассматривают невооруженным
глазом, а затем под лупой; замеченных паразитов вынимают
пинцетом или препаровальной иглой. Если шкурка нужна для
коллекции и портить ее нельзя, осмотр носовых полостей про-
изводят через ротовую полость, раскрывая клюв и вырезая
ножницами нёбо. Вырезанные кусочки нёба помещают в ча-
совое стекло с водой и просматривают под лупой. Открытые
таким способом носовые полости внимательно осматривают
86
как со стороны ротовой полости, так и со стороны носовых
отверстий.
За веками глаз и в глазной впадине могут встречаться
сосальщики семейств Cyclocoelidae и Philophthalmidae и круг-
лые черви семейств Thelaziidae (подотряд Spirurata) и Аргос-
lidae (подотряд Filariatd). В орбитальной полости глаз утиных,
куликов и некоторых веслоногих птиц паразитируют сосаль-
щики сем. Cyclocoelidae (рис. 42, 1)\ у чаек, дневных хищных
птиц и редко у домашних и диких
утиных из сосальщиков сем. Philoph-
thalmidae встречается род Philoph-
thalmus, а у куликов — род Ophthal-
motrema. Наиболее распространен-
ный вид Philophthalmus palpebrarum
(рис. 45, 1) встречается у дневных
хищных и врановых птиц. Круглые
черви сем. Thelaziidae обычно встре-
чаются в протоках слезных желез,
под мигательной перепонкой и редко
в глазу у дневных хищных птиц,
сов, козодоев, сорокопутов, некото-
рых воробьиных, куликов и у диких
и домашних куриных. Широко рас-
пространены роды Thelazia и Oxyspi-
rura. У видов рода Thelazia женские
половые отверстия открываются в
передней части тела, а у рода Оху-
spirura — ближе к заднему концу.
Обычный вид Thelazia stereura
(рис. 45, 2) обитает за мигательной
Рис. 46. Сосальщик — Clino-
stomum complanatum из ро-
товой полости серой цапли.
перепонкой дневных хищных птиц.
В ротовой полости, кроме круг-
лых червей подотряда Filariata и
Trichocephalata (род Capillaria), па-
разитирующих под слизистой оболочкой, в самой полости и на
языке аистообразных и веслоногих птиц встречаются в свобод-
ном состоянии сосальщики сем. Clinostomatidae. Типичным
видом является Clinostomum complanatum (рис. 46) из ротовой
полости и пищевода многих цапель, реже бакланов и пеликанов.
При обследовании ротовой полости пеликанов нередко на
стенках подклювного мешка можно встретить крупных пухо-
едов Tetrophthalmus titan, сидящих там группами, плотно при-
крепившись к слизистой оболочке. Здесь же могут быть встре-
чены и пиявки.
В носовой полости, кроме сосальщиков сем. Cyclocoelidae
(у гусиных, пастушковых, куликов, некоторых куриных и
87
аистообразных), круглых червей сем. Aproctidae (у некоторых
куликов, чаек и дневных хищных птиц) и пиявок (у различных
водоплавающих птиц), встречаются гамазовые клещи сем.
Rhinonyssidae (рис. 20). Эти своеобразные клещи с короткими
толстыми ногами и якореобразными коготками паразитируют
у гусиных, чаек, чистиковых, аистообразных, куликов, па-
стушковых, дроф, сов, козодоев, сизоворонок, стрижей и .во-
робьиных.
Обследование кожи, подкожной клетчатки и мускулатуры/
Поверхность кожи осматривается при сборе наружных па-
разитов. Однако позже, для обследования ее соединительно-
тканного слоя, подкожной клетчатки и мускулатуры, кожу
снимают со всей птицы и еще раз внимательно осматривают
с наружной и внутренней сторон. Часть подкожной клетчатки
сдирается вместе с кожей и осматривается с внутренней сто-
роны снятой шкурки; часть ее вместе с жировыми отложениями
остается на мышцах тушки и исследуется небольшими участ-
ками, отделенными от мышц с помощью пинцета и ножниц.
Участки подкожной клетчатки с несколькими каплями
воды сдавливают между стеклами и рассматривают под лупой.
Мышцы птиц обследуют невооруженным глазом. Прежде всего
их осматривают снаружи, обращая особое внимание на места
соприкосновения их друг с другом и на сухожильную часть
в местах прикрепления их к костям. При обнаружении на фас-
циях мышц небольших светлых или темных узелков и других
образований их вырезают с прилежащими тканями и, сдавив
между стеклами, осматривают под лупой. Мышцы крупных
суставов ног и крыльев отрезают от костей и, расщепляя пин-
цетом вдоль волокон, исследуют отдельные участки.
Непосредственно на коже и под чешуйками эпидермиса
птиц, как уже было сказашЛвыше (см. стр. 49), паразитируют
мелкие перьевые клещи сем. Epidermoptidae (рис. 24, 1—3) и
другие наружные паразиты (различные клещи, мухи и блохи).
В подкожной клетчатке встречаются личинки (дейтонимфы)
перьевых клещей семейств Pterolichidae и Proctophyllodidae,
взрослые эндопаразитические клещи родов Cytolichus и Lami-
nosioptes, своеобразные сосальщики сем. Collyriclidae, много-
численные виды круглых червей подотряда Filariata и раз-
личные личинки сосальщиков и круглых червей. Последние
три группы паразитируют и в мышцах птиц.
Эндопаразитические личинки (дейтонимфы) перьевых клещей
семейств Pterolichidae и Proctophyllodidae (взрослые особи ко-
торых паразитируют на перьях) встречаются в подкожном
соединительном слое, особенно в местах отложения жировой
88
ткани и между слоями мышц и, в меньшем количестве, в соеди-
нительной ткани по ходу крупных кровеносных сосудов и
трахей. Дейтонимфы имеют характерное удлиненно-оваль-
ное тело молочно-белого цвета и внешне напоминают яйца или
мелких личинок мух (рис. 22). По величине дейтонимфы в не-
сколько раз превосходят взрослых клещей того же вида.
Взрослые перьевые клещи родов Cytolichus (С. nudus,
рис. 24, 5) и Laminosioptes (L. cysticola, рис. 24, б), достигающие
всего 0.25—0.50 мм в длину, в основном паразитируют в под-
кожной клетчатке у кур и других домашних и диких куриных.
Сосальщики сем. Collyriclidae представлены одним видом —
Collyriclum faba (рис. 47, I), особи которого встречаются по-
Рис. 47. Сосальщик Collyriclum faba, паразитирующий под кожей птиц.
1 — взрослый паразит; 2 — нога индейки, пораженная С. faba. (Из Скрябина, 1947).
парно в цистах под кожей у различных воробьиных, кур и
индеек. Чаще цисты располагаются группами на брюшной
(у отверстия клоаки) и грудной частях тела, реже на ногах
(рис. 47, 2), спине, шее и других частях тела.
Круглые черви подотряда Filariata, помимо внутренних
органов и полости тела, встречаются в подкожной клетчатке,
межмышечной соединительной ткани, в фасциях мышц и в су-
хожильной части мышц у многих птиц. Подкожную клет-
чатку необходимо осматривать на всей поверхности тела и на
голове.
Личинки различных сосальщиков и круглых червей обычно
встречаются в небольших белых или коричневых цистах в виде
узелков, которые могут быть обнаружены во всех частях тела
в подкожной клетчатке, на фасциях мышц, в полости тела и
в тканях внутренних органов у ряда птиц.
89
Обследование мозга
В литературе нет указаний на нахождение в мозгу птиц
каких-либо паразитов, кроме плазмодиев малярии, находя-
щихся в крови, так что обычно при паразитологическом об-
следовании птиц мозг не осматривают.
Осмотр мозга следует производить следующим образом.
Поскольку к осмотру мозга приступают после обследования
подкожной клетчатки, череп птиц оказывается обнаженным.
Держа нижнюю часть головы в левой руке, правой с помощью
скальпеля (осторожно, чтобы не повредить мозг), снимают
по частям тонкую верхнюю стенку черепа, а затем и более
толстые губчатые кости боковых его сторон (можно приме-
нять плоскогубцы для обламывания костей). Открытый таким
способом мозг осматривают снаружи, а затем вынимают по
частям и, сдавливая между стеклами, исследуют под лупой и
малым увеличением микроскопа.
МЕТОДИКА КОПРОЛОГИЧЕСКОГО ОБСЛЕДОВАНИЯ
При исследовании домашних птиц для диагностики массо-
вых паразитов кишечника (кокцидий и червей) пользуются
методом копрологических анализов.
Наличие в кишечнике птиц различных паразитов устанав-
ливается по нахождению в их помете яиц червей и цист про-
стейших.
Известно много методов копрологического обследования
животных, из которых наиболее простым и доступным
в полевых условиях является метод Фюллеборна. Этот метод
основан на принципе всплывания яиц червей и ооцист кокци-
дий при обработке испражнений животных насыщенным рас-
твором поваренной соли (в 1 л воды растворяют, при кипяче-
нии, 400 г поваренной соли). Обработку испражнений произ-
водят следующим способом. В чистую химическую пробирку
или другой цилиндрический сосуд помещают 3—4 см3 испраж-
нений (взятых из разных мест одной пробы кала) и, прибавляя
к ним небольшими порциями насыщенный раствор поварен-
ной соли, тщательно размешивают (для размешивания удобно
пользоваться тонкими деревянными палочками, которые после
однократного употребления уничтожают). Все крупные ча-
стицы, сразу всплывающие на поверхность жидкости, немед-
ленно удаляют, затем доливают пробирку до краев насыщен-
ным раствором поваренной соли и оставляют ее отстаиваться.
Через 1 час яйца и ооцисты паразитов, всплывшие на поверх-
ность, снимают с поверхностной пленки, так как позже они
начнут погружаться на дно. Поверхностную пленку с находя-
90
щимися в ней яйцами и ооцистами удобнее снимать покровным
стеклом (или проволочной петлей), осторожно прикасаясь им
поверхности жидкости. Покровное стекло с приставшей
к нему жидкостью осторожно, влажной стороной книзу, опу-
скают на предметное стекло и влажный препарат внимательно
исследуют при малом и большом увеличениях микроскопа.
Для ускорения всплывания яиц и ооцист на поверхность жид-
кости прибегают к центрифугированию ручной центрифугой
в течение 2—3 минут. Затем с пробы снимают поверхностную
пленку и исследуют ее под микроскопом.
Недостатком метода Фюллеборна является то, что круп-
ные яйца сосальщиков и некоторых ленточных червей в силу
своей тяжести не всплывают на поверхность и остаются в осадке.
Поэтому для отыскания их приходится после обследования
поверхностной пленки обследовать и осадок.
Лучшие результаты дает метод копрологического обсле-
дования по Хаустову (1935), основанный на обработке испраж-
нений насыщенным раствором медного купороса, имеющего
больший удельный вес, чем раствор поваренной соли. Метод
Хаустова разработан для обследования испражнений на цисты
простейших (амеб, жгутиконосцев, кокцидий и инфузорий),
но одновременно является прекрасным способом и для копро-
логического обследования животных на яйца паразитических
червей.
Обработка испражнений по Хаустову сводится к следую-
щему. Небольшой комочек испражнений тщательно растирают
в ступке с 15—20 см3 воды. Полученную смесь процеживают
сквозь металлическое сито в центрифужную пробирку, удаляя
все крупные части. Пробирку со смесью помещают в центри-
фугу и центрифугируют в течение 2—2.5 минут со скоростью
1000 оборотов в минуту. При этом все цисты и яйца паразитов
оседают на дно, а легкие частицы испражнений оказываются
в воде во взвешенном состоянии. Их быстро сливают и к осадку
прибавляют насыщенный раствор медного купороса. Содер-
жимое пробирки тщательно перемешивают деревянной палоч-
кой и, долив доверху раствора медного купороса, снова центри-
фугируют. Все цисты и яйца паразитов всплывают на поверх-
ность, а остальные, более тяжелые частицы испражнений осе-
дают на дно. Поверхностную пленку снимают покровным
стеклом (или проволочной петлей), помещают на предметное
стекло и рассматривают под малым и большим увеличениями
микроскопа. При подобной обработке испражнений на пре-
парате обычно бывают только цисты и яйца паразитов, почти
без всякой примеси кусочков помета, что сильно облегчает
микроскопирование. Метод Хаустова можно усиленно реко-
мендовать при проведении массовых копрологических обсле-
91
дований человека и различных животных (в том числе и птиц)
в лабораторных условиях, а при наличии центрифуги — ц
в экспедиционной обстановке.
Проводя копрологическое обследование домашних птиц, це*
обходимо точно знать, от какого вида и возраста птиц взяты
исследуемые пробы помета и т. п. Это облегчает диагностику
и дает возможность судить о степени заражения различных
видов и возрастов птиц.
Пр ооцистам кокцидий и яйцам паразитических червей
устанавливают, какие виды паразитов обитают в кишечнике и
некоторых других органах (печени, дыхательных путях или
фабрициевой сумке) обследованных птиц. Для определения
вида кокцидий очень важно, чтобы ооцисты были зрелыми,
с вполне развитыми внутри их спорами и спорозоитами (см.
стр. 61). В домашних птицах могут встречаться многие виды
кокцидий. Чаще всего ими заражены куры и дикие куриные
и реже гуси и утки.
Систематическими признаками зрелых кокцидий являются
величина и форма ооцист и количество и форма находящихся
в них спор со спорозоитами (Эпштейн, 1931; Якимов, 1931,
и др.).
При определении паразитических червей по их яйцам из
помета птиц необходимо учитывать следующие морфологиче-
ские особенности яиц: величину, форму (круглые, овальные,
бочковидные и т. д.), характер оболочки (тонкая, двуконтур-
ная, гладкая, с различными вдавлениями и т. д.), степень раз-
вития (внутренняя структура однороднозернистая или нахо-
дится на различных стадиях дробления, или уже содержит
эмбрион и т. д.) и другие особенности (наличие крышечки,
эмбриональных крючьев, филаментов, пробковидных образо-
ваний на полюсах и т. д.).
Яйца сосальщиков, как правило, имеют овальную форму.
На одном из их полюсов имеется крышечка в виде слабо за-
метной бороздки, опоясывающей вершину. На противополож-
ном полюсе у большинства видов находится бугорок, шипик
или другое образование (рис. 48, 2, 3). У червей сем. Notoco-
tylidae яйца на обоих полюсах имеют филаменты (рис. 48, I).
Яйца ленточных червей обычно имеют округлую форму.
Внутри яйца у большинства видов уже находится вполне разви-
тый зародыш (онкосфера), снабженный 6 эмбриональными крючь-
ями. Онкосфера имеет свою оболочку и находится в жидкости,
заключенной в нежной наружной оболочке яйца (рис. 48, 4, 5).
Очень часто при копрологическом обследовании последняя раз-
рушается и на препарате обнаруживаются не яйца, а онко-
сферы червей. У некоторых видов ленточных червей (сем.
Diphyllobothriidae} яйца, выходящие во внешнюю среду вместе
92
с пометом, еще не содержат шестикрючных зародышей и внешне
очень сходны с яйцами сосальщиков.
Яйца круглых червей отличаются от предыдущих отсут-
ствием крышечек и шестикрючных зародышей. Форма их может
быть весьма различной (круглой, овальной, асимметрично-
овальной, бочковидной и т. д.), так же как и характер их
оболочек. У большинства видов яйца овальные (рис. 48, 6—11).
Степень развития яиц, выходящих во внешнюю среду у раз-
ных групп круглых червей, различна. Так, яйца родов
Ascaridia и Heterakis (рис. 48, 6) выделяются во внешнюю
среду на стадии недробившейся яйцеклетки с однородным
внутренним содержанием, яйца Amidostomum (рис. 48, 9) и
Trichostrongylus — на различных стадиях дробления, а яйца
спирурид и капилляриид в большинстве случаев уже содер-
жат личинок (рис. 48, 10, 11). Яйца Capillaria (рис. 48, 7)
имеют боченковидную форму с пробковидными образованиями на
полюсах. Сходные с ними образования на полюсах наблю-
даются у яиц червей рода Syngamus (рис. 48, 8).
Яйца паразитических червей близких систематических
групп (род, семейство) морфологически очень сходны, и видо-
вая принадлежность их устанавливается по средним размерам.
Поэтому измерение найденных яиц и ооцист является обяза-
тельным условием при каждом копрологическом обследова-
нии.
Измерение микроскопических объектов производят окуляр-
микрометром или обычным окуляром, вставляя внутрь его
специальную стеклянную пластинку с нанесенной на ней из-
мерительной линейкой. Прежде чем измерять объект, необхо-
димо^заранее установить, чему равно одно деление измеритель-
ной линейки окулярмикрометра при определенном увеличе-
нии микроскопа. Этот расчет производят с помощью объект-
микрометра, т. е. измерительной линейки, нанесенной на пред-
метное стекло, где 1 миллиметр поделен на 100 равных частей
и 1 деление соответствует 0.01 мм или 10 jx. Объектмикрометр
помещают на столик микроскопа и, изменяя фокусное рас-
стояние, добиваются резкой видимости в поле зрения делений
обеих измерительных линеек, находящихся в окуляре и под
объективом. Вращая в тубусе микроскопа окуляр, нужно
установить его так, чтобы его измерительная линейка была
параллельна черточкам линейки объектмикрометра. После
этого отсчитывают, сколько делений объектмикрометра со-
впадает с целым числом делений окулярмикрометра, и, исходя
из этого, вычисляют абсолютное значение одного деления
окулярмикрометра. Например, 14 делений объектмикрометра
(т. е. 140 [х, или 0.14 мм) совпадают с 22 делениями окуляр-
микрометра; следовательно, одно деление последнего равно
93
Рис. 48. Яйца различных паразитических червей птиц.
1 — Notocotylus attemiatus с филаментами; 2 — Prostogonimus ovatus;
3 — Echinostoma revolutum; 4 — Hymenolepis collaris; 5 — Drepanido-
taenia lanceolata; 6 — Heterakis gallinae; 7 — Capillaria contorta; 8 —
Syngamus trachea; 9a — Amidostomum anseris, незрелое яйцо, 96 —
A. anseris, яйцо с личинкой; 10 — Acuaria spiralis; 11 — Tetrameres
fissispina; 12 — Polymorphous minutus; 13 — FUicollis anatis. (По разным
авторам).
Размеры яиц некоторых паразитических червей
домашних и диких птиц (в мм)
Виды червей	Размеры яиц		Примечание
	длина	ширина	
Notocotylus attenuatus . . .	0.020—0.022	0.010	На полюсах фила-
			менты 0.2 мм длиной.
Catatropis verrucosa ....	0.018—0.020	0.011	Филаменты 0.16 мм
			длиной.
Prosthogonimus ovatus . . .	0.022—0.026	0.013—0.018	
P. cuneatus		0.023—0.027	0.013—0.016	
Echinoрагуphium recurvatum	0.090—0.110	0.060—0.084	
Echinostoma revolutum . .	0.097—0.126	0.059—0.071	
Cotylurus cornutus ....	0.090—0.100	0.060—0.080	-
Choanotaenia infundibulum Hymenolepis setigera . . .	0.040—0.050 0.047—0.061 0.050 .	0.032—0.036	Онкосферы 0.023 мм в диаметре.
Drepanidotaenia lanceolata .		0.035	
Fimbriaria fasciolaris . . .	0.035—0.045	0.019—0.023	Онкосферы 0.017— 0.021 мм в диа- метре; крючья 0.014—0.015 мм
	0.015—0.018		длиной.
Davainea proglottina . . .		0.015—0.018	Яйца в капсулах
			0.04 мм в диа- If АГППЛ
Raillietina cesticillus . . .	0.032—0.035 0.08b i •	0.032—0.035	метре. Яйца в капсулах 0.05—0.07 мм в диаметре.
Ascaridia lineata			0.050	
Heterakis gallinae		0.063—0.071	0.038—0.048	
Trichostrongylus tenuis . .	0.066—0.075	0.035—0.042	
Capillaria gallinae ....	0.048—0.053	0.022—0.023	
C, columbae		0.044—0.062	0.023—0.027	
C. contorta		0.048—0.056		
Syngamus trachea		0.078—0.100	0.043—0.046	
Amidostomum anseris . . .	0.085—0.110	0.050—0.082	
Epomidiostomum uncinalum	0.074--0.080	0.048—0.050	
Echinuria uncinata ....	0.0 j 7	0.020	
Tetrameres fissispina . . .	0.048—0.056	0.026—0.030	
140 : 22 = 6.36 р.,или 0.0064 мм. Вычисление следует произво-
дить с точностью до десятых долей микрона.
Величина одного деления окулярмикрометра должна быть
вычислена для каждого увеличения микроскопа, которым поль-
зуются при полевой работе. При измерении микроскопических
объектов величина последних определяется в делениях оку-
95
лярмикрометра, которые затем умножают на абсолютную
величину одного деления и получают абсолютные размеры
объекта. Например, измеренные окулярмикрометром яйца
имеют 13 делений в длину и 11 делений в ширину. Следова-
тельно, их абсолютная величина при определенном выше уве-
личении (6.36 (л) будет равна 13x6.36=82.68 [л, или 0.083 мм,
в длину и И X 6.36=69.96 или 0.070 мм, в ширину.
В таблице на стр. 95 приведены размеры яиц некоторых
широко распространенных паразитических червей, встречаю-
щихся у домашних и некоторых диких птиц.
Копрологическое обследование птиц имеет большое практи-
ческое значение, так как позволяет своевременно выяснить
опасных паразитов и принять меры для уничтожения их на
территории хозяйства. Для точной диагностики видов пара-
зитов, вызывающих заболевания птиц, необходимо, чтобы парал-
лельно с массовым копрологическим обследованием было про-
ведено хотя бы небольшое количество полных паразитологи-
ческих вскрытий. С помощью последних уточняют диагностику,
основанную на данных копрологического обследования, и
более точно и на большем материале устанавливают степень
заражения птиц отдельными видами паразитов.
ЗАПИСЬ В ДНЕВНИКЕ ВСКРЫТИЙ
Параллельно с паразитологическим обследованием необхо-
димо вести дневник, тщательно записывая в нем все сведения,
касающиеся обследуемой птицы и найденных в ней парази-
тов. Для ведения дневника наиболее удобной является общая
тетрадь, запись в которую производят обязательно простым
(не химическим) карандашом.
Прежде чем приступать к непосредственному паразитоло-
гическому обследованию, птицу определяют (см. стр. 24)
и записывают в дневник ее название и порядковый номер
вскрытия. Если имеются сомнения в правильности определе-
ния, то после сбора наружных паразитов с птицы снимают
шкурку (Новиков, 1953) или отрезают голову, ногу, крыло и
сохраняют их до проверки определения специалистом. При об-
следовании птиц разнообразного видового состава номера их
вскрытий обозначают двойными, например: серебристая чайка
№ 62-9. Первая цифра, 62, обозначает общий порядковый
номер вскрытия птиц, а вторая, 9, — порядковый номер вскры-
тия данного вида птицы. Такая нумерация позволяет иссле-
дователю все время ориентироваться в количестве обследо-
ванного им материала. После названия птицы и ее номера
в дневнике указывают некоторые ее измерения (см. стр. 23),
вес, дату и место исследования (район, где проводится работа,
96
п место, где добыта птица) и оставляют место для обозначения
ее пола, который проставляют позже, при вскрытии. Здесь же
необходимо отметить, взят ли мазок или толстая капля крови.
Все эти сведения должны быть распределены на странице
дневника в определенном стандартном порядке (пример за-
писи см. на стр. 98). Определенный порядок записи имеет
большое значение и для дальнейшей статистической обработки
материала, ускоряя выборку из дневника нужных сведений.
Далее приступают к непосредственному паразитологиче-
скому обследованию птицы и по мерс нахождения в ней пара-
зитов производят запись в дневнике. В дневнике должны быть
отмечены более или менее точное видовое (очень редко), родо-
лое (чаще) или другое, систематически более крупное название
паразита, точное место его нахождения (орган, сосуд, место
в ткани и т. д.) п количество. Кроме того, там, где это нужно,
делают небольшое примечание, в котором указывают па неко-
торые морфологические особенности паразита, степень его по-
ловозрелости, особенности в его локализации, характер вызы-
ваемых им патологических изменений органа и т. д.
Подобные примечания в дальнейшем значительно облег-
чают систематическую обработку и экологическое осмыслива-
ние собранного материала.
Если в обследованной птице паразиты отсутствуют, в днев-
нике обязательно пишут «паразитов нет».
Точный количественный учет паразитов имеет большое
значение для оценки степени их распространения и вредного
воздействия отдельных видов на птиц. Поэтому во всех слу-
чаях нужно стремиться точно подсчитать количество парази-
тов каждого вида и записать в дневнике.
Очень хорошо, если исследователь при подсчете парази-
тов может различать разные стадии или фазы их развития
(для наружных паразитов — личинки, нимфы, взрослые, для
червей — молодые, неполовозрелые и взрослые формы) и пол
(самцы, самки) и количество каждых записывает в дневнике
отдельно.
Количество перьевых клещей, находящихся па маховых
перьях крыла, подсчитывают для каждого пера отдельно и за-
писывают в дневнике дробью, ставя в числителе порядковый
номер пера (начиная от вершины крыла), а в знаменателе
количество находящихся па нем клещей (см. форму записи на
стр. 98). В примечании к перьевым клещам необходимо отме-
тить, в какой части пера (у стержня, ближе к вершине или
к основанию опахала и т. д.) находится большее количество
клещей. Число мелких перьевых клещей, обитающих в пуху,
на перьях тела, на коже и в подкожной клетчатке, точный
учет которых затруднен, записывают в дневнике с помощью
7 М. Н. Дубинина
97
Образец записи в дневнике вскрытий
Серебристая чайка № 62-9
Длина тела:	660	мм.
Длина крыла:	450	мм.
Размах крыльев: 1490	мм.
Длина хвоста:	181	мм.
Длина цевки:	11	мм.
Вес: 1200 г. Пол: (5.
Дата: 27 V 1962.
Место исследования: Астраханский
заповедник, Дамчик, Карасинский
култук.
Кровь: Взят мазок.
Название пара- зита	Локализация паразитов	Количество паразитов	Примечание
Перьевые клещи »	» »	» Пухоеды: Philopterus тип Colpocepha- lum Bilcharzia ъ Сосальщики Strigeidae Ремнецы Ленточные черви Ascaridata » Strigeidae Filariata	Маховые перья к рыла Кроющие перья к рыла Очины маховых перьев Перья головы и гиеи Перья тела Вены прямой кишки и клоаки Воротная вена печени Желчный пузырь Прямая кишка Средняя часть средней кишки Средняя часть средней кишки Желудок Пищевод Фабрициева сумка I Под кошеная клет- чатка бедра	1/г» 2/4> 3/42» 4/46» 5/б„ 6/40> 712» 8/б»	9/2. 1О/о, и/о, 13/и- 14/ю и т. д. Много 7о, 78, 3/42, 4/о0 и т- Д- 7 13 5	и 2 3 1	и 1 3 5 3 2 25 34(9 3,25 J) 9 молодых 11 1 5	Большинство нахо- дится на внутрен- нем опахале, ближе к стержню. Собраны частично. Много шкурок. Большеголовые. С поперечно вытяну- той головой. Собраны вместе. I Фиксатор ценкер- формол. Часть материала окрашена по Бла- жину. 1 Фиксированы вме- J сте. Тот же вид, что и из прямой кишки. I
Пища: Вобла дл. 17 см, отд. кости рыб (собраны).
условных обозначений: «масса», «много», «единичные экзем-
пляры» и т. д. Подобным способом учитывают и записывают
в дневнике всех простейших, находящихся в крови и кишеч-
98
нике, дейтонимф клещей и личинок различных червей, пара-
зитирующих в мускулатуре и подкожной клетчатке. Приме-
чания в дневнике должны быть очень краткими и точными.
Все замечания, касающиеся отдельных особенностей па-
разитов, их локализации и вызываемых ими заболеваний,
должны быть занесены в особую, предназначенную для этой
цели тетрадь.
В -случае фиксации паразитов сложными фиксаторами не-
обходимо отметить в примечании название последних. Кроме
того, если количество собранного материала не соответствует
количеству материала, отмеченному в дневнике, в примеча-
нии против таких паразитов отмечают: «собраны частично»
или «взято несколько экземпляров», «не собраны» и т. д.
После записи всех найденных паразитов в дневнике вскры-
тий, в примечании «пища» перечисляются животные и расти-
тельные остатки, найденные в зобу, желудке или других от-
делах пищеварительного тракта. На этом запись в дневнике
по данному вскрытию заканчивают. В общем виде запись в днев-
нике имеет форму, приведенную на стр. 98.
МЕТОДЫ ФИКСАЦИИ РАЗЛИЧНЫХ ГРУПП ПАРАЗИТОВ
Для последующей лабораторной обработки и точного опре-
деления материала очень важно, чтобы в полевой обстановке
он был чисто собран, хорошо и соответствующим образом за*-
фиксирован и правильно сохранен. Первое особенно относится
к эндопаразитам, которые при извлечении из внутренних ор-
ганов бывают покрыты кусочками ткани, слизью или содержи-
мым кишечника; наружных паразитов можно собирать прямо
в фиксатор.
Фиксация паразитов должна производиться так, чтобы обес-
печить их дальнейшее изучение как на тотальных препа-
ратах (паразит изучается целиком), так и на сериях срезов.
Поэтому наряду с фиксацией основной массы паразитов обыч-
ными фиксаторами, пригодными для тотального изучения объ-
екта, одновременно небольшое количество наиболее редкихи ма-
ло знакомых паразитов фиксируют более сложными фиксатора-
ми для дальнейшего анатомо-гистологического их изучения.
Обычным, наиболее широко употребляемым фиксатором для
тотального изучения любых паразитов является 70°-й спирт.
Перед фиксацией 70°-й спирт хорошо подогреть до 40—50° Ц;
теплый фиксатор быстро убивает паразитов и фиксирует их
в расправленном состоянии. Количество фиксатора должно
в 8—10 раз превышать объем фиксируемого материала.
Для тотального изучения всех групп наружных паразитов
(блох, кровососущих мух, пухоедов и различных клещей), луч-
99
шим фиксатором, чем 70 %-й спирт, является жидкость Уде-
манса (см. стр. 117). Последнюю особенно можно рекомендо-
вать для фиксации мелких клещей — гамазовых, краснотел-
ковых, перьевых и для личинок иксодовых клещей.
В жидкости Удеманса клещей фиксируют в течение 2—-3 чц.
сов, затем их промывают 70°-м спиртом и сохраняют в свежей
порции спирта.
Для последующего анатомо-гистологического изучения на-
ружных паразитов прекрасным фиксатором (для всех членисто-
ногих) является жидкость Карну а, быстро проникающая че-
рез хитиновые покровы. Жидкость Карнуа приготовляется
(см. стр. 117) только перед употреблением; длительность фик-
сации 30—40 минут. Крупные объекты (иксодовые клещи и
крупные пухоеды) перед фиксацией необходимо надколоть пре-
паровальной иглой. После фиксации объект промывают 70°-м
спиртом и сохраняют в спирту до лабораторной обработки.
При отсутствии указанных фиксаторов можно пользоваться
4%-м формалином (см. стр. 116), однако для тотального изу-
чения паразитов он не пригоден. Для анатомо-гистологиче-
ского изучения отдельных паразитов и кусочков ткани, пора-
женной ими, формалин, наоборот, более применим, чем 70°-й
спирт.
Фиксация представителей различных групп внутренних па-
разитов — паразитических червей и простейших — имеет свои
особенности.
Для тотального изучения паразитических червей обычным
и широко употребляемым фиксатором, как было сказано выше,
является 70°-й спирт. Извлеченных паразитических червей,
прежде чем фиксировать, помещают в солонки с физиологи-
ческим раствором (см. стр. 115) или водой для промывания.
Вода, в которой промывают паразитов, должна быть без осадка.
Если воду берут прямо из водоема (реки, озера, водохрани-
лища и т. д.), ее предварительно фильтруют через двойной
фильтр.
Паразитов промывают следующим образом: солонку с па-
разитами помещают на столик штативной лупы и, наблюдая
в окуляр, устраняют с помощью препаровальных игл, стараясь
не повредить паразитов, приставшие к ним большие сгустки
слизи и кусочки тканей; затем, направляя пипеткой сильную
струю воды па паразитов (осторожно, чтобы не выплеснуть
их из солонки), отмывают приставшие к ним мелкие частицы.
Загрязненную воду осторожно отсасывают пипеткой, а в со-
лонку к паразитам наливают чистой воды. Только после много-
кратной смены воды, добившись полной очистки паразитов, их
фиксируют. Для изучения гистологической структуры стенок
цист и выяснения положения в них паразитов, личинок пара-
100
знтических червей (сосальщиков и круглых) фиксируют вместе
с капсулами; для морфологического изучения самих червей —
их предварительно извлекают из цист. Для этого цисты с жи-
выми паразитами помещают на предметное (или препароваль-
ное) стекло в каплю воды или физиологического раствора и,
наблюдая под лупой, осторожно надрывают острыми препаро-
вальными иглами их стенки; далее цисты накрывают покров-
ным стеклом и, слегка нажимая на последнее, выдавливают
из них паразитов. Личинки червей (особенно сосальщиков)
очень нежны и при сильном нажиме на покровное стекло их
можно раздавить; во избежание этого надавливание на стекло
производят очень осторожно (лучше концом препаровальной
иглы), наблюдая при помощи лупы за выходом личинок. Не-
обходимо следить, чтобы при этом под покровным стеклом
было достаточное количество воды, предохраняющей парази-
тов от раздавливания. Личинок, извлеченных из цист, промы-
вают и фиксируют, как и взрослых червей.
Сосальщиков и круглых червей с толстой кутикулой (аска-
ридат, спирурат и др.) желательно фиксировать сразу после
их гибели в воде (момент прекращения движений), так как
в это время они хорошо расправляются. Мертвых червей долго
держать в воде нельзя: они начинают разлагаться и материал
оказывается непригодным для систематического изучения.
Ленточных червей и скребней, наоборот, нужно фикси-
ровать живыми, предупреждая этим выпадение из их хобот-
ков крючьев, имеющих большое систематическое значение, и
добиваясь фиксации паразитов с вытянутыми хоботками.
Сосальщиков, извлеченных из печени, почек и крове-
носных сосудов, а также круглых червей со сравнительно
тонкой кутикулой (Filai'iata, Capillaria и др.) фиксируют
тоже живыми и возможно скорей, так как паразиты могут
лопнуть от долгого пребывания в воде в силу разности осмоти-
ческого давления их полостной жидкости и окружающей воды;
определение же таких поврежденных червей сильно затруд-
няется. Чтобы зафиксировать червей в расправленном состоя-
нии, для сосальщиков и ленточных червей, кроме фиксации
подогретыми фиксаторами, применяется фиксация под стеклом.
С этой целью червей помещают на предметное стекло и накры-
вают, в зависимости от величины объекта, покровным или пред-
метным стеклом; затем, слегка надавливая на верхнее стекло,
пипеткой подпускают под него 70°-й спирт пли другую фикси-
рующую жидкость. Черви между стеклами должны находиться
в фиксаторе не менее 1—2 часов, поэтому нужно следить,
чтобы фиксатор не испарялся, и по мере надобности добавлять
его. Лучше всего фиксацию производить в закрытых чашках
Петри.
101
Фиксацией под стеклом особенно злоупотреблять нельзя
так как при ней нередко происходят изменения формы тела и
относительного расположения отдельных органов червей. По-
этому одновременно с фиксацией под стеклом часть того же
материала, для контроля, следует фиксировать без стекла.
При фиксации без стекла хорошо пользоваться подогретым
до 40—50° Ц 70°-м спиртом.
Мелких сосальщиков перед фиксацией без стекла рекомен-
дуют помещать в пробирку с водой и сильно встряхивать
в течение 5—10 минут (метод Лоосса); при этом мышцы червей
расслабляются и сосальщики фиксируются хорошо расправ-
ленными.
Скребней, как правило,.всегда фиксируют под предметным
стеклом, которым осторожно, с возрастающей силой надав-
ливают на червя, до полного выворачивания его хоботка.
После того как хоботок червя удается вывернуть совсем, на
верхнее стекло ставят небольшой груз (специально изготовлен-
ный или гирю весом 10—20 г), или стекла, между которыми
находится паразит, перевязывают ниткой и под стекло пипеткой
наливают фиксатор. В таком виде скребней нужно держать не
менее 2—3 часов, поместив их предварительно в закрытую
чашку Петри.
Кроме фиксации 70°-м спиртом, для тотального изучения
различных групп червей пользуются и другими фиксаторами.
Для круглых червей лучшим фиксатором является жидкость
Барбагалло (см. стр. 117). Этот фиксатор, как и спирт, удобен
тем, что в нем объект сохраняется до лабораторной обработки.
Скребней хорошо фиксировать жидкостью Костылева (см.
стр. 117); паразитов в ней выдерживают 2—3 часа, а затем
сохраняют в 70°-м спирту. Пиявок лучше фиксировать 1 —
2%-м раствором формалина (см. стр. 116), в котором хорошо
сохраняется их окраска. Очень хорошо одновременно с простой
фиксацией спиртом небольшое количество ленточных червей
и крупных сосальщиков предварительно окрасить по Блажину.
Для этой цели живых червей помещают в проточную или
часто сменяемую воду и мацерируют в ней в течение суток
(крупные объекты до 2 суток). После этого объект переносят
в смесь Блажина (см. стр. 117), где держат от 30 минут до 4 ча-
сов, до получения им интенсивной оранжево-красной окраски,
а затем, основательно промыв водой, помещают в раствор
полуторахлористого железа (на 100 см3 воды 3 капли полутора-
хлористого железа и 2 капли карболовой кислоты). В послед-
нем растворе объект через несколько часов приобретает ко-
ричнево-черную окраску, затем его промывают в воде и поме-
щают в 70°-й. спирт до лабораторной обработки; однако, если
объект нужно срочно рассмотреть, можно сделать через сутки
102
из окрашенного и фиксированного материала постоянный пре-
парат (см. стр. 122).
Способ окраски и фиксации по Блажину на тотальных пре-
паратах дает исключительно четкую картину анатомического
строения червя, но при продолжительной мацерации ленточ-
ных червей в воде сколексы их теряют крючья. Поэтому окра-
ской по Блажину можно пользоваться лишь при наличии
большого материала, часть которого одновременно фиксируют
спиртом. Если же материала мало, то лучше его фиксиро-
вать только спиртом или, оторвав от червей головки и зафикси-
ровав их спиртом, окрасить стробилу по Блажину.
Для анатомо-гистологического изучения паразитических
червей (и кусочков пораженных ими органов) на серии микро-
скопических срезов наиболее распространенными фиксато-
рами являются различные сулемовые смеси.
Сулема — сильный яд, поэтому при работе с ней и ее
смесями нужно соблюдать должную осторожность и хра-
нить их под ключом. При работе с сулемовыми фиксаторами
нельзя опускать в них металлические инструменты (они пор-
тятся!), надо пользоваться для переноски объекта в фиксатор
деревянными палочками, зубочистками или пипеткой.
Из сулемовых смесей особенно хорошие результаты при фик-
сации червей дает смесь насыщенного раствора сулемы (20 см3)
с ледяной уксусной кислотой (1 см3). Смесь приготовляется
перед употреблением и для ускорения фиксации подогре-
вается до 50°Ц. Подогретый фиксатор быстро наливают в со-
лонку к живым червям; последние моментально гибнут и фи-
ксируются в расправленном состоянии. Фиксация длится от
30 минут до 1 часа, в зависимости от величины объекта (круп-
ные куски тканей с паразитами фиксируют дольше). После
фиксации объект тщательно промывают 70°-м спиртом и для
удаления сулемы иодируют, помещая его в смесь 70°-го спирта
с иодом (цвета крепкого чая). Под влиянием сулемы иодиро-
ванный спирт начинает обесцвечиваться; в этом случае к нему
прибавляют еще иода. После прекращения обесцвечивания
спирта иодирование заканчивают и объект переносят в чистый
70°-й спирт, в котором хранят до дальнейшей обработки.
Универсальным фиксатором для гистологического иссле-
дования всех групп червей и особенно кусочков органов и тка-
ней, поврежденных паразитами, является смесь Максимова,
или ценкер-формол (см. стр. 117). Смесь приготовляют перед
употреблением. Фиксация длится от 1 до 3 часов, в зависимости
от величины объекта. После фиксации объект в течение суток
промывают в проточной или часто сменяемой воде до исчез-
новения желтой окраски, затем его иодируют (см. выше) и
сохраняют в 70°-м спирте.
ЮЗ
Для фиксации крупных кусков тканей, до 0.5 см толщиной,
и целых органов, пораженных паразитами, обычно пользуются
и 4%-м формалином, который сравнительно быстро прони-
кает в ткани. Если объект большой, то его в нескольких местах
надрезают бритвой. Объект фиксируют не более 6 часов, меняя
фиксатор 1 или 2 раза. В дальнейшем материал сохраняют
в 70°-м спирте.
Перечисленные фиксаторы при правильном их примене-
нии вполне обеспечивают хорошую сохранность объектов для
дальнейшей их обработки.
Мазки для обнаружения простейших, сделанные из содер-
жимого кишечника или других органов, обычно фиксируют
жидкостью Шаудина (см. стр. 117). Покровное стекло со сде-
ланным на нем мазком сразу же, пока последний не подсох,
опускают мазком вниз на 5—10 минут в солонку с жидкостью
Шаудина, где мазок фиксируется и прочно прилипает к по-
верхности стекла. После фиксации стекло с мазком промывают
в 70°-м спирте, иодируют в течение 15 минут и сохраняют
в специальном цилиндрическом стаканчике с 70°-м спиртом
(рис. 50, 7). Мазки крови, сделанные на предметных стеклах,
обычно фиксируют в течение 3—5 минут метиловым спиртом
(ядовит, остерегаться вдыхания) или, если его нет, смесью
равных частей абсолютного спирта и эфира (15—30 минут).
Чтобы жидкость быстро не испарялась, фиксацию произво-
дят в закрытом стаканчике. Стекло с сухим мазком крови
опускают на указанный срок в фиксирующую жидкость, за-
тем вынимают, высушивают на воздухе и, завернув в бумагу,
сохраняют до окраски.
Толстые капли крови не фиксируют совсем, а сохраняют
в сухом виде, как и мазки крови, до последующей окраски.
Дальнейшую обработку их нужно производить как можно
скорее, при первой же возможности, так как давно изготов-
ленные мазки п капли крови окрашиваются очень трудно.
ЭТИКЕТИРОВАНИЕ И ХРАНЕНИЕ ПАРАЗИТОЛОГИЧЕСКОГО
МАТЕРИАЛА
Правильное и точное этикетирование собранного материала
является основным требованием каждой научной работы. Даже
хорошо собранный и зафиксированный материал, если он плохо
или неверно этикетирован (не указаны хозяин, локализация
или место сбора; этикетки перепутаны или их нет совсем и т. д.),
теряет научную ценность и исключается из научной обработки.
Поэтому во избежание путаницы при этикетировании мате-
риала следует быть очень внимательным и точным.
При сборе материала из определенного органа сразу же
под солонку или другой сосуд, куда помещают паразитов,
104
подкладывают временную этикетку, написанную простым ка-
рандашом на обыкновенной белой бумаге. На временной
этикетке должны быть указаны: помер вскрытия птицы,
локализация паразита (место оперения, орган,, ткань, сосуд
н т. д.) и дата вскрытия. Эта этикетка остается с парази-
тами, находящимися в солонке, в течение всего времени их
промывки и фиксации и заменяется более подробной постоян-
ной этикеткой только при перенесении материала для хране-
ния в пробирки. Постоянную этикетку пишут на кальке или
плотной белой бумаге несмываемой в спирту тушью или простым
мягким карандашом. Размеры этикетки должны быть немного
меньше площади сторон пробирок, в которые помещают пара-
зитов. Стандартный размер этикетки для пробирок, указан-
ных в настоящей инструкции, должен быть не более 20 X
30 мм. На этикетке параллельно ее длине указывают: в 1-й
строке — название птицы и номер; во 2-й строке — место
локализации паразита (перья, орган, ткань и т. -д.); в 3-й
строке — название паразита (которое должно точно соот-
ветствовать тому, как оно записано в дневнике) и в скоб-
ках название фиксатора (если паразит зафиксирован сложным
фиксатором для целей гистологического исследования); в 4-й
строке — район исследования и место добычи птицы; в 5-й
строке — дату вскрытия и фамилию сборщика.
Чтобы перечисленные сведения уместились на сравнительно
небольшой площади этикетки, писать их следует мелко и раз-
борчиво, пользуясь тонким чертежным пером или остро от-
точенным карандашом. Некоторые слова в этикетке можно
писать сокращенно; все сокращения, однако, должны быть,
понятными для всех. Примеры таких этикеток:
Серый гусь 42-9
Слепые отростки киш.
Notocotylus
АГЗ,1 Дамчик, взморье
5 V 1939, Е. Петрова
Шилохвость 39-5
Задн.частъ тонкой киги.
Сосальщики (ценкер-
формол)
Зап.-Сиб. край, оз. Чаны
27 VII 1937, С. Иванов
Кваква 114-16
М ах. перья к рыла
Перьевые клещи
Смесь Карну а
АГЗ,1 Дамчик,
колония
14 V 1949, М. Ду-
бинина
Если текст не умещается на одной стороне этикетки, его
пишут на обеих сторонах; на лицевой стороне указывают на-
звание птицы, номер вскрытия, место локализации паразита,
его название и фиксатор, на оборотной стороне — место ис-
1 АГЗ — Астраханский государственный заповедник.
105»
•следования, дату вскрытия и
мер:
Лицевая сторона
фамилию сборщика. Нацр^
Оборотная сторона
Кулик фифи 25-3
Перъя головы и шеи
Пухоеды
Куйбышевская обл.
Ку ту лукское водохран.
12 V 1951, М. Дубинина
Этикетку свертывают в трубочку и вкладывают в пробирку
так, чтобы ее лицевая сторона плотно прилегала к стенкам
пробирки и ее можно было бы прочесть, не вынимая. Такое
положение этикетки в пробирке при дальнейшей лаборатор-
ной обработке материала сильйо облегчает разбор его по груп-
пам паразитов и видам хозяев. Этикетку лучше вкладывать
в еще пустую пробирку, а затем уже пипеткой (мелких пара-
зитов) или пинцетом (крупных паразитов) переносить в нее
материал. Пробирку с паразитами (до краев наполненную
спиртом) с помощью пинцета закрывают смоченным в спирту
плотным ватным тампоном, нижний край которого должен
касаться жидкости, находящейся в пробирке, и не оставлять
там воздуха, а верхний быть на уровне края пробирки
(рис. 49,1). Если пробирок мало, можно в одну пробирку упако-
вывать две пробы паразитов из разных органов или разных птиц,
отделяя их друг от друга небольшим, но очень тугим ватным
тампоном; в этом случае на дно пробирки помещают пробу
с мелкими паразитами, а во второй ярус, на ватный тампон, —
крупных паразитов (рис. 49, 2). Пробирки берут из материаль-
ных банок, в которые их упаковывают перед отъездом на поле-
вую работу (см. стр. 114). Перед началом обследования, уже
на месте полевых работ, такую материальную банку с пробир-
ками нужно «зарядить», т. е. вынуть все пробирки и вату
верхних рядов и, оставив один нижний ряд пробирок, залить
их 70°-м спиртом или другой жидкостью, в которой предпо-
лагают хранить материал после фиксации (4%-й формалин,
жидкость Барбагалло и т. д.) (рис. 49, 3). По мере надобности
пробирки по одной берут из «заряженной» банки и, положив
в них этикетку и паразитов, закрывают ватным тампоном и
ставят на прежнее место. Когда все пробирки нижнего ряда
будут заполнены, их закрывают слоем ваты и устанавливают
второй ряд пустых пробирок, который заливают фиксатором
и заполняют паразитами и т. д. При таком способе заполне-
ния банки пробирки всегда находятся в вертикальном поло-
жении, а паразиты в них лежат на дне, не касаясь ваты, что
•особенно важно при хранении мелких объектов, которые могут
пристать к ватному тампону и впоследствии затеряться. Когда
поз
банка будет заполнена, в нее доверху наливают спирт (или
другую жидкость) и оставшееся в верхней части место, не
занятое пробирками, плотно забивают ватой. Банку с мате-
рпалом плотно закрывают корковой (или стеклянной, при-
тертой) пробкой, которую крепко привязывают к краям гор-
лышка банки и заливают парафином (рис. 49, 4) или обтяги-
вают куском мокрого бычьего пузыря. В таком виде паразитов
перевозят и хранят до лабораторной обработки.
Так же этикетируют и сохраняют фиксированные кусочки
органов и ткани, пораженные паразитами, и крупных пара-
Рис. 49. Упаковка паразитов.
1 — обычная упаковка паразитов в пробирку; 2 — упаковка паразитов ь пробирку
в два яруса; 3 — «заряженная» материальная банка; 4 — упаковка заполненной
пробирками с паразитами материальной банки.
знтов, уложенных в отдельные баночки соответственной вели-
чины или химические пробирки. В этих случаях в этикетках
(которые могут быть большего размера, чем это указано для
мелких пробирок), после названия паразита обязательно (даже
при фиксации их 70°-м спиртом) нужно указать название фик-
сатора.
Мазки содержимого кишечника, сделанные на покровных
стеклах, этикетируют и сохраняют иначе. Покровные стекла
с фиксированными и иодированными (см. стр. 103) мазками,
обычно сохраняют в 70°-м спирте, в плотно закрывающемся
цилиндрическом стаканчике или бюксе.
107
По диаметру стаканчика из кальки или плотной белой
бумаги вырезают круглые этикетки (рис. 50, 2), которые одно-
временно служат прослойками, отделяющими друг от друга
мазки из разных отделов кишечника или от разных птиц.
Круглые этикетки заполняют только с одной стороны, где
указывают: название птицы и номер вскрытия; место кишеч-
ника или другой орган, откуда взят мазок; название группы
паразитов (кокцидии, жгутиконосцы или другие простейшие),
если они обнаружены при предварительном просмотре мазка
в микроскоп (если мазок не просмотрен, вместо названия группы
пишут «мазок»); район обследования и место добычи птицы;
дату изготовления мазка и фамилию сборщика.
При укладке мазков па дно стаканчика с 70°-м спиртом
помещают несколько чистых кружков бумаги и на них, всегда
мазком вниз, опускают покровные стекла одной пробы,
а сверху покрывают их соответствующей им этикеткой. Эти-
кетки по размеру должны строго соответствовать внутрен-
нему диаметру стаканчика и, плотно прилегая к мазку,
лежать текстом кверху. На этикетку кладут новые мазки,
сделанные из другой части кишечника или из другой птицы,
которые в свою очередь покрывают соответствующей этикеткой,
и т. д. (рис. 50). При транспортировке мазков во избежание
трения их друг о друга и об этикетки в стаканчик между стол-
биком мазков и пробкой необходимо положить плотный, смо-
ченный в спирту комок ваты. При упаковке стаканчик плотно
закрывают пробкой и края ее заливают парафином. В таком
виде мазки сохраняют до лабораторной обработки.
Этикетировка и упаковка мазков крови, сделанных па
предметных стеклах, более проста. Вместо бумажной этикетки,
выцарапывают острой препаровальной иглой на толстой части
мазка крови помер вскрытия или пишут его тушью на краю
стекла. Зафиксированные и высушенные мазки завертывают
один за другим в узкую полоску бумаги, связывают ниткой и
хранят (лучше в коробке) до окраски.
Обработанные в лаборатории мазки крови, содержимого
кишечника и постоянные препараты отдельных паразитов (см.
стр. 119) этикетируются окончательно. Каждый готовый пре-
парат снабжается двумя этикетками, на одной из которых
(нижней) пишут название птицы, номер вскрытия, место лока-
лизации паразитов, район и дату обследования и фамилию
сборщика, а на другой (верхней) — точное видовое название
паразитов, количество их (отдельно для разных полов и фаз
развития) на данном препарате и фамилию лица, определив-
шего данных паразитов (рис. 51). Этикетки пишут тушью на
плотной белой бумаге, размером 23X18 мм. Лучшим клеем
для приклеивания этикеток к препарату является готовый
108
клей БФ-2. Можно пользоваться также казеиновым (сухой
казеин, разведенный в нашатырном спирте) или желатиновым
(разбухший в воде желатин нагревают до кипения и разводят
крепкой уксусной кислотой) клеем. Чтобы этикетка прочно
приклеилась к стеклу> на ное сразу после наклейки ставят
грузик, который снимают как только подсохнет клей.
0^
|> ан,	оШэ
|9ч5
(Ц «ГЛ	ииича.

Рис. 50. Упаковка влажных
хмазков.
j — цилиндрический стаканчик с
мазками; 2 — круглые этикетки.
Рис. 51. Микроскопические препа-
ратной их этикстировка.
1 — препарат с одним покровным стеклом;
2 — препарат с двумя покровными
стеклами.
ПЕРВИЧНАЯ ПОЛЕВАЯ ОБРАБОТКА МАТЕРИАЛА
При обследовании большого числа птиц различного видо-
вого и возрастного состава очень важно знать в любое время,
какое количество птиц каждого вида и возраста вскрыто на
данное число, как сильно они заражены, сколько и какие виды
нужно еще обследовать. Такие сведения дают возможность
более точно планировать полевую работу и заранее предупре-
дить возможные в ней промахи. При разнообразном видовом
составе птиц довольно трудно каждый раз просматривать весь
дневник вскрытий и выбирать нужные сведения. Наиболее
целесообразно такой статистический учет обследованных птиц
и степень заражения их отдельными группами паразитов вести
ежедневно, пользуясь заранее заготовленной табличкой, об-
109
разец которой дается на стр. 111: с левой стороны выписы-
вают все виды птиц, подлежащие обследованию, а справа,
в небольшие квадраты (число которых должно соответствовать
количеству предполагаемых вскрытий), по мере обследования
вписывать основные сведения по кащдому вскрытию.
Число заполненных квадратов против названия каждого
вида показывает, какое количество птиц вскрыто, число пу-
стых квадратов — сколько нужно еще добыть и обследо-
вать.
Сведения, вписываемые в квадраты таблицы по каждому
вскрытию, должны быть стандартизированы для всех видов:
птиц и соответствовать задачам работы. Для эколого-пара-
зитологических работ в таблице по каждому вскрытию нужно
указать: номер вскрытия, пол и возраст птицы, дату вскрытия
(число и месяц), место, где добыта птица, и название основных
групп паразитов, найденных в каждой птице. Группу пара-
зитов обозначают сокращенно, через начальную букву их наи-
менования: блохи — Б, перьевые клещи — An (Analginae)r
иксодовые клещи — I (Ixodes), прочие клещи — пухоеды —
М (Mallophaga), сосальщики — Т (Trematoda), ленточные
черви — С (Cestoidea), круглые черви — N (Nematoda),
скребни — A (Acanthocephala), простейшие — Р (Protozoa) и
т. д. Обозначение групп паразитов может быть и иным, в за-
висимости от удобства. Внешний вид такой таблицы представ-
лен на стр. 111.
Подобная таблица наглядно иллюстрирует объем работыг
характер видового, возрастного и полового состава обследо-
ванных птиц и дает в общих чертах представление о степени
их заражения различными группами паразитов в разные ме-
сяцы. Имея подобные сведения, уже в условиях полевой ра-
боты можно наметить некоторые основные закономерности
в заражении птиц отдельными паразитами в разных местах их
обитания и в различное время года и, прибегая к дополнитель-
ным обследованиям и наблюдениям, проверить их достовер-
ность. Кроме того, сопоставляя степень заражения с биоло-
гией птиц данного района (период гнездования, линьки, места
кормежки, характер пищи и т. д.), можно выяснить условия
и понять причины массовых заражений, возможных эпизоо-
тий и т. д. среди отдельных видов домашних и промысловых
птиц, что имеет большое значение для борьбы с паразитарными
заболеваниями.
Подобная статистическая обработка материала активизи-
рует полевую работу, делает ее более целеустремленной и
в некоторых случаях позволяет уже на месте сделать практи-
чески важные выводы, которые доводятся до сведения местных
хозяйственных организаций.
110
Таблицу нужно заполнять ежедневно, но не после каж-
дого вскрытия, а в конце рабочего дня, когда весь собранный
материал будет зафиксирован и упакован. Сведения по вскры-
Образец таблицы вскрытия птиц1
Риды обсле- дуемых птиц	Количество вскрытых птиц		
	1	2	3
Серый гусь	1-1 О, взросл., 12 VI Взморье	4-2 О, взросл., 13 VI У верхней грани- цы заповедника	8-3 Молод., пух., 18 VI •Гнездо, взморье
	Ап, М, Т, С, N	К, Ап, М, Т, С, N	Т, N
Кряковая утка	5-1 (j), взросл., 13 VI У верхней границы	г	°-2 О, взросл., 13 VI У верхней границы	15-3 О, взросл., 20 VI Взморье
	Ап, М, Т	Ап, М, С, N	An, М, Т, N
1 Серая цапля	2-1 О, взросл., 12 VI Взморье	10-2 Молод., 20 дн., 18 VI Колония№ 3	11-3 Молод., 15—18 ‘ дн., 18 VI Колония № 3
	An, М, Т, N	М, Т, N	м, с
Большая белая цапля	7-1 о, взросл., 16 VI У верхней границы	12-2 Молод., 10—15 дн., 18 VI Колония № 3	16-3 2» взросл., 20 VI Взморье
	Ап, М, С, N	Ап, Т, С	An, М, Т, N
Малая белая цапля	3-1 2> взросл., 12 VI Колония № 1	13-2 2» взросл., 19 VI Река Быстрая	14-3 Молод., 5—7 дн., 19 VI Колония № 1
	1 Ап, М, Т, С, N 1	Ап, М, С, N	Паразитов нет
1 Астраханский заповедник, лето 1940 г.
111
тиям для заполнения таблицы берут из дневника, одновременно
проверяя, все ли правильно и точно записано в нем за этот
день работы.
ОБОРУДОВАНИЕ И РЕАКТИВЫ, НЕОБХОДИМЫЕ ДЛЯ ПОЛНОГО
ПАРАЗИТОЛОГИЧЕСКОГО ОБСЛЕДОВАНИЯ ПТИЦ
Успешность исследования во многом зависит от тщатель-
ной подготовки необходимого оборудования, реактивов и вспо-
могательных материалов. Недостаток чего-либо во время ра-
боты в полевых условиях приводит к необходимости заменять
отсутствующее и отступать от правильной методики исследо-
вания, что снижает качество научного материала. Поэтому
сборам в экспедицию должно быть уделено серьезное внимание.
Приводимый ниже список оборудования является мини-
мумом, необходимым для проведения полного паразитологи-
ческого обследования птиц. Количество материалов и реак-
тивов зависит от объема предполагаемых работ и видового
состава обследуемых птиц. Необходимо иметь в виду, что
крупные, питающиеся животной пищей птицы, как правило,
заражены внутренними паразитами сильнее, чем мелкие зерно-
ядные и растительноядные птицы. Наружные же паразиты,
особенно клещи и пухоеды, встречаются у подавляющего боль-
шинства птиц.
При определении количества необходимых материалов
(спирта, пробирок, материальных банок и другой посуды)
•следует исходить из того, что в каждой птице в среднем будет
найдено 4—5 видов паразитов (у воробьиных и птиц северных
районов среднее количество видов паразитов будет значительно
меньше); при этом, однако, и посуду и реактивы лучше взять
•с превышением сделанных расчетов, так как трудно заранее
предугадать объем работ и обилие материала.
Оптика
1.	Лупа штативная с увеличениями х10 и х20.
2.	Микроскоп биологический.
3.	Бинокуляр (по обязательно, но желательно).
4.	Рисовальный аппарат типа Аббе (желательно).
.5. Окулярмпкрометр (с уже вычисленным абсолютным значением од-
ного деления линейки, см. стр. 93).
Инструменты и прочес оборудование
1.	Пинцеты мягкие, анатомические — 3 шт.: один большой (20—30 см
длиной) для укладки пробирок в материальные банки и извлечения
их оттуда; один средний (13—16 см длиной) для грубых работ при
вскрытии и один маленький (глазной), прямой или изогнутый, с ост-
рыми концами, для сбора паразитов.
2.	Ножницы — 3 пары: одни большие для вскрытия полости тела круп-
ных птиц и перерезания костей, другие средней величины для вскры-
112
гия органов и третьи маленькие, лучше с тупыми концами, для пре-
паровки кровеносных сосудов и нежных тканей.
3.	Скальпели обыкновенные — 2 шт.
4’ Препаровальные иглы — 10—20 шт.
5 Зубочистки — 1 пачка (удобны для перенесения паразитов со стекла
в солонки, пробирки и т. д.).
0 Пипетки с резиновыми грушами — 4—6 шт. (2—3 для воды и сбора
живых тразптов и 2—3 для разных фиксаторов и красок).
; Весы чашечные с разновесом до 500 г пли безмен.
S, Аптекарские весы с разновесом.
р Спиртовка.
Стекло и посуда
I Препаровальные стекла для компрессорного исследования, размером
6X12 см из светлого оконного стекла — не менее 6 пар. В качестве
препаровальных стекол могут быть использованы отмытые старые
фотопластинки размером 9X12 см, которые перерезают алмазом на
два равных стекла размером 6X9 см.
Рис. 52. Различные солонки, пригодные для сбора паразитов.
2.	Чистые предметные стекла — 50—100 шт., для рассмотрения на них
отдельных паразитов и изготовления временных и постоянных пре-
паратов.
3.	Обезжиренные предметные стекла для. мазков и толстых капель
крови — в количестве предполагаемых вскрытий.
4.	Чистые покровные стекла (размером 18 X 18 или 20 X 20 мм) для изготов-
ления мазков на простейших и временных и постоянных микроско-
пических препаратов.
5.	Специальные солонки (рис. 52) из прозрачного стекла, чашечки или
небольшие чашки Петри (не более 2—2.5 см высотой и 5—7 см в диа-
метре), со стеклянными крышками — не менее 10—15 шт. При от-
сутствии подобной посуды вполне пригодными являются стеклянные
баночки из-под икры на 25 г.
6.	Часовые стекла 5—6 см в диаметре — 10 пар; при отсутствии солонок
количество часовых стекол надо соответственно увеличить.
7.	Чашки Петри обычного размера — не менее 5 пар. Необходимы для
изоляции отдельных органов, разбора пищи, для отмывки и фикса-
ции большого количества паразитов, прикрытия мазков крови при
их просушке и т. д.
8.	Металлические или пластмассовые кюветы размером 30—35X20—
25 см для вскрытия в них птиц — 1—2 шг.
9.	Кристаллизатор, простоквашница или другая посуда объемом на 1—
2 л для мытья препаровальных стекол.
10.	Стаканы или широкогорлые банки объемом 100—150 см3 для чистой
воды и физиологического раствора.
S М. Н. Дубинина	-	113
И. Цилиндрический стаканчик 3—4 см в диаметре или бюкс для хране-
ния покровных стекол с влажными мазками.
12.	Мензурка емкостью 50—100 см3 для разведения фиксаторов.
13.	Стеклянная воронка среднего размера.
14.	Материальные банки емкостью 250, 500 и 1000 см3 для упаковки и
хранения в них мелких пробирок с паразитами. Общий объем банок
зависит от предполагаемого числа обследований птиц и нужного ко-
личества пробирок.
15.	Пробирки (цилиндрические) размером: 30X8—10 мм, 40X10
50X10 мм, 50—60X15 мм. Количество зависит от предполагаемого
числа исследуемых птиц, из расчета 3—4 пробирки на одну птицу.
Лучше брать большее количество мелких пробирок; число же круп1
ных пробирок должно не превышать 1/10 общего числа.
Пробирки должны быть упакованы в материальные банки, где
их устанавливают обязательно в вертикальном положении в два или
три ряда (в зависимости от их высоты и величины материальной
банки). На дне банки и между рядами пробирок прокладывают слои
гигроскопической ваты, которой плотно набивают также верхнюю
незаполненную часть банки. В такой упаковке пробирки, без риска
быть разбитыми, могут перевозиться на большие расстояния.
16.	Химические пробирки с пробками для хранения в них больших проб
паразитов или отдельных крупных червей.
17'. Мелкие баночки емкостью 25—100 см3 для той же цели.
18.	Склянки различной емкости для приготовления в них физиологи-
ческого раствора, 70°-го спирта и других фиксаторов и растворов.
Вспомогательные материалы
1.	Мешочки из плотной белой материи для изоляции в них свежеубитых
птиц; размеры их зависят от величины предполагаемых для исследо-
вания видов птиц.
2.	Гигроскопическая вата.
3.	Марля или широкие бинты-, куски которых можно использовать
при недостатке пробирок для завертывания содержимого желудка
птиц и отдельных зараженных органов.
4.	Полотенца мягкие для вытирания посуды и стекол.
5.	Фильтровальная бумага.
6.	Калька для этикеток.
7.	Тетради общие для ведения дневника вскрытий и для записи биоло-
гических наблюдений по исследованным видам птиц и найденным
в них паразитам.
8.	Бумага чистая, нарезанная полосами (ширина которых равна ширине
большей стороны предметного стекла), для завертывания в них пред-
метных стекол с мазками крови.
9.	Тушь и чертежные перья-для написания этикеток.
10.	Карандаши простые, мягкие.
11.	Халат или передник.
12.	Мыло.
Реактивы
1.,	Спирт-ректификат, 96°-й |	количество устанавливается в зави-
2.	Формалин 40%-й	/	симости от объема работы.1
3.	Спирт 70°-й, подкисленный крепкой соляной кислотой; для диф-
ференцировки объектов при окрашивании квасцовым кармином —
небольшой флакон объемом 30—50 см3. 1
1 При этом необходимо исходить из общего объема материальных
банок, которые понадобятся для хранения собранного материала. Так.
114 ,
4.	Обезвоженный (прокаленный) медный купорос в банке или бутылке
с притертой пробкой (для приготовления абсолютного спирта) на 200
—300 г.
5.	Раствор Ценкера — 100—200 г.
6.	Жидкость Шаудина (можно приготовить на месте).
7.	Сулема, насыщенный раствор — 100—200 г.
8.	Ледяная уксусная кислота — 50 г.
9.	Хлороформ — 100—150 г.
10.	Метиловый спирт или серный эфир — 100—150 г.
Ц. Хлористый натрий (поваренная соль) — 50—100 г.
12.	Хлористый калий — 5—10 г.
13.	Двууглекислый натрий (NaHCOs — очищенная сода) — 5—10 г.
14.	Хлористый кальций — 5—10 г.
15.	Двухромовокислый калий — 15—20 г.
16.	Раствор полуторахлористого железа — 15—20 г.
17.	Кармин по Блажину — 100—200 г.
18.	Квасцовый кармин — 50—75 г.
19.	Просветляющее масло (гвоздичное, кедровое, бергамотовое) или
ксилол — 15—20 г (масла) или 100—250 г (ксилола).
20.	Бальзам — 50 г.
21.	Тинктура иода — 10—25 г.
22.	Молочная кислота — 50—70 г.
23.	Глицерин — 70—100 г.
24.	Глицерин-желатин — 20—25 г.
ПРИГОТОВЛЕНИЕ ГЛАВНЕЙШИХ РАСТВОРОВ, ФИКСАТОРОВ
И КРАСОК
Физиологический раствор. Для получения
растворяют в 1 л дестиллированной воды 9 г поваренной соли.
Раствор Рингера для паразитов из теплокровных
животных. Получают, растворяя в 1 л дестиллированной
воды 8.5 г хлористого натрия, 0.25 г хлористого калия, 0.20 г
двууглекислого натрия (NaHCOs) и 0.30 г хлористого каль-
например, для исследования 100 птиц потребуется приблизительно
300—400 пробирок средней величины (см. стр. 114), которые упакуются
в материальные банки общим объемом 2—2.5 л. Количество же раз-
веденного спирта, нужного для фиксации и хранения материала, должно
превышать общий объем банок не менее чем в 3 раза, т. е. в данном
случае на 2.5 л посуды (материальные банки, заполненные пробирками)
потребуется 5.5 л 96°-го спирта, который при разведении его водой
даст 7.6 л 70°-го спирта.
Если при работе пользуются крупными пробирками, то соответ-
ственно увеличивается общий объем банок, в которые их упаковывают,
а вместе с этим и количество нужного спирта.
При работе в южных районах, учитывая быструю испаряемость
спирта, его нужно брать несколько больше.
При недостаточном количестве спирта или его отсутствии материал
можно фиксировать 4%-м формалином (см. стр. 116).
Количество формалина устанавливается, так же как и спирта,
в зависимости от объема работы и общего объёма банок, предназна-
ченных для хранения материала; при этом нужно иметь в виду, что
на 1 л 4%-го формалина требуется-0.1 л 40 % -го формальдегида........
8*
ция. Соли растворяют в порядке перечисления в холодной воде
(кипятить нельзя!). Раствор хранится не более 2—3 недель.
Разведение спиртов (из исходного 96°-го). Для
получения 70°-го сцирта к 100 см3 исходного спирта прибав-
ляют 39 см3 воды; для получения 60°-го — к 100 см3 исходного
прибавляют 63 см3 воды; для получения 50°-го — к 100 см3 ис-
ходного прибавляют 96 см3 воды.
Абсолютный спирт. Получают из 96°-го спирта
действием на него безводного медного купороса. Химически
чистый кристаллический медный купорос, размельченный
в ступке, прокаливают в фарфоровой чашке до получения бе-
лого порошка. При прокаливании купорос перемешивают
стеклянной или фарфоровой палочкой (не металлической!), не
допуская его перекаливания (порошок становится желтоватого
цвета). Обезвоженный медный купорос хранят в банке или
флаконе с притертой пробкой (в таком виде его берут в экспе-
дицию). Для приготовления абсолютного спирта в банку с про-
каленным купоросом наливают 96°-й спирт из расчета, чтобы
объем спирта не превышал 3—4 объемов купороса. Спирт
взбалтывают и оставляют отстаиваться на 1—2 дня. Обез-
воженный купорос поглощает из спирта воду и через некото-
рое время синеет. Для полного поглощения воды из спирта
в банку с последним через сутки подсыпают еще небольшое
количество прокаленного купороса или отстоявшийся спирт
сливают в другую банку со свежей порцией обезвоженного
купороса, вторично взбалтывают и дают отстояться. Если
купорос в банке со спиртом более не синеет, абсолютный спирт
можно считать готовым.
Подкисленный спирт. Для получения прибав-
ляют к 50 см3 70°-го спирта 7—9 капель крепкой (дымящейся)
соляной кислоты. Спирт взбалтывают и пользуются для диф-
ференцировки объектов, окрашенных квасцовым и борным
кармином.
Разведение формалина (из исходного 35—40 %-го
водного раствора формальдегида). Для получения 10%-го фор-
малина к 3 частям воды прибавляют 1 часть исходного фор-
мальдегида; для получения 4 %-го — к 9 частям воды прибав-
ляют 1 часть формальдегида; для получения 2 %-го -
к 19 частям воды прибавляют 1 часть формальдегида.
Насыщенный водный раствор сулемы.
Является главной составной частью многих фиксирующих
смесей. Для получения его 7 г сухой сулемы растворяют
в 100 см8 кипящей в химической колбе дестиллированной воды.
Раствор слегка остужают и переливают в флакон из темного
стекла (или обернутого черной бумагой). При полном охла-
ждении раствора на дне бутылки выпадут кристаллы сулемы,
116
что свидетельствует о насыщенности раствора. Сулема — сильг
ный яд, при работе с ней и ее смесями нужно соблюдать долж-
ную осторожность, хранить под ключом.
Раствор Ценкера и ценкер-формол. Для
получения раствора Ценкера 5 г кристаллической сулемы, 2.5 т
двухромовокислого калия и 1 г сернокислого натрия раство-
ряют при подогревании в 100 см3 дестиллированной воды.
Полученный раствор Ценкера может храниться долгое время.
Для получения ценкер-формола перед употреблением к 20 см3
смеси Ценкера прибавляют 1 см3 неразведенного формалина.
Жидкость Шаудина. Для получения к 2 частям
насыщенного водного раствора сулемы прибавляют 1 часть
абсолютного или 96°-го спирта. Жидкость хранят в флаконе
из темного стекла или в склянке, обернутой в черную бумагу.
Сулема с уксусной кислотой. Для получе-
ния к 20 см3 насыщенного водного раствора сулемы перед
употреблением прибавляют 1 см3 ледяной уксусной кислоты.
Жидкость Карну а. Для получения к 6 частям аб-
солютного спирта прибавляют 3 части хлороформа и 1 часть
ледяной уксусной кислоты. Смесь приготовляют перед упо-
треблением.
Жидкость Удеманса. Для получения к 87 частям
70°-го спирта прибавляют 8 частей ледяной уксусной кислоты
и 5 частей глицерина. Смесь хранят в хорошо закрытом фла^
коне.
Жидкость Барбагалло. Для получения рас-
творяют 9 г поваренной соли в 1 л дестиллированной воды и
к раствору прибавляют 30 см3 40 %-го формалина.
Жидкость Костылева. Для получения раство-
ряют 2 части кристаллической карболовой кислоты в 2 частях
воды и прибавляют 2 части молочной кислоты и 1 часть гли-
церина. Жидкость употребляют для фиксации скребней, после
чего паразиты сохраняются в 70°-м спирте. Перед окраской
скребней вторично выдерживают в течение 1—2 часов в жид-
кости Костылева, что способствует их лучшему прокрашиванию.
4%-й раствор двухромовокислого
калия. Приготовляют, растворяя в 100 см3 воды 4 г кристал-
лического двухромовокислого калия.
Кармин по Блажину. Для получения в 100 см3
30 %-й молочной кислоты растворяют при осторожном кипя-
чении в течение 20—30 минут 0.3 г растертого в ступке кар-
мина. Полученный раствор остужают и фильтруют. Одной
и той же порцией краски повторно пользуются не более
2—3 раз.
Квасцовый кармин. Для получения растворяют
4 г калийных или аммиачных квасцов в 100 см3 дестиллиро-
117
ванной воды и, прибавив 2 г тщательно растертого в ступке
сухого кармина, осторожно кипятят (1 час). Раствору дают
остыть, фильтруют и для предохранения от плесени кла-
дут в него 1—2 кристалла тимола. Краской пользуются много-
кратно.
Железный гематоксилин, по Гейден-
гай н у. Для получения растворяют 0.5 г гематоксилина
в 10 см3 9б°-го спирта. Раствор разбавляют 90 см3 дестиллиро-
ванной воды и оставляют его в заткнутом ватной пробкой
сосуде на 3—4 недели для созревания. Перед употреблением
краску разбавляют в 2 раза дестиллированной водой. Краской
можно пользоваться многократно.
Глицерин-желатин. Для получения 7 г чистого
желатина размачивают в течение 2—3 часов в 42 см3 дестил-
лированной воды. Добавляя 50 г глицерина и 0.5 г кристал-
лической карболовой кислоты, смесь, помешивая, нагревают
на водяной бане, затем фильтруют в термостате при 56—60°
и охлаждают.
Гуммиарабиновая смесь (жидкость Фора—
Верлезе). Состоит из 5 частей дестиллированной воды, 20 ча-
стей хлоралгидрата, 2 частей чистого глицерина и 3 частей
сухого гуммиарабика. Способ приготовления: в хорошо за-
крывающуюся стеклянную банку наливают воду, всыпают
гуммиарабик и ставят на несколько часов в термостат при
50—60°; затем в смесь добавляют глицерин и хлоралгидрат
и оставляют в термостате на 1—3 дня, до полного растворения
гуммиарабика. Готовую смесь фильтруют в термостате через
стеклянную вату или чистую ткань и сохраняют в темном
месте. Для текущей работы смесь отливают в маленькую широ-
когорлую баночку с притертой пробкой.
ИЗГОТОВЛЕНИЕ ПРЕПАРАТОВ
В данном разделе излагаются основные, наиболее простые
методы лабораторной обработки материала, которые в неко-
торых случаях оказываются необходимыми и в полевых ус-
ловиях.
Для определения паразитов и их изучения в лаборатории
из основной массы собранного материала изготовляют тоталь-
ные препараты, а из отдельных, специально фиксированных
для этой цели объектов — серии микроскопических срезов.
В случае необходимости изучение отдельных, особо важных
или мало знакомых паразитов проводят в полевых условиях
на живых объектах и тотальных препаратах.
Изготовление тотальных препаратов из различных групп
паразитов имеет свои особенности. В некоторых случаях из-
118
г0товляют временные препараты. При этом объект без предва-
рительной окраски помещают на предметное стекло в про-
светляющую жидкость (глицерин, молочная кислота), а после
еГо изучения переносят обратно в жидкость, в которой он
хранился до изготовления препарата. Однако в большинстве
случаев приходится приготовлять постоянные препараты. Из-
готовлением постоянных препаратов в полевой обстановке
особенно злоупотреблять нельзя, так как это занимает много
времени и отвлекает от основной задачи — сбора паразито-
логического материала.
Временные препараты
На временных препаратах чаще, чем на постоянных, изу-
чают и определяют всех круглых червей, плотная кутикула
которых не пропускает красок и которые поэтому, как правило,
не окрашиваются.
Круглых червей из жидкости, в которой они хранятся
(жидкость Барбагалло, спирт и др.), переносят на предметное
стекло в каплю молочной кислоты или, если объект очень
мелкий, в глицерин, накрывают покровным стеклом и через
короткое время, в процессе просветления, изучают под микро-
скопом.
На временных препаратах в молочной кислоте лучше, чем
на постоянных, можно рассмотреть вооружение головок лен-
точных червей и хоботков скребней, формуй величину крючьев,
имеющих большое систематическое значение. В глицерине и
в молочной кислоте можно также рассматривать зафиксирован-
ных гамазовых и перьевых клещей, мелких пухоедов и т. п.
Временные препараты могут храниться до года. Однако
нужно иметь в виду, что через 1—2 месяца объекты, лежащие
в молочной кислоте, становятся хрупкими и при перенесении
их обратно в спирт могут ломаться.
Постоянные препараты
Наружных паразитов (блох, клещей, пухоедов, мух-кро-
вососок и их личинок) при изготовлении постоянных тоталь-
ных препаратов, как правило, не окрашивают. Внутренние же
паразиты, кроме круглых червей, предварительно окраши-
ваются.
При изготовлении препаратов объекты проводят через ряд
жидкостей, в которых их, если нужно, мацерируют или окра-
шивают, обезвоживают, просветляют и затем заключают в ка-
надский бальзам или другую среду, в которой и* изучают.
При проведении объектов через жидкости надо следить, чтобы
119
их не растерять и не подсушить. Для этого солонки с паразц.
тами держат всегда плотно закрытыми стеклянными крышками
или часовыми стеклами; при проведении через жидкости
объект переносят из одной жидкости в другую, а с помощью
чистой пипетки отсасывают из солонки с паразитами одну
жидкость (следя за тем, чтобы не отсосать и объекты) и сразу >не
(чтобы объект не подсох) наливают другую. Исключением
являются просветляющие масла (гвоздичное, кедровое, бергамо-
товое или др.), которыми пользуются многократно. Просвет-
ляющее масло обычно держат в отдельных, специально
предназначенных для этого солонках или чашках с плотной
крышкой, куда паразитов переносят, а после просветления выни-
мают по одному острой деревянной палочкой (спичкой) или
зубочисткой (препаровальные иглы и другие металлические
предметы в масло опускать не рекомендуется).
Изготовление препаратов из блох. Блох
из спирта переносят в воду, налитую в солонку или часовое
стекло. Через 30 минут воду заменяют 5—10 %-м раствором
едкой щелочи (NaOH или КОН), в котором держат в течение
суток, затем споласкивают водой и обезвоживают в спиртах
возрастающей крепости (50°-й, 70°-й, 96°-й и абсолютный
спирт), выдерживая в каждом их них не менее 1 часа и не более
суток. Хорошо обезвоженных блох просветляют в гвоздич-
ном масле или в ксилоле (не передержать!) и заключают
в канадский бальзам. Для того чтобы препараты были ак-
куратными и правильно центрированными, под предметное
стекло (на котором собираются делать препарат), до нанесе-
ния на него бальзама, подкладывают специальный шаблон
готового препарата, вычерченного на белой бумаге тушью.
На шаблоне указываются контуры стандартного предметного
стекла и границы, где на нем должно лежать правильно цен-
трированное покровное стекло. На поверхность предметного
стекла в указанных границах предварительно наносят баль-
зам, а затем помещают на него блох (всегда на правый бок,
что удобно для сравнения). Не давая подсохнуть бальзаму,
блох накрывают покровным стеклом, и готовый заэтикетиро-
ванный препарат (см. стр. 108) высушивают в горизонтальном
положении. Если объект обладает значительной толщиной, то
прежде чем его накрывать покровным стеклом, на последнем
делают восковые «ножки». Восковые «ножки» получают, наца-
рапывая на каждый угол стекла небольшое количество раз-
мягченного пальцами воска. Высота их определяется толщиной
объекта.
Для того чтобы слой бальзама в препарате был по возмож-
ности тонким, на покровное стекло можно ставить небольшой
груз. По мере высыхания бальзама его нужно добавлять, при-
120
касаясь стеклянной палочкой с каплей бальзама к краю по-
кровного стекла, где он подсох.
Изготовление препаратов из пухо-
едов. Пухоедов, находящихся в 70°-м спирте, для лучшего
проникновения в них последующих реактивов слегка про-
калывают в край брюшка острой препаровальной иглой и,
сполоснув в свежем 70°-м спирте, обезвоживают в 96°-м и
абсолютном спиртах, выдерживая объект в каждом из них
(в зависимости от величины) от 1 до 3 часов. После обезвожи-
вания пухоедов просветляют в гвоздичном масле или ксилоле
п, так же как и блох, заключают в бальзам. Если пухоеды
сохранялись в формалине, их предварительно промывают
в воде, затем помещают в спирты (70°-йг 96°-й и абсолютный),
просветляют и заключают в бальзам. Готовые препараты эти-
кетируют и высушивают, прибавляя по мере надобности
бальзам.
Изготовление п реп- аратов из гамазовых,
краснотелковых, перьевых и личинок
и к содовых и аргасовых клещей. Лучшей средой
для заделки мелких клещей в постоянные препараты является
гуммиарабиковая смесь (см. стр. 118). Изготовление препа-
ратов очень просто и занимает сравнительно мало времени,
так как объекты заключаются в гуммиарабиковую смесь без
предварительного обезвоживания и просветления.
При изготовлении препаратов гамазовых и краснотелковых
клещей, их из спирта, в котором они хранились, переносят
в солонку с водой и тщательно промывают; затем в течение
10—12 часов держат в 5—10%-м растворе едкой щелочи (ка-
лия или натрия) и, вторично хорошо промыв в дестиллирован-
ной воде, заключают в гуммиарабиковую смесь. Клещей по
одному переносят на предметное стекло в каплю гуммиараби-
ковой смеси (размазанной на предметном стекле по площади,
несколько меньшей, чем площадь покровного стекла) и у каж-
дого из них сбоку на теле делают прокол острой препароваль-
ной иглой.
После этого клещей, если их несколько, располагают в 2—3
правильных ряда, поворачивая часть из них на брюшную,
а часть на спинную сторону. Правильно расположенных кле-
щей осторожно (чтобы не сбить порядок) накрывают покров-
ным стеклом и готовый препарат этикетируют и сушат в гори-
зонтальном положении.
Перьевых клещей, личинок и нимф гамазовых, красно-
телковых и других клещей заключают в гуммиарабиковую
смесь прямо из 70°-го спирта, в котором они хранились, без
предварительной обработки в едкой щелочи и последующей
промывки в дестиллированной воде. Перьевых клещей при
121.
заключении в гуммиарабиковую смесь в силу их мелких раз-
меров не надкалывают. Для ускорения просветления смесь
слегка подогревают.
Всех перечисленных клещей можно заключать, как и круг-
лых червей, в глицерин-желатиновые препараты (см. стр. 123),
которые, однако, у клещей дают менее четкую, по сравнению
с предыдущей средой, картину их морфологического строения.
Изготовление препаратов из плоских
червей и скребней. Обычной средой, в которую за-
ключают сосальщиков, ленточных червей и скребней, изго-
товляя из них постоянные препараты, является канадский или
пихтовый бальзам. При изготовлении препаратов, червей,
как правило, предварительно окрашивают одной из много-
численных красок, применяемых для этой цели. Наиболее
распространенной краской является квасцовый кармин (см.
стр. 117). Червей, вынув из спирта или формалина, хорошо
промывают в воде, оставляя в ней объекты на 12—18 часов
{лучше на ночь). Перед окраской их споласкивают в дестил-
лированной воде и 10—30 минут выдерживают в квасцовом
кармине до получения интенсивно красной окраски. После
этого червей промывают дестиллированной водой и дифферен-
цируют (оттягивают избыток краски) подкисленным спиртом
(см. стр. 116). При дифференцировке краска из покровов и
паренхимы оттягивается сильнее, чем из внутренних органов,
вследствие чего последние выступают рельефнее, чем на недиф-
ференцированных препаратах. После дифференцировки чер-
вей споласкивают в чистом 70°-м спирте, обезвоживают в спир-
тах возрастающей крепости, выдерживая в каждом (в за-
висимости от величины объекта) от 1 до 3 часов, просветляют
в кедровом, гвоздичном или бергамотовом масле (а при от-
сутствии их в карбол-ксилоле и ксилоле) и заключают в ка-
надский или пихтовый бальзам. Червей, находящихся в
бальзаме, размещают на стекле правильными рядами, ориенти-
руя их поперек предметного стекла (рис. 51), накрывают по-
кровным стеклом и ставят на последнее небольшой груз, чтобы
черви лежали в одной плоскости. Если черви длинны (напри-
мер большинство ленточных) и не умещаются под одно покров-
ное стекло, их располагают вдоль предметного стекла и на-
крывают двумя покровными стеклами так, чтобы края их
плотно соприкасались между собой (рис. 51). При изготовлении
препаратов из толстых червей на покровных стеклах делают
восковые «ножки» (см. стр. 120).
Готовые препараты этикетируют и высушивают в горизон-
тальном положении, добавляя по мере надобности бальзам.
Так же изготовляют постоянные препараты из сосалыци-
'Ков и ленточных червей, уже окрашенных кармином по Бла-
422
жину. Окрашенные объекты из 70°-го спирта, в котором их
^охраняли, переносят в спирты возрастающей крепости для
.обезвоживания, просветляют и заключают в бальзам.
Изготовление препаратов из круглых
«червей. Круглых червей заключают в глицерин-желатин.
Червей из спирта или жидкости Барбагалло переносят в воду,
хорошо промывают и на 10—30 минут помещают в чистый гли-
церин* Из глицерина объект переносят на предметное стекло
в глицерин-желатин, небольшой кусочек которого предвари-
тельно растапливают на стекле, подогревая на слабом пла-
мени спиртовки или спички. В глицерин-желатине червей
располагают правильными рядами (лучше поперек стекла) и,
пока смесь не застыла, накрывают покровным стеклом. При
изготовлении препарата нужно следить, чтобы при подогре-
вании глицерин-желатин не закипал, а при заключении в него
объекта не был бы слишком горячим. Глицерин-желатиновые
препараты в полевой обстановке удобны тем, что они быстро
застывают и их можно держать в любом (не обязательно в го-
ризонтальном) положении, следя лишь за тем, чтобы отдель-
ные препараты не соприкасались друг с другом.
Для длительного хранения препаратов во избежание их
порчи и усыхания среды необходимо края покровного стекла
обвести растопленной канифолью (7 частей) с воском (2 части)
или каретным лаком.
Таким же способом делают постоянные глицерин-желати-
новые препараты из неокрашенных скребней, головок ленточ-
ных червей (на которых можно хорошо рассмотреть их воору-
жение) и из мелких клещей (гамазовых, краснотелковых и
перьевых).
Изготовление препаратов из влажных
мазков. Мазки содержимого кишечника обычно заклю-
чают в бальзам, предварительно окрашивая их железным ге-
матоксилином по Гёйденгайну. Эта окраска дает хорошие ре-
зультаты для изучения простейших, но она сложна и требует
много времени, а поэтому обработку мазков лучше производить
н лабораторных условиях.
Фиксированные на покровных стеклах мазки переносят
из спирта, в котором их сохраняют, на 2—3 минуты в воду.
Для протравления перед окраской их помещают на 6—24 часа
в 3%-й водный раствор железо-аммиачных квасцов, затем
быстро ополаскивают водой и переносят на 12—24 часа в рас-
твор железного гематоксилина (см. стр. 118).
В гематоксилине мазки становятся черными, и для полу-
чения желаемой окраски их нужно дифференцировать (от-
тянуть избыток краски). Для этого их помещают на 30—60 ми-
нут в воду, а затем дифференцируют 1.5%-ми железо-аммиач-
123
ными квасцами в чашках Петри, контролируя окраску под ма-
лым увеличением микроскопа. Мазки дифференцируют в те-
чение 15—30 минут до желаемой окраски, промывают в про-
точной или часто сменяемой воде (3—4 часа), проводят через,
спирты возрастающей крепости, просветляют в карбол-ксилоле
и ксилоле и заключают в бальзам.
Для проведения мазков через спирты и ксилол удобнее
всего пользоваться рядом закрывающихся стаканчиков.
Стекло с мазком пинцетом переносят последовательно из од-
ного стаканчика в другой, выдерживая в каждом не более 3—
5 минут. Из ксилола стекло опускают мазком вниз на каплю
бальзама, предварительно нанесенную на чистое предметное
стекло. Готовый препарат этикетируют, как обычно (см. стр.
109), и высушивают в горизонтальном положении.
Окраска мазков крови. Кровяные мазки обычно
изучают сухими, предварительно окрашенными. После дли-
тельного хранения мазки окрашиваются плохо, и поэтому
обработку их нужно проводить в первую очередь, а иногда-
и во время полевых работ.
Окраску мазков производят смесью эозин-азура по Рома-
новскому (продается в готовом виде и содержит метилен-азур,
метиленовую синьку и эозин, разведенные в равных частях
метилового спирта и глицерина). Основной раствор краски
перед употреблением разводят дестиллированной водой из
расчета 1—2 капли на 1 см3 воды. На успех окраски сильно
влияет качество дестиллированной воды, которая должна
быть нейтральной или слабо щелочной. Окраску ведут в чаш-
ках Петри, подливая каждый раз свеже разведенную смесь.
Стекла с мазками рекомендуется держать в краске так, чтобы
поверхность мазка была обращена вниз. Для этого на дно
чашки Петри, под оба конца стекла, подкладывают отрезки
предметных стекол, стеклянные трубочки или спички (без го-
ловок). Такой способ окраски предохраняет мазок от загряз-
нения выпадающим осадком краски. Срок окраски в отдельных
случаях сильно варьирует и каждый раз устанавливается
опытным путем. После окраски мазки споласкивают в дестил-
лированной воде, высушивают и изучают под большим и им-
мерсионным увеличениями микроскопа.
Обработка толстой капли. Толстые капли
крови, как и мазки, нужно обрабатывать вскоре после их
изготовления. Сухие толстые капли окрашивают без предва-
рительной фиксации, как и мазки, в краске Романовского,
споласкивают в воде и, высушив, изучают под микроскопом.
При окраске гемоглобин эритроцитов растворяется и в пре-
парате видны лишь лейкоциты и, если кровь заражена, от-
дельные кровепаразиты.
124
ЛИТЕРАТУРА
Определение птиц
Б у турл ин С. А. и Г. П. Дементьев. 1934—1941. Птицы СССР,
1, Пищепромиздат: 1—254 (1934); 2 : 1—278 (1935); 3 : 1—254
(1936); 4 : 1—330 (1937); 5 : 1—367 (1941).
Дементьев Г. П., Н. А. Гладков, Е. С. Птушенко п
А. М. С у д и л о в с к а я. 1948. Определитель птиц СССР, Изд.
«Сов. паука» : 1—450.
Дементьев Г. П. и Н. А. Г л а д к о в (ред.). 1951—1954. Птицы
Советского Союза. Изд. «Сов. наука», 1 : 1—625 (1951); 2 : 1—480
(1951); 3 : 1—680 (1951); 4 : 1—640 (1952): 5 : 1—803 (1954);
6 : 1—792 (1954).
Иванов А. И., Е. В. Козлова, Л. А. Портенко и
А. Я. Т у г а р и н о в. 1951. Птицы СССР, 1, Изд. АН СССР:
1—280.
Козлова Е. В. и А. Я. Т у г а р и н о в. 1947. Гагаровые, трубко-
носые, веслоногие, аистообразные, _ фламинго. Фауна СССР,
Птицы, 1 (3), Изд. АН СССР: 1—299.
Тугаринов А. Я. 1941. Пластинчатоклювые. Фауна СССР, Птицы,
1 (4), Изд. АН СССР: 1—363.
Ill тегма н Б. К. 1937. Дневные хищники. Фауна СССР, Птицы, 1 (5),
Изд. АН СССР: 1—264.
Методика паразитологического
исследования
Брегетова Н. Г. 1952. Сбор и изучение гамазовых клещей. Сер.
«В помощь работающим на полезащитных лесных полосах», Изд.
АН СССР, 14 : 1—38.
Быховская-Павловская И. Е. 1952. Паразитологическое
исследование рыб. Сер. «В помощь работающим на полезащитных
лесных полосах и на великих стройках коммунизма», Изд. АН СССР,
19 : 1—63.
Догель В. А. 1933. Проблемы исследования паразитологии рыб.
(Методика и проблематика ихтиопараз.итологических исследова-
ний). Тр. Лен. общ. естсствоиспыт., 62 (3) : 247—268.
Догель В. А. 1935. Очередные задачи экологической паразитологии.
Тр. Петергофск. биол. инет., 15 : 31—48.
Дубинин В. Б. 1951. Перьевые клещи (Analgesoidea), ч. I. Введение
в их изучение. Фауна СССР, Паукообразные, 6 (5), Изд. АН СССР:
1—363
125
Иванов А. В., Г. К. Петру шевский, 10. И. Полянский;
и А. А. Стрелков. 1941. Большой практикум по зоологии-
беспозвоночных. Учпедгиз, 1 : 1—436.
Клер В. О. 1907. Инструкция для собирания кишечных паразитов птиц.
Зап. Уральск, общ. любит, естеств., 26 : 81—84.
.Маркевич А. П. 1950. Методика и техника паразитологического,
обследования рыб. Изд. Киевск. Гос. унив.: 1—24.
И о р д в и л к о А. К. 1909. Инструкция для собирания и сохранения,
паразитических червей. Наставл. для собирания зоолог, коллек-
ций, Изд. Зоолог, музея АН, 6 : 1—28.
И у л я р с к а я Л. В. 1953. Биоценозы птичьих гнезд. Тр. АН Тадж
ССР, 13 : 3—81.
Новиков Г. А. 1953. Полевые исследования по экологии наземных,
позвоночных. Изд. «Сов. наука», 2-е: 1—502.
Олсуфьев Н. Г. 1941. К методике лабораторного разведения иксо-
довых клещей. Медиц. паразитол. и паразитарн. бол., 10 (3—4) ;
436—439.
Павловский Е. Н. 1927. Наставление к собиранию и исследованию-
блох (Aphaniptera). Наставл. для собирания зоолог, коллекций,
Изд. Зоолог, музея АН СССР, 15 : 1—40.
Павловский Е. Н. 1928. Наставление к собиранию и исследованию*
клещей (Ixodoidea). Наставл. для собирания зоолог, коллекций„
Изд. Зоолог, музея АН СССР, 16 : 1—102.
Павловский Е. Н. 1938. Практикум по зоологии. Учпедгиз:
394—424.
Павловский Е. Н. и Г. Г. Смирнов. 1948. Гельминтологи-
ческая диагностика. Изд. Военно-мед. акад.: 1—16.
Предтеченский В. Е’., В. М. Боровская и Л. Т. Мар-
голина. 1950. Руководство по лабораторным методам исследо-
вания. Медгиз: 1—804.
Р и х т ер А. А. 1951. Наставление по сбору насекомых. Сер. «В помощь,
работающим на полезащитных лесных полосах», Изд. АН СССР.
1 : 1—35.
Розанов Н. И. 1952. Микробиологическая диагностика заболеваний,
сельскохозяйственных животных. Сельхозгиз: 1—508.
Р о с к и н Г. И. 1951. Микроскопическая техника. Изд. «Сов. наука»:
1—440.
Сердюкова Г. В. 1940. Методика кормления эктопаразитов на ла-
бораторных животных (инфекционный материал). Сб. изобрет.
и рацион, предлож. Военно-мед. акад., 1 : 79—84.
Скрябин К. И. 1928. Метод полных гельминтологических вскрытий
позвоночных, включая человека. Изд. 1-го Моск. Гос. унив. : 1—45.
Хаустов И. М. 1935. Метод обогащения для обследования кала на
цисты простейших. Тр. Лен. инет, эпидемиол. и бактериол. им.
Пастера, 2 : 215—218.
Эпштейн Г. В. 1940. Практикум по паразитическим простейшим w
спирохетам. Изд. АН СССР: 1—279.
Основные сводки для определения
различных групп паразитов
Благовещенский Д. И. 1940. Определитель пухоедов (Mai
lophaga) домашних животных. Фауна СССР, Новая серия, 27,.
Изд. АН СССР: 1—88.
Брегетова Н. Г. 1951. Клещи, паразитирующие в носовой полости
птиц. Паразитол. сб. ЗИН АН СССР, 13 : 111—119.
126
Быховская И. Е. 1949. Изменчивость морфологических признаков;
и значение ее в систематике сосальщиков сем. Cyclocoelidae.
Паразитол. сб. ЗИН АН СССР, 11 : 9—60.
Б ы х о в с к а я - II а в л о в с к а я И. Е. 1951. Изменчивость морфо-
логических признаков и значение ее в систематике сосальщиков
рода Leucochloridium Carus, 1839. Паразитол. сб. ЗИН АН СССР,
13 : 45—74.
Даре кая Н.Ф. 1950. Определитель птичьих блох рода Ceratophyllus.
Сб. «Эктопаразиты», Изд. Моск. общ. испыт. природы, 2 : 85—105.
Дубинин В. Б. 1950. Систематический анализ видов перьевых кле-
щей (Sarcoptiformes, Analgesoidea), паразитирующих на утиных
птицах. Паразитол. сб. ЗИН АН СССР, 12 : 17—72.
Дубинин В. Б. 1951. Перьевые клещи птиц Барабинских озер. Сооб-
щение 1. Перьевые клещи водоплавающих и болотных птиц отря-
дов пастушковых, поганок, веслоногих, пластинчатоклювых, ца-
пель, чаек и куликов. Паразитол. сб. ЗИН АН СССР, 13 : 120—256.
Дубинин В. Б. 1953. Перьевые клещи (Analgesoidea), ч. II. Сем.
Epidermoptidae и Freyanidae. Фауна СССР, Паукообразныег
6 (6), Изд. АН СССР: 1—380.
И о ф ф И. Г. и В. Е. Т и ф л о в. 1938. Пособие для определения блох
(Aphaniptera) юго-востока Европейской части СССР. Саратовск.
обл. изд.: 1—114.
И а с с и н о Б. Г. 1927. К определению видов рода Plagiorchis Ltihe.
1889, Сб. раб. по гельминтолог., поев. К. И. Скрябину, Изд. АН
СССР: 108—113.
Мозговой А. А. 1953. Аскаридаты животных и человека и вызы-
ваемые ими заболевания. Основы нематодологии, II, Изд.
АН СССР, 1 : 1—351; 2 : 1—616.
Померанцев Б. И. 1950. Иксодовые клещи (Ixodidae). Фауна
СССР, Паукообразные, 4 (2), Изд. АН СССР: 1—223.
Рыжиков К. М. 1949. Сингамиды домашних и диких животных. Ос-
новы нематодологии, I. Изд. АН СССР: 1—162.
Скрябин К. И. 1913. Паразитические черви птиц Туркестана сем.
Prosthogoniminae Lube. СПб.: 1—18.
Скрябин К. И. 1914. Lyperosomum filiforme nov. sp. (Материалы к си-
стематике рода Lyperosomum). Журн. научи, и практ. ветерин.
медиц., 7 (2): 3—16.
Скрябин К. И. 1917. Паразитические черви домашних птиц. 1. Лен-
точные черви домашних птиц. Архив ветерин. наук, 6, 7 и 8 : 382—
468.
Скрябин К. И. 1919. Трематоды фабрициевой сумки донских птиц.
Тр. общ. ветерин. врачей Всевелик, войска Донск., 1 : 14—29.
Скрябин К. И. 1923. Трематоды домашних птиц (опыт монографи-
ческой обработки). Тр. Гос. Инет, экспер. ветерин., 1 (2) : 193—256.
(Скрябин К. И.) Skrjabin К. I. 1924. Nierentrematoden dec
Vogel Russlands. Zentrbl. f. Bakt., Parasit. и Infek., 2 Abt., 62:
80—90.
С к p я б и н К. И. и Е. М. М а т е в о с я н. 1945. Ленточные гельминты—
гименолепидиды домашних и охотничье-промысловых птиц. Сель-
хозгиз: 1—486.
Скрябин К. И. 1947—1952. Трематоды животных и человека. Основы
трематодологии, Изд. АН СССР, I : 1—515 (1947); II: 1—600(1948);
IV: 87—495 (1950); V : 1—622 (1951); VI: 153—759 (1952); VII:
1—604 (1952); VIII : 1—249 (1953).
Скрябин К. И. и Н. П. Ш и х о б а л о в а. 1948. Филярии живот-
ных и человека. Библиотека по гельминтологии. Сельхозгиз:!—
608.
127.
Скрябин К. И., 11. П. Ш их об а лов а и А. А. Соболев.
1949. Спирураты и филяриаты. Определитель паразитических не*
матод, I, Изд. АН СССР: 1—519.
Скрябин К. И., Н.П. Ш и х о б а л о в а и А. А. Мозговой.
1951. Оксиураты и аскаридаты. Определитель паразитических не-
матод, II, Изд. АН СССР: 1—631.
С к р я б и и К. И., И. П. Ш п х о б а л о в а, Р. С. Ш у л ь ц, Т. И. П о-
п о в, С. Н. Б о е в и С. Л. Д е л я м у р е. 1952. Стронгиляты.
Определитель паразитических нематод, III, Изд. АН СССР: 1—.
890.
Скрябин К. И., Н. П. III и х о б а л о в а, А. А. Парамо-
нов и В. Е. Судариков. 1954. Камалланаты, рабдитаты,
тилепхаты, трихоцефаляты, диоктофиматы. Определитель пара-
зитических нематод, IV, Изд. АН СССР: 1—927.
Скрябин К. И., Н. П. Шихобалова и Р. С. Шульц.
1954. Трихостронгилиды животных и человека. Основы немато-
дологии, III, Изд. АН СССР: 1—683.
Штакельберг А. А. 1933. Определитель мух Европейской части
СССР. Определители по фауне СССР, 7, Изд. АН СССР: 1—742.
Эпштейн Г. В. 1931. Патогенные простейшие, спирохеты и грибки.
Медгиз: 1—920.
Якимов В. Л. 1931. Болезни домашних животных,, вызываемые про
стейшими. Сельхозгиз: 1—863.
Cram Е. В. 1927. Birds parasites of the nematode suborders Strongy-
lata, Ascaridata and Spirurata. U. S. Nat. Mus. Bull., 140 : 1—465.
Cram E. B. 1936. Species of Capillaria parasitic in the upper digestive
tract of birds. U. S. departm. of agricult. Washington., D. C. Techn.
Bull., 516 : 1—27.
Dawes Ben. 1946. The Trematoda. Cambridge: 1—644.
Dubois G. 1938. Monographic des Strigeida. Mem. de la Soc. Neuchal.
des Sci. Nat., 6 : 1—535.
F a 1 с о z L. 1926. Faune de France, 14. Dipteres Pupipares. Office Cen-
tral de Faunistique. Paris : 1—62.
Fuhrmann 0. 1932. Les Tenias des Oiseaux. M6m. de i’Univ. de Neu-
cbat.’, 8 : 1—381.
J о у e u x Ch. u. J. G. Baer. 1936. Gestodes. Faune de France, 30,
Paris: 1—610.
Meyer A. 1933. Acanthocephala. Bronn’s Klassen u.Ordnungen der Tier-
reichs, : 1—582.
S e guy E. 1929. Etude sur les Dipteres a larves commensales ou para-
sites des Oiseaux de PEurope occidentale. Encyclopedic Entomo-
logique, ser. В, II, Diptera, 5 : 63—82.
Sprehn C. 1932. Lehrbuch der Helminthologie. Berlin.: 1—998.
Основные работы по паразитологическом у
исследованию птиц в Советском Союзе
Барышева А. Ф. 1939. Паразитофауна серой куропатки (Perdix
perdix). Уч. зап. Леп. Гос. унив., сер. биол., И : 67—76.
Бауер О. Н. 1939. Паразитофауна некоторых птиц Закавказья, со-
вершающих вертикальные миграции. Уч. зап. Лен. Гос. унив.,
сер. биол., И : 77—91.
Бауер О. Н. 1941. Паразитофауна птиц высокогорной части Боржом-
ского района. Уч. зац. Лен. Гос. унив., сер. биол., 18 : 63—92.
Б е л о п о л ь с к а я М. М. 1952. Паразитофауна морских водоплаваю-
щих птиц. Уч. зап. Лен. Гос. унив., сер. биол., 28 : 127—180.
128
Белопольская М. М» 1954. Паразите фауна птиц Судзухин-
ского заповедника (Приморье). Уч. зап. Лен. Гос. упив., сер.
биол., 35 : 3—34.
Благовещенский Д. И. 1948. Mallophaga с птиц Барабинских
озер. Паразитол. сб. ЗИН АН СССР, 10 : 259—294.
Благовещенский Д. И. 1951. Mallophaga Таджикистана. Па-
разитол. сб. ЗИП АН СССР, 13 : 272—327.
В ы ховска я И. Е. 1948. Скребни (Acanthocephala) птиц СССР.
1.	Скребни (Acanthocephala) птиц Барабинских озер. Паразитол.
сб. ЗИН АН СССР, 10 : 245—257.
Б ы х о в с к а я - П а в л о в с к а я И. Е. 1953. Фауна сосальщиков
птиц Западной Сибири и ее динамика. Паразитол. сб. ЗИН АН
СССР, 15 : 5-116.
Вильданов В. Г. 1938. Гельминтофауна домашних птиц Б АССР.
Тр. Башкирск. гельминтол. экспед., Уфа : 360—371.
(Тассовская М.) G a s s о w s k a M. 1931. Die Vogelcestoden
aus der Umgebung von Kiew (Ukraina). Bull. Intern, de 1’Acad.
Polonais., ser. B, 2 (7—10) : 599—627.
Г и н e ц и н с к а я T. A. 1947. О паразитарных заболеваниях гусей
в Ленинградской области. Тр. Леи. общ. естествоиспыт., 69 (4) :
22—30.
Г и и е ц и н с к а я Т. А. 1949. Паразптофауна утиных птиц дельты
Волги. Уч. зап. Лен. Гос. унив., сер. биол., 19 : 81—109.
Г и п е ц и н с к а я Т. А. 1952. Паразиты пастушковых птиц и поганок
Астраханского заповедника. Тр. Лен. общ. естествоиспыт., отд.
зоол., 71 (4) : 53—72.
Гнедина М. П. и Л. Ф. Потехина. 1950. К фауне трематод птиц
Киргизской ССР. Тр. Гельминтол. лаб., 4, Изд. АН СССР : 75—83.
Горшков И. II. 1937. К познанию гельминтофаупы домашних гусей
Омской и Челябинской области. Раб. по гельминтол., поев.
К. И. Скрябину, Изд. АН СССР : 191—202.
Г у ш а н с к а я Л. X. 1946. К фауне паразитических червей тетеревов
и рябчиков Сибири. Гельминтол. сб., поев. К. И. Скрябину, Изд.
АН СССР : 91—95.
Гушанская Л.Х. 1950. К гельминтофау не тетеревиных птиц Урала,
Дальнего Востока и Сахалина. Тр. Всесоюзн. Инет, гельминтол.,
4 : 93—98.
Догель В. А. 1947. Курс общей паразитологии. Учпедгиз : 1—371.
Догель В. А. 1949. Биологические особенности паразитофауны пе-
релетных птиц. Изв. АН СССР, сер. биол., 1 : 99—107.
Догель В. А. иХ. М. Каролинская. .1936. Паразитофауна
стрижа (Apus apus). К вопросу о происхождении паразитофауны
перелетных птиц. Уч. зап. Лен. Гос. унив., сер. биол., 3 : 49—79.
Догель В. А. иН. Навцевич. 1936. Паразитофауна городской
ласточки. (К вопросу о происхождении паразитофауны перелет-
ных птиц). Уч. зап. Лен. Гос. унив., сер. биол., 3 : 80—ИЗ.
Дубинин В. Б. 1938. Изменения паразитофауны каравайки (Р1е-
gadis falcinellus L.), вызываемые возрастом и миграцией хозяина.
Тр. Астраханск. Гос. заповеди., 2 : 114—212.
Дубинин В. Б. 1939. Кокцидиоз цапель Астраханского заповедника.
Уч. зап. Лен. Гос. унив., сер. биол., И : 44—57.
Дубинин В. Б. 1941. Новые данные по возрастной локализации па-
разитических червей в кишечнике птиц. Докл. АН СССР, 30 (4) :
374—378.
Дубинин В. Б. 1947. Исследование. адаптаций эктопаразитов.
II. Экологические адаптации перьевых клещей и пухоедов.
Паразитол. сб. ЗИН АН СССР, 9 : 191—222.
9 М. Н. Дубинина
129
Дубинин В. Б. 1949. Экспериментальные исследования над циклами
развития некоторых паразитических червей животных дельты
Волги. Паразитол. сб. ЗИН АН СССР, 11 : 126—160.
Дубинин В. Б. 1949. Зависимость распространения личинок парази-
тических червей в рыбах дельты Волги от изменения мест концент-
рации птиц. Зоол. журн., 28 (2) : 131—136.
Дубинин В. Б. 1952. Фауна личинок паразитических червей позво-
ночных животных дельты реки Волги. Паразитол. сб. ЗИН АН
СССР, 14 : 213—265.
Дубинин В. Б. 1954. Динамика паразитофауны пеликанов дельты
Волги. Уч. зап. Лен. Гос. унив., сер. биол., 35 : 203—243.
Дубинина М. Н. 1937. Паразитофауна кваквы (Nycticorax nycti-
согах) и ее изменения в связи с миграцией хозяина. Зоол. журн
16 (3) : 547—573.
Дубинина М. Н. 1948. Паразитофауна дикого серого гуся (Anser
anser). Паразитол. сб. ЗИН АН СССР, 10 : 165—187.
Дубинина М. Н. 1950. Ленточные черви птиц, зимующих в южном
Таджикистане. Паразитол. сб. ЗИН^АН СССР, 12 : 352—381.
Дубинина М. Н. 1953. Ленточные черви птиц, гнездящихся в Запад-
ной Сибири. Паразитол. сб. ЗИН АН СССР, 15 : 117—233.
Дубинина М. Н. и О. П. Серкова. 1951. Круглые черви птиц,
зимующих в южном Таджикистане. Паразптол. сб. ЗИН АН СССР,
13 : 75—95.
Дубинины В. Б. иМ. Н. 1940. Паразитофауна колониальных птиц
Астраханского заповедника. Тр. Астраханск. Гос. заповеди., 3 :
190—298.
Дудолкина Л. А. 1950. О паразите кур Ceratophyllus gallinae и
близких видах блох. Сб. «Эктопаразиты», Изд. Моск. общ. испыт.
природы, 2 : 106—111.
Ершов В. С. 1936. Гельминтозы сельскохозяйственных животных.
Сельхоэгиз : 1—238.
Ефимов А. В. 1936. К вопросу о распространении паразитических
червей у сухопутных и водоплавающих птиц. Тр. Казанск. н.-и. ве-
терин. инет., 2 : 162—174.
Зехнов М. И. 1947. Возрастные изменения в заражении грача (Cor-
vus frugilegus) эндопаразитами. Зоол. журн., 26 (2) : 133—142.
Иваницкая В. В. 1920. Трематоды дыхательных путей донских
птиц. Тр. Гельминтол. лаб., кафедры паразитол. и инвазион. бол.
Донского ветерин. инет, за 1918—1920 гг., Новочеркасск : 1—12.
(Клер В. О.) С 1 е г с W. 1902. Contribution a I’Stude de la faune hel-
minthologique de 1’Oural. Zool. Anzeiger, 25, I : 565—575; II ;
658—664.
(Клер В. О.) C 1 e r c W. 1903. Contribution a l’6tude de la faune hel-
minthologique de 1’Oural. Rev. Suisse de Zool., II, 11 (2) : 241—368.
Клер В. О. 1910a. Систематический список кишечных паразитов птиц
Среднего и Южного Урала. Зап. Уральск, общ. любит естеств. :
99—113.
Клер В. О. 19106. Каталог коллекции паразитов птиц Среднего и
Златоустовского Урала. Зап. Уральск, общ. любит, естеств. :
123—133.
Клер В. О. 1913. Материалы по гельминтологии из Орловской губер-
нии. Изв. Общ. для исслед. природы Орловск. губ., 3 : 1—24.
К р а б б е Г. 1879. Ленточные черви. (Научные результаты путешествия
в Туркестан А. П. Федченко). Изв. Общ. любит, естеств., антро-
пол. и этногр., 34 (1) х 1—23.
Кротов А. И. 1949. К фауне гименолепидид гусиных птиц СССР.
Тр. Гельминтол. лаб., 2, Изд. АН СССР : 99—109.
130
Кулачкова В. Г. 1950. Паразитофауна чаек и крачек дельты Дуная.
Уч. зап. Лен. Гос. унив., сер. биол., 23 : 123—128.
Курашвили Б. Е. 1941. К изучению гельминтофауны птиц Грузии.
Тр. Зоол. инет. АН Груз. СССР, 4 : 53—100.
Линетов О. 1886. Паразитические черви (круглые, сосальщики и
колючеголовые). (Научные результаты путешествия в Туркестан
А. П. Федченко). Изв. Общ. любит, естеств., аптропол. иэтногр.,
34 (2) : 1—40.
Марков Г. С. 1939. Динамика паразитофауны скворца. Уч. зап. Лен.
Гос. унив., сер. биол., И : 172—212.
М а р к о в Г. С. 1941. Паразитические черви птиц губы Безымянной
(Новая Земля). Докл. АН СССР, 30 (6) : 573—576.
Матевосян Е. М. 1938. Гельминтофауна диких птиц Башкирии.
Тр. Башкирск. гельминтол. экспед., Уфа : 372—390.
Матевосян Е. М. 1950. К фауне пестод птиц южной Киргизии. Тр.
Гельминтол. лаб., 4, Изд. АН СССР : 84—98.
Никольская Н.П. 1939. Паразитофауна баклана (Phalacrocorax
carbo) Астраханского заповедника. Уч. зап. Лен. Гос. унив., сер.
. биол., 11 : 58—66.
Олигер И. М. 1940. Паразитофауна рябчика (Tetrasles bonasia vol-
gensis But.) на севере Горьков.ской области. Уч. зап. Лен. Гос.
унив., сер. биол., 59 : 102—124.
О ш м а р и н 11. Г. 1950. К фауне гельминтов птиц Дальнего Востока
(Камчатка, Земля Коряков, Курильские о-ва). Тр. Гельминтол.
лаб., 3, Изд. АН СССР : 116—179.
О ш м а р и н П. Г. и Т. К. Доценко. 1951. К эпизоотологии гли-
стных болезней домашних птиц Приханкайской низменности.
Сообщ. Дальневост. фил. АН СССР, 3 : 8—И.
Павловский Е. Н. (ред.). 1947. Паразитология Дальнего Востока.
Медгиз : 1—427.
Павловский Е. Н. 1948. Руководство по паразитологии человека.
С учением о переносчиках трансмиссивных болезней, т. 2. Изд.
5-е, переработанное и значительно расширенное. Изд. АН СССР :
527—1022.
Панова Л. Г. 1927. К фауне трематод чаек Донской области. Тр. Лен.
ветерин. инет., 1 (1) : 52—61.
Панова Л. Г. 1927. Гельминтология в Казахстане. Сб. работ по гель-
минтол., поев. К. И. Скрябину, Изд. АН СССР : 121—137.
Пащенко Л. Ф. 1952. До гельминтофауны евшеко! птиц! КиТвскоп
области. Пращ шетитуту зоол., 8 : 43—53.
Петров А. М. 1926. К фауне паразитических червей домашних и ди-
ких гусей Донской области. Тр. Гос. Инет, экспер. ветерин.,
3 (1) : 1—15.
Петроченко В. И. 1950а. К фауне скребней (Acanthocephala)
птиц Барабинских озер. Тр. Гельминтол. лаб., 4, Изд. АН СССР :
106—107.
Петроченко В.И. 19506. О некоторых биологических особенностях
скребней рода Polymorphus и о значении этих особенностей в си-
стематике. Тр. Всесоюзн. Инет, гельминтол., 4 : 98—108.
П оспе л ова-Штром М. В. и Ж. К. Штром. 1940. О парази-
тофауне животных, преимущественно перелетных и оседлых птиц
Талыша («Закавказье). Паразитол. сб. ЗИН АН СССР, 8 : 7—24.
Потемкина В. А. 1938. Изучение диагностики гименолепидоза гу-
сей и биологии его возбудителей. Тр. Всесоюзн. Инет, гельмин-
тол., 3 : 97—126.
Потемкина В. А. 1953. Основные гельминтозы домашних птиц.
Сельхозгиз : 1—168.
9*
131
Рыжова А. А. 1948. Паразитические черви домашних птиц Горь
ковской области. Тр. Гельминтол. лаб., 1 : 195—197.
Свинцов П. М. и А. А. Ушаков (род.). 1£51. Болезни птиц,
т. 1. Сельхозгиз : 1—440.
Семенов В. Д. 1927. Трематоды птиц Западного края СССР.
Сб. работ по гельминтол., поев. К. И. Скрябину, Изд. АН СССР-
221—267.
Серкова О. П. 1948. Круглые черви птиц Барабинских озер. Парази-
тол. сб. ЗИН АН СССР, 10 : 209—244.
(С к р я б и н К. И.) S k г j a b i п К. I. 1913. Fogel trema to den aus
Russisch Turkestan. Zool. Jahrb., Syst., 35 (3) : 351—388.
(Скрябин К. И.) S k r j a b i n К. I. 1914. Vogelcestoden aus Rus-
sisch Turkestan. Zool. Jahrb., Syst., 37 (15) : 411—492.
Скрябин К. И. 1915. Трематоды уральских птиц. Ежегодн. Зоол.
музея АН, 20 (3) : 395—416.
Скрябин К. И. 1915. Нематоды птиц Туркестана. Ежегодн. Зоол.
музея АН, 20 (3) : 457—557.
Скрябин К. И. 1916. К характеристике-гельминтофауны домашних
животных Туркестана. Юрьев : 1—89.
Скрябин К. И. 1920. Гельминтологические заметки (к познанию
гельминтофауны птиц России). Изв. Донск. ветерин. инет., 2 (2) :
1—7.
Скрябин К. И. 1926. Изучение гельминтологической коллекции,
собранной экспедицией С. Я. Седова к Северному полюсу в 1912—
1914 гг. Тр. Гос. Инет, экспер. ветерин., 4 (1) : 114—121.
Скрябин К. И. 1932. Глистные инвазии голубей. Сельхозгиз :
1—121.
Скрябин К. И. 1947. Девастация в борьбе с гельминтозами и другими
болезнями человека и животных. Изд. Киргизск. фил. АН СССР :
1—95.
Скрябин К. И., А. М. Петров, И. В. Орлов, А. А. Мар-
ков, А. А. Ц а п р у н и В. А. С а л я е в. 1941. Краткий
курс паразитологии домашних животных. Сельхозгиз : 1—355.
Соловьев П. Ф. 1912. Паразитические черви птиц Туркестана.
Ежегодн. Зоол. музея АН, 17 (1) : 86—115.
Солоницын И. А. 1928. К познанию гельминтофауны птиц Волжско-
Камского края. Уч. зап. Казанск. Гос. ветерин. инет., 38 (1) :
75—98.
Спасская Л. П. 1949. Нематоды птиц Западной Сибири по материа-
лам 257-й Союзной гельминтологической экспедиции. Тр. Гельмин-
тол. лаб., 2, Изд. АН СССР : 128—142.
Спасский А. А. 1946. К познанию фауны пестод птиц Союза ССР.
Гельминтол. сб., поев. К. И. Скрябину, Изд. АН СССР : 179—188.
Спасский А. А. 1947. Материалы к познанию цестод Горьковской
области. Тр. Горьковск. Foe. пед. инет., 12 : 48—58.
Спасский А. А. и П. Г. О ш м а р и н. 1939. Паразитические черви
врановых птиц (к гельминтофауне птиц Горьковск. обл.). Тр.
Горьковск. Гос. пед. инет., 4 : 45—70.
Судариков В. Е. 1950. К фауне трематод позвоночных среднего
Поволжья. Тр. Гельминтол. лаб., 3, Изд. АН СССР : 131—141.
Федюшин А. В 1937. Гельминтофауна гусей и уток Западной Сибири
в связи с задачей использования естественных водоемов для целей
птицеводства. Сб. работ по гельминтол., поев. К. И. Скрябину,
Изд. АН СССР : 167—177.
Федюшин А. В. 1949. Гельминты и гельминтозы тетеревиных и фа-
зановых птиц Западной Сибири и Южного Урала. Бюлл. Моск,
общ. испыт. природы, отд. биол., 54 (2) : 22—29.
132
< о л о д к о в с к и й Н. А. 1912. Объяснительный каталог коллекции
паразитических червей Зоологического кабинета Военно-медицпн-
ской академии. Вып. 1. Цепни. СПб. : 1—96.
Колодковский Н. А. 1921. Паразитические черви Петроград-
ской губернии. Фауна Петроградск. губ., 2 (8) : 2—6.
Ч с р т к о в а А. Н. 1950. К обнаружению редких видов гельминтов у до-
машних куриных птиц в СССР. Тр. Всесоюзн. И пет. гельминтол.,
4, Изд. АН СССР : 84—90.
III а ц М. Ф. 1947. Паразитарные заболевания гусей в Солецком районе
Ленинградской области. Тр. Лен. общ. естествоиспыт., 69 (4) :
202—222.
Ill ульман-Альбова Р. Е. 1954. Паразитофауна фазана (Pha-
sianus colchicus L.). Уч. зап. Лен. Гос. унив., сер. биол., 35 :
185—202.
Шума кович Е. Е. 1948. К фауне паразитических червей домашних
птиц Северного Сахалина. Тр. Гельминтол. лаб., 1, Изд. АН
СССР : 158—160.
Ш у м а к о в и ч Е. Е. и Ф. К. Борисович. 1950. Указатель ли-
тературы по общей и ветеринарной гельминтологии с 1781 до
1947 г. Тр. Гельминтолог, лаб., 3 : 235—272; 4 : 167—260.
ОГЛАВЛЕНИЕ
Стр.
Введение .............................................. . .	3
Необходимые сведения по анатомии птиц и локализации парази-
тов ......................................................... 5
Наружное строение ...................................
Внутреннее строение..................................
Методика сбора птиц для паразитологического исследования . .
Наружный осмотр птиц и сбор эктопаразитов..................
1. Блохи (стр. 25). 2. Кровососущие мухи (стр. 27). 3. Пу-
хоеды (стр. 29). 4. Иксодовые клещи (стр. 35). 5. Аргасо-
вые клещи (стр. 38). 6. Гамазовые клещи (стр. 40). 7. Крас-
нотелковые клещи (стр. 42). 8. Перьевые клещи (стр. 44).
Паразитологическое вскрытие птиц и сбор внутренних паразитов .
Методика обследования внутренних органов ..................
Порядок обследования внутренних органов..............
Обследование кровеносной системы и мышцы сердца . . .
Обследование печени и желчного пузыря................
Обследование поджелудочной железы и селезенки . . . .
Обследование пищеварительного тракта.................
Обследование фабрициевой сумки ......................
Обследование дыхательной системы ....................
Обследование половой системы ........................
Обследование почек и мочеточников ...................
Осмотр полости тела..................................
Обследование глаз, ротовой и носовой полостей........
Обследование кожи, подкожной клетчатки и мускулатуры
Обследование мозга...................................
Методика копрологического обследования.....................
Запись в дневнике вскрытий.................................
Методы фиксации различных групп паразитов..................
Этикетирование и хранение паразитологического материала . .
Первичная полевая обработка материала
Оборудование и реактивы, необходимые для полного паразитоло-
гического обследования птиц................................
Приготовление главнейших растворов, фиксаторов и красок . . .
Изготовление препаратов....................................
Временные препараты..................................
Постоянные препараты.................................
Литература.................................................
6
12
22
25
49
50
51
52
56
59
59
78
80
83
83
85
85
88
90
90
96
99
104
109
112
115
118
119
119
125
Утверждено к печати
Зоологическим институтом
Академии Наук СССР
*
Редактор Издательства 3. А. Радаивиловская
Технический редактор Н. А. Кругликова
Корректор Э. А. Кацман
РИСО АН СССР № 70-8В. М-18557. Под-
писано к печати 11/11 1955 г. Бумага
60\92/16. Бум. л. 41/4, Печ. л. 81/2.
Уч.-изд. л. 8.54. Тираж 2500. Зак. 1297.
1-я тип. Издательства АН СССР.
Ленинград. В. О., 9 линия, 12