Text
                    В.Б. Голуб, М.Н. Иуриков, А.А. Прокин
КОААЕКИИИ НАСЕКОМЫХ: сбор, обработка и хранение материала
В.Б. Голуб, М.Н. Иуриков, А.А. Прокин
КОЛЛЕКЦИИ НАСЕКОМЫХ:
сбор, обработка
и хранение материала

В.Б. Голуб, М.Н. Нуриков, А.А. Прокин КОЛЛЕКЦИИ НАСЕКОМЫХ: сбор, обработка и хранение материала Товарищество научных издании КМК Москва ❖ 2012
УДК 595.7+59.082.11 ББК 28.691.89с8 Г62 Голуб В.Б., Цуриков М.Н., Прокин А.А. Г62 Коллекции насекомых: сбор, обработка и хранение материала. — М.: Товарище- ство научных изданий КМК. — 339 с., 224 ил. В книге последовательно излагается весь процесс составления энтомологических коллекций. Описываются различные приспособления, в том числе оригинальные, для сбора наземных, амфибиотических и водных насекомых и приемы работы с ними. Особое внимание при этом обращается на щадящие методы их отлова. Описываются способы монтирования насекомых на энтомологические булавки, расправления бабо- чек и других насекомых, консервирования в жидкостях. Приводятся правила этике- тирования коллекционного материала. Дается ряд методик приготовления макро- и микропрепаратов насекомых. Уделяется внимание способам и приемам постановки и оформления коллекций различного назначения, правилам их хранения и пересылки. Книга рассчитана на научных работников, связанных по роду своей деятельности с коллекциями насекомых, специалистов, преподавателей и студентов вузов биоло- гических специальностей, по защите сельскохозяйственных растений и лесозащите, учителей средних школ, сотрудников особо охраняемых природных территорий, уч- реждений детского и юношеского творчества, краеведческих музеев, широкого круга энтомологов-любителей. ISBN 978-5-87317-826-1 © В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин, 2012 © Т-во научных изданий КМК, издание 2012
ПРЕДИСЛОВИЕ Биологические, в том числе энтомологические, коллекции широко использу- ются в учебном процессе, при выполнении фундаментальных и прикладных ис- следований, в дизайне помещений, в работе по природоохранному и эстетическому воспитанию детей. В таких областях науки, как систематика, фаунистика, зоогео- графия, морфология насекомых, они являются основным рабочим материалом. Без коллекций животных, включая насекомых, невозможно глубокое усвое- ние материала студентами биологических специальностей в вузах. Во все более расширяющейся сети особо охраняемых природных территорий России (запо- ведниках, национальных парках, заказниках) инвентаризационные и кадастровые исследования растительного и животного мира неразрывно связаны с постановкой и оформлением коллекций и их длительным хранением. Используются коллекции в школах на уроках биологии и во внеклассной работе, на юннатских станциях, в домах и дворцах молодежи, где они помогают расширять у детей круг знаний о природе, воспитывать к ней любовь и бережное отношение. В важнейшей отрасли сельскохозяйственной науки и практики — защите растений — все исследования и мероприятия начинаются с опознания вредных и полезных организмов. Особенно возрастают объем определений и требования к их точности при разработке про- грамм интегрированной борьбы с вредителями и болезнями, когда приходится иметь дело с очень большим числом видов, входящих в сложно организованные системы. Кропотливая и трудная, требующая специальных знаний и опыта рабо- та по установлению видовой принадлежности, в значительной мере облегчается, если у специалиста по защите растений имеются под рукой справочные и учебные коллекции насекомых, хозяйственно важных объектов. Готовые энтомологические коллекции, имеющие научную, практическую, культурно-просветительную, учебно-воспитательную и эстетическую ценность, представляют собой итог большой и кропотливой работы, принципы и методы которой вырабатывались в течение двух сотен лет. Как показывает опыт, для овла- дения этими методами требуются соответствующие руководства, подготовленные профессионалами, с описанием методов .создания и хранения коллекций. Таких руководств в отечественной литературе очень мало, а в последние два десятилетия они почти не выпускались.
4 В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Предлагаемое пособие подготовлено на основе ранее опубликованных отече- ственных и зарубежных материалов, а также собственного многолетнего опыта авторов. Тридцать лет назад В.Б. Голубом, Д.А. Колесовой, Ю.Б. Шуровенковым, А.А. Эльчибаевым было опубликовано пособие «Энтомологические и фитопатоло- гические коллекции, их составление и хранение» (1980), которое давно уже стала библиографической редкостью. Десять лет назад вышла книга М.Н. Цурикова и С.Н. Цурикова «Природосберегающие методы исследования беспозвоночных животных в заповедниках России» (2001), содержащая описания большого числа оригинальных конструкций ловушек, в основе которых лежит принцип максималь- ного сохранения насекомых в живом состоянии. Именно материалы этих двух книг положены в основу настоящего руководства, с многочисленными дополнени- ями. В него вошли описания совершенно новых, оригинальных приспособлений авторов настоящего пособия для сбора и обработки энтомологического материала и приемов работы с ними. Включен и ряд технических разработок и методик, появившихся в публикациях отечественных и зарубежных авторов в последнее время. Включен новый, довольно обширный раздел, в котором рассматриваются различные приспособления для сбора насекомых-амфибионтов и гидробионтов и методы работы с ними. Разумеется, авторы смогли включить в книгу лишь малую толику существую- щих методик и конструкций для сбора насекомых и других беспозвоночных жи- вотных. В пособии описано много относительно простых и широко используемых приемов сбора, обработки материала и составления коллекций. К ним относятся, в основном, те, которые уже были апробированы многими энтомологами и авторами книги. Все оригинальные конструкции М.Н. Цурикова и С.Н. Цурикова, которые включены в книгу, были неоднократно использованы ими и их соавторами в про- цессе длительных полевых исследований, связанных со сбором энтомологического материала. Методы монтирования и этикетирования материала, приготовления пре- паратов, составления коллекций освоены авторами за много лет работы (первым автором — за 40 лет работы с фондовыми коллекциями Зоологического института РАН). Для более глубокого изучения методов сбора и обработки коллекционного ма- териала различных систематических групп необходимо обращаться к специальным работам, частично приведенным в списке литературы в конце книги. Авторы будут чрезвычайно благодарны читателям за пожелания и критические замечания, кото- рые они обязательно учтут в том случае, если возникнет необходимость и будет возможность для переиздания этого практического пособия. Авторы выражают глубокую благодарность коллегам, оказавшим помощь сове- тами, рекомендациями и материалами в процессе подготовки книги: С.Ю. Синеву, Д.А. Гапону (Зоологический институт РАН, Санкт-Петербург), В.Я. Фету (универ- ситет Маршалла, Хантингтон, Западная Виргиния, США), В.Н. Фурсову (Институт Зоологии Национальной академии наук Украины, Киев), М.Ю. Мандельштаму (Институт экспериментальной медицины РАМН), Н.Н. Жгаревой, Г.Х. Щербине
Предисловие Ф 5 (Институт биологии внутренних вод РАН, Борок), Н.Ю. Клюге, В.Д. Иванову (Санкт-Петербургский государственный университет, Санкт-Петербург), И.А. Ба- рышеву (Институт биологии Карельского Научного Центра РАН, Петрозаводск), Н.Е. Николаевой (Тверской государственный университет, Тверь), О.П. Негробову, С.О. Негробову В.Д., Логвиновскому, и В.А. Соболевой (Воронежский государ- ственный университет, Воронеж), А.Е. Силиной (заповедник «Белогорье», Белго- родская область), Ю.И. Черненко (Воронежский государственный педагогический университет, Воронеж), А.В. Суркову (Борисоглебский государственный педагоги- ческий институт, Борисоглебск), всем, кто поделился своим практическим опытом и мыслями, касающимися формирования энтомологических коллекций. В.Б. Голуб чрезвычайно благодарен своему учителю, И.М. Кержнеру, который в течение многих лет своим примером и помощью способствовал формированию глубоко научного подхода ко всем видам деятельности, связанным с постановкой и хранением коллекций насекомых. М.Н. Цуриков адресует искреннюю призна- тельность своему брату, С.Н. Цурикову, постоянно оказывающему неоценимую помощь в разработке новых методов исследования. А.А. Прокин выражает глубо- кую благодарность своему отцу, доценту химического факультета Воронежского государственного университета, А.Н. Прокину, который в течение всей жизни воспитывал стремление подходить к методике проведения эксперимента с ве- личайшей тщательностью, обеспечивая максимальную точность его повторения другими исследователями. Полевые и лабораторные исследования, в процессе которых отрабатывались методики сбора и обработки энтомологического и гидробиологического матери- ала, проводились, в основном, на базе биологического учебно-научного центра «Веневитиново» Воронежского государственного университета и заповедника «Галичья Гора».
Глава 1.ТИПЫ БИОЛОГИЧЕСКИХ КОЛЛЕКЦИИ В зависимости от назначения можно выделить следующие основные типы зоологических коллекций, которыми, разумеется, не исчерпывается все их много- образие (Голуб и др., 1980). 1. Научно-исследовательские коллекции создаются для того, чтобы иметь исчерпывающий материал, пригодный для проведения оригинальных таксономи- ческих исследований. Материал в таких коллекциях располагается в соответствии с существующей классификацией и современными представлениями о систематике каждого таксона. Это высший тип научных коллекций. Помимо своего главного назначения, они являются основой для формирования и могут выполнять многие функции всех других типов коллекций. Обширные систематические коллекции, называемые часто фондовыми, нахо- дятся в зоологических учреждениях Российской академии наук и академий других стран, в крупных институтах защиты растений, в музеях ряда учебных заведений и т.д. В учреждениях, в которых нет необходимости создания больших система- тических коллекций, охватывающих многие или большинство высших таксонов, формируются специальные, или тематические, научно-исследовательские коллек- ции по отдельным группам организмов, представляющих интерес для данного учреждения (лаборатории, кафедры). Такие коллекции создаются в отраслевых научно-исследовательских институтах, в вузах и т.п. Материал в этих коллекциях также должен быть достаточно большим по каждому таксону. Он должен быть представлен из различных частей ареала, а из каждого пункта сборов — жела- тельно серией для анализа внутривидовой и внутрипопуляционной изменчивости. К научно-исследовательским коллекциям относятся биологические (в узком смысле слова), предназначенные для изучения морфологических и биологических особенностей различных стадий развития видов, взаимоотношений «хозяин-пара- зит», «хищник-жертва» и др. 2. Справочные (сравнительные) коллекции создаются по отдельным сис- тематическим или хозяйственно важным группам организмов. Во втором случае коллекции могут включать, например, насекомых — вредителей каких-либо куль- тур, энтомофагов одного или нескольких близких видов вредителей, комплекс видов (полезных и вредных), связанных с какой-либо культурой, и т.д. Справочные коллекции можно формировать на основе сочетания систематического принципа и принципа хозяйственной значимости. В коллекциях этого типа не требуется значительного материала по каждому таксону: очень часто его объем может быть ограничен всего двумя экземплярами, включающими самца и самку. К этому же типу коллекций относятся биологические, отражающие цикл раз- вития данного вида и его биоценотические связи, а также коллекции образцов по- вреждений и поражений, причиняемых вредными организмами и абиотическими факторами. Такие коллекции предназначены для сравнения объекта исследований
Глава 1. Типы биологических коллекций Ф 7 с достоверно определенными образцами, особенно при проведении прикладных работ. Справочные коллекции необходимы, а в ряде случаев являются основными и даже единственными на особо охраняемых территориях (в заповедниках, при- родных парках и т.д., где в первую очередь должно проводиться щадящее изъятие животных из природы), в отраслевых научно-исследовательских институтах, на станциях защиты растений, пунктах сигнализации и прогноза, в карантинных ин- спекциях, школах, в дворцах творчества молодежи, на юннатских станциях и т.д. 3. Демонстрационные коллекции являются атрибутом музеев, используются в качестве учебных и наглядных пособий, средств пропаганды достижений и пере- дового опыта и т.д. Демонстрационные коллекции могут быть систематическими, биологическими, содержать образцы повреждений и поражений и т.д.
Глава 2. СБОР НАЗЕМНЫХ НАСЕКОМЫХ 2.1. Необходимое оборудование для сбора наземных насекомых и методы работы с ним При сборе насекомых в полевых условиях исследователь всегда должен иметь при себе комплект оборудования. Ниже приводим краткое описание основных предметов полевого энтомологического снаряжения. 2.1.1. Различные типы и конструкции сачков Конструкция и изготовление традиционного нескладного сачка Сачки применяются для сбора насекомых (летающих прыгающих, сидящих на травянистых растениях, кустарниках, деревьях, почве, находящихся в воде), реже — пауков и клещей. Сачок самой простой конструкции представляет собой мешок из материи, укрепленный на металлическом обруче, который прикреплен к палке (рис. 1). Рис. 1. Сачки. А — обычный; Б — с привязным мешочком. Сачок, особенно не складывающийся, можно довольно легко изготовить са- мостоятельно. Главное — найти подходящую проволоку для обруча. Для его из- готовления берут упругую стальную проволоку толщиной 3-5 мм, длиной 112 см и сгибают ее, как показано на рис. 2.
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 9 112 см 7 см 94 см 11 сМ Рис. 2. Изготовление обруча энтомологического сачка. А-В — заготовка обруча из отрезка проволоки; Г, Д — сгибание обруча. Концы проволоки (7 см — с одной стороны и 11 см — с другой) сгибают под прямым углом. Это удобно делать с помощью молотка, положив проволоку на край наковальни, стальной балки, рельса и т.п. На концах проволоку загибают внутрь опять под прямым углом (небольшой участок — около 1 см). Загнутые сантиметровые участки расплющивают молотком и заостряют напильником. В результате получится фигура, напоминающая очень широкую букву П. Затем проволоку сгибают в виде круга. Круг должен быть совершенно ровным, поэтому гнуть проволоку лучше всего на ровной трубе или даже бревне, диаметр которых должен составлять около 36 см. Для облегчения изготовления обруча из толстой стальной проволоки можно использовать простую конструкцию, используемую как болванку (устное сообщение А.В. Суркова; г. Борисоглебск): к кругу из 6-слойной фанеры с диаметром, равным диаметру сачка, с двух сторон прибивается еще по кругу, диаметр которых больше диаметра срединного круга на удвоенную толщину диаметра проволоки будущего обруча. Суть изготовления обруча в этом случае
10 В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых состоит в обжиме проволоки с помощью молотка срединного круга; при этом боковые фанерные круги служат бортами, не дающими соскользнуть проволоке во время обжима. Мешок для стандартного сачка шьют цилиндрической формы, на вершине округлый. На рис. 3 дана выкройка для сачка. Ее вычерчивают в натуральную Рис. 3. Способы крепления обруча сачка к рукоятке и выкройка мешка энтомоло- гического сачка стандартных размеров.
Глава 2. Сбор наземных насекомых 11 Рис. 4. Прикрепление мешка воздушного сачка к обручу (по Павловичу, 1947). величину и вырезают из бумаги, а затем переносят на материал. Сшивают мешок двойным «бельевым» швом. Если используют марлю, то для прочности пришива- ют ее тем же швом к сложенной бязевой полоске. Соединив таким образом марлю и бязь, сшивают сам мешок. Чтобы мешок легко надевался на обруч, в одном месте делают неглубокий вырез, для чего края бязевой полоски не сшиваются (рис. 4). При изготовлении сачка выбор материала для палки (рукоятки), мешочка и обруча зависит от его назначения. Для отлова насекомых в воздухе, воде, в рас- тительном покрове необходимы различные сачки. Воздушный сачок Его используют для отлова многих насекомых, которые значительную часть времени проводят в воздухе. Они очень осторожны, легко взлетают при при- ближении человека. Этих насекомых (бабочек, стрекоз, ручейников, многих мух, перепончатокрылых, прямокрылых и др.) удобнее всего ловить воздушным сачком. Он должен быть легким и удобным, свободно фильтровать воздух, не создавая впереди себя воздушной волны. Его изготавливают из мельничного газа (капроновой сетки) или, в худшем случае, из марли. Мешок в этом случае следует пришить к полосе плотного холста или бязи шириною 10 см, которая служит для прикрепления мешка к обручу. Обруч из тонкой стальной проволоки сечением не более 1,5 см прикрепляется к тонкой сухой прямой палке из легкого дерева или из бамбуковой трости, удочки и т.п. При обнаружении сидящей особи насекомого на растении, почве, камне и т.п. незаметно подходят и резким взмахом сачка подсекают. После поимки насекомого сачок переворачивают на 180 градусов, «захлестывают» насекомое, и оно оказы-
12 "у" В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых вается в мешке сачка, откуда его легко можно извлечь. Нередко насекомое долго не садится, и его надо научиться ловить на лету. Резким точным взмахом сачка ловят насекомое сбоку (не накрывают сверху!), захлестывают его и, перевернув сачок, изолируют в мешке. Как только дневная бабочка крупных или средних размеров окажется в сачке, ей следует слегка сжать грудной отдел с боков и несколько секунд выдержать. Это травмирует их мускулатуру, и они уже не могут улететь. Стрекоз, мух, ручейников, перепончатокрылых, мелких бабочек сдавливать не следует. Слегка приоткрывая сачок, вводят туда руку с морилкой или пробиркой и помещают в нее пойманные экземпляры. Всех остальных достаточно крупных насекомых, кроме жалящих перепончатокрылых, можно поймать в сачке рукой и поместить потом в морилку. Мелкие насекомые извлекаются из сачка с помощью эксгаустера (см. ниже). Сачок для энтомологического кошения Он служит для сильного обмахивания травянистых и древесных (по тонким веткам) растений, на которых насекомые питаются или прячутся. Этот метод явля- ется эффективным при сборе многих насекомых. Мешок для сачка изготавливается из плотной материи (толстой капроновой сетки или, лучше, бязи), насаживается на толстый (до 3-4 мм) проволочный обруч и крепится к прочной орешниковой, березовой, бамбуковой или металлической, например, лыжной палке. Длина палки сачка для кошения должна быть на 20 см меньше роста сборщика. В этом случае сборщику будет легко забраться с головой в сачок при выборке насекомых, не вы- пуская их из сачка. Сбор насекомых методом энтомологического кошения проводят следующим образом: сачок берут в одну руку так, чтобы конец палки доходил, по крайней мере, до локтя. Обруч сачка размещают примерно перпендикулярно к поверхности земли или кроне куста или дерева. Затем сачком быстро проводят по растению. Лучшие результаты от кошения получают в том случае, если при ударе по растению оно нагибается обручем, и находящиеся на них насекомые и другие мелкие беспозвоночные животные стряхиваются в мешок сачка. Следовательно, сачок нужно вести так, чтобы нижняя часть рамы ударяла по растениям, а верхняя проходила над ними. Нельзя вести сачок по самой поверхности почвы, так как в этом случае в него набираются комья земли, и выборка насекомых становится невозможной; кроме того, значительная часть насекомых при этом сильно трав- мируется. Большое значение при этом имеет сила удара сачка по растениям. При мед- ленном ведении сачка подбивающий удар не получается, и насекомые успевают свалиться на землю. Наоборот, при слишком сильном ударе вместе с насекомыми в сачок попадут сбитые части растений, которые мешают выборке насекомых. Следует эмпирически подбирать среднюю силу удара (как говорится, «достига- ется упражнением»). При этом надо иметь в виду, что чем тверже растение, тем сильнее по нему надо ударять.
Глава 2. Сбор наземных насекомых 13 При кошении по травянистой растительности исследователь не стоит на месте, а идет, делая удары сачком через один или два шага. При проведении количе- ственных учетов методом энтомологического кошения расчеты ведутся на число взмахов (25, 50 или 100 взмахов, обычно, как среднее значение при 3^4-кратном отборе проб). Взмахом считается один удар сачком в одну сторону. При этом луч- ше всего ударять сачком перед собой, несколько откидывая руку в сторону, но, не поворачивая туловища. Закончив взмах, сачок поднимают в воздух, поворачивают кругом на 180 градусов и делают следующий взмах в обратную сторону. Кошение проводят только в сухую погоду, днем. При росе или в дождь сачок намокает, насекомые прилипают к полотну мешка, и сбор их почти невозможен и требует очень большой затраты времени. Многие насекомые при этом сильно травмируются. Из сачка насекомых выбирают руками, эксгаустером, ловчей пробиркой. При выборке насекомых из сачка стандартных размеров (диаметром 30-33 см) руками, эксгаустером или пинцетом сборщику следует полностью опускать в сачок голову («залезать» в него головой) и просовывать туда же руку с эксгаустером или пин- цетом. Любые попытки выбрать насекомых из открытого сачка неминуемо приво- дят к большим, часто невосполнимым потерям насекомых: крылатые насекомые мгновенно улетают. При проведении количественных учетов, если планируется использовать для исследований полный сбор материала, часто для этой цели применяются сачки с привязными мешочками (см. выше). После каждого кошения мешочек отвязывают от основной части сачка и крепко стягивают и завязывают его отверстие пред- варительно вставленными специальным шнурком или бельевой резинкой. Затем в лаборатории насекомых замаривают, не вынимая из мешочка. Для замаривания всех насекомых, находящихся в сачке после проведения количественных учетов, можно использовать и обычный сачок, без привязных мешочков или других съем- ных приспособлений. При этом в качестве сосуда для замаривания используется не маленькая морилка, а обычная стеклянная банка емкостью 0,5 или 0,7 л с плотно закрывающейся обычной полиэтиленовой крышкой и брошенным в нее комочком ваты, смоченным хлороформом или эфиром для наркоза. Можно в качестве ем- кости для замаривания использовать и полиэтиленовый пакет, хотя этот способ менее удобен. Сачок для сбора насекомых в кроне деревьев и на кустарниках Он представляет собой обычный сачок для энтомологического кошения, толь- ко более крупных размеров: диаметр обруча — 50-70 см, длина палки — 3-5 м. Ручку целесообразно делать телескопически складной. В качестве таковой можно использовать продающийся в магазинах для рыболовов складные удочки длиной до 5 м. Крепить обруч к такой телескопической ручке следует не к самым тон- ким коленам, убирая их. Таким сачком можно собирать насекомых с листвы и
14 В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Црокин. Коллекции насекомых ветвей, охватывая при этом сразу большую площадь кроны. В.Н. Фурсов (2003) рекомендует использовать сачок, имеющийся в широкой продаже под названием обычного рыболовного «подсака» для рыбы. У него складная ручка и складной обруч. Преимуществом данного сачка является возможность быстро изменить его длину для сборов материала на растительности разной высоты. Кроме того, складной обруч сачка очень удобен при его транспортировке. Данный сачок имеет несколько больший диаметр (40 см), чем у стандартного энтомологического сачка, что делает его весьма удобным для сбора насекомых с деревьев и кустарников. В соответствии с таким диаметром изготавливается отдельная выкройка из мель- ничного газа. П.А. Положенцевым (1979) рекомендуется к вершине конусовидного дна меш- ка сачка для сбора насекомых с деревьев привязывать длинный шнур. Сачок такой конструкции надевается на ветку дерева, которая затем встряхивается обручем сачка. Находящиеся на листьях, почках, цветках и побегах насекомые оказываются в мешке сачка. При снятии его с ветки шнур натягивается, что препятствует мешку вывернуться наизнанку. При сборе насекомых с кустов и деревьев кошение ведут, захватывая с каждым взмахом новые зоны крон растений. При этом сачок надо стараться держать так, чтобы воображаемая плоскость его круга располагалась примерно под 45 граду- сов к горизонтальной поверхности: так меньше насекомых падает мимо сачка и улетает не достигнув мешка. Приведенные рекомендации сбора наземных насекомых, разумеется, носят са- мый общий характер. Очень многие приемы работы с сачком весьма специфичны и постигаются в процессе «упражнений». Например, при окашивании пустынных кустарников с жесткими ветвями и почти без листьев надо бить по ним с доста- точно большой силой, как говорят энтомологи — «выбивать» насекомых. Точно также, приходится «выбивать» насекомых, например, цикадовых, держащихся в основании степных злаков с плотными узлами кущений. Напротив, при кошении по сочной травянистой луговой растительности сильные удары сачком приводят к быстрому его забиванию сбитой травой, что мешает выборке из сачка собранных насекомых и их травмированию. Сачки с привязными (съемными) мешочками При проведении количественных учетов методом энтомологического коше- ния довольно часто применяют сачки с привязными мешочками (Палий, 1970; Фасулати, 1971; Голуб и др., 1980). В самом простом случае (см. рис. 1, Б) такой сачок представляет собой усеченный конус, в узкое вершинное отверстие которого вшито кольцо. Размеры сачка: диаметр основной рамы — 30 см, нижней — 5 см, глубина конуса — 30 см. К сачку готовят мешочки диаметром 6-7 см и глубиной 15 см, вдевают в них шнурок. Мешочек надевают на вершинное кольцо, слегка затягивают, и сачок готов к работе.
Глава 2. Сбор наземных насекомых 15 Палка для сачка, если она деревянная, должна быть хорошо выстругана и от- полирована наждачной бумагой. Чтобы прикрепить к палке обруч, надо вбить в нее загнутые и заостренные концы проволоки, а чтобы палка не лопнула, можно предварительно высверлить в ней маленькие отверстия в тех местах, где потом будут вбиты концы обруча. Место прикрепления обруча к палке надо обмотать прочной суровой ниткой, шпагатом или мягкой проволокой (см. рис. 3). При этом следует наматывать виток к витку как можно плотнее. Усовершенствованный сачок со съемными мешочками Сачок (7) должен иметь конический мешок с отрезанной вершиной. К краю среза нужно пришить приспособление (3) цилиндрической формы, изготовленное из пластика и имеющее круговую бороздку, глубина которой составляет 3-5 мм, а ширина — 5-8 мм (рис. 5, Б). Лучше всего для этой цели использовать верхнюю часть пластиковой банки для хранения моющих средств. Диаметр приспособления должен составлять примерно 60-80 мм. Съемный мешочек (2) можно изготовить из мельничного газа, капрона и т.п., причем диаметр его горловины должен быть немного больше диаметра приспо- собления, а длина — около 150 мм. В 40 мм от горловины мешочка параллельно его краю необходимо вшить большими стежками капроновую нить (4), как по- казано на рис. 5, Б. Затем оба конца нити (4) нужно протянуть сквозь маленькое отверстие в кусочке резины (5) (15 х 15x3 мм), после чего их следует завязать в большой узел. На вершину мешка сачка (7) рядом с приспособлением (3) не- обходимо поместить резиновое кольцо (6) диаметром 50 мм и шириной 5-8 мм. Крепление мешочка (2) с приспособлением производится следующим образом. Мешочек необходимо надеть на приспособление так, чтобы круговая бороздка Рис. 5. Усовершенствованный сачок со съемными мешочками (ориг.). Обозначения см. в тексте.
16 В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых последнего оказалась в 10 мм от края горловины мешочка, после чего мешочек (2) прикрепляется резиновым кольцом (6) на уровне круговой бороздки (рис. 5, Б), После проведения кошений резиновое кольцо необходимо стянуть в сторону об- руча сачка, а на освободившемся мешочке затянуть горловину, для чего большим и указательным пальцами левой руки следует придерживать кусочек резины (5) за его края, а пальцами правой руки нужно потянуть за узел нити (4). В результате горловина мешочка будет надежно перекрыта. Складные сачки Складные сачки очень удобны в поездках и экспедициях, совершаемых «сво- им ходом», т.е. не на экспедиционной машине. Даже в личном автотранспорте уложить полутораметровый нескладывающийся сачок — определенная проблема. Вырезать же наскоро пригодную палку для сачка в ходе поездки удается не всегда. Традиционные конструкции складных сачков. Авторами (Фасулати, 1961; Горностаев, 1970; Голуб и др., 1980; Koch, 1984; и др.) описаны различные кон- струкции складных сачков. Еще большее количество их конструкций можно встре- тить у энтомологов-любителей. Однако надо иметь в виду тот факт, что прочность складывающихся сачков значительно ниже, чем у не складывающихся. Некоторые конструкции простых складных сачков показаны на рис. 6, 7, 8. Одна из конструкций сачка со складывающейся металлической рукояткой, изготовленной из лыжной палки, и складным обручем представлена на рис. 8 (авторство конструкции установить не удалось, поэтому нами она описана и представлена в виде чертежей на основе уже готового сачка). Эта конструкция складного сачка широко используется специалистами по защите растений. Рис. 6. Простая конструкция складного сачка.
Глава 2. Сбор наземных насекомых 12 Сачок состоит из складывающегося обруча (7) и двух сегментов рукоятки (2 и 3). Обруч (7) изготовлен из дюралюминиевой проволоки диаметром 6 мм и состоит из 3 частей, подвижно скрепленных заклепками (форма деталей и принцип крепления показаны на рисунке). Вершинный сегмент рукоятки (2) изготовлен из дюралюминиевой трубки (лыжной палки) длиной 410 мм и внешним диаметром 12 мм, к обоим концам которой прикреплены детали (4) длиной 52 мм и диа- метром в самом широком месте 20 мм, имеющим в средней части резьбу (форма детали (4) показана на рисунке). В средней части вершинного сегмента рукоятки (2) на нее надеты два цилиндра (5), у каждого из которых имеется внутренняя резьба у внутреннего края и рифленая продольно внешняя поверхность для того, чтобы рука не скользила во время навинчивания цилиндров на основание обруча сачка и на резьбу базального сегмента рукоятки (см. рисунок). При этом внутрен- няя резьба цилиндра (5) навинчивается на внешнюю резьбу детали (4). Базальный сегмент рукоятки (3) изготовлен из такого же материала и имеет те же размеры, что и сегмент (2), но имеет только одну деталь (4) и один цилиндр (5). На противо- положном от детали (4) конце трубки базального сегмента рукоятки имеется ручка из пластмассы или резины (рукоятка лыжной палки). Крепление сегментов (2 и 3) происходит следующим образом. В отверстие в детали (4) базального сегмента рукоятки (3) вставляется специальная деталь (б) по форме напоминающая звено цепи, разрезанное вдоль и подвижно соединенное при помощи заклепки на одном из краев. Далее, приложив друг к другу концы сег- ментов (2 и 3), следует сложить деталь (б) так, чтобы ее вершинные изгибы погру- зились в отверстие детали (4) сегмента (2), после чего с обоих концов сегментов следует навинтить цилиндры (5) до упора друг в друга, что обеспечит надежное
18 В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Рис. 8. Сачок со складными рукояткой и обручем. Обозначения см. в тексте.
Глава 2. Сбор наземных насекомых 19 крепление. Обруч (7) прикрепляется к рукоятке сачка так же, как и сегменты (2 и 3), но здесь в отверстия детали (4) вершинного сегмента (2) вставляются изгибы основания сачка, после чего при помощи цилиндра (5) путем навинчивания на де- таль (4) происходит скрепление рукоятки и обруча. Конструкцией предусмотрено проведение сборов с использованием лишь одного сегмента, в тех случаях, когда не требуется длинная рукоятка сачка. Ниже приведено описание еще нескольких складных сачков оригинальных конструкций М.Н. Цурикова. Сачок со съемным обручем из двух стальных лент. Каркас сачка (рис. 9, А) состоит из обруча (7) и рукоятки (2), изготовленной из орехового ствола диаме- тром 25 мм. Обруч (7) состоит из двух стальных лент длиной 52 мм, шириной 15 мм и толщиной 1 мм, имеющих в 10 мм от каждого конца отверстие диамет- ром 3 мм. Вершины лент скрепляются при помощи заклепок (3 и 4) так, чтобы, слегка растягивая в стороны и проворачивая ленты вокруг своих продольных осей (одну — по, другую — против часовой стрелки!), получался обруч (7) (рис. 9, Б). Обруч (7) прикрепляется к рукоятке (2) следующим образом. На вершине рукоятки (2), на одной из сторон, необходимо сделать продольный срез на глубину 5 мм и длиной 40 мм. Затем к торцу рукоятки нужно прикрепить две стальные пластины Рис. 9. Сачок со съемным обручем из двух стальных лент (ориг.). Обозначения см. в тексте.
20 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Рис. 10. Складывающийся сачок с обручем из двух стальных параллельных полос (ориг.). Обозначения см. в тексте.
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 21 (5) (20 х 20 мм) при помощи гвоздей (6), как показано на рис. 9, В. Далее в щель между пластинами (5) следует поместить участок обруча (7) с заклепкой (3), обе вершины которой предварительно нужно сточить при помощи напильника (чтобы торцевые поверхности заклепки были ровными). Фиксация обруча (7) произво- дится при помощи металлической щеколды (7) с изогнутым верхним краем для большей надежности крепления. Щеколда (7) прикрепляется к рукоятке (2) при помощи гвоздя (5). После того, как к обручу будет пришит мешок из мельничного газа или капрона, сачок можно будет использовать для кошения по наземной или водной растительности, а также для проведения индивидуальных сборов насекомых. Складывающийся сачок из двух стальных параллельных полос. Каркас сачка (рис. 10, А, Б) состоит из обруча, изготовленного из двух стальных полос (7 и 2), между вершинами которых натянута капроновая нить (3), деревянной рукоятки (#), а также механизма для складывания сачка, состоящего из стального остова (5), изогнутой стальной пластинки (6), пластикового параллелепипеда (7) и фиксатора (5), сделанного из стальной проволоки. Форма и размеры стальных полос (7 и 2), а также всех основных деталей механизма для складывания сачка {5-8) показаны на рис. 10, Б. Полосы (7 и 2) крепятся к изогнутой пластинке (6) так, что полоса (2) может разворачиваться вокруг заклепки (9) на 180° (рис. 10, В). Далее к полу- ченному устройству необходимо приложить параллелепипед (7) и прикрепить эти детали к остову (5) при помощи заклепки (70) как показано на рис. 10, Г. При этом заклепка (70) должна пройти сквозь отверстие, отмеченное на рисунке звездочкой, а второе отверстие параллелепипеда должно совпадать с отверстием остова (5) (помечено крестиком). К полученной конструкции необходимо добавить фиксатор (5), для чего последний следует вставить длинным отрезком в отверстие остова, помеченное на рис. 10, Д крестиком, а короткий отрезок с резьбой должен войти в отверстие, помеченное треугольником. Внутрь остова (5) на отрезок фиксатора (8) с резьбой следует надеть пружину (77) и прижать ее при помощи гайки (72), как по- казано на рис. 10, Е. Таким образом, после нажатия на длинный отрезок фиксатора (кнопку) отрезок с резьбой выходит из отверстия в остове (5). Далее необходимо пластинку (6) развернуть вокруг заклепки (70), совместить отверстия в остове (5) и в пластинке (6), после чего пружина (77) возвращает фиксатор в исходное по- ложение и фиксирует обруч сачка. Для изготовления обруча необходимо согнуть полосы (7 и 2) по направлению друг к другу и связать их капроновой нитью (3), как показано на рис. 10, Л. Рукоятка {4) крепится при помощи гвоздей, для чего имеются соответствующие отверстия в остове (5). Этапы раскладывания каркаса сачка показаны на рис. 10, Ж. Нажав на кнопку фиксатора, необходимо повернуть пластинку (6) на 90°. Затем полосу (2) следует развернуть на 180° относительно заклепки (9), в результате чего обе полосы (7 и 2) компактно складываются и рас- полагаются вдоль рукоятки {4). Описанную операцию можно производить и после того, как на обруч будет нашит мешок из мельничного газа или капрона. Сачок с разъемным обручем из стальной ленты. Сачок (рис. 11, А) состоит из деревянной рукоятки (7), обруча (2) и мешка (3). Обруч (2) изготовлен из сталь-
22 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Рис. 11. Сачок с разъемным обручем из стальной ленты (ориг.). Обозначения см. в тексте. ной ленты длиной 1 м и шириной 20 мм, к одному из концов которой прикреплен шарнир (4), а у вершины второго имеется продольный разрез длиной 10 мм и шириной 3 мм (рис. 11, В). К торцу рукоятки (1) нужно прикрепить шарнир (4), 2 гвоздя (6) длиной 20 мм, и Т-образную фигуру из жести (5), размеры и места прикрепления которых см. на рис. 11, В. Мешок (3) имеет продольный разрез длиной 600-800 мм (в зависимости от всей длины мешка сачка) с вшитой в него застежкой «молния» (7) (рис. 11, Б). Для монтирования сачка необходимо обруч (2) продеть сквозь полость (3) у края мешка (3), образованную полосой прочной ткани, сложенной вдвое и прошитой. Далее следует стальную ленту обруча (2) согнуть в окружность и подвести к торцу рукоятки сачка (рис. 11, В). Затем не- обходимо развернуть конец стальной ленты на 90° (показано пунктирной линией на рис. 11, В), надеть на Т-образную фигуру (5), после чего конец обруча (2) раз- вернуть в прежнее положение и упереть вершинным краем в гвозди (6). Таким образом, обруч будет надежно зафиксирован, после чего необходимо застегнуть разрез в мешке (3) при помощи застежки (9). По окончании работы нужно рас- стегнуть застежку (9) и отсоединить вершину обруча (2). Далее стальная лента укладывается вдоль рукоятки (7) и прикрепляется к ней посредством нескольких оборотов мешка (3) (рис. 11, Г). Усовершенствованный сачок с треугольным обручем. Для сбора насекомых, сидящих на поверхностях с различным рельефом (стволах деревьев, углах построек и т.п.) нами предлагается конструкция треугольного сачка, которая выгодно отли-
Рис. 12. Сачок с треугольным обручем (ориг.). Обозначения см. в тексте.
24 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых чается от других конструкций удобством снятия сидящих насекомых и скоростью складывания сачка (рис. 12). Каркас сачка (рис. 12, А) состоит из рукоятки и треу- гольного обруча. Рукоятка изготовлена из двух стальных швеллерных балок (7 и 2) размеры и форма которых показана на 12, Б. Швеллерные балки (7 и 2) крепятся друг к другу и к двум пластиковым призмам (3 и 4) неправильной формы болтами (5 и 6) с гайками (7 и 8) при помощи пластинок (9 и 10) с двумя отверстиями (рис. 12, В). Призмы (3 и 4) имеют на соприкасающихся гранях продольные вырезки, в которые вставляются концы двух узких изогнутых стальных полос (77 и 72) и крепятся при помощи заклепок (73) (размеры и форму полос (77 и 72) см. на рис. 12, Г). Между вершинами стальных полос (77 и 72) необходимо натянуть капро- новую нить (14), а к швеллерной балке (2) прикрепить скобку (75), служащую для фиксации рукоятки. Полученный таким образом каркас сачка с треугольным входом может компактно складываться, для чего сначала необходимо повернуть скобку (75) и освободить швеллерные балки (7 и 2), которые поворачиваются вокруг болтов (5 и 6), охватывают стальные полосы (77 и 72) и прижимают их друг к другу. Далее скобка (75) фиксирует конструкцию, как показано на рис. 12, А. После того, как к обручу будет пришита полоса из крепкой ткани, а к ней — мешок из мельничного газа, сачок можно будет использовать для сбора беспозвоночных. Приемы работы с сачком, имеющим треугольный обруч, показаны на рис. 12, Д-Ж. Микросачок. Для сбора насекомых, особенно мелких и сидящих на ровных поверхностях в процессе экскурсионной работы со школьниками, в различных поездках и т.п. нами предлагается микросачок, надеваемый на пальцы. Микросачок (рис. 13, А) состоит из двух приспособлений (7) и мешка для сбора беспозвоночных (2). Каждое из приспособлений (7) изготовлено из цельного куска проволоки диаметром 2 мм и состоит из прямого отрезка длиной 150 мм и двух колец, находящихся друг от друга на расстоянии 25 мм (рис. 13, Б). Диа- метр колец должен соответствовать диаметру второй и третьей фаланг мизинца и Рис. 13. Микросачок (по М. Цурикову, С. Цурикову, 2001). Обозначения см. в тексте.
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 25 безымянного пальца правой руки исследователя, так как приспособление должно надеваться на эти пальцы, как показано на рис. 13, В, Г). Мешок (2), изготовлен- ный из мельничного газа, должен быть глубиной 200-250 мм, а ширина горловины определяется размером руки исследователя. Для этого нужно надеть приспособле- ния (7) на пальцы и максимально расставить их друг относительно друга. Затем в таком положении нужно измерить расстояние между вершинными и между основ- ными концами приспособлений (7). Сложив эти длины и прибавив к ним общую длину обоих приспособлений, можно получить размеры периметра горловины мешка (2). Описанный микросачок служит для оперативного отлова летающих и сидящих на растениях или предметах с ровными поверхностями насекомых. Не снимая с пальцев сачок, можно даже вести записи в полевом дневнике (рис. 13, Д), что бывает очень удобно при проведении учетов. Кроме того, поймав насекомое, можно быстро закрыть вход в мешок. 2.1.2. Выборка насекомых из сачка. Различные конструкции эксгаустеров Насекомые крупных и средних размеров при известной практике легко из- влекаются из сачка рукой. Начинающие энтомологи, студенты часто не берут насекомых руками из-за боязни быть ужаленными или укушенными. В таких случаях руководителю экскурсии надо предварительно объяснить или напомнить экскурсантам признаки жалящих перепончатокрылых. В отношении же «укусов» беспокоиться не следует вообще: нелегко поместить кончик пальца между верх- ними челюстями какого-либо жука для того, чтобы он укусил. Стоит опасаться контактов волосистых гусениц бабочек с открытой кожей, особенно лица и шеи: содержащиеся в волосках ядовитые вещества при обламывании могут вызвать сильное раздражение и опухоль. Бабочек извлекать из сачка надо очень осторожно, так как даже при легком прикасании пальцами к крыльям последние теряют чешуйки, а такая бабочка, следовательно, — свою научную и эстетическую ценность. Поэтому брать бабочек пальцами надо только за грудной отдел, стараясь это сделать так, чтобы крылья были направлены вверх, после чего для умерщвления бабочки грудной отдел сдавливается с боков, как об этом уже было сказано выше. Крупных мух (саркофагид, мусцид, каллифорид, тахин и др.), пойманных ме- тодом индивидуального отлова с помощью прозрачного сачка, удобно извлекать пальцами следующим образом: после перегиба мешка сачка непосредственно под обручем (чтобы пойманная муха не улетела) сачок просматривается на про- свет, найденная муха захватывается большим и указательным пальцами левой руки (человека-правши, разумеется) с наружной стороны сачка, который затем выворачивается наизнанку (с одновременным удерживанием мухи), и насекомое бросается в открытую остальными пальцами левой руки и правой рукой морилку. Мелких насекомых извлекают из сачка, как правило, с помощью эксгаустера, или всасывателя той или иной конструкции. Выборка насекомых с помощью экс-
26 В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых гаустера имеет ряд преимуществ, по сравнению с извлечением их пальцами или пинцетом: насекомые не теряются, не повреждаются, сборы из разных биотопов и стаций можно легко дифференцировать, меняя пробирки эксгаустера и т.д. Эксга- устеры применяются и при сборе мелких насекомых непосредственно с растений, в подстилке и т.п. Описано много разных конструкций эксгаустеров (Богданов-Катьков, 1947; Плавильщиков, Кузнецов, 1952; Палий, 1970; Фасулати, 1971; Lheritier, 1955; Nelson, Chamberlain, 1955; Голуб и др., 1980; Farr, 1989; Цуриков М., Цуриков С., 2001; и др.). Эксгаустеры большинства конструкций (рис. 14), можно достаточно легко из- готовить в лаборатории или домашних условиях. Эксгаустер самой простой и очень удобной конструкции (рис. 14, А, Б) представляет собой широкую пробирку диаметром обычно 20-25 мм и длиной 85-110 мм, плотно закрывающуюся корковой или резиновой пробкой. В пробку вставляются две стеклянные трубочки диаметром 5-6 мм. Длина одной трубочки 40-50 мм, другой — 160-180 мм. Короткая трубочка проходит внутрь пробирки на 10-15 мм, длинная — на 15-30 мм. На наружный конец короткой трубочки надевается резиновая трубка длиной до 40 см. На внутреннем конце этой же трубочки с помощью нитки или резинового колечка укрепляется фильтр из марли (2-3 слоя) или мелкоячеистой капроновой сетки для предотвращения попадания пыли и самих насекомых в рот сборщика. Рис. 14. Эксгаустеры различных конструкций. А, Б — односторонние, В, Г— двусторонние.
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 27 Рис. 15. Патронташ-пояс (А) для ношения сменных экскурсионных пробирок (Б) (по Фасулати, 1971). Рис. 16. Шприц-эксгаустер (по Ведерникову, 2003, с изменениями). А, Б — последовательность сборки шприц-эксгаустера; 1 — кольцо для закрепления фильтра; 2 — шприц-эксгаустер в собранном виде.
28 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Для удобства пользования эксгаустером длинную стеклянную трубочку делать изогнутой под углом, хотя в большинстве случаев прямая трубочка оказывается практичнее и удобнее. Вместо стеклянных можно применять достаточно жесткие полиэтиленовые трубочки и даже обрезки трубок капельницы (последние менее удобно из-за их гибкости). Вместо широкой стеклянной пробирки в качестве ем- кости эксгаустера можно успешно использовать различные стеклянные пузырьки (например, из-под туши) с достаточно широким горлышком для того, чтобы в него можно было вставить пробку с системой трубочек для всасывания насекомых. Перед экскурсией в емкость эксгаустера обязательно помещают сложенную гармошкой полоску фильтровальной или туалетной бумаги для впитывания па- ров воды, выделяемых замариваемыми насекомыми и предотвращения их порчи. Фильтровальную бумагу просушивают на воздухе во время извлечения насекомых из эксгаустера и их разборки. Эксгаустером пользуются следующим образом: резиновую трубку берут в рот, а конец стеклянной близко подносят к насекомому, сидящему в сачке или на субстрате, с которого производится сбор насекомых (растение, поверхность почвы и т.п.). При втягивании воздуха в себя сильный ток его подхватывает насекомое и уносит внутрь пробирки. При проведении сборов в разных биотопах во время одной экскурсии для экс- гаустера надо иметь сменные пробирки. Их носят либо в полевой сумке, либо в патронташе — охотничьем или самодельном (рис. 15, А, Б). Для мелких объектов можно использовать шприц-эксгаустер, сделанный из одноразового шприца, конструкция которого предложенная В.Е. Ведерниковым (2003). Конструкция шприц-эксгаустера, использованная нами на практике, изо- бражена на рис. 16. Многоемкостный эксгаустер Многоемкостный эксгаустер (рис. 17) состоит из основания (У), представ- ляющего собой металлический диск диаметром 90 мм с отверстием диаметром 6 мм в центре. Края диска приподняты перпендикулярно поверхности на 10 мм и образуют бортик. В пространство между краями диска вкладывается прокладка, толщиной 5 мм из мягкой пористой резины (2), в центре которой прорезано отвер- стие диаметром 6 мм. Снизу в центральное отверстие основания вставляется ось (3) длиной 60 мм и толщиной 6 мм, имеющая на нижнем конце ограничительное расширение, а на верхнем — продольное отверстие с резьбой на глубину до 15 мм и диаметром 3,5 мм. При помощи болта (4) перпендикулярно оси (3) крепится крышка (5), представляющая собой металлический диск диаметром 90 мм и толщиной 1 мм, имеющий в центре отверстие диаметром 4 мм. На верхней по- верхности диска в 5 мм от края имеется овальное отверстие, размером 5><10 мм, в которое герметично вставляются своими краями две медные трубки (6) и (7) диаметром 5 мм и длиной 15 мм так, чтобы нижние их концы соприкасались друг
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 29 Рис. 17. Многоемкостный эксгаустер (по М. Цурикову, С. Цурикову, 2001). Обозначения см. в тексте. с другом, а верхние расходились. При этом нижние края этих трубок располага- ются вровень с нижней поверхностью крышки. В трубку (6) вставляется сетка из мельничного газа (5) так, чтобы она находилась рядом с нижней поверхностью крышки. Эту операцию легче всего проделать следующим образом. Необходимо подобрать трубку из мягкой пластмассы, которая может входить в трубку (6) с не- большим усилием и отрезать от ее конца цилиндр длиной 5 мм. Затем на верхние края трубки (6) нужно положить кусочек мельничного газа, сверху поместить пластиковое кольцо и погрузить его внутрь медной трубки. Таким образом, кольцо будет удерживать мельничный газ недалеко от нижней поверхности крышки экс-
30 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых гаустера. На вершины трубок (6) и (7) натягиваются резиновые или пластиковые трубки (9) и (70) необходимой длины, причем диаметр трубки (9) должен несколь- ко превышать диаметр трубки (70). Между основанием и крышкой эксгаустера помещаются емкости для нако- пления беспозвоночных (77), представляющие собой стеклянные сосуды высотой 55 мм и внешним диаметром 23 мм (можно пузырьки из-под медицинских препа- ратов для инъекций). Обязательное условие при выборе сосудов — гладкие и ров- ные верхние поверхности. Емкости для накопления насекомых устанавливаются по периферии основания эксгаустера и с помощью болта (4) герметично прижимают- ся верхними краями к гладкой крышке. При этом резиновая прокладка (2) выпол- няет роль уплотнителя, если емкость имеет небольшое отклонение от стандартной высоты и одновременно позволяет вынимать емкости, не отвинчивая болта (4). Принцип действия многоемкостного эксгаустера заключается в следующем. При круговом вращении крышки (5) относительно оси (3) нижние поверхности трубок (6) и (7) могут быть оперативно совмещены с соответствующей емкостью для на- копления беспозвоночных. Пронумеровав эти емкости, можно в каждую из них, всасывая воздух через трубку (9), собирать беспозвоночных размером до 3 мм. Предлагаемый авторами многоемкостный эксгаустер предоставляет энтомо- логам следующие возможности. Во-первых, можно собирать беспозвоночных в различных биотопах или исследуемых участках, не меняя емкостей, а лишь передвигая их в соответствующее положение. Во-вторых, можно отлавливать представителей разных групп беспозвоночных, дифференцированно помещая их в соответствующие емкости. Описанный вариант эксгаустера применим для мелких беспозвоночных, главным образом, клещей, пауков, коллембол (Collembola), тизанур (Thysanura), а также представителей Coleoptera, Diplura, Diptera, Heteroptera, Homoptera, Hyme- noptera, Psocoptera, мелких Trichoptera. Данную конструкцию можно оснастить электропылесосом, что позволит зна- чительно расширить сферу ее применения, в том числе в других областях науки и техники. Эксгаустер с накопителем большой вместимости Эксгаустер большой вместимости (рис. 18, А, Б), конструкция которого раз- работана М. Цуриковым, С. Цуриковым (2001), характеризуется большой вмести- мостью и безопасностью для жизни беспозвоночных. Он состоит из трубки (7) длиной 150-200 мм и диаметром 20-30 мм, изго- товленной из железа или стекла, а также двух резиновых пробок (2 и 3) соответ- ствующих размеров. В пробке (2) необходимо проделать два сквозных отверстия, диаметром 5 мм, в которые следует вставить металлические трубки (4 и 5) с диа- метром отверстия 3 мм. Трубка (4) должна иметь длину 50 мм, причем к концу этой трубки, выступающему на 10 мм над нижней гранью пробки (2), следует
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 31 Рис. 18. Эксгаустер с накопителем большой вместимости (по М. Цурикову, С. Цу- рикову, 2001). Обозначения см. в тексте. приложить кусочек мельничного газа (6) (размером 15x15 мм) и прикрепить при помощи нити или резинки. Трубку (5) длиной 150 мм необходимо согнуть, как по- казано на рис. 18, Б. На верхний конец трубки (4) надевается гибкая пластиковая или резиновая трубка (7) длиной 250-300 мм. Вытащив пробку (3) из трубки (/), на дно последней необходимо поместить комок ваты (толщиной 8 мм), после чего пробку (3) следует вернуть в исходное положение. Принцип действия описанной конструкции заключается в следующем. Отло- вив, всасывая определенное количество беспозвоночных, необходимо вытащить пробку (2), быстро заткнуть образовавшееся отверстие комком ваты (толщиной 8 мм) и погрузить ее внутрь трубки (?) до соприкосновения с находящейся там ватой. При этом животные (3) прекращают движения и не могут повредить друг друга, зажатые между слоями ваты (9) (см. рис. 18, В). В случае необходимости на каждый слой беспозвоночных можно положить соответствующие этикетки. Таким образом, в одну трубку можно поместить большое количество животных, причем они не гибнут и не причиняют вреда друг другу. Обработку материала лучше всего
32 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых проводить при помощи полиэтиленового пакета. Для этого следует нижнюю часть трубки (7) поместить в полиэтиленовый пакет, дно которого должно быть направ- лено к источнику света. Затем нужно вытащить пробку (3) и осторожно извлечь первый комок ваты. Собранные беспозвоночные, двигаясь к свету, выползают из трубки и скапливаются в углах пакета, что способствует их легкому отлову. Про- ведя учет первой группы беспозвоночных, их необходимо отпустить, после чего следует извлечь из трубки очередной комок ваты. Изготовив несколько трубок (7) с пробками (3), можно их менять по мере заполнения, что позволяет отлавливать большое количество беспозвоночных, используя одну и ту же пробку (2). Описанная конструкция может применяться для отлова мелких представителей подавляющего большинства отрядов наземных беспозвоночных, за исключением Collembola, Lepidoptera, отдельных Diptera, а также некоторых других отрядов, виды которых имеют нежные и хрупкие конечности или крылья. Использование эксгаустера с накопителем большой вместимости позволит исключить гибель большого количества беспозвоночных, в том числе редких и полезных. Эксгаустер для насекомых с нежными покровами Эксгаустер (рис. 19, А, Б) состоит из металлической или стеклянной трубки (7) длиной 150 мм и диаметром 20-30 мм и двух резиновых пробок (2 и 3), соответ- ствующего диаметра длиной 20 мм. В пробке (2) необходимо проделать сквозное отверстие диаметром 7 мм, в которое следует вставить трубку (4) диаметром 7 мм Рис. 19. Эксгаустер для насекомых с нежными покровами (по М. Цурикову, С. Цу- рикову, 2001). Обозначения см. в тексте.
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 33 и длиной 40 мм, к внешнему концу которой нужно прикрепить резиновую или пластиковую трубку (5) соответствующего диаметра длиной 25-30 мм. В проб- ке (3) следует проделать сквозное отверстие диаметром 6 мм, в которое необ- ходимо вставить металлическую трубку (б) с внутренним диаметром отверстия 4-5 мм. Вытащив пробку (2) из трубки (/), на край последней нужно поместить рыхлый комок ваты толщиной около 7 мм, после чего пробку (2) следует вернуть в исходное положение. Описанная конструкция разработана авторами специально для сбора беспо- звоночных с нежными покровами: Collembola, Diptera, мелких Lepidoptera и т.п. После отлова при помощи всасывания определенного количества животных не- обходимо вытащить пробку (3) и осторожно погрузить внутрь трубки (?) рыхлый комок ваты (7), причем между комками ваты должно оставаться расстояние около 10 мм, чтобы исключить повреждение животных (3) (рис. 19, В). В трубку (?) мож- но поместить 5-7 рыхлых комков ваты без потерь для эффективного всасывания беспозвоночных. Обработку материала лучше всего проводить, как и при работе с накопителем большой вместимости. Эксгаустер данной конструкции выгодно отличается от эксгаустеров обыч- ных конструкций возможностью сбора большого количества беспозвоночных с нежными покровами с минимальными их повреждениями, исключить гибель большого количества животных, в том числе редких и полезных. Он может при- меняться для отлова мелких представителей подавляющего большинства отрядов наземных беспозвоночных, в том числе Collembola, Lepidoptera, Diptera и др., виды которых имеют нежные и хрупкие конечности и крылья. Нередко возникает необходимость в сборе всасыванием мелких насекомых с запыленных или загрязненных поверхностей, например, прелого сена и т.п. Для таких случаев можно рекомендовать эксгаустер с водяным фильтром (рис. 20). Основная задача уст- ройства — защита органов дыхания исследователя от попадания вредных пыле- видных частиц. В сосуд на V2 заполненный водой вставляется пробка (крыш- ка) в которой проделыва- ются 2 отверстия так, что- бы в одно из них герме- тично пропустить трубку обычного эксгаустера, а в другую — трубку для вса- сывания воздуха. Трубка эксгаустера опускается на дно сосуда с водой, а труб- Рис. 20. Эксгаустер с водяным фильтром (ориг.).
34 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых ка для всасывания не должна быть погружена в воду. Таким образом, во время работы воздух проходит сквозь толщу воды, в которой задерживается пыль. 2.1.3. Ловчие пробирки и другие приспособления для сбора насекомых Ловчие пробирки Вместо эксгаустера иногда удобно (особенно при сборе прыгающих насеко- мых — цикадок, листоблошек и др.) использовать ловчую пробирку, т.е. пробирку с коническим дном с отверстием, вдающимся в середину (рис. 21). Вакуумный «магнит» При захвате мелких беспозвоночных пинцетом для дальнейших манипуляций с живыми объектами существует большая вероятность их разрушения. При ис- пользовании всасывающих устройств многие особи повреждаются от удара о дно накопителя. При сборе ловчими пробирками насекомые также нередко поврежда- ются. Применение спирта ведет к гибели всех отлавливаемых животных. В связи с этим нами разработана конструкция приспособления, позволяющего присасывать («примагничивать») мелких насекомых к капроновой сетке (Цуриков М., Цуриков С., 2001), откуда их можно переносить в абсолютно неповрежденном состоянии в любую емкость. Это устройство условно названо нами вакуумным «магнитом». Вакуумный «магнит» (рис. 22, Л, Б) состоит из резиновой трубки (?) длиной 350-400 мм и диаметром отверстия 2,8 мм, тонкостенной пластиковой трубки Рис. 21. Ловчая пробирка с коническим дном с отвер- стием (по Фасулати, 1971). (2) длиной 25 мм и наружным диаметром отверстия 3 мм, кусочка мельничного газа (3) (10 х 10 мм) и пластикового цилиндра (4) высотой 3 мм и диамет- ром отверстия 3 мм. Для изготовления вакуумного «магнита» необходимо вставить трубку (2) на глу- бину 10 мм в трубку (7). Затем кусочек мельнично- го газа (3) следует приложить к наружному концу трубки (2) и надеть на нее цилиндр (4) так, чтобы его внешний край был вровень с поверхностью сетки из мельничного газа (3) (рис. 22, В). Описанное устрой- ство предназначено для мягкого захвата мелких бес- позвоночных и проведения различных манипуляций с ними. Принцип действия вакуумного «магнита» заключается в создании исследователем (при помощи всасывания воздуха) пониженного давления в трубке (7). Если в этот момент к сидящему насекомому под- нести конец трубки (2), то это животное притягива- ется к сетке («примагничивается»). Таким образом
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 35 Рис. 22. Вакуумный «магнит» (по М. Цурикову, С. Цурикову, 2001). Обозначения см. в тексте. можно «примагничивать» одновременно по нескольку экземпляров мелких бес- позвоночных, что позволяет значительно сократить время на их отлов. Вакуумный «магнит» использовался нами для сбора мелких беспозвоночных, главным образом, клещей (Acari), Opiliones, Pseudoscorpiones, Collembola, Thysa- nura а также мелких насекомых из отрядов Coleoptera, Diptera, Heteroptera, Homo- ptera, Hymenoptera, Microcoryphia, Neuroptera, Phthiraptera, Psocoptera, Trichoptera. Данную конструкцию можно увеличить и оснастить электропылесосом, что позволит значительно расширить сферу ее применения. 2.1.4. Замаривание насекомых. Морилки В целях подготовки энтомологической коллекции и для изучения морфологи- ческих и анатомических структур насекомые должны быть тем или иным образом умерщвлены (или, как часто говорят в процессе работы с детьми, — «усыпле- ны»). Для умерщвления наземных насекомых используются морилки различных конструкций. Самая простая из них представляет собой банку (рис. 23, Л, Б), лучше широкогорлую, цилиндрическую с хорошо пригнанной корковой проб- кой; последнюю желательно пропитать парафином. В банку помещают ленточки фильтровальной бумаги для поглощения влаги, выделяемой насекомыми. Пробка желательно прочно привязать к горлышку банки (рис. 23, Б). В качестве анестези- рующих веществ в морилке чаще всего применяют этилацетат (свободно продается в магазинах и на базах химопторга), хлороформ, серный эфир или, хуже, ацетон. В самом крайнем случае годится 25% нашатырный спирт (раствор аммиака). Указанными жидкими веществами (не цианистым калием) пропитывают вату или, лучше, резину и помещают в морилку на дно или укрепляют в пробке. Если
36 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Рис. 23. Морилки (А, Б, В) и пробки к ним (Г, Д). пропитанный хлороформом субстрат (резина, вата) помещается на дно морилки, то его надо фиксировать с помощью хорошо подогнанного по диаметру морилки кружка из картона или ватмана. Иногда для зарядки морилки в пробку вставляют стеклянную трубку с ватой. С наружной стороны трубка должна иметь пробку. Перед использованием морилки в трубку наливают отравляющую жидкость. При отсутствии под рукой корковой пробки ее можно заменить полиэтиленовой крышкой для стеклянной банки емкостью 0,2, 0,25 или 0,5 л. Более крупные банки использовать в качестве морилки не следует из-за их непрактичности. Какие-либо емкости, изготовленные из пластмассы, использовать в качестве морилок нельзя, т.к. хлороформ, эфир, ацетон или другое усыпляющее вещество легко растворяют пластмассу. Точно так же нельзя использовать для морилок крышки из пластмас- сы, а при использовании в качестве анестезирующего вещества хлороформа или эфира, также и из резины. При замаривании насекомых морилку нельзя чрезмерно заполнять ими, по- этому на длительных экскурсиях надо иметь несколько морилок, в экспедиции — обязательно. Насекомых в морилке содержат от 1-2 минут до 6-8 часов, в зависи- мости от их устойчивости к тому или иному анестезирующему веществу. Время замаривания устанавливается чаще всего эмпирически. Ряд насекомых, например большинство дневных бабочек, лучше не помещать в морилку, а умерщвлять легким сдавливанием грудки, а крупных ночных бабо- чек — уколом в нервные центры, вводя через иглу хлороформ, эфир или крепкий настой табака. После умерщвления бабочек сдавливанием грудного отдела ее по- мещают не в морилку, а в заранее заготовленный бумажный треугольный конвер- тик, изготовленный из кальки или другой гладкой бумаги (см ниже). Для умерщвления мелких и очень мелких насекомых разработан ряд специ- альных конструкций морилок, которые обеспечивают хорошую сохранность со- бранных насекомых. Одна из конструкций, широко использующаяся в Европе, изображена на рис. 24 (авторство конструкции не установлено).
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 37 Рис. 24. Морилка для мелких насекомых. А — общий вид морилки в собранном виде; Б — морилка в полностью разобранном виде; В — пластмассовая пробка с перфорированной стеклянной пробиркой; Г — мо- рилка в разрезе. Обозначения см. в тексте.
38 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Основу морилки составляет пузырек емкостью примерно 150 мл (7). На ее дно помещается достаточно большой кусок ваты (2), который при зарядке морилки смачивается хлороформом, серным эфиром или этилацетатом. Пузырек герметично закрывается хорошо подогнанной пластмассовой пробкой с отверстием (4). Снизу в отверстие плотно вставляется стеклянная пробирка (3) с рядом мелких отвер- стий на стенке, через которые пары хлороформа проникают в полость пробирки. Сверху отверстие пластмассовой пробки плотно закрывается корковой пробкой (5). В целом, вся система, пузырек, пробки и пробирка, должна быть герметичной. После отсасывания мелких насекомых в эксгаустер они высыпаются в про- бирку с отверстиями, которая быстро закупоривается сверху корковой пробкой. После замаривания насекомые пересыпаются в пробирки, которые тут же, в поле, снабжаются оригинальной (полевой) этикеткой. 2.2. Дополнительное полевое снаряжение энтомолога Сачок, морилка (или нескольких морилок), эксгаустеры — приспособления, без которых невозможно проведение какой-либо энтомологической экскурсии, во время которой проводится отлов насекомых. Кроме них реально требуется еще ряд инструментов и принадлежностей, использующихся на экскурсии и в экспедиции, в зависимости от ее цели. Некоторые из них, например, полевая сумка, полевой дневник, карандаш или ручка и некоторые другие необходимы в такой же степени, как и сачок. 2.2.1. Лопатки, ножи, пила, топорик Для раскапывания почвы, гнилых пней и т.п. субстратов необходима лопатка. Наиболее удобным типом лопатки является малая саперная или туристическая складная. Можно применять достаточно широкие шпатели, а также плоские скреб- ки, используемые в обиходе для снятия стенной штукатурки. Различные стамески, укрепленные на толстой палке длиной до 1 м, употребляемые ботаниками для вы- капывания растений, менее удобны. Для разрывания верхних слоев почвы удобны садовые совки (рис. 25, А). Для срезания коры при вскрытии повреждений на стволах деревьев, срезания ветвей, трутовиков и т.п. необходим нож. Лучшими являются крупные нескладные или складные карманные с хорошим стальным лезвием, а также садовые ножи (рис. 25, Б, В). Желательно, чтобы нож был на тонкой прочной веревочке или це- почке, для чего его рукоятку снабжают кольцом. Для срезки поврежденных ветвей используют садовый секатор (рис. 25, Д). Удобно также пользоваться складной пи- лой-ножовкой, особенно при работе с колючими кустарниками. Для снятия толстой коры деревьев, подрубки пней, разрыхления почвы, окантовки участков плотной дерновины с целью ее последующего снятия и т.п. работ очень удобно пользо-
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 39 Рис. 25. Инвентарь для сбора насекомых и поврежденных ими частей растений. А — совок, Б, В — перочинные ножи; Г— грабельки, Д— секатор. ваться туристическим топориком. Его недостатки — достаточно большая масса и неудобство при ношении на экскурсии. Для сгребания листьев и подстилки вместе с ее обитателями удобно пользоваться маленькими грабельками и садовыми раз- рыхрытелями почвы, продающимися в магазинах для садоводов (рис. 25, Г). 2.2.2. Пинцеты, лупа Из имеющихся в продаже в магазинах медицинской техники мелких пинцетов нужно выбирать самые мягкие, с концами с поперечной насечкой, прямыми или изогнутыми. Пинцеты можно изготовить из очень тонких пластинок упругой ста- ли, соединив их двумя заклепками на одном конце и вырезав в виде закругленных узких концов — на другом. Пинцеты применяются для извлечения насекомых из щелей в коре, навоза и т.д., а также для ловли жалящих насекомых. Полезно иметь при себе несколько разных пинцетов (например, более крупный и жесткий и очень
40 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых мягкий, маленький), и на экскурсиях, чтобы не потерять их, следует привязывать тонкими шнурками к полевой сумке. Для этого лучше просверливать узкое отвер- стие (диаметром до 2 мм) в рукоятке пинцетов. Вместе с пинцетом полезно иметь лупу (6- или 10-кратную), которая на экс- курсии также должна быть привязана к полевой сумке. Энтомологами по-разному решаются вопросы хранения сборов беспозво- ночных. Наряду с хранением собранных и заморенных насекомых на ватных ма- трасиках (см. ниже), широко распространено применение различных пузырьков, пробирок или банок (Якобсон, 1921; Богданов-Катьков, 1947; Павлович, 1947; Фасулати, 1971; Koch, 1984; и др.), которые заполняются материалом непосред- ственно на экскурсии. 2.2.3. Приспособления для мягкого захвата и удержания беспозвоночных При захвате беспозвоночных пинцетом существует большая вероятность их повреждения или даже разрушения. При этом возникает опасность безвозвратной утраты ценного экземпляра для исследования или коллекции. Можно изготавли- вать самим очень мягкий пинцет (см. выше) из тонкой упругой стали (Голуб и др., 1980). Кроме того, ниже приводятся описания двух простых самодельных приспособлений, при использовании которых опасность повреждений насекомых, даже с нежными покровами, практически исчезает. Устройство для захвата беспозвоночных (рис. 26, А) представляет собой поролоновый кубик размером 40 х 40 х 40 мм. Он служит для мягкого захвата беспозвоночных, перемещающихся по ровным поверхностям (почва, ствол дерева и т.п.). Для отлова необходимо быстро прикрыть животное и прижать его к поверх- ности почвы, после чего указательным и большим пальцами правой руки необхо- димо сдавить кубик в нижней трети его высоты (рис. 26, Б). При этом на нижней поверхности поролонового кубика образуется складка, края которой захватывают экземпляр беспозвоночного с двух сторон, мягко и надежно его удерживая. Рис. 26. Устройство для захвата беспозвоночных (по М. Цурикову, С. Цурикову, 2001). Обозначения см. в тексте.
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 41 Рис. 27. Зажим для мягкого захвата и удержания беспозвоночных (по М. Цурикову, С. Цурикову, 2001). Обозначения см. в тексте. Зажим для мягкого удержания беспозвоночных (рис. 27, Л, Б) состоит из двух металлических пластин (1 и 2) размером 150 * 10 мм, имеющих по два вы- ступа с отверстиями в средней части. Согнув выступы перпендикулярно плоскости пластин, необходимо совместить отверстия обеих пластин и зафиксировать это положение, пропустив сквозь них кусок проволоки (3) с последующим загибом обоих концов. Далее на вершины пластин (1 и 2) необходимо надеть кубики из поролона (4 и 5), размеры ребер которого должны быть 30 мм. Удобнее всего предварительно сделать разрезы перпендикулярно одной из граней кубиков с тем, чтобы было удобно погружать в них вершины пластин (1 и 2) (рис. 27, Б). Затем на пластины (1 и 2) следует надеть кольцо (6) из тонкой резинки, предна- значенное для легкого прижатия кубиков (4 и 5) друг к другу. Передвигая кольцо (6) между средней частью и вершиной пластин (1 и 2), можно регулировать вели- чину давления между поролоновыми кубиками (4 и 5). Описанная конструкция предназначена для мягкого захвата и удержания беспозвоночных (большей частью крупных и средних размеров), для чего в начале необходимо развести поролоно- вые кубики (4 и 5) в стороны нажатием на основные концы пластин (1 и 2). Далее следует, расположив кубики между сидящим животным, отпустить концы пластин, в результате чего объект исследования будет мягко зажат между поролоновыми кубиками (4 и 5). 2.2.4. Полевые сумки и контейнеры Полевая сумка необходима исследователю для переноса оборудования, исполь- зуемого при сборе насекомых. Для этой цели приспосабливают практически лю- бую сумку, которую можно носить с ремнем через плечо. Можно изготовить сумку специально для энтомологических целей. Подробное описание энтомологической сумки приводит В.Ф. Палий (1970). На рис. 28 показан ее общий вид. Главное
42 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Рис. 28. Энтомологическая сумка (по Палию, 1970). в ее конструкции, а также других конструкций самодельных полевых сумок, заключается в наличии нескольких карманов для различных полевых приспособлений. Ниже приводятся описание и рисунок много- целевого жестяного контейнера для проведения полевых исследований конструкции М.Н. Цу- рикова и С.Н. Цурикова (2001) (рис. 29). Остов жестяного контейнера (рис. 29, А, Б) состоит из дна (У) и крышки (2), подвиж- но скрепленных при помощи заклепок (3 и 4). В закрытом положении контейнер имеет размеры 250 х 200 х 45 мм, причем боковые стенки дна (У) имеют пятиугольную форму, а боковые стенки крышки — форму трапеции (рис. 29, Б). Для фиксации контейнера в закрытом по- ложении в верхней части дна (У) крепятся две защелки (5 и 6), изготовленные из проволоки диаметром 1,5 мм (рис. 29, В). Крепление контейнера на груди исследователя проводится при помощи широкой (30 мм) капроновой ленты (7), концы кото- рой пришиваются к защелкам (5 и 6), как показано на рис. 29, А, В. Лента (7) Рис. 29. Многоцелевой контейнер для проведения полевых исследований (по М. Цурикову, С. Цурикову, 2001). Обозначения см. в тексте.
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 43 служит для удержания контейнера на шее, а на поясе исследователя контейнер фиксируется при помощи капроновой ленты (8), с одной стороны, и ленты (9) с пряжкой (10) — с другой. Ленты (8 и 9) крепятся к нижней части боковых сторон дна (1) при помощи проволочных скрепок (11 и 12). К нижней части внутри дна (1) при помощи заклепок (13 и 14) нужно подвижно прикрепить узкую крышку (15), изготовленную из жести, которая служит для ограничения пространства внутри контейнера. Под крышкой (15) можно хранить мелкие при- надлежности для проведения энтомологических исследований: емкости для сбора беспозвоночных, бумагу, вату и др. Ко дну (1) крепятся при помощи заклепок 8 зажимов (16), изготовленных из тонких стальных пластинок (форму и размеры см. на рис. 29, Б). Зажимы (16) служат для удержания энтомологических при- надлежностей: стамески (17), контейнеров для хранения живых насекомых (18) (см. выше), эксгаустера (19). Описанный набор устройств может быть изменен в зависимости от специфики исследования. Многоцелевой контейнер для полевых исследований, наряду с хранением и возможностью оперативного использования различных приспособлений, может служить для разбора почвенных проб или любых образцов субстрата. В качестве столика следует использовать раскрытую крышку (2), а эксгаустер (19), снабжен- ный длинной трубкой для всасывания беспозвоночных, позволяет отлавливать последних, не вынимая его из зажима (16) (рис. 29, А). Для удаления мелких остатков субстрата после разбора пробы необходимо приподнять край крышки (2), как показано на рис. 29, Г. При этом между крышкой (2) и дном (1) образуется щель шириной 10 мм, через которую субстрат легко удаляется, после чего можно приступать к исследованию следующей пробы. Несмотря на некоторую сложность в изготовлении и определенный вес (1,2 кг при полной комплектации), эти неудоб- ства полностью компенсируются его широкими возможностями. Очень удобно носить многие не особенно крупные принадлежности энтомо- лога в многочисленных карманах жилетов, получивших в последнее время очень широкое распространение в повседневной жизни и работе специалистов многих направлений. 2.2.5. Полевой дневник, карандаши, ручки, компас, карты, персональный навигатор Собранный материал представляет ценность только в том случае, если снаб- жен соответствующими записями в дневнике. Обычно для дневника используют блокнот или тетрадь небольшого размера в плотной обложке, которую можно по- местить в полевую сумку или карман. На обложке дневника указывают название учреждения, адрес его, фамилию исследователя и год заполнения. Записи делают простым карандашом или шариковой ручкой (но не капиллярной или гелевой). Для каждого энтомологического сбора в дневник заносят следующие сведения: географический пункт, биотоп или стация, дата, метод сбора и другие данные,
44 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых которыми исследователь считает необходимым снабдить данный сбор (напри- мер, кормовые растения, характер их повреждения, влияние внешних факторов, физиологическое состояние отдельных видов, количественные показатели и т.п.). Основные из этих сведений в дальнейшем переносят на этикетки ватного матра- сика и при монтировании насекомых на энтомологические булавки. Записи в полевом дневнике лучше всего вести простым карандашом средней мягкости (с отечественной маркировкой «ТМ» или на английском языке — «НВ»), Можно вести записи и более мягким карандашом, но не твердым, т.к. в дождливую погоду он легко рвет отсыревшую бумагу полевого дневника. Очень часто ведут записи (а также заполняют оригинальные этикетки ватного матрасика) шариковой ручкой, что достаточно удобно, если погода не слишком жаркая и нет опасности протекания пасты. При пользовании шариковой ручкой, надо следить за тем, что- бы ацетон, хлороформ или эфир, находящиеся в полевой сумке, не пролились на ручку и не растворили пасту. Пользоваться в поле гелевой или капиллярной руч- кой не рекомендуется, т.к. они легко вытекают, а также со временем выцветают. Компас, карты местности и квартальные карты лесных массивов используются при работе на малознакомой местности. Очень полезным прибором при проведении полевых исследований, определе- ния географических координат местонахождения, пунктов отбора проб, высоты над уровнем моря, прокладывания маршрутов и т.п. является персональный на- вигатор GPS (Global Positioning System). Как показывает практика, для этих целей удобны различные марки персональных навигаторов, которые энтомолог может себе подобрать, исходя из имеющихся у него возможностей. Надо только иметь в виду, что персональный навигатор должен обладать функциями определителя географических координат, компаса, альтиметра, а также, желательно, прокладки маршрута по азимуту, указателя коэффициента скольжения по склону, положения солнца и луны. 2.3. Специальное оборудование для хранения и первичной обработки материала при проведении экологических исследований При проведении специальных экологических исследований (выяснения ус- ловий обитания, сроков развития видов и т.п.), не связанных непосредственно со сбором энтомологического материала, требуется соответствующее, нередко сложное, оборудование: термометры (для измерения температуры атмосферного воздуха, воды и почвы), психрометр, барометр, фотометр и другие. В связи с иной направленностью содержания настоящего пособия, мы не рассматриваем здесь марки этих приборов и методы их использования. Отметим только, что для про- ведения обычных эколого-фаунистических исследований наземной энтомофауны, связанных так или иначе с последующим созданием коллекций, в ряде случаев
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 45 полезно измерять температуру и влажность атмосферного воздуха. Для измерения температуры в открытых местообитаниях (на солнце) следует пользоваться пра- щевым ртутным термометром, который при его вращении в течение 1 минуты над головой устраняет эффект нагревания термометра прямыми солнечными лучами. Для измерения основных взаимосвязанных показателей (температуры и влажности) атмосферного воздуха, а также температуры воды и почвы, когда не требуется очень высокая точность показателей, можно использовать бытовые метеостанции, имеющиеся повсеместно в продаже. Они компактны и довольно точны в пределах одного градуса по Цельсию и одного процента относительной влажности воздуха. 2.3.1. Компактный блок емкостей для хранения беспозвоночных В ряде случаев временное хранение собранного и заморенного энтомологи- ческого материала нужно хранить не на ватных матрасиках, а в фиксирующих жидкостях в пузырьках или других емкостях (см. ниже). Рекомендуется насекомых помещать в спирт, формалин или другую фиксирующую жидкость непосредствен- но на экскурсии, т.к. материал в этом случае сохраняется лучше. Следовательно, в этих случаях надо брать с собой на экскурсию достаточно большой запас пу- зырьков или пробирок, носить которые бывает весьма неудобно. М.Н. Цуриковым разработана конструкция блока для ношения и хранения емкостей с фиксирован- ными насекомыми. Для изготовления блока емкостей (рис. 30, Л, Б) необходимо взять прямо- угольный кусок прочной ткани (У) (размеры см. на рис. 30, Б), сложить его и прошить по линиям, показанным мелким пунктиром. Далее нужно в каждый из узких карманов поместить емкости для хранения беспозвоночных, как показано на рис. 30, А (авторы в качестве емкостей использовали пузырьки высотой 50 мм и диаметром 16 мм). При этом пробки емкостей должны упираться друг в друга, что исключит случайное выпадение пробок и, таким образом, сохранит собранный материал. К тыльной плоскости, полученной таким образом системы узких карма- нов с емкостями, следует пришить пятиугольный кусок ткани (2), линии крепления которого показаны точками на рис. 30, Б. Затем необходимо взять две пластиковые пластинки (3 и 4) и погрузить их в полости между скрепленными кусками ткани (У и 2), как показано на рис. 30, В, после чего горловины полостей следует зашить. Для фиксации компактного блока емкостей в положении, когда пробки пузырьков прижаты друг к другу, необходимо к вершине треугольной лопасти куска ткани (2) прикрепить крючок (5), а на противоположной стороне конструкции пришить петельку (6) так, чтобы крючок (5) с некоторым усилием доставал до петельки (6). 2.3.2. Пробирки и банки для сохранения насекомых живыми Насекомых, которых нужно принести с экскурсии живыми, обычно сажают в пробирки или банки. Обычные длинные химические и бактериологические про-
46 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Рис. 30. Компактный блок емкостей для хранения беспозвоночных (по М. Цури- кову, С. Цурикову, 2001). Обозначения см. в тексте.
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 47 бирки неудобны, лучше применять короткие и широкие стеклянные цилиндрики с плоским дном. Такие пробирки, заткнутые ватными или корковыми пробками, очень удобно брать с собой в патронташе (см. рис. 15) или в сумке. Для сбора личинок следует брать пробирки, наполненные до 2/3 их объема 75% спиртом. Наиболее удобны пробирки следующих размеров: длина 60 мм, диаметр 15 мм; длина 40 мм, диаметр 15-18 мм; длина 70-100 мм, диаметр 20-25 мм. Собрав материал, следует отсоединить крючок (5) от петельки (6), разложить конструк- цию, как показано на рис. 15, Л, и поместить беспозвоночных в соответствующие емкости. Необходимо пронумеровать емкости, написав цифры на пробках. Кроме основного предназначения (дифференцированное хранение беспозвоночных), тыльная сторона компактного блока емкостей может служить в качестве гладкого столика, на котором удобно производить записи в полевом дневнике, записной книжке или делать этикетки. 2.3.3. Контейнер для хранения живых насекомых Описано много типов емкостей для хранения насекомых, в том числе живых (Богданов-Катьков, 1947; Wyniger, 1953; Mesch, 1955; Фасулати, 1971; Приставко, 1979; А.с. 843898; и др.). Представленный авторами контейнер характеризуется совокупностью трех качеств: компактностью, большой вместимостью и безопасностью для жизни беспозвоночных. Контейнер (рис. 31, Л) представляет собой металлическую или пластиковую трубку (У) длиной 100-120 мм и диаметром 18-20 мм, в которую необходимо последовательно вставить 12-15 плотных комков ваты (2) толщиной около 8 мм. Основное требование к трубке: гладкая внутренняя поверхность, чтобы комки ваты легко скользили и между ними не создавалось большого давления. Два верхних (крайних) комка ваты должны быть окрашены в какой-либо цвет, отличный от остальных комков. Для этой цели лучше всего подходит спиртовой раствор брил- лиантового зеленого. После 30-минутного замачивания в этом растворе комок ваты необходимо тщательно промыть и высушить. Изготовленные таким образом комки ваты приобретают светло-зеленый цвет. Для удобного использования кон- тейнера, его следует подвесить на шею (подобно кулону). Это легче всего сделать следующим образом. На верхний конец трубки (У) (в 20-30 мм от его края) нуж- но надеть толстое резиновое кольцо (3), привязанное к капроновой веревке (4) (рис. 31, Л). Размеры петли из веревки (4) необходимо подбирать индивидуально каждому исследователю, при этом верхний конец контейнера должен находиться на расстоянии 150-200 мм от подбородка. Описанное крепление очень надежно и позволяет оперативно менять трубки (У), для чего достаточно выдернуть одну трубку из резинового кольца (3) и вставить другую. Описанная конструкция действует следующим образом. Отловив одну особь или некоторое количество насекомых, необходимо мизинцем левой руки нажать на
48 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Рис. 31. Контейнер для хранения живых насекомых (ориг). Обозначения см. в тексте. верхний комок ваты (2) с тем, чтобы увеличить глубину верхней полости трубки (У) и одновременно придвинуть последний комок ваты к противоположному краю трубки. Затем следует высыпать насекомых в верхнюю часть полости трубки, из- влечь нижний комок ваты, погрузить его сверху в трубку и протолкнуть мизинцем вглубь (рис. 31, В). При этом животные (5) мягко обездвиживаются и не могут повредить друг друга, зажатые между комками ваты (2) (рис. 31, Б). Отловив сле- дующих насекомых, необходимо повторить описанную выше манипуляцию. Таким образом, в одну трубку можно поместить большое количество животных, причем они не гибнут. Сигналом заполнения контейнера насекомыми служит первый из двух зеленых комков ваты, после извлечения которого из нижней части трубки (У) и фиксации им последней порции животных, следует заменить контейнер. Обработку материала лучше всего проводить при помощи полиэтиленового пакета. Для этого следует нижнюю часть трубки (У) поместить в полиэтиленовый пакет, дно кото- рого должно быть направлено к источнику света. Затем нужно осторожно извлечь первый комок ваты. Собранные беспозвоночные, двигаясь к свету, выползают из трубки и скапливаются в углах пакета, что способствует их легкому отлову. Про- ведя учет первой группы беспозвоночных, их можно отпустить, после чего следует извлечь из трубки очередной комок ваты и продолжить исследование материала. Описанная конструкция может применяться для отлова мелких представите- лей большинства отрядов наземных беспозвоночных, за исключением Collembola, Lepidoptera, отдельных Diptera, а также некоторых других отрядов, виды которых имеют нежные и хрупкие конечности и крылья. Широкое использование представленного контейнера позволит исключить гибель большого количества беспозвоночных, в том числе редких и полезных.
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 49 2.3.4. Приспособления для проведения экспресс-анализа собранных материалов Имеющиеся в литературе методики ускоренной сортировки собранного эн- томологического материала и использования дополнительных устройств к сачку для уменьшения содержания в нем мусора всегда были связаны с предваритель- ным замариванием насекомых (Zolnerowich, Heraty, Wooley, 1990; Авторское свидетельство № 1528413). Однако далеко не всегда целесообразно применение фиксирующих средств, особенно при работе с редкими видами насекомых или в уникальных местообитаниях. М.Н. Цуриковым и С.Н. Цуриковым (2001) разработанно простое приспосо- бление для проведения экспресс-анализа, методика которого позволяет проводить такой анализ собранных насекомых в полевых условиях, при необходимости без замаривания. Устройство (рис. 32, Л, Б) состоит из прозрачного полиэтиленового пакета (У), размером 400 х 400 мм и пластиковой трубки (2) длиной около 100 мм и диаме- тром 15-20 мм. Один из концов трубки (2) нужно закрыть кусочком мельничного газа (3) и закрепить при помощи капроновой нити или тонкой медной проволоки (4) (рис. 32, Л). Описанное устройство предназначено для оперативной обработки смеси бес- позвоночных, собранных различными методами (почвенные ловушки, светоло- вушки, кошение сачком и др.). Последовательность проведения экспресс-анализа удобнее всего показать на примере исследования хортобионтов, отловленных методом кошения. Проведя серию кошений, содержимое энтомологического сачка необходимо быстро высыпать в пакет (У), для чего нужно вывернуть сачок и не- сколько раз резко встряхнуть его, предварительно поместив мешок сачка внутрь пакета (У). Далее следует вставить вершину трубки (2) в пакет (У) и герметично скрепить их при помощи резинки (5). Затем, расположив пакет с трубкой в го- Рис. 32. Устройство для экспресс-анализа сборов беспозвоночных (модификация 1) (по М. Цурикову, С. Цурикову, 2001). Обозначения см. в тексте.
50 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Рис. 33. Устройство для экспресс-анализа сборов беспозвоночных (моди- фикация 2) (по Цурико- ву, 2002). Обозначения см. в тексте. ризонтальной плоскости и слегка встряхивая содержимое, необходимо добиться более или менее равномерного распределения беспозвоночных по всей внутренней поверхности пакета (7). Затем нужно удалить воздух из пакета через трубку (2) и быстро закрыть большим пальцем левой руки отверстие в трубке. Беспозвоноч- ные, прижатые стенками полиэтиленового пакета, теряют подвижность, что по- зволяет легко подсчитать животных и провести анализ их состава на том уровне (видовом, родов, семейств), которым владеет исследователь и который требуется в соответствии с программой исследований. По окончании учета беспозвоночных выпускают. Для большей сохранности беспозвоночных не следует пользоваться пакетами, изготовленными из толстостенной или жесткой полиэтиленовой пленки. Описанное устройство можно применять для анализа сборов, содержащих самых различных наземных беспозвоночных без их гибели, лишь с временным их обездвижением. Еще проще в изготовлении другая модификация устройства для экспресс-ана- лиза сборов беспозвоночных (рис. 33). Устройство (рис. 33) состоит из стекла (?) прямоугольной формы с размером 200x200 мм и поролонового параллелепипеда (2) размером 200x200x30 мм и более. При проведении исследования параллелепипед (2) желательно размещать на ровной поверхности. Затем смесь живых беспозвоночных, собранных всевоз- можными методами, необходимо высыпать в центр параллелепипеда (2) и быстро накрыть стеклом (7). Неподвижных животных, мягко зафиксированных между по- ролоном и стеклом, не представляет труда пересчитать, а известных исследователю представителей определить, не причинив им вреда. Для того чтобы исключить потери наиболее активных особей в момент их укладки под стекло, необходимо данную операцию проводить внутри просторного мешка из полиэтиленовой плен- ки. Если в собранном материале содержится мусор, или сбор достаточно много- числен, полезно, слегка приподнимая стекло, дать возможность беспозвоночным разбежаться в стороны от центра пластины (2), что позволяет существенно упро- стить их подсчет и изучение. Описанное устройство можно применять для обработки сборов подавляюще- го большинства групп наземных беспозвоночных. Исключение составляют лишь мельчайшие представители клещей, коллембол и перепончатокрылых, так как они теряются в полостях поролона (для них нужно подбирать поролон с гладкой верх-
Глава 2. Сбор наземных насекомых 51 ней поверхностью), а также некоторые виды двукрылых и чешуекрылых, имеющие нежные и хрупкие крылья и конечности. 2.3.5. Сепаратор для сортировки наземных членистоногих по их размерам Описанные устройства для предварительной сортировки беспозвоночных по размерам, представляют собой набор сит с отверстиями разного диаметра (Morris, 1922; Hawkins, 1936; Balogh, 1958; Палий, 1970; Фасулати, 1971; Тихомирова, 1975; и др.). Описываемый здесь сепаратор выгодно отличается от сит компактно- стью и возможностью сохранять собранных артропод живыми. Сепаратор для беспозвоночных (рис. 34, А, Б) состоит из пластиковой крыш- ки (?) (от стеклянной банки) диаметром 81 мм и алюминиевого диска (2), скре- пленных между собой в центре при помощи болта (3), двух шайб (4 и 5) и гай- ки (б). На крышке (?) следует вначале удалить полукруглый лепесток, служащий для открывания банки, а затем между центральным отверстием диаметром 3 мм и боковым краем крышки следует прорезать отверстие диаметром 15 мм (рис. 34, Б). Для изготовления диска (2) следует вырезать из алюминиевой пластинки тол- щиной 1 мм фигуру, размеры которой указаны на рис. 34, В. Скрепив диск (2) с крышкой (?) при помощи болта с гайкой (3 и б), необходимо короткие лепестки Рис. 34. Сепаратор для беспозвоночных (по М. Цурикову, С. Цурикову, 2001). Обозначения см. в тексте.
52 В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых диска (2) загнуть вниз, а кончик — к центру конструкции (рис. 34, Л, Б), что спо- собствует плотному соприкосновению внутренних поверхностей крышки (?) и диска (2). Затем длинные лепестки диска необходимо свернуть в трубки (рис. 34, А, Б), которые служат ручками для вращения диска (2) вокруг болта (3). Между центральным отверстием и краем диска (2) на равном расстоянии друг от друга, в пределах площади круга диаметром 15 мм, нужно проделать группы отверстий различного диаметра (рис. 34, В). Для этого необходимо положить кон- струкцию диском (2) вниз и проделать в последнем отверстие диаметром 15 мм, границы которого должны совпадать с границами отверстия в крышке (7). Далее следует в диске (2) проделать отверстия или группы отверстий диаметром 10, 7, 4, 2, и 1 мм таким образом, чтобы при перемещении диска (2) по часовой стрелке на определенный угол отверстие в крышке (7) могло совмещаться с указанными выше перфорациями. При этом один из секторов диска (2) должен быть без от- верстий, чтобы сепаратор был непроницаем для беспозвоночных в определенном положении крышки и диска (рис. 34, В). Описанную конструкцию сепаратора для беспозвоночных необходимо ис- пользовать следующим образом. Собранный кошением или другими способами материал, представляющий собой комплекс артропод для предварительной сор- тировки по их размерам, нужно высыпать в стеклянную банку емкостью 0,5 л и быстро закрыть сепаратором. При этом отверстие в крышке (7) должно быть перекрыто. Далее необходимо последовательно совмещать отверстие в крышке (7) с отверстиями различного диаметра, проделанными в диске (2), начиная от мелких к крупным. При этом через отверстия в диске (2) последовательно выпол- зают беспозвоночные соответствующих размеров: сначала мелкие, затем средние и крупные. Для повышения эффективности сепаратора банку с животными целе- сообразно поместить в мешок из плотной ткани черного цвета, причем внутрен- нюю поверхность крышки (7) необходимо покрасить черной краской. Собирать вышедших беспозвоночных проще всего при помощи полиэтиленового пакета, в горловину которого следует вставить сепаратор с банкой, помещенной в мешок темного цвета. Сортировка смеси беспозвоночных по величине (сепарирование) значительно облегчает их дальнейшую обработку и позволяет выпускать редкие и полезные виды после их учета. 2.3.6. Устройство для определения живых беспозвоночных В ряде случаев требуется временное обездвижение для рассмотрения или оперативного определения насекомых и других беспозвоночных в полевых или лабораторных условиях. Кроме того, редкие виды насекомых без крайней необхо- димости уничтожать нельзя. Разумеется, определение живых объектов возможно только в отношении тех, которые имеют крупные и средние размеры, когда не требуется изготовление микропрепаратов, и когда определение производит под- готовленный специалист по определенной группе насекомых.
Глава 2. Сбор наземных насекомых 53 Рис. 35. Устройство для определения живых беспозвоночных (по Цурикову, 2002). Обозначения см. в тексте. Данное устройство (рис. 35, А-Б) состоит из двух прямоугольных обрезков стекол (7 и 2) и двух деревянных или пластмассовых планок (3 и 4). Выбор раз- меров стекол и планок зависит от величины объектов исследования. У проверен- ного на практике устройства, предназначенного для исследования жесткокрылых, размеры стекол (7 и 2) составляли 100 х 80 мм, а планок (3 и 4) — 110 х 30 х 15 мм. На одной из сторон каждой планки следует пропилить две сходящиеся канавки (рис. 35, Б), ширина которых зависит от толщины стекла, а глубина со- ставляет около 5 мм. Угол между канавками находится в прямой зависимости от размеров исследуемых животных (в авторском варианте — 10 градусов). Кон- струкцию необходимо скрепить при помощи клея, как показано на рис. 35, Б. Основное условие успешной работы устройства — плотное касание сходящихся краев стекол. С описанным устройством работают следующим образом. Приготовленный для определения экземпляр животного нужно поместить между стеклами, при этом устройство следует расположить так, чтобы сходящиеся края стекол были внизу. Животное, в зависимости от размеров, продвигается на соответствующее расстояние и останавливается, зажатое между стеклами. Для исключения его передвижения в стороны, необходимо изготовить специальный ограничитель (5). В случае работы с беспозвоночными, различными по размерам, полезно сделать несколько таких ограничителей, имеющих различную величину вершинной «вил- ки». Угол сужения каждой лопасти «вилки» (см. вид сбоку на рис. 35, Б) должен соответствовать углу между стеклами (7 и 2). Ограничив движение исследуемого животного пространством между лопастями «вилки» и сужением стекол (7 и 2), данную конструкцию следует повернуть в горизонтальном положении и поместить на столик бинокулярного микроскопа, причем, изучение особей желательно про- водить при рассеянном свете.
54 В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Одно из преимуществ данного устройства заключается в возможности осмо- тра животных с разных сторон, для чего достаточно перевернуть конструкцию. Устройство позволяет проводить определение многих видов беспозвоночных без повреждений конечностей и крыльев. По окончании определения животных можно выпустить в месте их обнаружения. 2.4. Методы сбора, ловушки и приспособления для сбора хортобионтов, тамнобионтов и летающих насекомых 2.4.1. Банки и пластиковые пакеты Довольно часто оказывается удобным способом сбора отдельно сидящих на- секомых или небольших их группировок на соцветиях или побегах стряхиванием в пустую банку или в морилку. Для этого следует осторожно подойти к растению, подставить под сидящий на растении объект банку (морилку), аккуратно стрях- нуть объект точно в банку и сразу же закрыть ее крышкой. При этом надо иметь в виду, что, используя в качестве банки заправленную морилку, последнюю нель- зя долго держать открытой во избежание быстрого испарения анестезирующего вещества. В качестве изолирующей от внешней среды емкости удобно также исполь- зовать прочные пластиковые (полиэтиленовые) пакеты. При этом насекомые, сидящие на соцветии или побеге растения, либо стряхиваются в подставленный снизу пакет, либо стряхиваются в него после того, как в него будет введены все растение или его часть, и завязано отверстие, охватывающее растение. Желательно предварительно положить в пакет ватку, смоченную усыпляющим веществом — хлороформом или этилацетатом. Эфир для замаривания насекомых в большом пакете мало пригоден, т.к. он очень быстро испаряется. 2.4.2. Полотно При сборе с небольших деревьев и кустарников хорошие результаты дает стряхивание насекомых на полотно. Обычно берут квадратное полотно размером 4x4 или 3 х 3 м, с разрезом до центра. Вполне пригодным материалом является бязь. Полотно должно быть белое (не цветное). Такое полотно осторожно подво- дят под деревце или куст, причем ствол вводят в разрез, который по возможности смыкают; затем растение сильно встряхивают руками или колотушкой (короткой толстой палкой, обернутой войлоком, резиной или тряпками). Потревоженные насекомые в большинстве своем падают на полотно, откуда их быстро собирают в морилку или банки. Сбор насекомых и других беспозвоночных с деревьев ме- тодом стряхивания следует проводить утром, до жары, или в пасмурную погоду. В жаркую погоду многие насекомые, вместо того чтобы упасть, взлетают.
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 55 2.4.3. Волокуши Они служат для сбора иксодо- вых клещей. Описание волокуши приводится в этой книге, т.к. по опыту знаем, что к энтомологам нередко обращаются (особенно в последние годы в связи с усиле- нием внимания к клещам как пере- носчикам возбудителей многих ин- фекционных болезней) с просьбой дать консультацию в отношении численности клещей и мер борьбы с ними. Провести учеты клещей на определенной площади (лучше всего в местах выгула домашних собак) — несложное мероприятие для любого энтомолога, даже на- Рис. 36. Волокуша для сбора клещей. пинающего. Волокуша — это простое приспособление. Оно состоит из полоски материи (мешковины, бязи), прикрепленной к палке. Его волокут по траве, при этом клещи прицепляются к материи (рис. 36). Передний конец волока представляет собой раму, состоящую из двух палок толщиной 4-5 см и длиной 135 см, скрепленных с обоих концов веревками длиной 4,5-5 м. К этой раме пришивается волок. Волок ведут по участку против ветра. Для исследовательской цели можно изготовить волок меньшего размера. Несколько иного устройства волокуши, или волоки, можно использовать для вылавливания легко вспархивающих (например, бабочек лугового мотылька), прыгающих (например, цикад, саранчовых) насекомых, особенно при массовых сборах. Такой волок состоит из марлевого конусообразного мешка (длиной 5 м) с открытыми концами, передним широким и задним узким, до полуметра в диа- метре. Узкий конец завязывают до проведения сбора и развязывают после прохода изучаемого участка для высыпания насекомых в морилки. Можно вылавливать насекомых руками, эксгаустером, для чего необходимо стряхнуть насекомых к узкому концу, просунуть голову в мешок с широкого конца и плотно его затянуть во избежание потерь насекомых. 2.4.4. Ловчие конусы Для сбора массовых видов насекомых, в частности крестоцветных блошек на рассаде (но, очевидно, и других насекомых), рекомендуется (Ярошенко и др., 2006) устанавливать на травянистые растения ловчий конус. Он сворачивается из кар-
56 В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых тона или плотной бумаги. Его размеры должны быть такими, чтобы он покрывал растение. Для отлова и подсчета численности мелких насекомых конус изнутри намазывается клеем. Для отлова блошек на рассаде капусты авторы рекомендуют быстро накрыть кустик и подержать его с полминуты. Затем провести подсчет вредителей. Можно вместо одного использовать два конуса, которыми закрывают кустик рассады с боков. В этом случае на нижней стороне каждого конуса нужно сделать выемку для того, чтобы при соприкосновении конусов не повредить их краями стебель растения. 2.4.5. Ловушки для сбора антофилов Как известно, крупные цветы и соцветия предоставляют большие возможности для сбора насекомых. Нами широко используются два оригинальных эффективных метода сбора насекомых, в основном жуков и клопов, сидящих на цветущей рас- тительности, с помощью двух простых устройств. Ловушка для антофилов из пластиковой бутылки. Она изготавливается из прозрачной пластиковой бутылки емкостью 2 л и пластиковой упаковки для фотопленки или аналогичной емкости (рис. 37, А, Б). Для этого в бутылке (?) следует сделать 3 разреза, как показано на рисунке 37, Л, после чего прямоуголь- ные лопасти нужно раздвинуть в стороны так, чтобы они находились в одной плоскости. Далее пробку бутылки (?) необходимо снять, а на горлышко надеть емкость-коллектор (2), в качестве которого мы использовали обычную упаковку для фотопленки (рис. 37, А). При проведении сборов описанное устройство берется за горлышко (при этом сосуд (2) удлиняет «рукоятку», значительно облегчая работу) и подставляется открытой частью под цветок или соцветие (рис. 37, Б) с сидящими на нем насе- комыми. Цветок или ветку с цветками можно даже поместить внутрь устройства, Рис. 37. Устройство для сбора антофилов (ориг.). Обозначения см. в тексте.
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 57 после чего следует сделать несколько резких ударов пальцами по цветку. После этого жуки и другие ползающие насекомые оказываются в ловушке. Далее, раз- вернув ловушку так, чтобы емкость-коллектор (2) оказалась внизу, необходимо слегка встряхнуть конструкцию, собрав, таким образом, насекомых в коллектор. После этого емкость-коллектор (2) снимается, закрывается крышкой и заменяется на другой. Можно продолжить отлов насекомых в один коллектор (в случае обра- ботки одного вида растений), периодически ударяя по стенке бутылки и стряхивая пытающихся выползать из сосуда насекомых. Ловушка для антофилов. Ловушка (рис. 38) состоит из контейнера для на- копления беспозвоночных (?) и приспособления (2) для его подвешивания над цветками. Контейнер (?) изготовлен из полиэтиленовой пленки (выкройку см. на рис. 38) посредством термического сплавления. В результате получается пакет с открытой верхней частью и трехгранной воронкой, узкий конец которой обращен внутрь пакета. Верхняя часть пакета перевязывается веревкой, проволокой или резинкой, чтобы исключить вылет попавших в ловушку беспозвоночных. Учиты- вая легкость конструкции, для снижения негативного влияния ветра при иссле- довании антофилов в открытых биотопах, а также для поддержания постоянного объема контейнера, целесообразно к его нижнему краю прикрепить устройство (3), изготовленное из двух металлических стержней диаметром 4-6 мм, подвижно скрепленных при помощи заклепки (4). Устройство (3) прикрепляется к нижним углам контейнера (?) вершинами стержней, а также местом их скрепления. Для поддержания постоянного угла между стержнями необходимо изготовить из сталь- ной проволоки диаметром 1-2 мм специальный фиксатор (5), который крепится Рис. 38. Ловушка для антофилов (по М. Цурикову, С. Цурикову, 2001). Обозначения см. в тексте.
58 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых к заклепке (4) и имеет на вершинах зацепы в форме крючков. Если 'со стержней снять зацепы фиксатора, то ловушку можно сложить и компактно скатать в рулон, что немаловажно при ее использовании во время экспедиционных походов. При- способление (2) для подвешивания контейнера (?) может быть изготовлено из раз- личных материалов, однако испытание на практике показало, что для исследования цветков травянистых растений проще всего использовать металлический стержень длиной около 1,5 м и диаметром 8-10 мм, один конец которого заострен, а на противоположном имеется кольцо или отверстие для прикрепления контейнера (7). Погружая стержень острым концом в почву под углом, величина которого зависит от высоты исследуемого соцветия, можно оперативно устанавливать ловушку. При этом для успешного сбора антофилов необходимым условием является контакт края исследуемого соцветия с нижней поверхностью воронки. В этом случае бес- позвоночные начинают переползать с цветка на нижнюю поверхность воронки и далее внутрь контейнера, прозрачность которого дезориентирует антофилов, и они не могут найти входное отверстие. Наибольшую эффективность ловушка для антофилов показала для сбора Diptera, Thysanoptera, Coleoptera, Hymenoptera и Heteroptera. Кроме того, были отмечены попадания в ловушку Aranei, Homoptera и Lepidoptera. Наряду с изучением чис- ленности и видового состава антофильного комплекса беспозвоночных, описанная ловушка позволяет проводить исследования суточной и сезонной динамики состава и численности антофилов, в том числе энтомофагов и экономически опасных видов. Возможен и дифференцированный учет беспозвоночных, предпочитающих различ- ные цветущие растения. Отсутствие фиксирующих веществ позволяет выпускать большинство животных (в том числе редкие и полезные виды) после их учета. 2.4.6. Кошельковая ловушка для хортобионтов Описан ряд конструкций ловушек, принцип действия которых основан на стряхивании насекомых с растений в насекомосборники (Плавильщиков, 1953; Чу- вахин, 1957; Скугравы, Новак, 1961; Фасулати, 1971; Barstow, Edvards, 1983; и др.). Описанная М. Цуриковым, С. Цуриковым (2001) кошельковая ловушка харак- теризуется двумя положительными качествами: простотой изготовления и большой производительностью. Каркас ловушки состоит (рис. 39, Л, Б) из двух рам (7 и 2), изготовленных из стальной проволоки диаметром 6-8 мм, скрепленных друг с другом при помощи проволоки (3), как показано на рис. 39, Б. Высота получен- ной конструкции должна быть около 800 мм, а ширина каждой из рам — 600 мм. Горизонтальные (нижние) отрезки каркаса должны иметь полукруглые изгибы (рис. 39, Б), а на расстоянии 150 мм от основания рам (7 и 2) между их верти- кальными стойками следует натянуть резинки (4). Для изготовления карманов для накопления беспозвоночных необходимо взять прямоугольный кусок полиэтиле- новой пленки (5) размером 1300 х 800 мм и сложить его, как показано на рис. 39, В. Далее конструкцию из полиэтиленовой пленки необходимо прикрепить к
Глава 2. Сбор наземных насекомых 59 Рис. 39. Кошельковая ловушка для хортобионтов (по М. Цурикову, С. Цурикову, 2001). Обозначения см. в тексте. каркасу ловушки. При этом верхний край узкой, загнутой внутрь полосы пленки (5) нужно скрепить термическим сплавлением к резинками (4), а оба боковых края (наружных) следует прикрепить к наружным стойкам каркаса (рис. 39, Л, Б). Описанная кошельковая ловушка может быть использована для отлова насе- комых, сидящих на небольших кустарниках, полукустарниках (например, на по- лынях), куртинах растений высотой до 600 мм. Для этого необходимо отодвинуть внешние стойки рам (7 и 2) друг от друга, поднести к кусту внутреннюю часть ловушки, после чего следует быстро прижать внешние стойки друг к другу. Таким образом, куст изолируется с четырех сторон створками ловушки, при этом исклю- чается повреждение ствола, благодаря изгибам на нижних отрезках каркаса. Далее изолированный куст необходимо несколько раз встряхнуть или поворошить рукой, в результате чего беспозвоночные падают вниз и скапливаются в объемных карма- нах, расположенных в нижней части ловушки (рис. 39, Г). После обработки куста нужно раздвинуть створки ловушки и выбрать попавших в карманы животных. При отлове беспозвоночных на каком-либо участке можно обрабатывать несколько растений, а выборку материала производить по окончании работы. Кошельковая ловушка для хортобионтов показала наибольшую эффективность сбора Coleoptera, Heteroptera, Aranei и Homoptera. Кроме того, в ловушку попадали Acari, Hymenoptera, Orthoptera, Psocoptera, Neuroptera, Mecoptera, Thysanoptera и Lepidoptera.
60 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Описанная ловушка, наряду с решением ряда чисто научных задач, может быть использована для отлова энтомофагов и экономически опасных видов беспозво- ночных (кокцинеллиды, колорадские жуки и др.). В сборе первых часто возникает острая необходимость при разработке и внедрении биологических методов борьбы с вредителями. 2.4.7. Ловушка для прямокрылых Ловушка для прямокрылых предназначена прежде всего для сбора крупных прыгающих прямокрылых-хортобионтов, но может быть использована для ци- кадок и иных групп активно летающих насекомых. Ловушка (рис. 40, Л) состоит из каркаса (У), изготовленного из проволоки диаметром 6 мм, и мешка (2) из по- лиэтиленовой пленки, общая длина которого должна быть не менее 2,5 м. Каркас (1) представляет собой прямоугольник размером 1 х 3 м, согнутый поперек вдвое под уголом 70 градусов. Мешок (2) прикрепляется к каркасу (1) при помощи тер- мического сплавления (развертка и размеры указаны на рисунке 40, Б). Ловушкой нужно пользоваться следующим образом. Два человека, удерживая каркас за боковые крылья, двигаются со стороны солнца и несут ловушку, которая должна скользить нижней частью по траве (100-150 мм от уровня почвы). Прямокрылые, попадающиеся на пути движения ловушки, прыгают в стороны от темных фигур исследователей и попадают в мешок, где скапливаются в вершинном отделе, об- ращенном к солнцу. Рис. 40. Ловушка для прямокрылых (ориг.). Обозначения см. в тексте.
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 61 Рис. 41. Биоценометр Конакова и Онисимовой (из Фасулати, 1971). 2.4.8. Биоценометры и приемы работы с ними Их используют для сбора и исследования фауны насекомых на поверхности земли, преимущественно в травостое. Особенно целесообразно их применение при вылове и количественном учете подвижных насекомых — прыгающих прямокры- лых, цикадок, легко взлетающих клопов, бабочек-огневок, прыгающих жуков и т.п. Биоценометры бывают самых различных систем, но все они устроены по одному принципу. Определенный участок почвы площадью в 1, 0,5 или 0,25 м2 накрывают прибором, затем из него выбирают всех животных, подсчитывают их и пересчитывают на определенную площадь, как правило, на 1 м2. Наиболее часто используется биоценометр с мешком (рис. 41). Основой его служит квадратная рама. Длина каждой стороны по внутреннему краю — 50 см, высота — 10 см. Нижний край рамы остро отточен, верхний — отогнут наружу кантом шириной около 1 см. Снаружи к биоценометру прикреплены ручки. Пло- щадь, покрытая такой рамой, равна 0,25 м2. Вторая часть биоценометра — мешок высотой около 170 см (в зависимости от роста исследователя), без дна, диаметром немного шире рамы. Нижняя половина мешка сшита из полотна или бязи, верх- няя — из марли.
62 В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Рис. 42. Биоценометры (по Фасулати, 1971). Слева — Баскиной и Фридман, справа — Станчинского. Нижний край мешка, снабженный резинкой, надевают на верхнюю часть рамы, выше ручек, под кантом. Затем мешок перевязывают шнурком посредине, где полотно сшито с марлей. В таком виде биоценометр набрасывают на площадку. Исследователь просовывает в верхнюю часть мешка голову и руки (резина затяги- вает его на уровне груди или пояса), затем отвязывает шнурок, перехватывающий мешок, и оказывается в биоценометре (см. рис. 41). Предварительно исследователь должен взять все необходимое для сбора животных: морилку, пробирки, пинцет, кисточку и пр. Сначала вылавливают из биоценометра летающих насекомых, затем собирают их с растений и с поверхности земли. После того как все быст- робегающие животные собраны, обрезают вокруг биоценометра землю, удаляют биоценометр и продолжают обследовать изучаемую площадку. Срезанную траву переносят в банки или мешочки для детального последующе- го анализа в лаборатории. Насекомых, обнаруженных у корней растений, собирают в отдельные пробирки; выкапывают дерновину и укладывают также в банку или мешочек для детального изучения. Затем приступают к поиску животных в почве. Кроме описанного биоценометра сконструированы и применяются различные модификации: например, биоценометр Баскиной и Фридман, биоценометр Стан- чинского и др. (рис. 42). 2.4.9. Ловушки Малеза Конструкция ловушки предложена шведским энтомологом Р. Малезом (Malaise, 1937). Ловушка была усовершенствована и интенсивно использовалась для сборов
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 63 различных групп насекомых (Gressitt & Gressitt, 1962; Townes, 1962, 1972; Schauff, 2001; Фурсов, 2003; и др.). Принцип работы ловушки основан на проявлении отрицательного геотаксиса насекомых при столкновении насекомых с каким-либо барьером (вертикальной площадкой) и положительном фототаксисе многих из них. Ловушка наиболее эф- фективна для сборов паразитических Hymenoptera, Diptera, Coleoptera и несколько менее эффективна — для сборов Lepidoptera, Heteroptera, Homoptera. Некоторые группы насекомых, например, жалящие перепончатокрылые (Aculeata), почти не собираются данной ловушкой. Преимуществами ловушек Малеза являются долговременный, на протяжении одних суток или нескольких суток, стационарный сбор и качественное фиксиро- вание насекомых в спирте, сбор в одном месте, а также использование ловушки в местах, где затруднено или невозможно кошение энтомологическим сачком. До- стоинством ловушки является также простота ее установки и легкость выборки и хранения материала, выполняемые даже неспециалистами. Испытания ловушки показали ее чрезвычайно высокую эффективность для массовых и качественных сборов насекомых, причем возможность массового сбора тех насекомых, которых очень трудно собрать любыми другими методами и ло- вушками (Schauff, 2001). Недостатками ловушки являются большой расход спирта и необходимость присмотра за хорошо заметной ловушкой, а также попадание мелких Lepidoptera, которые оставляют много мелких чешуек в спиртовой пробе. Наиболее простые конструкции ловушек Малеза изображены на рис. 43. Широко используются ловушки Малеза палаточного типа (Самков, Чернышев, 1983; Самков, 1986; Darling, Packer, 1988; Полезная фауна..., 1989; New, 1991; и др.). Одна из таких конструкций, разработанных и успешно применяемых нами, описана ниже и изображена на рис. 44. Для изготовления основы ловушки лучше всего использовать мельничный газ (размеры и форма составных частей показана на рис. 44, А. Вырезанные элементы необходимо сложить, как показано на рис. 44, Б и пришить так, чтобы получилась конструкция, напоминающая палатку (рис. 44, В). Перед установкой ловушки сле- дует вкопать в почву 2 шеста (У и 2) на расстоянии 2,1 м друг от друга, причем высота шеста (У) должна быть около 2,5 м над уровнем почвы, а высота шеста Рис. 43. Схемы ловушек Малеза (по Фурсову, 2003).
64 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Рис. 44. Ловушка Малеза палаточного типа. Обозначения см. в тексте. (2) — примерно 2 м. После этого, верхние углы конструкции из мельничного газа нужно привязать к вершинам шестов (У и 2). Для большей устойчивости ловушки к нижней части шестов полезно при- крепить нижние края передней и задней частей основы (рис. 44, В). Далее к углам полученной конструкции необходимо привязать шнуры, которые, после растяжки их в стороны прикрепляются к почве колышками. Затем в наивысшей точке конструкции (рис. 44, Г) следует прорезать круглое отверстие, к краям которого нужно пришить широкую часть конусовидного рукава (3) изготовлен- ного из плотной полиэтиленовой пленки. Далее необходимо взять стеклянный или пластиковый (обязательно прозрачный) сосуд (4) с широкой горловиной, к краю которой надо прикрепить мягкую проволоку (5) для фиксации сосуда (4) к вершине шеста (У) под углом к .вертикальной плоскости. Внутрь сосуда (4) нужно поместить фиксирующее вещество, лучше всего 70%-ный спирт, после
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 65 чего свободный конец рукава (5) следует погрузить в горловину сосуда (4) как показано на рис. 44, Г. Принцип действия ловушки заключается в следующем. Насекомые случайно залетают в палатку, контактируют с мельничным газом, двигаются вверх, кон- центрируются в наивысшей точке конструкции, проникают сквозь конусовидный рукав (5) в сосуд (4). Для повышения эффективности ловушки полезно устанав- ливать ее так, чтобы сосуд (4) находился с южной стороны. В некоторых случаях, если в задачу исследования входит только сбор летающих насекомых, ловушку следует устанавливать таким образом, чтобы нижние края основы из мельничного газа находились над уровнем травостоя и с ним не могли контактировать. Во всех остальных случаях вполне допустим контакт нижней части ловушки с травосто- ем или почвой. В этом случае ползающие насекомые также будут забираться по мельничному газу в палатку, и часть из них будет попадать в фиксатор. Выборку насекомых лучше всего проводить ежедневно вечером непосредственно перед закатом солнца или сразу после заката, когда дневные насекомые уже не будут попадать в палатку. 2.4Л0. Портативная ловушка палаточного типа Ловушка (рис. 45, А, Б) состоит из основания (У), системы направляющих плоскостей (2), трехгранной воронки (5), пакета-накопителя (4), устройства для подвешивания ловушки (5) и стержня (б). Основание (У) выпиливается из фанеры и имеет форму равностороннего треугольника с размером сторон 400 мм. К углам основания (У) прикрепляются нижние углы системы направляющих плоскостей (2), изготовленной из полиэтиленовой пленки (размеры см. на рис. 45, В) при помощи термического сплавления по линиям, отмеченным пунктиром на двух фигурах (7 и 8). Верхние края системы направляющих плоскостей (2) крепятся терми- ческим сплавлением изнутри к воронке (5) (размеры и линии сплавления см. на рис. 45, Г). В верхнем углу воронки (5) имеется отверстие, в которое вставляется прозрачная пластиковая трубка (9) длиной 40 мм и диаметром 30 мм, после чего она прочно и герметично крепится к краям отверстия воронки. К трубке прикре- пляется съемный пакет-накопитель (4). Для изготовления пакета-накопителя (4) необходимо взять кусок полиэтиленовой пленки размером 170 * 200 мм, сложить ее вдвое и, проложив сверху неплавкий прозрачный материал, скрепить оба слоя по линиям (рис. 45, Д) термическим сплавлением. Далее нужно сделать разрезы по внешним краям линий сплавления, после чего узкий край полученной конструкции завернуть внутрь и расправить, чтобы получился направленный узким концом внутрь конус. В пакет помещается вставка из тонкой проволоки (У0), назначение которой — сохранение внутреннего объема. Вершинный край пакета-накопителя складывается вдвое и фиксируется скрепкой (11). Крепление пакета-накопителя с воронкой проще всего сделать энтомологической булавкой. Для этого в 20-30 мм от узкого края воронки проделываются (параллельно плоскости края) два отвер-
66 ф- В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Рис. 45. Портативная ловушка палаточного типа (по М. Цурикову, С. Цурикову, 2001, с изменениями). Обозначения см. в тексте. стия диаметром 2 мм. Далее съемный пакет надевается на воронку и прокалывает- ся булавкой на уровне обоих отверстий. Такое крепление даже во время сильного ветра, не позволяет пакету смещаться и сохраняет собранный материал. Портативная ловушка палаточного типа может быть установлена двумя ос- новными способами. Для подвешивания к веткам деревьев и т.п. в конструкции предусмотрено устройство (5), изготовленное из стальной проволоки диаметром 3 мм, которое необходимо пришить капроновой нитью к трубке (9). Для установки ловушки на почве или среди травостоя необходимо дополнить конструкцию стерж- нем (б), изготовленным из стальной проволоки диаметром 3 мм, верхний край которого упирается в трубку (9), а нижний вставляется в отверстие диаметром 4 мм, которое необходимо проделать в центре основания (У). Если стержень (б) удалить, то ловушку можно компактно сложить, что важно при ее использовании в экспедиционных походах. Принцип действия портативной ловушки палаточного типа заключается в следующем. Мигрирующие насекомые, сталкиваясь с системой направляющих плоскостей (2), двигаются вверх и попадают в пакет-накопитель (4). Портативная ловушка палаточного типа показала наибольшую эффективность для отлова Diptera, Coleoptera, Hymenoptera, Thysanoptera и Homoptera. Кроме того, в ловушку попадали Psocoptera и Acari. Отсутствие фиксирующих веществ в описанной конструкции позволяет выпускать большинство животных (в том числе
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 67 редкие и полезные виды) после их учета, если не требуется точное определение и коллекционирование. 2.4.11. «Оконные» ловушки «Оконные» ловушки представляют собой стеклянные или пластиковые «ба- рьеры», о которые ударяются насекомые во время их полета и падают, или пре- кращают полет. Используются также ловушки в виде клеевых щитов и стекол, намазанных клеем (Trojan, 1958; и др.). Считается, что оконные ловушки наиболее эффективны для сборов Coleoptera (Martin, 1977; Huizen, 1980). Однако они успешно применялись и для сборов пара- зитических Hymenoptera (Novitzky, 1956; Фурсов, 2003). Оконные ловушки могут быть различных типов — барьерные (рис. 46) и палаточной формы из прозрачного материала (рис. 47). Оконные ловушки весьма эффективны, хотя и не так часто используются в практике энтомологических исследований. Отмечено, например, что за 2 месяца (май-июнь) в условиях Московской области пятью оконными ло- вушками было собрано около 14000 экз. насекомых из 13 отрядов, причем больше всего — Coleoptera, Hymenoptera, Homoptera, Heteroptera и Psocoptera (Самков, Чернышев, 1983). Рис. 46. Оконные ловушки (по: Martin, 1977; Huizen, 1980). Рис. 47. Оконная ловушка палаточ- ной формы (по: Martin, 1977).
68 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых 2.4.12. Портативная оконная ловушка Портативная оконная ловушка (рис. 48, Л, Б) состоит из стекла (У) пятиуголь- ной формы, верхнего (2) и нижнего (5) конусов, изготовленных из полиэтиленовой пленки, пакета-накопителя (4) и сосуда (5) для сбора беспозвоночных. Стекло (У) необходимо перевязать капроновой нитью или проволокой диаметром 1-2 мм. Полученная обвязка (б) (см. рис. 48, Б) необходима для прикрепления стекла к конусам (2 и 5). С целью придания жесткости и формы конструкции к широким краям конусов (2 и 5) необходимо прикрепить кольцо из алюминиевой проволоки диаметром 2 мм. Удобнее всего это проделать при помощи термического сплавления, загнув и оплавив края конусов, так чтобы проволочное кольцо оказалось внутри канта широкого края конусов. К узкому концу конуса (2) необходимо герметично приклеить прозрачную пластиковую трубку длиной 40 мм и диаметром 20-30 мм, к которой будет крепиться съемный пакет-накопитель (4). Изготовление пакета-нако- пителя (4) подробно описано выше (см. «Портативная ловушка палаточного типа»). Конусы (2 и 3) крепятся своей широкой частью с проволочным кольцом к об- вязке (б) при помощи капроновых нитей. Узкий конец конуса (3) имеет отверстие диаметром около 90 мм, в которое на глубину 20 мм снизу вставляется пласти- ковый сосуд для сбора беспозвоночных (5). Сосуд (5) изготавливается из двух- литровой пластиковой бутылки (рис. 48, В), которую следует разрезать поперек в верхней четверти (как показано на рис. 48, Г). Затем в полученную емкость (7) нужно вставить воронку (S) (верхняя часть пластиковой бутылки) узким концом внутрь. Крепление воронки (S) с емкостью (7) производится при помощи прово- локи (9) диаметром 1-2 мм. Для этого необходимо раскалить на огне проволоку (9) и прожечь отверстие сквозь стенки сосуда и воронки, параллельно плоскости верхних краев конструкции в 10 мм от края (рис. 48, Г). Внутрь сосуда помеща- ется вставка (рис. 48, Д), состоящая из двух горизонтальных пластиковых пере- городок (10 и 11), разделяющих внутренний объем сосуда на три равные части. Края перегородок должны иметь боковые стенки высотой 5-10 мм, для того, чтобы беспозвоночные не скапливались у места соприкосновения перегородок (10 и 11) с внутренней поверхностью емкости (7) и при извлечении перегородок не были бы раздавлены. В верхней перегородке (10) необходимо проделать несколько отвер- стий диаметром 4 мм, а в нижней (И) — 2 мм. Обе перегородки нужно скрепить в центре стержнем (12), изготовленным из алюминиевой проволоки диаметром 2-3 мм. Стержень (12) предназначен как для извлечения вставки во время осмотра ловушки, так и для фиксации перегородок (10 и И) на определенном расстоянии друг от друга. Отверстия в перегородках (10 и И) служат для разделения насе- комых по величине (сепарирования): крупные виды находятся в верхней части сосуда, средних размеров проникают в среднюю часть, а самые мелкие доходят до дна и там концентрируются. На дно емкости (7) и в каждый из его отделов необходимо поместить сложенные «гармошкой» полоски бумаги или картона, в складках которых мелкие беспозвоночные могут укрываться от хищников.
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 69 Рис. 48. Портативная оконная ловушка (по М. Цурикову, С. Цурикову, 2001). Обозначения см. в тексте.
70 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Для установки портативной оконной ловушки (рис. 48, Е) конструкцию не- обходимо дополнить капроновой нитью (73), прикрепленной к краям конуса (2) так, чтобы с ее помощью можно было подвешивать ловушку в местах исследо- вания. Универсальным приспособлением для установки ловушки может служить металлический стержень (74) длиной около 1,5 м и диаметром 8-10 мм, один конец которого заострен, а на противоположном имеется крюк для подвешивания ловушки. Погружая стержень (74) острым концом в почву под углом около 80° по отношению к горизонтальной поверхности, можно оперативно устанавливать ловушку. Летающие насекомые, сталкиваясь со стеклом (7), либо падают вниз и попа- дают в сосуд (5), либо ползут по стеклу вверх, переходят вначале на внутреннюю поверхность конуса (2), далее через трубку попадают в пакет-накопитель (4). Учеты собранного данной ловушкой материала лучше всего проводить ежедневно, однако допустимо увеличение интервала между учетами до 3-5 суток. Наибольшую эффективность портативная оконная ловушка показала для отло- ва Coleoptera, Diptera и Hymenoptera. Кроме того, в ловушку попадали Heteroptera, Homoptera, Psocoptera и Thysanoptera. Наряду с исследованием видового состава, численности и направлений суточ- ных и сезонных миграций насекомых, описанная ловушка может быть использо- вана в сельском хозяйстве для контроля за массовыми миграциями по воздуху энтомофагов и экономически опасных видов беспозвоночных. 2.4.13. Сетчатая мухоловка Простая сетчатая или проволочная мухоловка представляет собой деревянный каркас, обтянутый проволочной или капроновой сеткой, но без дна, со съемной крышкой, обтянутой такой же сеткой. Снизу мухоловка имеет короткие ножки высотой примерно 2,5 см. Такая мухоловка устанавливается возле мусорных куч, экскрементов и т.п. Внутрь мухоловки помещается приманка из подгнивших пище- вых продуктов, трупика мелкого животного (мыши), рыбы, различных бродящих веществ (патоки, скисшего молока, кваса, пива и т.п.). С помощью сетчатой му- холовки за один день можно выловить до 10-15 тыс. мух (Ярошенко и др., 2006). 2.4.14. Ловушка для мух и ос Ловушка для мух и ос предназначена для сбора (при необходимости — уничто- жения) летающих синантропных насекомых. Ловушка (рис. 49, А, Б) изготавлива- ется из цилиндрического сосуда (7), к примеру, пластиковой бутылки емкостью 1, 5 или 2 литра. В 70 мм от уровня дна сосуда (7) необходимо проделать 2 отверстия диаметром 15 мм, отстоящие друг от друга на расстоянии 20 мм. С противопо- ложной стороны бутылки в 70 мм от горловины нужно проделать такие же 2 от- верстия (рис. 49). В полученные отверстия следует погрузить пластиковые труб-
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 71 Рис. 49. Ловушка для мух и ос (ориг.). Обозначения см. в тексте. ки (2) диаметром 15 мм и длиной 30—40 мм так, чтобы наружу выходило 3-5 мм длины трубки. На дно сосуда (7) нужно поместить приманку: раствор варенья, пиво и т.п., после чего ловушку можно устанавливать у жилых построек или на скотных дворах. Большая эффективность ловушки для мух и ос обусловлена распространением запаха привлекающих веществ, благодаря возникающему сквозняку между нижни- ми и верхними отверстиями. Насекомые проникают внутрь ловушки, а выбраться наружу не могут, дезориентированные прозрачностью стенок сосуда (рис. 49, В). Если уничтожение животных не требуется, над приманкой необходимо установить сетку (3), не позволяющую насекомым утонуть или приклеиться к липкой при- манке. Для этого можно отрезать дно сосуда (7), накрыть его сеткой и вставить в верхнюю часть сосуда. 2.4.15. Комбинированные ловушки — барьерные, оконные и Малеза Комбинированная барьерная ловушка создается путем сочетания особенностей ловушки Малеза и «оконной» (рис. 50) (Masner, Goulet, 1981). Ловушка представ- ляет собой наклонный навес (крышу) из прозрачного материала, закрывающую вертикально установленную оконную ловушку. Насекомые собираются живыми на вертикальном «барьере» оконной ловушки и на «навесе». Ловушка имеет высоту 1,3 м, длину 3,0 м и ширину навеса около 1,2 м.
72 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Ловушка предназначена для сборов активно летающих днем насекомых, в осо- бенности Coleoptera и Hymenoptera. Для повышения эффективности сборов ловуш- ки ее вертикальный «барьер» обрабатывается инсектицидом (Masner, Goulet, 1981). Существуют и другие типы комбинированных ловушек (Фурсов, 2003). 2.4.16. Ловушка для сбора мигрирующих насекомых-хортобионтов и изучения их миграций Для изучения хортобионтов энтомологами широко используются ловушки палаточного типа (Darling, Packer, 1988; Полезная фауна..., 1989; New, 1991; и др.). Известны примеры слежения за миграциями летающих насекомых при по- мощи установки барьера из металлической сетки (Walker, 1985, 1989), а также с использованием клеевых щитов и стекол, покрытых клеем (Буракова, 1934; Trojan, 1958; Бегляров, Танский, 1959; и др.). Среди недостатков перечисленных ловушек можно назвать сложность изготовления и установки, применение дорогостоящих материалов, а также непригодность для дальнейшего исследования части сборов. Предлагаемая нами конструкция ловушки для изучения миграций хортобион- тов лишена перечисленных недостатков. Отсутствие фиксирующих веществ по- зволяет выпускать большинство животных (в том числе редкие и полезные виды) после их учета. Ловушка для изучения миграций хортобионтов (рис. 51, A-В) по принципу действия относится к барьерным ловушкам и состоит из полиэтиленового пяти- угольника (7) (размеры см. на рис. 51), прикрепленного к трем металлическим стержням диаметром 10 мм, центральный из которых (2) имеет длину 900 мм, а два боковых (3) — по 600 мм. На верхнюю половину пятиугольника (7) с обеих сторон накладываются полиэтиленовые треугольники (4) (размеры см. на рис. 51), после чего термическим сплавлением скрепляются их верхние края. Таким образом, получается конструкция барьерной ловушки, имеющей 2 треугольных кармана с открытыми широкими нижними краями. Для фиксации карманов в открытом положении к центральному стержню (2) на уровне нижних краев полиэтиленовых треугольников (4) прикрепляются специальные распорки
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 73 Рис. 51. Ловушка для сбора мигрирующих насекомых-хортобионтов (по М. Цури- кову, С. Цурикову, 2001). Обозначения см. в тексте. (5), изготовленные из проволоки диаметром 2-3 мм. Карманы предназначены для направления ползущих вверх беспозвоночных к вершине ловушки. В вершинных углах треугольников (4) проделываются отверстия, в которые вставляются про- зрачные воронки (6) из прочного материала (лучше всего подходят горлышки от пластиковых бутылок). Далее воронки герметично крепятся к краям отверстий при помощи термического сплавления. К воронкам сверху прикрепляются пакеты-на- копители (7). Изготовление пакета-накопителя (7) подробно описано ранее (см. «Портативная ловушка палаточного типа»). Ловушку для изучения миграций хортобионтов лучше всего устанавливать вдоль границы двух биотопов (опушка-лес, поле-степь и т.п.). Наряду с исследованием видового состава, численности и направлений суточ- ных и сезонных миграций хортобионтов, описанная ловушка может быть исполь- зована в сельском хозяйстве для контроля за массовыми миграциями экономически опасных видов беспозвоночных. 2.4.17. Методика отлова мелких летающих насекомых С мая по август отличные результаты дают сборы насекомых перед заходом солнца. В этот период многие насекомые, особенно жуки из семейств Crypto- phagidae, Latridiidae и Staphylinidae совершают расселительные миграции по воз- духу. Необходимо выбрать место рядом с деревянными постройками, на опушках, у берегов рек и т.п., там, где наблюдаются максимальные миграции насекомых. Не- обходимо, также, чтобы в этом месте был виден закат солнца. В таком месте сле- дует установить заграждение, изготовленное из темной ткани, размером 2 х 1,5 м (можно попробовать использовать ткань и других размеров). Она прикрепляется вертикально к двум шестам (рис. 52). Исследователь должен стоять в 4-5 м от
74 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Рис. 52. Расположение исследователя при отлове мелких летающих насекомых (ориг.) заграждения и смотреть в сторону заката. В этом случае, даже самые маленькие жуки (и другие насекомые) очень хорошо видны на фоне темного заграждения, т.к. лучи заходящего солнца создают ореол вокруг летающих насекомых. Отлавливать жуков следует воздушным сачком. Начинать сбор насекомых наиболее предпо- чтительно за 1 час до заката. 2.4.18. Всасывающие ловушки Всасывающие ловушки используются достаточно широко, хотя и в меньшей степени, чем другие типы. Чаще всего они используются для сбора насекомых с поверхности растений или в углублениях, а также во время лёта на различной высоте, преимущественно — насекомых, переносимых воздушными потоками. Принцип их действия заключается в вакуумном захвате и фильтрации воз- душной массы. Всасывающие ловушки широко используют в Европе и Америке для мониторинга тлей. Конструкция мощной всасывающей ловушки разработана на Ротамстедской опытной станции (Англия). Она приводится в действие электро- двигателем мощностью 0,8 киловатт и имеет высоту 12,2 м. Всасывающие ловушки для индивидуального пользования изготавливаются не- больших размеров. В литературе описан ряд устройств, принцип действия которых основан на всасывании беспозвоночных. Известно несколько типов портативных электропылесосов (Johnson et al., 1955; Фасулати, 1971; Wairhouse, 1980; Summers, Garrett, Zalom, 1984), а также пылесос работающий от бензинового двухконтакт- ного двигателя (Holtkamp, Thompson, 1985).
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 75 Любая из конструкций всасывающих ловушек обязательно включает в качестве центрального звена вентилятор. Количество их модификаций весьма значительно. Так, для сбора насекомых внутри крон деревьев и густого кустарника используется приспособление, состоящее из автомобильного пылесоса, соединенного с легкой пластмассовой трубкой. На выходе из трубы имеется сопло с сетчатым фильтром, который задерживает насекомых при всасывании воздуха через трубу. Питание электродвигателя пылесоса — от автомобильного аккумулятора, установленного на двухколесной ручной тележке. Одна из эффективных конструкций клейкой ловушки-вентилятора была пред- ложена К. Такаги (Takagi, 1974, 1981) для сборов мелких перепончатокрылых в условиях плодовых садов (рис. 53). Ее описание приводится здесь по Фурсову (2003). Ловушка представляет собой вентилятор, помещенный в прозрачную пластико- вую коробку, которая подвешивается на стойке вне помещения. Вентилятор может работать от электрического тока напряжением 12, ПО или 220 вольт. К стойке, на которой подвешивается коробка с вентилятором, закрепляется также держатель квадратной формы, на который кладется сменная пластиковая пластина, намазыва- емая липким клеем (растворимым в ацетоне, толуоле или спирте). В качестве клея можно использовать долго сохнущий клей для обмазывания деревьев от вредите- лей, но можно использовать и обычное машинное масло (Brigham, Smichek, 1991). Желательно использовать клей очень мягкой консистенции (подобно вазелину), который не высыхает длительное время и не повреждает насекомых при снятии их с клея. Коробка с вентилятором подвешивается на стойке на любой сменной высоте (от 50 см до 1,5 м от земли) и на расстоянии 10-15 см от держателя с клейкой пластиной. Рис. 53. Ловушка-вентилятор Такаги (по Фурсову, 2003).
76 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Принцип работы ловушки основан на засасывании вентилятором воздуха вместе с мелкими насекомыми («воздушный планктон») и их приклеивании на горизонтальной пластине с липким клеем. Мелкие насекомые (0,2-3 мм) свободно, без повреждений пролетают через вентилятор, притягиваются потоком воздуха с боков от пластины и приклеиваются к пластине. Насекомые аккуратно снимаются с мягкого клея иголкой и отмываются от него в растворителе (ацетон, толуол, др.), а затем переносятся для хранения в пробирки с 70-90% этиловым спиртом. Круп- ные насекомые (более 5 мм) избегают ловушки или могут оторваться от клейкой пластины. Вентилятор может работать вне помещения круглосуточно, обеспечивая сбор в разное время суток. Преимуществом ловушки является возможность длительной работы в течение суток и пассивный сбор самых хрупких и трудно собираемых мелких насекомых. Недостатком ловушки является необходимость в электрическом токе и длинных электропроводах. Ловушка эффективна для сборов мелких Hymenoptera, мелких Diptera, трипсов (Thysanoptera), крылатых тлей (Aphidoidea). В сборах встречаются насекомые и других групп (Coleoptera, Homoptera). 2.4.19. Насос-ловушка для скрытноживущих беспозвоночных Насос-ловушка была разработана М.Н. Цуриковым для исследования беспоз- воночных, живущих в норах, пещерах, трещинах, углублениях скал и т.п. Основа насоса-ловушки (рис. 54) представляет собой металлическую или пластиковую трубку (7) длиной 320 мм и диаметром 25 мм. С целью создания пониженного давления в трубке (7) необходимо изготовить поршень, для чего следует взять металлическую или пластиковую трубку (2) длиной 270 мм и диа- метром 15 мм, на оба конца которой необходимо надеть и герметично приклеить короткие (длиной 15 мм) обрезки резиновых трубок (4 и 5) с внешним диаметром около 23 мм. При этом полученная конструкция (поршень) должна вставляться в трубку (7) и двигаться по ее полости с небольшим трением. Для сбора насекомых необходимо сделать накопитель, который состоит из куска мельничного газа (6) размером 100 х 100 мм и толстостенной резиновой трубки (7) длиной 25 мм, наружным диаметром 24 мм, а внутренним — 8 мм. Центральную часть куска мельничного газа необходимо приложить к вершине трубки (7), а затем пальцем погрузить его вглубь на 30 мм. Полученный таким образом мешочек следует за- фиксировать погружением конца трубки (7) в трубку (7) на глубину до 10 мм. Во внутреннее отверстие трубки (7) нужно вставить конец металлической трубки (8) (длина 150 мм, диаметр 8 мм) или конец пластиковой либо резиновой гибкой трубки (9) таких же размеров. Проводить сборы животных при помощи насоса-ловушки для скрытоживущих беспозвоночных необходимо следующим образом. Погрузив трубку (2) в трубку (7) так, чтобы между обрезком трубки (5) и трубкой (7) оставалось расстояние
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 77 Рис. 54. Насос-ловушка для скрытноживущих беспозвоночных (по М. Цурикову, С. Цурикову, 2001). Обозначения см. в тексте. 15 мм, необходимо открытую часть трубки (2) зажать между первыми фаланга- ми указательного (70) и среднего (77) пальцев левой руки. При этом подушечки пальцев должны упереться в передние края обрезка трубки (5). Затем подушечкой первой фаланги большого пальца левой руки (72) нужно герметично закрыть от- верстие в трубке (2) (рис. 54, В). Далее трубку (5) необходимо приблизить к объ- екту исследования, после чего левой рукой следует потянуть за обрезок трубки (5), а правой при этом следует фиксировать трубку (7). Образованный таким образом в трубке (7) вакуум создает всасывающую струю воздуха, благодаря которой бес- позвоночные попадают в мешочек (6) (рис. 54, Б). Используя трубку (5), можно отлавливать животных в щелях и прямых отверстиях, в то время как для нор и пещер с извилистыми ходами лучше подходит гибкая трубка (9). Для извлечения материала, собранного насосом-ловушкой, необходимо отсоединить толстостенную трубку (7) от трубки (7), а мешочек из мельничного газа (6) вытащить и поместить в полиэтиленовый пакет, внутри которого можно разбирать материал, не опасаясь потери наиболее активных и прыгающих видов беспозвоночных. Извлекать со- бранных животных не обязательно после каждого движения поршня. Напротив, из одной или нескольких трещин необходимо отсасывать животных несколько раз подряд. При этом после проведения каждого всасывания следует пальцем правой руки закрывать отверстие в трубке (5 или 9), а трубку (2) при этом нужно погру- зить в трубку (7). В этот момент отверстие в трубке (2) необходимо открывать, чтобы быстро удалить через него воздух из трубки (7). Описанная ловушка может быть использована для сбора представителей большинства групп наземных беспозвоночных, размеры которых не превышают диаметр всасывающей трубки. В порах и трещинах скал из известняка нами были
78 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых отловлены представители Hymenoptera, Collembola, Aranei и Acari, а в норах мле- копитающих — Diptera, Acari и Coleoptera. 2.4.20. Устройство для улавливания мелких насекомых из воздуха Данное устройство занимает особое место среди всех методов сбора, т.к. здесь используется солнечная энергия для создания засасывающей струи воздуха. Основу устройства (рис. 55) оставляет прозрачная пластиковая труба (7) длиной 1 м и более и диаметром 70 мм (в проверенном на практике варианте). Сверху в трубу (7) следует поместить согнутую вдоль полоску жести (2), окрашенную в черный цвет. Крепление трубки (7) и полоски жести (2) производится спицей (3), как показано на рисунке. Снизу к трубе (7) нужно приложить кусочек мельничного газа (4), после чего не- обходимо прозрачную пластиковую воронку (5), высотой 120-150 мм погрузить в трубу на глубину 10 мм как показано на рис. 55. В узкое отверстие описанной воронки целе- сообразно поместить пластиковую прозрач- ную трубочку (6) длиной 70 мм и диаметром 25 мм (в проверенном варианте) так, чтобы ее нижний конец слегка выступал наружу. Полученную конструкцию следует подве- шивать на ветки деревьев или специально установленные шесты при помощи крюка (7), изготовленного из проволоки диаметром 3 мм. Описанное устройство предназначено для всасывания мелких насекомых, но может быть использовано и для сбора летающей пыльцы, спор грибов и прочих пылевидных частиц. Его принцип действия заключается в следующем. При попадании солнечных лучей на полоску жести (2) последняя нагре- вается и создает восходящий поток воздуха, благодаря чему в трубочке (6) образуется мощная засасывающая струя воздуха. Та- Рис. 55. Устройство для улавливания мелких насекомых из воздуха (по патенту № 46147). Обозначения см. в тексте.
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 79 ким образом, все объекты, находящиеся в воздухе вблизи трубочки (6) попадают внутрь воронки (5). Если конструкцию увеличить в размерах, то необходимость в солнечном свете будет не столь велика, так как будет возникать «сквозняк», бла- годаря которому сбор насекомых можно проводить круглосуточно. Особенно эф- фективны сборы при установке ловушки над навозом, гниющими растительными остатками и иными субстратами, привлекающими мелких летающих насекомых. 2.5. Методы сбора дендробионтов 2.5.1. Сбор насекомых в кроне деревьев Существующие методы исследования энтомофауны крон деревьев, как прави- ло, основываются на визуальном осмотре при помощи бинокля, кошении сачком с длинной ручкой, стряхивании насекомых на кусок полотна (Плавильщиков, Кузне- цов, 1952; Фасулати, 1971), а также использовании различных ловушек (см. ниже). При сборе насекомых сачком его обруч следует делать большего диаметра, чем для обычного сачка для кошения (для повышения уловистости), и укреплять на длинной прочной ручке длиной 3-5 метров (подробнее см. выше, раздел «Сачок для сбора насекомых в кроне деревьев и кустарников»). При этом результат сбора сачком в кроне деревьев во многом зависит от физических возможностей сборщи- ка. Применяются сачки с привязанной к вершине конусовидного мешка длинной веревкой для стряхивания в мешок насекомых с ветвей (см. выше, раздел «Сачок для сбора насекомых в кроне деревьев и кустарников»). Используются и сачки с укрепленным над мешком металлическим конусом, обтянутым полиэтиленовой пленкой. Конус с помощью пружины и шнура, тянущегося вдоль рукоятки сачка, захлопывается, заключая между мешком сачка и конусом ветку дерева, с которой внутрь мешка стряхиваются насекомые (Инструкция по сбору, хранению и пере- сылке насекомых, 1979). Довольно удобными для сбора насекомых в кроне деревьев оказываются складные сачки, изготовленные из складной пластмассовой удочки. Такой сачок удобен при транспортировке и легок. Однако работать им высоко в кроне несколь- ко затруднительно из-за его большой гибкости. Простым и эффективным способом исследования беспозвоночных крон де- ревьев является применение для стряхивания сачка для филлобионтов (рис. 56). Сачок (рис. 56, А, Б) состоит из обруча (7) диаметром 1 м, мешка (2) изго- товленного из прочного материала (например, нейлона), деревянной рукоятки (3) длиной 3-5 м (в зависимости от высоты до исследуемого участка кроны дерева) и металлического крюка (4). К обручу (7) пришивается мешок (2) имеющий длину 1,5-2 м. Рукоятку (3) следует продеть сквозь трубку крепления обруча так, чтобы конец рукоятки выступал на 150 мм по отношению к центральной части обруча сачка (7), после чего конструкция скрепляется при помощи шурупа. На конец рукоятки (3) прикрепляется крюк (4) как показано на рисунке.
80 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Рис. 56. Сачок для филлобионтов (по Цурикову, 20066). Обозначения см. в тексте. Используется сачок следующим образом. На исследуемую ветку дерева не- обходимо надеть мешок (2), после чего крюк (4) накидывается на ветку и про- изводится серия резких толчков. При этом нет необходимости тратить усилие на удержание сачка (он надежно прикреплен к ветке). После окончания стряхивания насекомых сачок нужно аккуратно снять с ветки и разобрать его содержимое. В литературе существуют описания некоторых механических ловушек для забора проб в кроне деревьев (Menzies, Hagley, 1977), а также ловушек, принцип действия которых заключается во всасывании насекомых (А.с. 1194346; Kennard, Spenser, 1955; Wairhouse, 1980; Holtkamp, Thompson, 1985). Среди недостатков перечисленных ловушек можно указать на невозможность проведения непрерыв- ных исследований динамики численности насекомых обитателей кроны. Представленная здесь конструкция кроновой ловушки позволяет вести кру- глосуточные непрерывные эколого-систематические исследования филлобионтов в течение всего сезона и, таким образом, контролировать их состав и числен- ность. В отличие от метода кошения исключены повреждения беспозвоночных. Фиксирующие вещества в пакетах-накопителях не применяются, что позволяет выпускать большинство животных после их учета. Разбор материала происходит в лаборатории, что значительно облегчает его обработку и повышает точность исследований, так как некоторые экземпляры из попадавших в съемные пакеты беспозвоночных (клещи, отдельные виды Hymenoptera), крайне трудно обнару- жить из-за их мелких размеров (до 0,2 мм). Простота технологии замены паке- тов-накопителей дает возможность оперативно обслуживать большое количество кроновых ловушек.
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 81 Основа кроновой ловушки (рис. 57) состоит из жесткого каркаса (7), кото- рый лучше всего сделать из проволоки диаметром 5-8 мм. В случае установки ловушки на небольшой высоте и в защищенном от ветра месте лучше исполь- зовать легкие каркасы, изготовленные из тонких стволов орешника или других подходящих пород деревьев. Применение легких каркасов на большой высо- те нередко приводит к нарушению чистоты эксперимента, так как из-за ветра возможны смещения ловушки и даже ее перевороты. На каркас накладывается полиэтиленовая пленка и закрепляется при помощи термического сплавления. Получается широкий, но короткий конус с сильно смещенной к одному из кра- ев основания вершиной. Диаметр основания должен быть равен 113 см, чтобы площадь его составила 1 м2. Узкая вершина конуса имеет отверстие диаметром 40 мм, к краям которого необходимо герметично прикрепить воронку или трубку длиной 50-60 мм из прозрачного, крепкого материала (лучше всего горлышко от пластиковой бутылки). К воронке (трубке) прикрепляется съемный пакет-на- копитель (2), подробное описание которого приведено ранее (см. «Портативная ловушка палаточного типа»). Ловушка прикрепляется к капроновой нити (3), протянутой через два кольца (4 и 5), одно из которых крепится у поверхности почвы, а другое — на высоте 15-20 м, причем это кольцо должно быть прикреплено к стволу или толстой ветке дерева выше исследуемого участка кроны. К верхнему кольцу желательно доба- вить пружину (6) для амортизации, так как в ветреную погоду из-за раскачивания дерева может происходить смещение ловушки, а также возможен разрыв нити. Для доставки ловушки на поверхность кроны дерева и опускания вниз для замены пакетов-накопителей используется принцип сходный с принципом поднятия флага при помощи 2 блоков, роль которых в данной конструкции заменяют кольца, так как они более надежны при эксплуатации ловушки. После установки ловушки Рис. 57. Кроновая ловушка (по М. Цурикову, С. Цурикову, 2001). Обозначения см. в тексте.
82 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых на поверхности кроны дерева необходимо зафиксировать ее в этом положении, используя зажим (типа бельевой прищепки). Для этого к нижнему кольцу подъ- емной системы нужно прикрепить зажимом капроновую нить. Кроновую ловушку необходимо крепить к капроновой нити таким образом, чтобы вершина конуса с пакетом-накопителем была в самой высокой точке, с тем, чтобы беспозвоночные- филлобионты, при контакте с внутренней поверхностью ловушки двигались вверх Рис. 58. Ловушка для изучения вертикального распределения филлобионтов (по Цурикову, 20066). Обозначения см. в тексте.
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 83 и попадали в накопитель. Замена пакетов-накопителей может производиться как ежедневно, так и через 2-5 суток. Испытание на практике показало, что дальней- шее увеличение интервала между учетами приводит к потере части собранного материала из-за постройки пауками в районе входного отверстия сети. В случае использования ловушки вблизи населенных пунктов, необходимо нижнее кольцо подъемной системы крепить не у поверхности почвы, а на высоте 2-3 м с тем, чтобы уменьшить риск разрыва нити домашними животными или местными жи- телями. В этом случае для замены пакетов-накопителей придется использовать легкую переносную лестницу. Для изучения вертикального распределения филлобионтов внутри кроны де- рева можно применять специальную ловушку (рис. 58). Ловушка (рис. 58, Л, Б) состоит из шеста (7), трех квадратных кусков стекла (2), крюка (3) и шести Г-образно изогнутых гвоздей (4). Длина шеста (7) и разме- ры стекол (2) могут быть различными в соответствии с поставленными задачами. В апробированном варианте длина шеста (7) составляла 2 м, а размеры кусков стекла (2) — 200 х 200 мм. К одному из концов шеста (7) следует прикрепить крюк (3) с диаметром закругленной части около 100 мм, как показано на рис. 58, А. Куски стекла (2) прикрепляются на равных расстояниях друг от друга (рис. 4) при помощи гвоздей (4). Используется ловушка следующим образом. Обе поверхности стекол (2) по- крывают тонким слоем энтомологического или иного клея, особенностями кото- рого должны быть слабая текучесть, медленное высыхание и растворимость (для аккуратного отделения прилипших насекомых). Подготовленную ловушку следует повесить при помощи крюка (3) в кроне исследуемого дерева. Чтобы исключить падение ловушки из-за порывов ветра, для крепления необходимо использовать прочные и достаточно толстые ветви деревьев. Через определенные интервалы времени ловушку нужно снимать, стекла (2) отсоединять от шеста (7), для чего достаточно отогнуть в стороны изогнутую часть гвоздей (4), а прилипших насе- комых исследовать в лаборатории. Полезно изготовить несколько наборов стекол (2), что позволит вести непре- рывные исследования, периодически меняя отработанные стекла на новые. При изучении филлобионтов крон берез (заповедник «Галичья гора») при помощи дан- ной ловушки были обнаружены существенные различия в численности и видовом составе насекомых, отловленных верхним и нижним стеклами. 2.5.2. «Стряхивающие» ловушки Имеется много модификаций «стряхивающих» ловушек, например, ловушка- зонтик (рис. 59). Одна из конструкций стряхивающей ловушки польского энтомолога С. Но- вицкого (Novitzky, 1956; Фурсов, 2003) для сборов Microhymenoptera изображена на рис. 60.
84 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Рис. 59. Ловушка-зонтик (по Фасулати, 1971). Рис. 61. Стряхивающее устройство (по Фур- сову, 2003). Рис. 60. «Стряхивающая» ловушка Новицкого (по Фурсову, 2003). Принцип работы «стряхиваю- щих» ловушек состоит в механи- ческом стряхивании насекомых с ветвей растений (кустов, дере- вьев) внутрь ловушки-поддона. Стряхиваемых в ловушку (под- дон) мелких насекомых выбирают кисточкой или эксгаустером. Достаточно простым в изго- товлении является стряхивающая ловушка-экран плоской формы (рис. 61) (Martin, 1977; Фурсов, 2003). Плоский экран закрепляется с помощью распорок по углам. Стряхиваемых на экран на- секомых выбирают кисточкой или эксгаустером. 2.5.3. Сбор насекомых на стволах деревьев и стволовые ловушки При исследовании энтомофауны деревьев и кустарников, помимо окашивания кроны деревьев, необходимо провести тщательные сборы на стволах. На них, а также под лишайниками, покрывающими стволы, под корой, в трутовиках и под ними обитает целый мир насекомых, образованный представителями разных от- рядов. Одни насекомые проходят на стволах весь жизненный цикл, ведя открытый или скрытный образ жизни, другие — только находится в укрытиях на стволах в диапаузирующем состоянии. Вначале стволы деревьев осматриваются снаружи, и эксгаустером вылавли- ваются бегающие по ним насекомые. Иногда днем на стволах обнаруживаются сидящие со сложенными крыльями ночные виды бабочек — совки (например, голубая и малиновая орденские ленты), пяденицы и др. Их отлавливают сачком
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 85 или накрывают банкой, а затем осторожно снимают с дерева. Затем осматривают- ся участки под отстающими пластинками коры и лишайников, особенно старых деревьев. Для сбора некоторых групп насекомых, например жуков-короедов, следует собирать обломки ветвей, упавшие на землю, и осматривать их. Обязательно и очень тщательно надо обследовать пни и недавно поваленные деревья. Под их отстающей корой очень много насекомых из разных системати- ческих групп. Для облегчения отделения коры пользуются туристическим топо- риком или большим ножом. Трухлявые пни, а также почву под ними, желательно расковырять и тщательно рассмотреть остатки, в которых могут быть личинки и имаго жуков-рогачей, пластинчатоусых и других насекомых. Не следует упускать из виду свежеспиленные стволы деревьев в процессе лесозаготовок, а также поленницы недавно заготовленных дров. После осмотра стволов и сборов под корой следует взять с собой часть кусков коры на стационар или стоянку и еще раз их пересмотреть, выбивая из коры живое население на светлую бумагу. При этом удастся обязательно собрать некоторое количество насекомых. Сборы на стволах одних и тех же деревьев или соседних следует повторять по двум причинам: во-первых, не всех нужных насекомых удается собрать с первого раза, а, во-вторых, развитие насекомых идет постоянно, и те виды, которые вна- чале находились, например, в фазе яйца, через некоторое время будут находиться в фазе личинки и т.д. Методы ручного сбора насекомых на стволах деревьев, как и в различных дру- гих стациях, очень подробно описаны основателем коллекции полужесткокрылых насекомых в Зоологическом институте РАН А.Н. Кириченко (1957). Описанные им методы сбора применимы ко многим группам насекомых. В литературе описана ловушка для дендробионтов (Stamey, Raff, 1988), состоя- щая из направляющих алюминиевых полос, плотно прикрепленных к стволу дере- ва, и стеклянной банки для сбора жуков, а также фотоэклектор для дендробионтов (Vidlicka, 1989). Главным недостатком ловчих колец и поясов является то, что выбор из них материала сопряжен со значительными потерями беспозвоночных, особенно мелких и наиболее подвижных. Беспозвоночные, собранные клеевыми кольцами, как правило, непригодны для дальнейшей обработки, а ловушка для дендробионтов эффективна только для сбора жуков и клопов, доля которых среди обитателей стволов сравнительно невелика. Два типа стволовых ловушек, предназначенных для отлова насекомых, мигри- рующих по стволу дерева, соответственно вверх и вниз, разработанные М.Н. Цу- риковым и С.Н. Цуриковым (2001), лишены этих недостатков. Для сбора и изучения насекомых, передвигающихся вверх по стволам дере- вьев, с успехом может быть использована ловушка, изображенная на рис. 62. Ловушка состоит из полосы ткани (7), плотно обтягивающей ствол дерева, конуса (2), и пакета-накопителя (3). Верхний край ткани срезан под углом 30°
86 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Рис. 62. Стволовая ловушка (по М. Цурикову, С. Цурикову, 2001). Обозначения см. в тексте. к горизонтальной плоскости. К этому краю прикрепляется конус (2), изготов- ленный из ткани или полиэтиленовой пленки. К нижнему канту конуса (2) для поддержания определенной формы крепится проволока (4) диаметром 2-3 мм. В верхней точке конструкции прорезано отверстие, в которое вставляется про- зрачная воронка (5) из прочного материала (лучше всего для этой цели подходит горлышко от пластиковой бутылки). Нижний край воронки (5) герметично кре- пится к краям отверстия, а сверху к воронке прикрепляется пакет для накопле- ния беспозвоночных (3), подробно описанный ранее (см. «Портативная ловушка палаточного типа»). Нижний край полосы ткани (7) герметично соединяется пластилином с корой дерева так, чтобы беспозвоночные, ползающие по стволу, попадали с коры во внутреннее пространство ловушки, а оттуда через воронку (5) в пакет-накопитель (3). Стволовую ловушку можно монтировать непосредственно на стволе дерева, последовательно прикрепляя все детали конструкции. Нами разработана моди- фикация ловушки, которую можно быстро устанавливать и снимать, причем даже на стволы различного диаметра. Для этого варианта стволовой ловушки берется кусок ткани (6) (размеры см. на рис. 62, 5), а также кусок ткани или полиэтилено- вой пленки (7) (размеры см. на рис. 62, Г). Верхние края этих кусков герметично сшиваются (на рисунке эти места заштрихованы), а нижний край куска (7) заво- рачивается и пришивается так, чтобы получилась узкая полость вдоль всего края. Сквозь эту полость необходимо протянуть проволоку (S) диаметром 2 мм. При этом ее концы должны выступать наружу не менее чем на 20 мм, так как их не- обходимо согнуть, чтобы получились крючки, предназначенные для оперативного
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 87 скрепления проволоки в кольцо после установки ловушки на стволе дерева. Далее к конструкции прикрепляется воронка (5), как описано выше. К вершине ловушки необходимо пришить две капроновые нити (9) длиной 1 м. Установка стволовой ловушки происходит следующим образом. К стволу ис- следуемого дерева вначале прикрепляется вершина ловушки при помощи нитей (9). Далее кусок ткани (6) плотно прикладывается к стволу дерева с покрытием одного из противоположных краев другим и скрепляется при помощи 2-3 англий- ских булавок (можно также проколоть вертикально спицей или пришить, сделав несколько стежков). Затем расправляется кусок (7), для чего проволока (S) сгиба- ется в кольцо, и ее концевые крючки фиксируют определенный диаметр конуса (2). Нижний край куска ткани (6), как уже было описано выше, герметично соеди- няется пластилином с корой дерева. Устанавливать стволовую ловушку можно на любой высоте, но при этом необходимо помнить, что проходящие рядом копытные животные могут ее разрушить, поэтому нужно или сделать ограждение вокруг ис- следуемого дерева, или прикрепить ловушку не ниже 1,5-2 м над поверхностью почвы. В целях ускорения и облегчения процесса обработки собранного матери- ала, для каждой из ловушек целесообразно изготовить по 2 пакета-накопителя (3) с тем, чтобы можно было менять их во время учетов на пустые, а материал разбирать в лаборатории. Учеты лучше всего проводить ежедневно, однако если внутрь пакета-накопителя (3) поместить сложенную «гармошкой» полоску бумаги или картона, чтобы мелкие беспозвоночные могли прятаться от хищников в ее складках, интервал между учетами можно увеличить до 5 суток (позже в геометри- ческой прогрессии возрастает процент гибели материала из-за пауков и муравьев). В пакеты-накопители описанной ловушки попадают как мельчайшие клещи (до 0,2 мм) так и крупные бабочки (сосновый бражник). Отсутствие фиксирующих веществ позволяет выпускать большинство животных (в том числе редкие и по- лезные виды) после их учета. При проведении нами исследований наибольшую эффективность стволовые ловушки показали для отлова Collembola, Acari, Homoptera, Hymenoptera, DipteTa, Heteroptera, Coleoptera, Aranei, Lepidoptera (гусеницы и имаго) и Psocoptera. Кроме того, в ловушки попадали Thysanoptera, Neuroptera, Blattoidea, а также единич- ные экземпляры Dermaptera, Ephemeroptera, Lithobiomorpha, Lumbricomorpha, Orthoptera, Stylommatophora и Trichoptera. Наряду с возможностью сбора материала по фенологии, динамике численно- сти и другим особенностям экологии дендробионтов, стволовые ловушки могут служить для контроля массовых миграций энтомофагов и экономически опасных видов по стволам деревьев. Весьма эффективна эта ловушка для выявления со- става и численности дендробионтов, уходящих на зимовку. Интересные сборы можно получить и при помощи портативной стволовой ловушки (рис. 63). Портативная стволовая ловушка предназначена для отлова мигрирующих вверх по стволам деревьев беспозвоночных, в том числе и экономически опасных
88 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Рис. 63. Портативная стволовая ловушка (ориг.). Обозначения см. в тексте. видов. Ловушка (рис. 63, Л, Б) состоит из куска мягкой проволоки (7), полоски поролона (2) шириной 30 мм и высотой 20 мм, ленты (3) и полиэтиленовой пленки шириной 80 мм, прозрачной пластиковой трубки (4) длиной 50 мм и диаметром отверстия 20 мм, пакета-накопителя (5). Длина элементов (7), (2), и (3) зависит от диаметра ствола исследуемого дерева. В центре ленты (3) необходимо проде- лать круглое отверстие диаметром около 20 мм, к которому следует герметично прикрепить трубку (4). Ловушка изготавливается следующим образом. На ствол дерева под углом около 30 градусов необходимо наложить полоску поролона (2), поверх которой следует проложить ленту (3) так, чтобы отверстие с трубкой (4) было расположено в самой верхней точке, причем верхний край отверстия должен касаться нижнего края полоски поролона (2). Далее проволокой (7) нужно прикре- пить конструкцию к дереву так, как показано на рисунке. При этом проволока (7) должна проходить вдоль центральной линии полоски поролона (2) и герметично прижимать ее к стволу исследуемого дерева. Для большей надежности крепления ловушки в верхней и нижней точке проволоку (7) полезно зафиксировать при помощи тонких гвоздей (чтобы не сильно повредить ствол дерева). К трубке (4) сверху прикрепляется пакет-накопитель (5). Изготовление пакета-накопителя (5) подробно описано ранее (см. «Портативная ловушка палаточного типа»). Крепле- ние пакета-накопителя с воронкой проще всего осуществлять при помощи энтомо- логической булавки. Для этого в 15-20 мм от узкого края пластиковой трубки (4) проделываются (параллельно плоскости края) 2 отверстия диаметром 2 мм. Далее съемный пакет надевается на трубку и прокалывается булавкой на уровне обоих отверстий. Такое крепление даже во время сильного ветра, не позволяет пакету смещаться, и сохраняет собранный материал. Устанавливать стволовую ловушку можно на любой высоте, но при этом необходимо помнить, что проходящие рядом животные способны ее разрушить, поэтому нужно или сделать ограждение вокруг
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 89 Рис. 64. Ловушка для спускающихся по стволам деревьев насекомых (ориг.). Обозначения см. в тексте. исследуемого дерева, или прикрепить ловушку не ниже 1,5-2 м над поверхностью почвы. В целях ускорения и облегчения процесса обработки собранного матери- ала, для каждой из ловушек целесообразно изготовить по 2 пакета-накопителя (5) . В этом случае можно менять пакеты во время учетов на пустые, а материалы разбирать в лаборатории. Ловушка, изображенная на рис. 64, предназначена для изучения состава и чис- ленности беспозвоночных, в том числе вредителей, мигрирующих вниз по стволу деревьев. Основу ловушки составляет квадратный кусок полиэтиленовой пленки (7), с длиной сто- рон равной 1 м (рис. 64, А, Б). Ствол исследуемо- го дерева на высоте 1,5 м от уровня почвы нужно обернуть куском полиэтиленовой пленки (7) верх- ний край которой следует временно прикрепить к стволу при помощи алюминиевой проволоки (2) (рис. 64, А). Затем свисающий край пленки нужно поднять вверх, снять алюминиевую прово- локу, временно прикреплявшую к стволу верхний край полиэтиленовой пленки, а образовавшееся внутреннее пространство на V заполнить кусоч- ками пенопласта размером примерно 30 х 30 х 40 мм. После этого верхний край пленки нужно в нескольких местах прикрепить к стволу при по- мощи тонких спиц (3) так, чтобы между стволом и пленкой оставалось свободное пространство шириной 30 мм. Мигрирующие вниз дендроби- онты попадают в ловушку и скапливаются между Рис. 65. Ловушка для ксило- бионтов (по Цурикову, 20066). Обозначения см. в тексте.
90 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых кусочками пенопласта. Особенно эффективна эта ловушка для выявления состава и численности дендробионтов, уходящих на зимовку. Ловушка для ксилобионтов (рис. 65) предназначена для исследования ви- дового состава обитающих под корой деревьев беспозвоночных. Изготовление главного элемента ловушки подробно описано ранее (см. «Портативная ловушка палаточного типа»). Вершинный край ловушки (1) складывается вдвое и фиксиру- ется скрепкой (2). Полученной таким образом ловушкой прикрывается отверстие, предварительно просверленное в коре мертвого дерева. Крепление ловушки легко осуществить при помощи швейных булавок. Для этого в 2-4 точках узкий край воронки прикрепляется к коре дерева. Такое крепление даже во время сильного ветра не позволяет пакету смещаться и сохраняет собранный материал. Насекомые, живущие под корой, пытаясь вылететь через искусственные отверстия, попадают в ловушку. Изготовив несколько таких ловушек, можно проводить сравнительные исследования фауны ксилобионтов различных пород деревьев. 2.5.4. Ловушки для сборов насекомых на горизонтальных ветвях Рис. 66. Ловушка для дендро- бионтов со скользким кольцом (по: Koponen et al., 1997). Для сбора насекомых на горизонтальных толстых ветвях деревьев можно ис- пользовать ловушку, конструкция которой разработана финскими энтомологами С. Копоненом, В. Ринне и Т. Клайхиллсом (Koponen et al., 1997). Она получила название ловушки со скользким кольцом (рис. 66). Ловушка состоит из резинового кольца, обернутого вокруг толстой ветки де- рева (желательно не менее 20 см в диаметре), пластиковой воронки и контейнера (рис. 66). Кольцо представляет собой обычный резиновый шланг с гладкой поверх- ностью диаметром 15 мм, плотно затянутый вокруг ветки, края которого связаны металлическим тросиком или проволокой. Узкий промежуток между кольцом и поверхностью ветки промазывается любой замазкой, чтобы не оставалось какой-либо щели, в которую могли бы забиться мелкие насекомые. Кроме того, по- верхность кольца вместе с замазкой по ее краю покрывается сухой или универсальной тефло- новой смазкой. Пластичная распыляемая тефло- новая смазка на основе политетрафторэтилена (ПТФЕ) продается в хозяйственных и автомо- бильных магазинах. Смазка не содержит жиров, быстро высыхает и образует очень скользкую поверхность с высокими антикоррозионными свойствами. Под кольцом, на расстоянии при- мерно 5 см, с помощью проволоки или синтети- ческого шпагата укрепляется воронка широкой часть вверх. Нижний конец воронки с узким от-
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 91 верстием соединяется с пластиковым контейнером — емкостью объемом не более 0,5 л. На боковой стороне контейнера делается отверстие, затянутое капроновой сеткой. В качестве фиксирующей жидкости авторы конструкции этой ловушки использовали раствор обычной поваренной соли NaCl. Можно использовать в ка- честве фиксатора и 4% формалин. Насекомые, передвигающиеся по суку, не могут преодолеть скользкое кольцо и падают в прикрепленную под кольцом воронку, а затем в контейнер с фиксирующей жидкостью. Для уменьшения попадания дождевой воды в воронку над всей ловушкой можно сделать защитный навес из водонепроницаемой ткани или полиэтилена. Ловушки полезно укреплять на ветвях, покрытых мхами и лишайниками, т.к. в них живут и прячутся многие мелкие насекомые. Устанавливают сразу по нескольку ловушек, которые периодически (один раз в 3-5 или даже 10 дней) осматриваются с выбором насекомых и сменой или доливанием фиксирующей жидкости. М.Н. Цуриковым скользкая поверхность резинового кольца обеспечивалась обертыванием его фольгой. Подробное описание конструкции такой ловушки за- ключается в следующем. Ловушка устанавливается на боковой ветке дерева (горизонтальной или на- клонной), на часть которой накладывается полоса из тонкой фольги шириной 30 см (7) (рис. 67, А, Б), после чего оба ее края герметично прикрепляются к коре пластилином (2) с тем, чтобы мигрирующие дендробионты были вынуждены двигаться по ее внешней поверхности. Далее по обе стороны от полосы фольги к ветке прикручиваются куски проволоки (3), свободные концы которых прикре- Рис. 67. Ловушка для сбора мигрирующих по ветвям беспозвоночных (по Цурикову, 2006 б). Обозначения см. в тексте. 5 Б
92 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых пляются к краям воронки (4), как показано на рис. 67, Л. К нижней части воронки (4) крепится съемный пластиковый стаканчик (5) для сбора беспозвоночных. Описанная ловушка изначально разрабатывалась для сбора мигрирующих по ветвям жесткокрылых, большинство видов которых соскальзывает с гладкой по- верхности фольги и попадают в ловушку. В результате проведенных испытаний в течение вегетационного периода одной ловушкой, установленной М.Н. Цурико- вым в заповеднике «Галичья гора», было зафиксировано 22 вида из 12 семейств отряда Coleoptera. Несмотря на небольшую эффективность (до 19 экземпляров за 1 сутки), данная конструкция позволила собрать интересные материалы по ми- грации ряда видов, в том числе Calosoma inquisitor L. (Carabidae) и Otiorrhynchus scopularis Hochh (Curculionidae). Кроме того, в ловушку попадали представители еще 11 отрядов беспозвоночных: Acari, Aranei, Collembola, Psocoptera, Homoptera, Heteroptera, Neuroptera, Raphidioptera, Lepidoptera, Hymenoptera и Diptera. 2.5.5. Ловчие деревья, ветви, пояса, ловушки-накопители Ловчие деревья, ветви, пояса, а также приманочные кучи (из веток, коры дере- вьев, сена, травы и др.) используют при проведении количественных учетов видов, заселяющих деревья, и для вылова вредителей, особенно со скрытным образом жизни. Эти своеобразные приманки рассчитаны на то, чтобы одни насекомые, например, короеды и усачи, отложили на них яйца, другие — использовали их как зимовочные укрытия. Ловчие деревья выкладывают или в виде поваленных целых стволов, очищен- ных от ветвей, или в виде стоячих, но частично окоренных. Ловчие пояса при- меняются также при проведении количественных учетов и для сбора насекомых, живущих на деревьях и передвигающихся по их стволам, а также использующих трещины в коре деревьев в качестве зимовочных стаций (например, некоторых клопов). Особенно эффективны они в плодовых садах и на деревьях, использую- щихся для озеленения населенных пунктов, для вылавливания гусениц яблонной и сливовой плодожорок, некоторых видов тлей, клопов, клещей, многих паразитов насекомых и т.д. Периодическая смена ловчих колец позволяет получать данные о фенологии и динамике численности отдельных видов насекомых. Очень эффек- тивны ловчие пояса для сбора насекомых в период ухода на зимовку. Достаточно широко применяются и клеевые кольца. Ряд таких приспособлений описан в рабо- тах известных отечественных энтомологов (Брамсон, 1896; Старк, 1930; Чувахин, 1957; Фасулати, 1971; Гиляров, 1975; и др.). Ловчие кольца и пояса представляют собой широкие полосы (15-20 см). Они изготавливаются из самых различных материалов — мешковины, ветоши, соломы, бумаги, в том числе гофрированной, полиэтиленовой пленки, заполненной древес- ными стружками или стружками и мелкими обрезками пенопласта (с кольцевой щелью между пленкой и стволом дерева для заползания внутрь кольца насекомых), и других материалов. Они накладываются кольцами на стволы и толстые сучья
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 93 деревьев и привязываются шпагатом к стволу дерева ниже кроны (как правило, на высоте 1-1,5 м). Для борьбы с вредителями ловчие пояса обычно обрабатывают инсектицидами. Перед наложением ловчих поясов стволы деревьев очищают от старой (отмершей) коры и лишайников. С наступлением зимы ловчие пояса сни- мают и сжигают. В научных целях, для выяснения видового состава населения насекомых различных пород деревьев, ловчие пояса снимают либо посредине зимы, либо ранней весной, в зависимости от целей исследования и сроков выхода из зимовки исследуемого вида. Липкие пояса (кольца), применяемые в научных целях (в том числе и для сбора коллекционного материала) и в практике защиты растений, изготавливают из очень плотной бумаги (например, крафта, использу- емого на почтах для бандеролей), шириной примерно 5 см, с нанесенным на их наружную поверхность невысыхающим клеем. Следует, однако, иметь в виду тот факт, что снятые с клея многие насекомые, особенно мелкие, мало пригодны или вообще непригодны для качественного коллекционирования. При осмотре ловчих поясов и куч неизбежны также потери животных и их травмирование. В связи с этим ниже описывается очень простая ловушка-накопи- тель, использование которой позволяет во многом избежать указанных недостатков ловчих и клейких поясов и колец. Ловушка-накопитель (рис. 68) состоит из полиэтиленового пакета (7) и встав- ки (2). Размеры пакета (7) могут быть произвольными, но мы на практике ис- пользовали небольшие пакеты — 100 х 150 мм с открытой короткой стороной. Вставка (2) представляет собой ленту из картона (желательно черного цвета) размером 70 х 250 мм, которая складывается «гармошкой» и вставляется внутрь пакета (7). Испытания различных материалов для изготовления вставок (кроме картона использовалась также газета, хлопчатобумажная ткань и полиэтиленовая пленка) показали, что именно картон черного цвета наиболее охотно заселяется беспозвоночными. Накопители для зимующих беспозвоночных желательно размещать в различ- ных биотопах в середине лета (на почве и на деревьях), чтобы беспозвоночные успели их найти использовать для перезимовки. Рис. 68. Накопитель зимующих беспозвоночных (по М. Цурикову, С. Цурикову, 2001). Обозначения см. в тексте.
94 •ф- В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Такие ловушки-накопители легко и быстро могут быть собраны, а исследова- ние их содержимого производится в лаборатории, что позволяет обнаружить даже самые мелкие экземпляры беспозвоночных. Наибольшую эффективность накопители для зимующих беспозвоночных по- казали для сбора Collembola, Aranei, Acari, Lepidoptera, Homoptera, Coleoptera, Hymenoptera, Stylommatophora, Diptera и Heteroptera. Кроме того, в ловушках были обнаружены отдельные представители Blattoidea, Neuroptera, Lithobiomorpha и Opiliones. 2.5.6. Ловушка для паразитов и комменсалов птиц-дуплогнездников В литературе содержится описание ряда ловушек, принцип действия которых основан на движении насекомых к свету после привлечения их различными при- манками в затененные камеры (Скуфьин, 1951; Щербаков, 1953; Шевченко, 1956; Потапов, 1961; Thorsteinson et al., 1965; А.с. 3807081; и др.). Описаний ловушек для исследования насекомых — обитателей искусственных гнездовий птиц по описанному ниже принципу авторы в литературе не обнаружили. Ловушка для паразитов птиц (рис. 69, А) состоит из съемной крышки искус- ственного гнездовья для птиц (7) и пакета-накопителя (2). Крышка (7) изготав- ливается из обрезка доски и должна соответствовать размеру гнездовья (обычно 300 х 150 х 30 мм). В центре доски пропиливается круглое отверстие диаметром 100 мм (рис. 69, Б). Далее на верхней поверхности доски, с двух противополож- ных от отверстия сторон, необходимо вбить по одному ряду из 5-6 мелких гвоздей (длиной около 25 мм), расстояние между которыми должно быть около 20 мм. Затем, используя в качестве ограничителей возвышающиеся на 3-5 мм над по- верхностью доски верхние части гвоздей, необходимо натянуть леску с диаметром около 1 мм так, как показано на рис. Б, после чего гвозди нужно загнуть, закрепив полученную решетку (3). Назначение решетки — ограждение ловушки на случай возможного вылета птиц через верхнее отверстие в крышке (7). Далее нужно вбить 4 длинных тонких гвоздя в верхнюю поверхность крышки (7) на равных расстояниях друг от друга в 20 мм от края отверстия, после чего следует удалить у гвоздей шляпки, а их верхние части (длиной 15 мм) загнуть под прямым углом (рис. 69, Б). Полученные щеколды (4) служат для фиксации кольца (5) диаметром ПО мм, изготовленного из алюминиевой проволоки диаметром 3-5 мм. Для изготовления пакета-накопителя (2) необходимо взять кусок полиэтиле- новой пленки размером 300 х 300 мм (рис. 69, В), сложить ее вдвое и, проложив сверху неплавкий прозрачный материал, скрепить оба слоя по линиям (рис. 69, Г) термическим сплавлением утюгом или паяльником. Далее нужно сделать раз- резы по внешним краям линий сплавления, после чего узкий край полученной конструкции завернуть внутрь и расправить, чтобы получился направленный узким концом внутрь конус (рис. 69, Д). После этого в пакет (2) помещается вставка из проволоки (6) диаметром 1-2 мм, назначение которой — сохранение
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 95 Рис. 69. Ловушка для паразитов птиц (по М. Цурикову, С. Цурикову, 2001). Обозначения см. в тексте.
96 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых внутреннего объема. Вершинный край пакета складывается вдвое и фиксируется скрепкой (7). Установив нижний край пакета (2) на край отверстия в крышке (7) (причем края пакета должны быть распластаны в стороны на 10 мм), нужно надеть кольцо (5) сверху на пакет и прижать его нижние края к крышке (7), после чего следует повернуть щеколды (4) так, чтобы кольцо было надежно зафиксировано. Описанную конструкцию нужно устанавливать взамен крышек искусственных гнездовий (скворечников, дуплянок и т.п.). Принцип действия ловушки заключа- ется в следующем. Гематофаги, копрофаги и некрофаги, привлекаемые птицами (особенно птенцами), попадают внутрь гнездовья через входное отверстие. На- пившись крови, отложив яйца или потревоженные птицами, они взлетают вверх, ориентируясь на более сильный источник света, в результате чего попадают в па- кет (2). Учеты отловленных насекомых лучше всего проводить 1 раз в 5-10 суток, так как при более частых учетах некоторые виды птиц в гнездовой период могут отказаться от дальнейшего высиживания. 2.6. Клейкие, пищевые и другие приманочные ловушки 2.6.1. Клейкие ловушки Клейкие ловушки используют для сбора мелких насекомых и клещей. Особен- но широко применяются они при отлове мелких мух, перепончатокрылых, тлей, трипсов. Принцип действия таких ловушек основан на прилипании насекомых к липким поверхностям. С этой целью улавливающую поверхность покрывают не- высыхающими клеями, продающимися в хозяйственных магазинах, или специаль- ным невысыхающим клеем «Пестификс», или же другим невысыхающим клеем. Можно использовать глицерин, жир, касторовое масло или изготовить специаль- ную смесь, обладающую липкими свойствами: 2 части касторового масла, 4 части размельченной канифоли. Смесь нагревают на огне, пока не растворится канифоль, и в подогретом виде ею намазывают лист бумаги. Подобному же требованию отвечает и клей такого состава: 450 г смолы, 55 г льняного масла и 55 г патоки. Разработан ряд конструкций клейких ловушек (Southwood, 1978; Brigham, Smishek, 1991; Kalcounis et al., 1992; Фурсов, 2003). Ловушки представляют со- бой пластины (плоские, сложенные в виде треугольных домиков или свернутые в цилиндры), смазанные липким клеящим веществом, устойчивым к влажности, не имеющим запаха и медленно высыхающим на воздухе. Наиболее удачным является использование медленно застывающих клеев мягкой консистенции, что позволяет отклеивать насекомых без повреждения (Kalcounis et al., 1992). Клейкие ловушки были эффективно использованы для сборов крылатых тлей (Broadbent, 1948; Taylor, 1962; A’Brook, 1973) и паразитических перепончатокрылых насе- комых (Фурсов, 2003). Обычно клейкие ловушки для сборов тлей имеют ярко- желтый цвет (Broadbent, 1948), однако для сборов двукрылых используются и
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 97 ловушки белого цвета. Клей с ловушки отмывается при помощи ксилола, толуола или ацетона. Недостатком клейких ловушек является трудоемкость отмывки насекомых от клейкого вещества и вероятность значительных повреждений насекомых. Конструкция очень простой клейкой ловушки, склеенной из картона или куска ватмана, показана на рис. 70. При этом для фиксации насекомых на ее нижнюю внутреннюю сторону наносится клей «Пестификс» или другой невысыхающий клей. В последнее время разработаны многочисленные конструкции клейких ло- вушек, различающихся как по форме, так и используемому материалу для их изготовления. Часто они применяются для комбинирования с ловушками разного цвета, пищевого запаха или полового феромона. Уловистость последних может быть увеличена в 2-3 раза за счет покрытия их поверхностей снаружи или изнутри клейким материалом. 2.6.2. Паточные ловушки Принцип их действия основан на способности насекомых прилетать на запахи. Наиболее простой конструкцией пищевой ловушки являются корытца с бродящей патокой (рис. 71). Изготавливаются они из оцинкованного железа или дощечек глубиной 6-10 см, площадью примерно 1500 см2. Корытца устанавливают горизон- тально на высоте 1 м на колышках, вбитых в землю. Корытца с бродящей патокой очень эффективны для сбора совок. Бабочек следует собирать по утрам, чтобы они не подсыхали. При этом их берут за грудной отдел, опуская пинцет в патоку и подводя под насекомое. Бабочек отмывают в воде, затем помещают на лист фильтровальной бумаги, слегка под- сушивают и расправляют или раскладывают на вате. Усовершенствованная методика сбора бабочек на привлекающие смеси состо- ит в следующем. Жидкость наливают в небольшой сосуд (чашку Петри, блюдце,
98 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Рис. 71. Корытце с бродящей патокой. Рис. 72. Комбинированная оконно-пи- щевая ловушка. Рис. 73. Паточная ловушка Щеголева (по Фасулати, 1971). тарелку) и затягивают марлей так, чтобы насекомое хоботком могло достать смесь, но не утонуло в ней. Сосуд ставят на сто- лик и прикрывают стеклянным колпаком с таким расчетом, чтобы между колпаком и столиком оставалась небольшая щель, через которую насекомые проникают под колпак. Ароматизированные различными ве- ществами (бродящий раствор сахара, белковые приманки, пиво, разлагающиеся органические вещества и т.п.) ловушки широко используют также для отлова очень многих видов мух и жуков. На рис. 72 изображена усовершен- ствованная пищевая ловушка, которая снабжена вертикальным стеклом, т.е. она представляет собой комбинированную оконно-пищевую ловушку. Известны различные модификации пищевых ловушек. Например, ловушка В.Н. Щеголева (рис. 73) построена по следующему принципу. В обычной све-
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 99 толовушке вместо источника света ставят щит, покрытый пропитанным патокой войлоком. Насекомые, привлеченные запахом патоки, падают в конус прибора, от- туда — в банку с фиксирующей жидкостью. Пищевые приманки часто применяют для повышения эффективности светоловушек. 2.6.3. Ловушки с приманкой в емкости В литературе описан ряд ловушек, принцип действия которых основан на привлечении насекомых различными приманками в емкости для их сбора (Novak, Povolny, 1969, 1969; Mahari, 1973; Shuibeck, 1976; Ross, 1981; Burditt, 1982; и др.). Конструкция ловушки (рис. 74), разработанная нами (Цуриков М., Цуриков С., 2001), отличается простотой изготовления. Она представляет собой картонную коробку произвольной длины и ширины (рис. 74, А), высота которой должна быть не менее 60 мм, а крышка (7) — плотно подогнана к коробке (2). Герметичность конструкции необходима для исключения выхода насекомых наружу. Для этого можно приклеить на края коробки (2) полоску ткани (3) (рис. 74, Б). Далее необ- ходимо снять крышку (7), перевернуть ее и к внутренней поверхности приложить кусок полиэтиленовой пленки размером 100 х 50 мм (рис. 74, В), после чего плен- ку следует приплавить к крышке при помощи нагретого утюга, предварительно подложив под утюг кусок неплавкого материала. Затем в центре полиэтиленового участка нужно прорезать узкую щель (5) (рис. 74, Г) размером 70 х 3 мм. Для того чтобы насекомые не могли выбраться через щель наружу, необходимо вокруг последней на гладкую поверхность полиэтиленовой пленки нанести слой сливоч- ного масла (6) (полоску шириной 20 мм и толщиной 1 мм) (рис. 74, Д). В теплом помещении, когда масло находится в полурасплавленном состоянии, описанная Рис. 74. Ловушка с приманкой (по М. Цурикову, С. Цурикову, 2001). Обозначения см. в тексте.
100 "Ф* В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых 10 мм 10мм Рис. 75. Ловушка для скрытноживущих беспозвоночных (ориг.). Обозначения см. в тексте. выше полоска абсолютно непреодолима для насекомых. Для дезориентации лета- ющих насекомых в стороне от щели в крышке коробки целесообразно проделать отверстие 50 х 50 мм (7) и закрыть его прозрачным материалом (8) (полиэтилен, целлофан и т.п.), герметично приклеив или приплавив его края к краям отверстия в крышке. При наличии отверстия (7) насекомые, пытающиеся вылететь из коробки, неизбежно будут лететь на более яркий источник света, что полностью исключит даже попытки пролететь в узкую щель (5). Для привлечения насекомых, например тараканов, на дно коробки (2) необходимо поместить соответствующую приманку (9), после чего, закрыв коробку (2) крышкой (7), следует установить ловушку в месте доступном для насекомых. Для извлечения попавших в ловушку насекомых нужно поместить ее в полиэтиленовый пакет соответствующего объема и открыть крышку. Такая предосторожность позволит избежать потерь насекомых, которые могут находиться в щели между крышкой (7) и стенкой коробки (2). Осматривать ловушку можно как ежедневно, так и 1 раз в 3-5 суток. Описанная ловушка может быть использована для отлова представителей многих насекомых, особенно из отрядов Blattoidea, Coleoptera и Diptera. Данная конструкция может получить широкое распространение среди энтомологов в
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 101 силу простоты изготовления и возмож- ности использования для отлова многих экономически важных видов насекомых, в том числе синантропных, копрофагов, некрофагов и др. Не менее удобна в применении и эф- фективна ловушка для скрытноживущих беспозвоночных (рис. 75). Данная ловушка предназначена для отлова беспозвоночных, использующих в качестве укрытий различные трещины. Ловушка (рис. 75, Л, Б) изготавливается склеиванием из темной полиэтиленовой пленки или картона (развертка и размеры Рис. 76. Ловушка с приманкой (ориг.). Обозначения см. в тексте. указаны на рисунке). Полученная таким образом ловушка, с помещенной внутри приманкой (например, тухлая рыба), имеет размеры (200 х 100 х 10 мм) и уста- навливается на почве во всевозможных биотопах. Беспозвоночные, двигаясь на запах приманки, проникают в ловушку через узкую щель и там скапливаются (рис. 75, В). Ловушка может быть использована и без приманки, для чего ее нужно устанавливать в открытых биотопах. Выходящие на охоту ночные беспозвоночные охотно используют ловушку в качестве дневного убежища. Для насекомых, активно прилетающих на запахи, можно рекомендовать при- менение ловушки с приманкой (рис. 76). Ловушка с приманкой устроена следующим образом. В пластиковый сосуд (7) с несколькими мелкими отверстиями у дна необходимо поместить приманку (например, фрукты), после чего этот сосуд нужно накрыть металлической сеткой (2) с ячейками 1 мм, верхнюю поверхность которой следует намазать медленно высыхающим клеем или патокой (рис. 76). Благодаря восходящему потоку воздуха, возникающему из-за отверстий у дна сосуда (7) запах приманки распространяется гораздо дальше и его действие становится более эффективным. Насекомые, на- пример плодовые мушки, двигаясь в сторону приманки, садятся на сетку (2) и прилипают к ней. 2.6.4. Желтые ловушки (тарелки, чашки) Мерике Конструкция ловушек предложена энтомологом В. Мерике (Moericke, 1951) для сбора тлей. В настоящее время ловушки Мерике (рис. 77) широко используют- ся для проведения «пассивных» сборов мелких насекомых (тлей, паразитических перепончатокрылых и др.), особенно в сочетании с ловушкой Малеза. Для отлова насекомых таким способом используют, например, жестяной сосуд диаметром 24-28 см и высотой 6-8 см, дно и внутренняя поверхность которого на высоте 3—4 см от поверхности дна окрашены ярко-желтой масляной краской
102 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Рис. 77. Ловушки Мерике (по Фурсову, 2003). (цвет одуванчика). Внешняя поверхность и верхняя часть внутренней поверхности сосуда окрашены в черный цвет. Необходимо обращать особое внимание на тща- тельность и равномерность окраски дна сосуда. Очень удобно использовать легкие, тонкие пластиковые тарелки (продающиеся в магазинах одноразовые тарелки) яр- ко-желтого, максимально яркого цвета. Рекомендуется (Фурсов, 2003) использовать также флуоресцентную краску. Диаметр тарелок — 15-20 см и глубина — 3-5 см. Глубокие тарелки (глубиной 5-8 см) удобнее в использовании, т.к. они более устойчивы на грунте и их содержимое не так быстро высыхает в жаркую погоду. Ловушки-тарелки наполняют обычной чистой водой с детергентом-шампунем. Принцип работы ловушек основан на том, что, вероятно, многие насекомые прилетают на яркий желтый цвет, сходный с окраской цветов, или распознают кон- траст цветов (эффективны также тарелки белого, голубого и других цветов). Кроме того, бегающие по почве и растениям насекомые забегают в них и тонут в воде. В полевых условиях качестве обычного фиксатора в ловушках Мерике исполь- зуется обычная вода с несколькими каплями детергента (шампуня) или концентри- рованного раствора стирального порошка (20 мл на 1 л воды) для усиления улав- ливающей способности. Иногда используют также 2%-ный раствор формалина. Вместо воды в ловушки Мерике можно налить глицерин, который не высыхает и может стоять с уловом 3-7 дней (до его выборки). Для увеличения «экспозиции» сборов (до нескольких дней) рекомендуют использовать в ловушках Мерике в качестве фиксатора раствор этиленгликоля (автомобильный «антифриз») в воде (в соотношении 1:1) или насыщенный раствор соли. Однако использование спе- циальных растворов имеет некоторые неудобства из-за затрат времени и необхо- димости дополнительного приготовления и хранения растворов. Последовательность установки ловушек Мерике следующая (Фурсов, 2003). 1. В воду в 1,5-литровой полиэтиленовой бутылке добавить шампунь (0,5 чай- ной ложки), при расходе воды 1,0-1,5 л на 10 ловушек (тарелок). 2. Расставить чашки (от 10 до 100-200 штук) на почве в прямую линию (так чашки заметнее и легче запоминается их местонахождение), на расстоянии 2-3 м (рис. 77). Чашки ставятся на землю ровно — под травянистые растения, под кусты, (чашки не надо прикапывать и прикрывать). Ловушки (чашки) можно установить даже на «плавающем» субстрате в водоеме (например, на пенопласте). Если чашки устанавливаются на посевах сельскохозяйственных культур, напри- мер, кукурузы, то они укрепляются на колах. По мере роста растений держатель передвигается по колу выше, с таким расчетом, чтобы верхний край чашки был на уровне верхушек растений. Желтая чашка должна быть хорошо видна со всех сторон.
Глава 2. Сбор наземных насекомых -ф* 103 3. Налить воду в чашки из бутылок; наливать лучше только на 1 день — вече- ром, а выбрать материал утром; или наоборот — утром поставить тарелки, а собрать вечером. Более длительное время между установкой чашек и выбором материала не рекомендуется, так как насекомые портятся в воде — разбухают и раздуваются. 4. Выбрать насекомых из тарелок. Для этого необходимо вылить содержи- мое из всех чашек в сачок небольшого размера (аквариумный) с очень мелкой ячеистостью, не пропускающей членистоногих размером 0,3-1,0 мм. Крупных беспозвоночных (мокриц, слизней, крупных насекомых) можно извлечь из чашек пинцетом. Мусор удаляется из чашек также пинцетом. Можно сливать все со- держимое (крупных и мелких беспозвоночных животных) вместе, в одну банку, а затем уже разбирать. 5. Затем содержимое сачка осторожно выворачивается в общую банку с той же водой, что в ловушках, и приносится в лабораторию (полевой лагерь). 6. В лаборатории сбор из банки надо вылить снова в аквариумный сачок и про- мыть весь сбор чистой водой (без шампуня!). Вылить сверху в сачок 200-500 мл чистой воды или промыть содержимое водой из-под крана. 7. После этого содержимое сачка (вместе со всеми мелкими и крупными беспозвоночными) выворачивается в коллекционную банку с этиловым 70-90% спиртом. Насекомые начинают плавать в спирте (вначале как будто «кипят» вместе с пузырьками воздуха), а потом тонут. Каждая проба снабжается оригинальной этикеткой с указанием места и времени сборов (см. ниже). В «единую пробу» можно сливать сборы за несколько дней. 8. Можно отсортировать в лаборатории различных по размеру насекомых из общих сборов ловушек Мерике (мелких отделить от крупных). Для этого из метал- лической (нержавеющей) сетки (с различной ячеистостью) изготавливаются (сва- риваются) прямоугольные ванночки, которые выполняют роль сит для фильтрации сборов. Используется сетка диаметром 1, 2 и 4 мм. Таким образом, при последова- тельном промывании сборов через сита насекомые различного размера остаются в разных ситах. Самые мелкие насекомые остаются в мелкоячеистом сите. Насекомых сортируют на салфетках. Крупные и с твердыми покровами насе- комые подсушиваются на фильтровальной бумаге, мелкие, с мягкими покровами (тли, перепончатокрылые и др.), фиксируются в 70% спирте. Считается эффективным сочетание тарелок (чашек) Мерике, стоящих рядом с ловушками Малеза. В ловушки (тарелки) Мерике попадаются различные насекомые: Diptera, Coleoptera, Hymenoptera, Hemiptera, Orthoptera, Collembola и др., а также клещи и другие беспозвоночные — слизни, мокрицы и др. Имеются данные об эффективном применении ловушек Мерике других цветов (например, ярко-голубого или белого) для сборов различных перепончатокрылых насекомых. Например, установлено, что ловушки Мерике ярко-голубого цвета наи- более эффективны для сборов представителей мелких паразитических насекомых (Aquilar, Sharkov, 1997; Фурсов, 2003).
104 "Ф* В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Отмечено, что использование пластиковых ловушек (тарелок) Мерике белого и голубого цветов более эффективно, чем желтого цвета, для привлечения хищни- ков и паразитов, трофически не связанных с листвой деревьев (Kirk, 1984). Пре- имущество ловушек Мерике белого и голубого цветов указано также для сборов наездников семейства Encyrtidae и дорожных ос семейства Pompilidae (Weseloh, 1986; Berglind, 1993). 2.6.5. Приспособление для подкормки антофилов Хорошо известна методика ранневесенней подкормки шмелей в садках при помощи сиропа с пыльцой растений, а также помещение внутрь садка веток цве- тущей ивы (Вовейков, 1959). Для подкормки диких перепончатокрылых широко распространен метод высадки ренневесенних нектароносов (Грамма, Заговора, 1976; Барабанщиков и др., 1983; и др.). Описанное авторами приспособление для подкормки насекомых-антофилов позволяет, как производить поддержку популяций в ранневесенний период (что особенно важно для популяций редких видов насекомых), так и осуществлять вы- борку из популяций достаточно многочисленных видов насекомых. Конструкция характеризуется простотой изготовления и большой эффективностью. Приспособление (рис. 78) состоит из искусственного «соцветия» (7), прикре- пленного к колышку (2) при помощи канцелярской кнопки (3). Для изготовления искусственного «соцветия» необходимо вырезать фигуры из лоскутов ткани ярких Рис. 78. Приспособление для подкормки антофилов (по М. Цурикову, С. Цурикову, 2001). Обозначения см. в тексте.
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 105 расцветок (белого, синего, желтого, красного и др.), похожие на венчики цветков (рис. 78). Далее необходимо поместить фигуры между двумя кусками полиэтиле- новой пленки, собрав их в «соцветия» по 3—4 экземпляра, и приплавить получен- ную конструкцию при помощи горячего утюга, проложив сверху и снизу от кусков полиэтиленовой пленки неплавкий материал (рис. 78). Полученные «соцветия» долго не портятся, благодаря герметичной защите от влаги. Удалив лишние части полиэтиленовой пленки, «соцветия» необходимо прикрепить к колышку (2), по- сле чего следует сделать вмятины в центре каждого «цветка», надавив сверху на полиэтиленовую пленку. Описанную конструкцию необходимо устанавливать ранней весной (в сред- ней полосе России — с начала апреля) на освещенные солнцем поляны, опушки, пустыри и т.п., после чего в каждую вмятину в центре «цветка» следует поме- стить по капле сладкой жидкости (сироп, патока, мед и др.). Первые из пробудив- шихся насекомых, главным образом из отрядов Diptera и Hymenoptera, а также Lepidoptera и Coleoptera, охотно слетаются на эти кормушки, что благоприятствует их выживанию, особенно в периоды аномальных скачков температуры воздуха, когда насекомые активизируются раньше зацветания первых растений. Летом и осенью также можно использовать искусственные цветы с целью постановки раз- личных экспериментов по изучению биологии и этологии антофилов. 2.6.6. Половые ловушки (секс-ловушки) Как в эколого-фаунистических исследованиях, так и в практике защиты расте- ний для сбора насекомых широко используются половые аттрактанты (феромоны) насекомых, т.е. вещества, выделяемые самками или самцами для привлечения противоположного пола. Иногда энтомологами (в основном любителями) ис- пользуются живые девственные (неоплодотворенные) самки или экстракты из их половых желез. Однако наиболее широкое применение получили синтезированные аналоги феромонов. Именно они в настоящее время широко используется в по- ловых ловушках. Простая конструкция половой ловушки, склеенной из картона или куска ват- мана, представляет собой, по существу, клейкую ловушку, описанную выше (см. рис. 70). Для фиксации насекомых на ее нижнюю внутреннюю сторону наносится клей «Пестификс» или другой невысыхающий клей, на который наносится синте- тический аттрактант. Простую половую ловушку можно изготовить также следующим образом: 3-5 неоплодотворенных самок исследуемого вида насекомых сажают в марлевый (или из сетки) садок, который помещают в большой садок; стенки последнего изготов- лены из марли или проволочной сетки в виде направленных внутрь вершин с от- верстиями посередине. Самцы залетают в такой садок, но вылететь оттуда не могут. Ловушка с отражающими лопастями показана на рис. 79. Источником аттрак- танта служат насекомые, помещенные в садке между лопастями, или какой-либо
106 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Рис. 79. Ловушка с по- ловым аттрактантом с от- ражающими лопастями (по Голубу и др., 1980). Рис. 80. Цилиндрическая ловушка с половым ат- трактантом (по Голубу и др., 1980). гигроскопический материал (вата, фильтровальная бумага, матерчатый фитиль), смачиваемый синтети- ческим аттрактантом. К смазанным невысыхающим клеем лопастям ловушки приклеиваются привлечен- ные аттрактантом насекомые. В практических целях ловушки этого типа успешно используют для отлова сливовой плодожорки, хрущей, хлопкового долгоноси- ка, кукурузного мотылька, американской белой бабочки и других вредителей. Ловушка, изображенная на рис. 80, представляет собой картонный цилиндр, внутренняя поверхность которого выстлана липкой бумагой или покрыта невы- сыхающим клеем. В цилиндр в металлическом или ка- проновом сетчатом цилиндре помещают синтетический аттрактант. Ловушки этого типа успешно используют для отлова бабочек яблонной плодожорки, сливовой плодожорки, непарного шелкопряда, листоверток, со- вок и других насекомых. При изготовлении этого типа ловушек используют пластиковые стаканчики для воды, любые пластиковые, картонные пакеты или коробочки подходящей формы или сгибают листы картона и скле- ивают их скотчем или липкой лентой. В практических целях для каждого вида насекомых, как правило, опытным путем устанавливается наиболее эффективная форма ловушки. Так, например, для сбора насекомых-герпетоби- онтов в практических и научных целях секс-ловушки закапываются в почву. В частности, для отлова самцов щелкуна посевного в качестве ловушек полиэтиленовые банки за- капываются в землю до ряда отверстий, которые находятся непосредственно под крышкой. Феро- мон крепят к крышке внутри ловушки. На рис. 81 показана наиболее уловистая форма ловушки для отлова яблонной плодожор- ки с применением аналога феромона кодлемона. Во всех конструкциях половых ловушек для Рис. 81. Секс-ловушка для отло- ва яблонной плодожорки фирмы «Зоекон» (США) (по: Culver, Barnes, 1977). удержания привлеченных насекомых использу- ется невысыхающий клей. Его наносят вблизи источника феромона. Ловушки с лопастями успешно используют- ся для отлова как жесткокрылых, так и чешуе-
Глава 2. Сбор наземных насекомых -ф* 107 крылых насекомых, а цилиндрические ловушки применяются преимущественно для отлова бабочек. 2.6.7. Водные ловушки («ловушки смерти») Водные ловушки используются исследователями для вылова влаголюбивых насекомых (таких, как слепни, мошки). Они известны также под названием «лужи смерти». Суть их заключается в том, что поверхность небольших водоемов покры- вают тонким слоем нефти или керосина. В жаркое время такие насекомые, прилетая к водоему напиться, соприкасаются с пленкой нефти или керосина, прилипают к ней и быстро погибают. Погибших насекомых собирают, промывают в серном эфире или хлороформе и высушивают на фильтровальной бумаге. Отмытые и вы- сушенные экземпляры сохраняют те же качества, что и собранные другим способом. Этот довольно простой и доступный метод позволяет собрать массовый материал для изучения видового состава и проводить наблюдения за интенсивностью и про- должительностью лёта отдельных видов. 2.7. Лов на свет и с помощью светоловушек Лов насекомых на свет и с помощью светоловушек применяется в энтомо- логической практике чрезвычайно широко вследствие высокой эффективности этих методов. Человеком используется один из важнейших инстинктов насеко- мых — ориентация в пространстве по небесным светилам, которые в данном случае заменяются искусственными источниками света. Различными источниками света привлекаются чешуекрылые, двукрылые, клопы, жуки, перепончатокрылые, сетчатокрылые, цикады, белокрылки, иногда — тли, сеноеды, поденки, веснянки, ручейники, уховертки, комары и др. Мощные светоловушки (убивающие электро- ловушки), специально изготовленные с расчетом на уничтожение насекомых, до недавнего времени использовались и в практике защиты растений. Однако вслед- ствие недифференцированного уничтожения всех насекомых, летящих в сумерки и ночью на свет, и нерентабельности (высока стоимость) в последнее время этот метод борьбы с вредителями используется все реже. Самым простым способом сбора насекомых на свет в фаунистических це- лях является включение обычной электрической лампочки достаточно большой мощности (200-500 Вт) на более или мене открытом пространстве (т.е. не под кроной деревьев непосредственно). При этом за лампочкой подвешивается белый экран из материи, обычно — простыня. Белая материя или ватманский лист (лучше два листа) кладутся на землю перед лампочкой. Если нет возможности провести электропровод с лампочкой в открытое пространство, то можно просто открыть окно в освещенной комнате и положить под электрическую лампочку на пол, стол или стул лист белый бумаги или постелить простыню. Очень хорошо
108 В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых в качестве источника света использовать прожектор с электрической лампой мощностью 1000 Вт. Более эффективны для привлечения насекомых люминесцентные лампы днев- ного света, имеющие голубоватый оттенок свечения. В последнее время в про- даже появились бытовые светодиодные фонари с различным количеством в них светодиодов. Они бывают двух типов — ручные и лобные (прикрепляющиеся с помощью ремня на голове). Свет таких фонарей — яркий белый, хорошо привле- кающий насекомых. Их большое преимущество состоит в большой длительности работы на одном комплекте электрических элементов. Еще в большей степени усиливается эффект привлечения насекомых при использовании источников УФ света (с длиной волны менее 365 нм). В магазинах электротоваров продаются энергосберегающие электрические лампы с патроном, испускающие свет только ультрафиолетовой части спектра. Их стекло темное, и человек не воспринимает их свечение как свет вообще. По- этому такие лампы (очень эффективные при сборе насекомых) надо использовать в комплекте с обычной лампой для освещения поля деятельности. Иногда для сбора насекомых используют бактерицидные кварцевые (медицин- ские) источники УФ света, но ими пользоваться надо с очень большой осторожно- стью и ни в коем случае не разрешать пользоваться ими школьникам и студентам, т.к. все они вредны для незащищенного глаза. В экспедиционных условиях в качестве источника света используются фары автомашины (неудобство — быстро разряжаются аккумуляторы) и фонарь типа «летучая мышь», который устанавлива- ют на открытых полянах, опушках, небольших холмиках. В последнее время полу- чили широкое распространение переносные мощные светильники, работающие от аккумуляторов. Они весьма удобны в поездках на автомашинах. Следует иметь в виду, что качественный состав и количество прилетающих на свет насекомых сильно зависят от направления лучей источника света. По крайней мере, в количественном отношении лучшие результаты получаются при направлении источника света (например, прожектора) косо вверх и в ту сторону, в которой непосредственно перед источником нет преграды в виде стены леса или дома. Если же лесной массив находится на расстоянии 100 м и более — эффективность сбора достаточно велика. Очень полезно направлять источник света на стоящее недалеко одиночное дерево или небольшую группу деревьев: на него в значительном количестве летят концентрирующиеся на таких деревьях насекомые. Успех лова на свет во многом зависит от сезона, времени суток, когда прово- дится сбор, метеоусловий и фазы луны. В самом общем виде рекомендации по отлову насекомых на свет могут быть следующими: насекомые в целом, лучше летят на свет в первой половине лета, с 22 до 24 ч, при более или менее облачной погоде (без дождя, но и не при абсолютно ясной погоде), не в полнолуние. При этом, несомненно, учитываются конкретные особенности биологии видов насеко- мых, которые отлавливаются на свет, время вылета имаго и т.п.
Глава 2. Сбор наземных насекомых -ф* 109 Насекомых, прилетающих и приползающих на свет (часто — в массовом количестве), собирают несколькими способами. Летающих крупных бабочек ловят сачком. Сидящих бабочек удобно накрывать небольшой банкой, которую закрывают приготовленной заранее плотной бумагой (кусочком ватмана), картон- кой или кусочком жести, просовывая такую временную крышку между банкой и поверхностью, на которой сидит бабочка. Ползающих по белой поверхности и стеклу прожектора жуков и клопов крупных и средних размеров собирают просто руками или с помощью пинцета. Мелких насекомых (которых, при использовании достаточно сильного источника света, может быть великое множество) собирают только с помощью эксгаустера. 2.7.1. Обычные светоловушки Разнообразие используемых светоловушек огромно. Приведем описания лишь некоторых из конструкций, как широко используемых, так и оригинальных, но уже испытанных нами и показавших достаточно хорошие результаты. Широкое распространение получила ловушка конструкции Л.Н. Сахарова (рис. 82) и ее модификации. Простейший прибор состоит из электрической лампы накаливания в 200- 500 Вт и металлического абажура-рефлектора, к которому снизу на расстоянии 20-25 см крепится конусообразная металлическая воронка, обращенная узким концом вниз. Раструб воронки (диаметром приметно 70-72 см) частично охва- тывает нижнюю часть лампы. К узкому концу воронки (диаметр 6-10 см) при помощи матерчатого или резинового соединения подвешивается стеклянная бан- ка, наполненная до 2/3 емкости 4% формалином. Ловушки включают вечером и оставляют на ночь. Утром содержимое банки процеживают сквозь мелкое сито, в лаборатории раскладывают насекомых на лист фильтровальной бумаги и под- сушивают. В дальнейшем насекомых разбирают и хранят в соответствии с целью сбора и исследования. Рис. 82. Светоловушка кон- \ струкции Сахарова (по Фасу- ПЦ/ лати, 1971, с изменениями). UA
110 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Рис. 83. Схема стандартной светоловушки Эн- томологического общества США (по: Harding et al., 1966). 1 — вид сверху; 2 — отражающая лопасть; 3 — лампа; 4 — воронка; 5 — контейнер для насеко- мых и умерщвляющего агента. В подобных светоловушках можно исполь- зовать лампы накаливания от автомобильных фар или лампы типа УФО-4А, которые могут подключаться к аккумуляторным батареям. Как и при простом лове на свет, более эффективны в светоловушках люминесцентные лампы днев- ного и УФ света. Ловушки часто накрывают плоской или конической крышей от дождя или размещают под контейнером устройство для стока воды. В качестве контейнеров используют стандартные стеклянные банки (0,5 л), марлевые мешки и др. Име- ются ловушки, позволяющие в контейнере сепарировать насекомых по размеру, в заданное время менять контейнеры, а также ловушки, включаемые программным реле времени, фотоэлементами и т.д. Описан ряд светоловушек имеющих накопитель, расположенный под источни- ком света (Сахаров, Струков, 1927; Williams, 1948; Плавильщиков, Кузнецов, 1952; Андреев и др., 1976; Приставке, 1979; и др.). Основным недостатком ловушек, цитированных авторов является наличие фиксирующих веществ, что приводит к массовой гибели насекомых. Рис. 84. Различные типы светоловушек (схема). А — ротамстедская ловушка; Б — «Нью-Джерси» (по Приставко, 1974).
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 111 Величина улова насекомых в светоловушки зависит не только от конструкции ловушки и источника света, но и от многих других факторов. Важнейшие из них, как и при отлове на свет лампы, — положение ловушки в биотопе и комплекс метеорологических условий. Качественный состав собранных насекомых и их количество зависят и от высоты размещения ловушки. Так, установлено, что для отлова большинства вредителей полевых культур предпочтительнее размещать ловушки на относительно небольшой высоте — 1,5-2,5 м, а садовых и лесных культур — на большей высоте, определяемой биологией вредителя, высотой и густотой древостоя. Схемы некоторых типов зарубежных ловушек изображены на рис. 83, 84, без дополнительных объяснений. 2.7.2. Контейнер-накопитель для светоловушки Ниже описан контейнер-накопитель конструкции М. Цурикова, С. Цурикова (2001) из полиэтилена, позволяющий накапливать значительное количество при- летевших на свет насекомых, например, за ночь. Контейнер-накопитель (рис. 85, А) состоит из пакета (7) для сбора беспозво- ночных и приспособления (2) для подвешивания пакета под источником света. Пакет (7) изготавливается следующим образом. Необходимо взять прямоугольный кусок полиэтиленовой пленки, размером 1150 х 1300 мм, сложить его вчетверо, как показано на рис. 85, Б, после чего на одной из полученных плоскостей на- чертить ломаную линию по размерам, показанным на рис. 85, В. Если провести разрез по начерченной линии, то получится готовая выкройка, форма которой в развернутом виде показана на рис. 85, Г. Далее при помощи термического сплав- ления нужно скрепить края линий смежных углов выкройки (места скрепления показаны штриховкой на рис. 85, Г). Для установки окончательной формы пакета необходимо завернуть внутрь его крышеобразно выступающую часть. Полученный таким образом пакет (7) с наклонно расположенными внутренними плоскостями имеет узкую щель, в которую необходимо вставить распорку (3), изготовленную из алюминиевой проволоки диаметром 2 мм. Распорка (3) служит для того, что- бы щель внутрь пакета (7) постоянно была открыта, что существенно повышает эффективность сбора беспозвоночных. Верхние углы пакета (7) прикрепляются к углам приспособления (2), представляющего собой прямоугольную раму с колечка- ми на углах, изготовленную из алюминиевой проволоки диаметром 2 мм. Размеры рамы должны быть равны размерам верхних ребер пакета (7). В средней части коротких сторон рамы нужно привязать капроновую нить (4), которая служит для подвешивания контейнера-накопителя под источником света. Таким образом, насекомые, прилетевшие на источник света, кружатся над контейнером-накопителем, неизбежно контактируют с наклонными плоскостями, скатываются вниз по их поверхности и, провалившись в щель, попадают внутрь пакета (7). Выбраться насекомым из контейнера-накопителя трудно, так как пакет из полиэтилена, освещенный источником света, полностью их дезориентирует, не
112 ф- В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Рис. 85. Полиэтиленовый контейнер-накопитель для светоловушки (по М. Цури- кову, С. Цурикову, 2001). Обозначения см. в тексте.
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 113 позволяя обнаружить узкий выход. Поэтому отловленные беспозвоночные вынуж- дены двигаться к свету по внутренним плоскостям и складкам пакета, в результате чего скапливаются в его верхних углах, вдали от входа. Для сохранения мелких на- секомых, способных пострадать от более крупных, внутрь контейнера-накопителя целесообразно поместить несколько положенных друг на друга кусочков картона размером 100 х 100 мм. В случае установки ловушки в незащищенном от дождя месте необходимо в нижней части пакета (У) проколоть несколько очень мелких отверстий (менее 0,5 мм), чтобы дождевая вода не скапливалась внутри пакета и не портила сборы. При сильном ветре конструкцию ловушки необходимо допол- нить грузом, помещенным внутри пакета (обрезок доски и т.п.). Для извлечения собранного материала достаточно перевернуть контейнер-накопитель, вывернуть направляющие плоскости наружу, удалить распорку (3) и высыпать беспозвоноч- ных. Описанная конструкция контейнера-накопителя позволяет выпускать большин- ство из отловленных насекомых после их учета. Исключение составляют мелкие Diptera и Homoptera, часть которых гибнет еще при контакте с источником света. Достаточно большой объем контейнера-накопителя позволяет насекомым рас- средоточиться по внутренним поверхностям пакета, что приводит к уменьшению контакта друг с другом, и, как следствие, снижается количество поврежденных животных. Кроме того, описанный контейнер обладает незначительным весом (40 г) и может компактно складываться. Наибольшую эффективность полиэтиленовый контейнер-накопитель показал при отлове Diptera, Ephemeroptera, Lepidoptera, Heteroptera, Coleoptera, Homoptera, Trichoptera и Neuroptera. Кроме того, в ловушку попадали Psocoptera, Aranei и Thysanoptera. Данная конструкция контейнера-накопителя может быть рекомендо- вана для исследований на особо охраняемых природных территориях, так как при ее использовании исключена гибель редких видов беспозвоночных. Сами ловушки изготовляются из различных материалов — органического стек- ла, алюминия, листовой стали, железа и даже из полиэтилена. Наиболее удобны и долговечны ловушки из листовой стали. 2.7.3. Микросветоловушка Для сбора ползающих по почве насекомых (герпетобионтов) нами разработана особая конструкция светоловушки, или микросветоловушка (рис. 86). Ловушка состоит из автономного источника света (У), крестообразно скре- пленных направляющих пластин из жести (2) и четырех емкостей для сбора беспозвоночных (3). В качестве автономного источника света (У) может служить электрическая лампочка питающаяся от батарейки, или керосиновая горелка. Мы остановимся на описании устройства керосиновой горелки, прошедшей ис- пытание и показавшей хорошую эффективность. Для изготовления керосиновой горелки необходимо взять небольшой стеклянный пузырек высотой 55 мм и
114 ф- В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Рис. 86. Микросветоловушка (по М. Цурикову, С. Цурикову, 2001). Обозначения см. в тексте. диаметром 22 мм (в таких пузырьках обычно хранятся антибиотики). Отверстие пузырька закрывается кусочком стекла с отверстием посередине диаметром 2 мм, в которое вставляется фитиль, изготовленный из трех сплетенных хлопча- тобумажных нитей (№ 20). Отверстие в стекле можно проделать обыкновенным сверлом, предварительно поместив на точку сверления каплю скипидара. Кроме этого, возможно использование двух небольших кусочков стекла, которыми вер- шинная часть фитиля удерживается над поверхностью пузырька. Применение только прозрачных материалов при изготовлении горелки обусловлено необхо- димостью исключить создание тени, т.к. попав в нее, многие беспозвоночные теряют активность и могут не попасть в емкость (3). Керосин в описанном варианте устройства выгорает приблизительно за 3 часа. Автономный источник света (У) устанавливается сверху на место пересечения направляющих пластин (2), длина которых может быть различной, однако предпочтительнее использовать размеры от 200 до 500 мм. В каждом из углов направляющих пластин в почве прорезаются углубления, диаметр и глубина которых должны соответствовать размерам емкостей для сбора беспозвоночных (5) таким образом, чтобы после погружения емкостей в полученные углубления их верхний край был вровень с поверхностью почвы. На дно емкостей (3) целесообразно положить кусочки картона или несколько листьев деревьев, чтобы мелкие беспозвоночные мог- ли прятаться от более крупных. Учитывая небольшой период работы горелки (в описанном варианте), лучше всего устанавливать ловушки в сумерках, когда наиболее активны беспозвоночные, реагирующие на источник света. В литературе описан ряд почвенных ловушек с направляющими пластинами, в том числе и расположенными крестообразно (Чувахин, 1957; Durkis, Reeves, 1982; Reeves, 1980; и др.). Известны также различные варианты портативных светоловушек, питающихся от батареек (Nelson, Chamberlain, 1955; Escafi, 1980; Fernandez-Rubio, 1985; и др.). Однако почвенные ловушки с направляющими пластинами, снабженные источниками света, авторы предложили впервые (Цури- ков М., Цуриков С., 2001).
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 115 Описанная нами микросветоловушка позволяет дифференцированно отлавли- вать беспозвоночных и определять направление движения животных к источнику света. Отсутствие фиксирующих веществ позволяет выпускать большинство жи- вотных (в том числе редкие и полезные виды) после их учета. Наибольшую эффективность микросветоловушки показали для отлова Collem- bola, Acari и Coleoptera. Кроме того, в ловушку попадали Aranei, Diptera, Homo- ptera, Hymenoptera и Lepidoptera. В случае применения большого числа микросветоловушек и размещения их в шахматном порядке (на определенном расстоянии друг от друга) на территории одного или нескольких биотопов, можно получить данные о распределении бес- позвоночных на различных участках исследуемой территории. 2.7.4. Светоловушка для герпетобионтов Светоловушка для герпетобионтов предназначена главным образом для отлова беспозвоночных-люцифилов, не способных к полету и не попадающихся, поэтому, в светоловушки традиционных конструкций. Светоловушка (рис. 87, Л, Б) состоит из металлического или пластикового усеченного конуса (7), сосуда (2) для сбора беспозвоночных, лампы накаливания (5) (в испытанном варианте мощностью 100 Вт), патрона (4), электрического шнура (5) и штепсельной вилки (6). Конус (У) должен иметь широкое основание диаметром 500 мм, небольшую высоту (100 мм) и отверстие на вершине диаметром 80 мм. Сосуд (2) диаметром 90 мм и высотой 70 мм необходимо дополнить приспособлением (7) для крепления патрона (4) в Рис. 87. Светоловушка для герпетобионтов (по Цурикову, 20066). Обозначения см. в тексте.
116 В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых вертикальном положении так, чтобы лампа (5) выступала над конусом. Приспо- собление (7) проще всего сделать из проволоки (см. рис. 87). Светоловушка монтируется следующим образом. На почву нужно установить сосуд (2) и накрыть его конусом (У) с прикрепленным при помощи приспособле- ния (7) патроном (4), причем шнур (5) не должен опускаться до дна сосуда (2) (рис. 87, 5). Таким образом, подключив источник света к сети, беспозвоночные начинают двигаться к лампе (5), проваливаются в щель между краем конуса (У) и патроном (4), в результате чего оказываются на дне сосуда (2). Существенное преимущество данной конструкции заключается в возможности ее быстрой уста- новки на любой горизонтальной поверхности, включая асфальтовые дорожки и каменистые участки, где очень сложно изготовить яму для почвенной ловушки. 2.7.5. Почвенная светоловушка Почвенная светоловушка (рис. 88, Л, Б) состоит из неглубокого, но широкого стеклянного сосуда (У), отражателя (2) и источника света (5). Диаметр сосуда (У) (апробированного авторами) составлял — 350 мм, высота 100 мм, а толщина сте- нок 8 мм. Отражатель (2) изготовлен из алюминия и представляет собой воронку, широкая часть которой должна равняться диаметру сосуда (У), а к узкой стороне жестко крепится источник света (рис. 88). Светоловушка устанавливается следующим образом. Вначале в почве на ис- следуемом участке нужно выкопать округлую яму диаметром 350 мм и глубиной Рис. 88. Почвенная светоловушка (по Цурикову, 20066). Обозначения см. в тексте.
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 117 400 мм. Далее на ее дне следует закрепить отражатель (2) с источником света (5), направленным вверх. На широкий край отражателя (2) необходимо установить сосуд (7), как показано на рисунке 88, В. Сосуд (7) нужно на V4 заполнить водой с несколькими каплями жидкого мыла. Очень эффективна эта ловушка для пере- двигающихся по почве беспозвоночных. Одной из возможных причин движения беспозвоночных по направлению к светоловушке, расположенной ниже уровня почвы, может быть их привлечение яркими бликами от крыльев летающих в луче света насекомых. Кроме того, вода обладает рассеивающими свойствами, что усиливает притяжение для летящих на свет насекомых. 2.7.6. Светоловушка с сепаратором В литературе описан ряд конструкций светоловушек, имеющих направляю- щую воронку и собирающий сосуд, которые расположены под источником света (Сахаров, Струков, 1927; Williams, 1948; Плавильщиков, Кузнецов, 1952; Андреев и др., 1976; Приставке, 1979; Barlow, 1989; и др.). Основным недостатком пере- численных ловушек является наличие ядов или других веществ для фиксации беспозвоночных. Разработанная нами (Цуриков М., Цуриков С., 2001) конструк- ция светоловушки лишена этого недостатка, что позволяет выпускать после учета большинство из попавших в ловушку насекомых. Основа светоловушки с сепаратором (рис. 89) состоит из двухлитровой пла- стиковой бутылки. Подробные этапы изготовления сосуда (1) детально описаны ранее (см. «Портативная оконная ловушка»). Ловушку необходимо установить под источником света. Для повышения эффективно- сти сборов конструкцию светоловушки можно допол- нить большой воронкой (2), узкое отверстие которой нужно совместить с верхним краем сосуда (7). Наибольшую эффективность светоловушка с сепа- ратором в наших сборах показала при отлове Diptera, Lepidoptera, Heteroptera, Hymenoptera, Coleoptera, Ho- moptera, Trichoptera и Neuroptera. Кроме того, в ловуш- ку попадали Ephemeroptera, Thysanoptera, Dermaptera, Aranei, Acari, Collembola и Blattoidea. Широкое внедрение описанной выше конструкции светоловушки позволит избежать массовой гибели беспозвоночных без потери качества проводимых ис- следований. Рис. 89. Светоловушка с сепаратором (по М. Цури- кову, С. Цурикову, 2001). Обозначения см. в тексте. 2.7.7. Комбинированные ловушки Очень часто для повышения эффективности любо- го из типов ловушек используются комбинированные.
118 ф- В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Рис. 90. Общий вид электро- уловителя ЭСЛУ-3 (по Голу- бу и др., 1980). Одним из наиболее эффективных способов увели- чения уловов является применение УФ-излучения в комбинации с половыми аттрактантами. На рис. 90 изображен электроуловитель типа ЭСЛУ-3, в котором наряду с привлекающим действием света могут быть использованы аро- матические и половые приманки. Эти вещества помещаются в специальную чашку, подвешенную внутри воронки под источником света. Принцип действия электроуловителя заключается в том, что привлеченные светом и приманками насекомые, кружась вокруг источника света, наталкиваются на радиально расположенные плоскости, теряют ориентацию, падают в воронку, по которой ска- тываются в сосуд для сбора насекомых. В этот сосуд наливается вода, на поверхности которой на- ходится тонкий слой керосина. Добавление в воду керосина, 1 г хозяйственного мыла (порошка) или 3-5 капель эмульгатора ОП-7 вызывает быструю гибель насекомых. 2.8. Сбор герпетобионтов, почвообитающих насекомых, обитателей дупел, муравейников и экскрементов 2.8.1. Ручной сбор Очень часто, особенно в экспедиционных условиях, герпетобионтов, обитате- лей мхов, прикорневой части растений, корней и т.п. собирают, ложась на землю, на обследуемый субстрат или рядом с ним и, разгребая подстилку, выбирают из нее насекомых эксгаустером или ловчей пробиркой. В случае обследования корней растений следует полностью или частично выдергивать их из почвы или же сильно расшевелить их, так чтобы образовались небольшие пустоты между корнями и по- чвой. Часть насекомых (клопы, цикадовые, тли, жуки, муравьи) довольно быстро начнут подниматься на поверхность почвы, где их и выбирают эксгаустером. Очень хорошие результаты при проведении фаунистических сборов и количе- ственных учетов дает снятие подстилки и мхов с помощью туристической склад- ной лопатки, малой саперной лопаты, скребка и т.п., с последующим помещением снятой подстилки в обычный полиэтиленовый пакет. Срезанные слои подстилки аккуратно укладываются в пакет друг на друга. При проведении количественных учетов на почве лопаткой предварительно намечается квадрат со стороной 50 см. Площадь снятого для исследования слоя подстилки (мхов) при этом будет состав- лять 0,25 кв. м. Принесенные в лабораторию пробы разбираются на куске белого
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 119 ватмана небольшими порциями, вытряхивая и постукивая срезанным участком дерновины о ватман. Выпадающие и выскакивающие мелкие насекомые быстро собираются эксгаустером, а крупные — руками, с последующим помещением насекомых в морилку. В случае количественных учетов 4-кратная повторность учетных срезов почвы обеспечивает количественную пробу на 1 кв. м. При прове- дении фаунистических сборов этот метод очень удобен в ранневесенний и осенний периоды: он позволяет избежать переохлаждения организма сборщика во время долгого лежания на почве при ручном сборе насекомых. 2.8.2. Энтомологическое сито Стандартное энтомологическое сито (рис. 91) состоит из двух обручей, из- готовленных из металлических полосок или толстой проволоки, к верхнему из которых приделаны две ручки, а на нижнем натянута металлическая сетка. Со- единены они матерчатым мешком, при этом обруч с ручками вшит в его верхний край, а обруч с сеткой — внутри так, что перегораживает мешок посредине. Снизу мешок остается незашитым, но прикрепляется тесьма для завязывания. Обручи для сита делают меньше, чем для сачка, диаметром 25-30 см, нередко не круглые, а квадратные. Верхний обруч иногда делают складным, на двух шарнирах. Сетка должна иметь отверстия диаметром 2,5-3 мм. Материя для мешка должна быть плотная: полотно или бязь. Пользуются ситом следующим образом. Через верхнее отверстие с обручем в сито накладывают подстилку, т. е. опавшую листву, мох, труху и пр. Затем сито берут за ручки и трясут, при этом мелкий сор вместе с мелкими животными, оби- тающими в нем, просеивается в нижнюю завязанную часть мешка, а в верхней — остаются крупные части растений и иногда крупные насекомые, которых от- туда выбирают. Труху из нижней части пересыпают в специально заготовленные бязевые мешочки (15 х 10 см), завязывают и для экономии времени разбирают позже, в лаборатории. Пробы из разных мест и условий кладут в отдель- ные мешочки. В них нужно обязательно класть вместе с пробами этикетки с кратким указанием — что, когда и кем просеяно. Разборку их не следует откладывать надолго, так как мелкие насекомые в них погибнут, и их будет очень трудно обнаружить. При необходимости хранения таких проб свыше недели насекомых высыпают в банки, добавляют еще подстилки до половины банки и время от времени слегка увлажняют; сверху банки завязывают марлей Рис. 91. Энтомологическое сито. в несколько слоев.
120 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых 2.8.3. Почвенные сита Для сбора беспозвоночных из лесной подстилки, мха, сильно разложившейся древесины, сухого навоза, речных наносов, растительных остатков, грибов, слоев почвы при почвенных раскопках и т.д. рекомендуется просеивание субстрата на почвенных ситах. Лучше использовать набор, или колонку, почвенных сит, в ко- торый входят сита с различным размером ячеек (рис. 92). Рис. 92. Колонка почвенных сит (по Тихомировой, 1975). А — в собранном виде; Б — разобранная. 2.8.4. Ловушка для сбора и изучения миграций насекомых-герпетобионтов («миграционная» ловушка) Существуют описания многочисленных конструкций почвенных ловушек с барьерами для увеличения сборов (Макаров, Черняховская, 1990; Reeves, 1980, Durkis, Reeves, 1982; и др.). Для сбора мигрирующих полевых вредителей (в том числе и педобионтов) рекомендуется применять ловчие (заградительные) канавы с колодцами (Чувахин, 1957; Фасулати, 1971; Разумовский и др., 1984). Извест- ны также способы исследования миграций гусениц по поверхности почвы при помощи раскладывания жердей, намазанных клеем, а также использование для этой цели рвов с ямами (Брамсон, 1896). В определенной мере можно составить представление о сроках и характере миграций герпетобионтов на основе учетов с помощью обычных ловчих канав или канав с углублениями (колодцами). Однако эти способы лова насекомых-герпетобионтов не дают возможности установить направление их миграций. Описание миграционной ловушки конструкции М.Н. Цурикова с жестяными направляющими пластинами, предназначенной для сбора насекомых-герпето-
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 121 Рис. 93. Миграционная ловушка (по М. Цурикову, С. Цурикову, 2001). Обозначения см. в тексте. бионтов и изучения направлений их миграций, описана в работах В.Б. Голуба, М.Н. Цурикова, Е.В. Канюковой (1994) и М.Н. Цурикова, С.Н. Цурикова (2001). Миграционная ловушка (рис. 93) состоит из прямоугольных направляющих пластин, изготовленных из жести (7), размером 580 х 100 мм, подвижно и зиг- загообразно связанных друг с другом своими узкими сторонами при помощи колец (2). Угол между двумя смежными пластинами составляет примерно 90°. Эта система собирающих пластин погружается для фиксации в почву на глубину 10-20 мм. В каждом из внутренних углов между двумя пластинами помещается пустой стеклянный сосуд для сбора беспозвоночных (3), погруженный в землю так, чтобы его верхний край был вровень с поверхностью почвы. В случае использования для сбора толстостенных стеклянных сосудов конструкцию не- обходимо дополнить приспособлением (рис. 93, Б), состоящим из изогнутой пластины (4) размером 100 х 40 мм и упора (5), изготовленного из проволоки диаметром около 2 мм. Приспособление устанавливается таким образом, чтобы мигрирующие беспозвоночные не могли избежать попадания в сосуд (3). На дно каждого из сосудов целесообразно положить кусочки картона или несколь- ко листьев дерева, чтобы мелкие беспозвоночные прятались под ними от более крупных. Описанная ловушка позволяет дифференцированно отлавливать беспоз- воночных, перемещающихся с каждой стороны систем направляющих пластин, и судить о направлениях миграции герпетобионтов. Нами с использованием такой ловушки получены очень интересные и даже уникальные данные об особенно- стях суточной и сезонной миграции некоторых представителей полужесткокры- лых и жесткокрылых насекомых. Наряду с возможностью изучения количественного и качественного состава беспозвоночных-герпетобионтов, а также их суточных и сезонных миграций, описанная ловушка может быть использована в практике защиты растений для контроля над массовыми миграциями вредителей, передвигающихся по почве (на- пример, гусениц лугового мотылька) и энтомофагов (жужелиц и др.).
122 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых 2.8.5. Четырехсекторная миграционная ловушка Она представляет собой одну из модификаций почвенной миграционной ловушки. Ловушка (рис. 94, A-В) состоит из крестообразно скрепленных направ- ляющих пластин из жести (7) и 4 емкостей для сбора беспозвоночных (2). Нами использовались ловушки, направляющие пластины которых были изготовлены из двух полос жести размером 250 х 100 мм. Такие ловушки представляют собой усовершенствованные крестообразные ловчие канавки (Тихомирова, 1975). Ловушка позволяет дифференцировано отлавливать беспозвоночных, движу- щихся с разных сторон через место установки ловушки, что позволяет судить о направлениях миграций животных. Рис. 94. Четырехсекторная миграционная ловушка (по М. Цурикову, С. Цурикову, 2001). Обозначения см. в тексте. 2.8.6. Ловушка для мелких беспозвоночных-герпетобионотов Ловушка (рис. 95, А, Б) состоит из кружков (7 и 2), изготовленных из поли- этиленовой пленки черного цвета диаметром 130 мм, 10 картонных кружков (5) диаметром 100 мм, тонкого гвоздя (4) длиной 30 мм и диаметром 1 мм, а также резинового квадратика (5) размером 10x10x3 мм. в центре каждого из кружков необходимо проделать отверстие диаметром 1 мм. Затем на гвоздь (4) нужно по- следовательно надеть полиэтиленовый кружок (7), 10 картонных кружков (3) и полиэтиленовый кружок (2). Далее острым концом гвоздя (4) следует проколоть в центре квадратик из резины (5), и зафиксировать конструкцию. Для повышения эффективности уловов целесообразно каждый из картонных кружков (3) слегка смять, чтобы их поверхности были неровными. Описанная ловушка устанавливается на почве и служит в качестве временного убежища для беспозвоночных. Осматривать ловушку целесообразно не чаще чем 1 раз в 2-3 суток. Для анализа материалов проведенных учетов ловушку надо по- местить в полиэтиленовый пакет и в таком виде доставить в лабораторию. Здесь сначала осторожно снимается резиновый квадратик (5), а затем, последовательно снимаются с гвоздя (4) кружки, тщательно осматривая каждый из них.
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 123 Наибольшую эффектив- ность ловушки для мелких бес- позвоночных-герпетобионтов показали для сбора Collembola и Acari. Кроме того, в ловушки попадали Aranei, Coleoptera, Heteroptera, Diptera, Homoptera, Blattoidea, Hymenoptera, Lepi- doptera и Opiliones. Исследо- вание содержимого ловушки в лаборатории позволяет обна- ружить самых мелких беспоз- воночных. Описанная ловушка имеет наибольшую эффектив- ность в наименее пригодные периоды для сбора беспозво- ночных общепринятыми мето- диками. Ее применение позво- ляет проводить качественные исследования в зимний период, а также во время длительных дождей. Рис. 95. Ловушка для мелких беспозвоночных-гер- петобионотов (по М. Цурикову, С. Цурикову, 2001). Обозначения см. в тексте. 2.8.7. Почвенная ловушка с сепаратором Существенным недостатком большинства ловушек является использование ядов для фиксации беспозвоночных (формалин, этиленгликоль и др.). Кроме мас- совой гибели животных, применение фиксирующих веществ неизбежно приводит к искажению результатов, так как большинство фиксаторов оказывает на беспозво- ночных или антифидантное, или аттрактивное действие. Кроме того, многолетнее применение почвенных ловушек, которое обычно осуществляется на модельных участках вблизи научных стационаров, причиняет прямой ущерб энтомофауне и дополнительно искажает полученные результаты. Так, например, использование ловушек Барбера только на одном участке Усманского бора (Воронежская область) в течение 5 лет приводило в среднем к вылову и умерщвлению более 3600 особей разных видов беспозвоночных. Поэтому возникает вопрос о применении почвен- ных ловушек без фиксаторов. Изготовление основного элемента почвенной ловушка с сепаратором (рис. 96) подробно описано ранее (см. «Портативная оконная ловушка»). Данную ловушку надо погрузить в землю до уровня ее верхнего края, чтобы отлавливать мигрирующих беспозвоночных-герпетобионтов. Благодаря системе сепарирования беспозвоночных по размерам, резко снижается число уничтожен-
124 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Рис. 96. Почвенная ловушка с сепаратором (по М. Цурикову, С. Цурикову, 2001). ных мелких насекомых крупными хищниками. При этом интервалы между учетами могут достигать 5 суток. Почвенные ловушки с сепаратором показали наиболь- шую эффективность для отлова имаго и личинок Coleoptera, имаго Collembola, Aranei, Acari, Hymenoptera, Heteroptera и Homoptera. Кроме того, в ловушки попадали: Diptera, Opiliones, Thysanoptera, Julidae, Lepidoptera (большей частью гусеницы), Orthoptera, Lumbricomorpha и Isopoda. В представленной авторами конструкции почвенной ловушки фиксаторы не предусмотрены, что позволяет вы- пускать в природу большинство беспозвоночных после проведения их учета (если не требуется точное определение всех беспозвоночных). 2.8.8. Устройства для проведения экспресс-анализа состава и численности герпетобионтов Нередко, особенно в экспедиционных условиях, при проведении эколого-фа- унистических и биоценологических исследований, возникает необходимость в проведении экспресс-анализа состава и численности всей герпетофауны или от- дельных таксономических групп. Большие, громоздкие биоценометры не всегда при этом оказываются удобными в работе. Нами предлагаются конструкции двух компактных устройств, предназначенных для оперативного ограничения стан- дартных по площади участков поверхности почвы и проведения учетов и сборов в подобных полевых исследованиях. 2.8.9. Прямоугольная рама для проведения экспресс-анализа состава и численности герпетобионтов Рама (рис. 97, А, Б) состоит из двух тонких стальных прямоугольных пластин (7 и 2) размером 540 х 60 мм, двух брусков из дерева (5 и 4) размером 100 х 30 х 20 мм и прямоугольной пластинки (5) размером 100 х Ю0 мм, изготовленной из жести. На последней необходимо сделать бортик шириной 40 мм, отогнутый под углом 90° к плоскости этой пластинки. Пластины (7 и 2) крепятся к брускам (5 и 4) при помощи гвоздей (6), как показано на рис. 97, Б. Внутренняя площадь из- готовленной таким образом рамы составляет V часть 1 м2. Описанное устройство предназначено для оперативного ограничения опреде- ленного участка почвы, и его нужно применять следующим образом. Установив
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 125 Рис. 97. Рама для экспресс-анализа состава и численности герпетобионтов (по М. Цурикову, С. Цурикову, 2001). Обозначения см. в тексте. раму на поверхность почвы необходимо быстро погрузить нижние края пластин (7 и 2) на глубину 20-30 мм. Для этого нужно, нажимая на бруски (3 и 4) сделать несколько скользящих движений вдоль плоскостей пластин (7 и 2) в обоих на- правлениях на расстояние 50-100 мм. Затем следует ограничить внутренний объем рамы со стороны бруска (4), для чего край пластины (5) нужно погрузить в почву на глубину 20-30 мм (рис. 97, А). Экспресс-анализ состава и численности герпетобионтов проводится методом разборки верхнего слоя почвы, дерна и растительных остатков, оказавшихся внутри ограниченного рамой участка. Начинать осмотр необходимо со стороны бруска (3) и, двигаясь в сторону пластины (5), следует осматривать поверхность почвы и ворошить растительные остатки, учитывая беспозвоночных. При этом большинство растений остается нетронутым, что позволяет до минимума сокра- тить ущерб, причиняемый исследуемым фитоценозам. Кроме того, фиксировать для дальнейшего изучения можно только неизвестные исследователю виды, а прочие — оставлять в месте обитания. 2.8.10. Устройство для проведения экспресс-анализа на круге Устройство для экспресс-анализа состава и численности герпетобионтов (рис. 98) состоит из стального стержня (7) длиной 330 мм и диаметром 8 мм (одна из вершин которого заострена, а к противоположной прикреплен пластиковый сфероид или шар диаметром около 50 мм), и ножа (2) длиной 80 мм и шириной в средней части 35 мм, приваренного к стержню (3) длиной 40 мм и диаметром 15 мм. К верхнему концу последнего прикрепляется пластиковый сфероид или шар (4) диаметром около 50 мм, а также пластинки (5), один край которой свернут в трубку с внутренним диаметром 9 мм, а противоположный приварен к стержню (3) так, чтобы плоскость ножа была расположена перпендикулярно плоскости
126 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Рис. 98. Устройство для экспресс-анализа состава и численности герпетобионтов (по М. Цурикову, С. Цурикову, 2001). Обозначения см. в тексте. пластинки (5). Стержень (7) необходимо вставить в трубку на краю пластинки (5) (рис. 98, А, В). Затем острый конец стержня (7) следует погрузить в почву на глу- бину 200 мм, после чего левой рукой необходимо придерживать шар на стержне (7), а правой рукой взять шар (4) и сделать несколько круговых движений, по- гружая нож (2) в почву на глубину 50-60 мм (рис. 98, В, Г). Далее надо извлечь стержень (7) и нож (2) из почвы, а в круговой разрез быстро вставить гибкую стальную прямоугольную пластину (б) размером 600 х 100 мм как показано на рис. 98, Д. Расстояние между плоскостью ножа (2) и стержнем (7) у изготовлен- ного нами устройства составляет 140 мм. Однако целесообразно это расстояние подобрать таким образом, чтобы величина площади круга ограниченного при по- мощи устройства была кратной 1 м2 (например, V ). Экспресс-анализ состава и численности герпетобионтов проводится методом ручной разборки верхнего слоя почвы, дерна и растительных остатков, оказавших- ся внутри ограниченного пластиной (б) участка. Начинать осмотр необходимо со стороны не загороженного края и двигаться к противоположной стороне участка, записывая всех обнаруженных беспозвоночных. При этом большинство растений остается нетронутым, что позволяет до минимума сократить ущерб, причиняемый исследуемым биотопам. Кроме того, фиксировать для дальнейшего изучения мож- но только неизвестные исследователю виды, а прочие следует оставлять в месте обитания. 2.8.11. Ловчие ямы, канавки и простейшие почвенные ловушки Ловчие ямы и почвенные ловушки широко используются при отлове насеко- мых, движущихся по поверхности почвы (герпетобионтов). Ловчие ямы выкапы- вают прямоугольной формы глубиной 30-35 см, размером 25 х 25 см, лучше — 50 х 50 см. Канавки выкапывают той же глубины, шириной 20-30 см и длиной,
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 127 зависящей от целей исследования и физических возможностей исследова- теля, делающего канавки. На дно ям и канавок нередко помещают различные приманки или просто банки с фикси- рующей жидкостью. Осматривают ямы по утрам, выбирая в морилку попавших насекомых. Для увеличения эффективности сборов насекомых-герпетобионтов поч- венные канавки можно располагать крестообразно, как показано на рис. 99. Модификациями ловчих ям являют- ся почвенные ловушки (рис. 100, 101) часто называемые ловушками Барбе- ра — по фамилии автора, очевидно, впервые опубликовавшего результаты Рис. 99. Крестообразная ловчая канавка (по Тихомировой, 1975). 1 — канавка; 2 — банка; 3 — крестовина из реек; 4 — кучка земли; 5 — устройство крестовины. исследования комплексов членистоногих, собранных с помощью подобных ло- вушек (Barber, 1931). Банка или стакан емкостью 0,5-0,7 л вкапывают в землю так, чтобы кромка стакана была на уровне поверхности почвы или чуть ниже. В стакан наливают фиксатор, обычно 4% формалин. Без фиксатора ставить по- чвенную ловушку нельзя, иначе попавшие туда жужелицы, муравьи и другие хищные насекомые очень быстро уничтожат ценный материал. Как правило, в одном биотопе ставят не одну банку, а серию — 3-5 или более. Такая серия по- чвенных ловушек соответствует количеству повторностей в обследуемом биотопе. Оставляют ловушки, в зависимости от целей исследований и возможностей для проведения проверки, на ночь, сутки или несколько суток. При выставлении почвенных ло- вушек на несколько суток существует опасность заливания их дождевой водой, вплоть до заполнения и пере- ливания через край (разумеется, если это не пустыня). При этом концентра- ция формалина сильно снижается, и собранный материал может пропасть. Для предотвращения заливания ловуш- ки водой можно прикрывать ее сверху приподнятой над горловиной банки «крышей», изготовленной, например, из отрезанной и перевернутой вершинной части пластиковой бутылки с навинчен- Рис. 100. Двойная банка с воронкой (по Тихомировой, 1975). 1 — наружный цилиндр; 2 — воронка; 3 — банка с фиксирующей жидкостью; 4 — дно, канавки.
128 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Рис. 101. Типы ловчих ям с банкой-ловушкой для сбора насекомых. А — общий вид ловушки; Б — схема расположения банки в яме. ной крышечкой. Такая «крыша» укрепляется стойками над ловушкой-банкой или прикрепляется непосредственно к ней. При проверке ловушек формалин вместе с собранными насекомыми сливают в заранее приготовленные емкости, из каждой ловушки в отдельную емкость, и бросают туда первичную экологическую этикетку с указанием места сбора, даты сбора и конкретного биотопа. Ловушки после выбора материала заполняют новым, заранее приготовленным, раствором формалина. При установки ловушки на старое место надо обязательно удостовериться, что ее края не выступают над поверх- ностью почвы, т.к. при извлечении ловушки из ямки, в последнюю обязательно попадет хотя бы немного земли. Для повышения уловистости почвенных ловушек в качестве приманок в них часто используют различные пахучие субстраты (патоку, забродившее пиво, под- гнившие продукты питания, экскременты и т.п.), экстракты полового аттрактанта или синтетические половые феромоны и др. При этом надо помнить, что соотно- шение численности разных видов, попавших в почвенную ловушку с приманкой, не будет соответствовать естественному соотношению численности видов в дан- ном биотопе, т.к. представители различных систематических групп в различной степени привлекаются одной и той же приманкой.
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 129 2.8.12. Почвенные ловушки с приманкой Почвенная ловушка конструкции М.Н. Цурикова с приманкой, предназначенная, главным образом, для отлова насекомых-некрофагов и копрофагов (рис. 102, А, Б) состоит из цилиндрического сосуда (7), металлического сосуда (2) и спицы (3). Сосуд (7) высотой 150 мм должен иметь внутренний диаметр на 1-2 мм боль- ше, чем внешний диаметр сосуда (2) (длиной 80 мм) для того, чтобы этот сосуд (2) легко погружался внутрь сосуда (7). В дне сосуда (2) необходимо проделать много мелких отверстий диаметром 1 мм (4), а на противоположном конце этого сосуда в 2 мм от верхнего края нужно проколоть два отверстия диаметром 1 мм (5). Дли- на спицы (3), с диаметром равным 1 мм, должна превышать диаметр сосуда (7) на 20 мм. Ловушка устанавливается и работает следующим образом. В почве на исследуемом участке вырезается углубление длиной 80 мм и диаметром, соответ- ствующим диаметру сосуда (7). На дно сосуда (7) необходимо поместить приманку (б). В краевые отверстия сосуда (2) вставляется спица (3), после чего этот сосуд вставляется в сосуд (7). Полученная ловушка устанавливается в углубление почвы так, чтобы ее края были вровень с уровнем почвы. Беспозвоночные, двигаясь на запах приманки, попадают в сосуд (2) (рис. 102, В). Данная конструкция не по- зволяет насекомым контактировать с приманкой, что с одной стороны продлевает действие приманки (она не съедается насекомыми), с другой, — облегчает выбор- ку материала (беспозвоночные не перемешиваются с приманкой). Рис. 102. Почвенная ловушка с приманкой (по Цурикову, 2006а). Обозначения см. в тексте.
130 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Рис. 103. Ловушка для медведок (по Цурикову, 2006а). Обозначения см. в тексте. Для отлова медведок и иных насекомых можно использовать специальную ловушку (рис 103). Основу ловушки (рис. 103, Л, Б) составляет суживающееся кверху металличе- ское корыто (7) высотой 200 мм с размером основания 500 х 200 мм и верхнего края — 400 х ЮО мм. Корыто (7) с приманкой (2) (например, отваренное куку- рузное зерно) нужно вкопать в почву так, чтобы его верхний край был вровень с уровнем земли. Сверху на корыто нужно положить несколько прутьев (3) диаме- тром 10 мм, после чего ловушку следует накрыть прямоугольным куском руберо- ида (4) размером 1000 х 400 мм. Благодаря рубероиду, аккумулирующему энергию солнца, нагревается корыто (7) с приманкой, что усиливает распространение запаха через щель, между корытом (7) и рубероидом (4), созданную при помощи прутьев (3). Медведки, двигаясь на запах приманки, попадают в корыто (7). Для усиления привлекательности приманки в корыто можно добавить воды. 2.8.13. Почвенная ловушка с приманкой и универсальным зажимом Описан ряд ловушек, принцип действия которых основан на привлечении бес- позвоночных приманками, в том числе и подвешенными над сосудом для их сбора (Lumeret, 1979; Bemon, 1980; и др.). Конструкция ловушки с универсальным зажимом, разработанная нами (рис. 104), отличается от конструкций, приведенных в упомянутых источниках, универсальным зажимом, благодаря которому приманка может проворачиваться, способствуя стряхиванию насекомых в емкость для их сбора. Она состоит из емкости для сбора беспозвоночных (7), проволочного каркаса, изготовленного из кольца (2) диаметром 100 мм к которому нужно прикрепить П-образную фигуру (3). Между вертикальными стойками надо растянуть резино- вое кольцо (4) (диаметром 40 мм и шириной 5 мм), натяжение которого достига- ется при помощи двух коротких отрезков тонкой резинки (5). Описанная конструкция используется следующим образом. Емкость (7) по- гружается в почву до уровня верхних краев, после чего сверху над ней следует
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 131 Рис. 104. Почвенная ловушка с приманкой и универсальным зажимом (по М. Цу- рикову, С. Цурикову, 2001). Обозначения см. в тексте. установить описанный выше каркас, как показано на рис. 104. А. Затем внутрь кольца (4) нужно поместить приманку (6). При этом ее объем может существенно варьировать, но благодаря эластичности резинок (5) приманка всегда будет надеж- но зафиксирована. Беспозвоночные, двигающиеся в сторону приманки, попадают в сосуд (7), причем даже летающие виды насекомых, так как приманка, на которую они садятся подвижно закреплена и способна покачиваться и даже поворачиваться вокруг оси резинок (5) от малейшего дуновения ветра, что приводит к стряхива- нию животных. Описанная ловушка показала наибольшую эффективность для отлова Coleo- ptera, Heteroptera, Hymenoptera и Homoptera. Кроме того, в ловушку попадали Collembola, Psocoptera, Thysanoptera, Dermaptera и Diptera. 2.8.14. Ловушка для копрофагов и некрофагов Ловушка (рис. 105, А, Б) состоит из сосуда (7), изготовленного из двух ос- новных частей пластиковых бутылок емкостью 2 л, двух поролоновых пластин в форме параллелепипедов (2) (300 х 50 х 20 мм) и прямоугольного металлического или пластикового ловчего корыта (3) размером 300 х 80 х 100 мм. Корыто (3) по- гружается в почву так, чтобы его края были ниже уровня поверхности на 20 мм (рис. 105, В). Поролоновые пластины (2) устанавливаются вдоль краев корыта (3) так, чтобы они на 10 мм нависали над ловушкой, а остальная часть располагалась вровень с уровнем почвы, для чего нужно для большей части этих деталей еде-
132 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых лать специальные углубления в земле. В стенках сосуда (7) необходимо проделать около 12 отверстий диаметром 15 мм (4) так, чтобы они располагались вдоль его противоположных сторон. Ловушка работает следующим образом. Взяв в руки две половинки сосуда (7), нужно зачерпнуть ими часть свежей «коровьей лепешки» или захватить труп животного, после чего обе половинки следует объединить, вставив одну из них в другую. Далее сосуд (7) с приманкой нужно расположить горизонтально над корытом (3). Жуки, привлеченные запахом, исходящим из многочисленных отвер- стий (4) сосуда (7), двигаются к нему, без труда продавливают канавку на мягкой поверхности поролоновой пластины (2), проникают под этот сосуд и оказываются в корыте (3) (рис. 105, В). Рис. 105. Ловушка для копрофагов и некрофагов (по Цурикову, 2006а). Обозначения см. в тексте.
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 133 2.9. Сбор почвообитающих насекомых 2.9.1. Сбор насекомых методом почвенных раскопок Сбору насекомых методом почвенных раскопок уделяется большое внимание при проведении эколого-фаунистических исследований и практических работ в области защиты растений. Он применяется в тех случаях, когда для обнаружения и установления численности личинок насекомых приходится прибегать к просмотру всей толщи почвенного горизонта. В зависимости от целей исследования, проведения раскопок в практике за- щиты растений или же биологических особенностей того или иного исследуемого вида берут почвенные пробы мелкие (до 10 см), обычные (до 45-50 см) и глубокие (до 65-100 см). Важной особенностью этого метода является то, что при обследовании почвы на разных глубинах выявляются насекомые разных таксономических и экологи- ческих групп. Так, в самом верхнем слое (до глубины 30 см) обнаруживаются коконы огневок, в том числе лугового мотылька, зерновок (гороховой плодожорки), молодых гусениц подгрызающих совок, куколок минирующих молей, ряд видов двукрылых. В слоях глубиной до 30-35 см обнаруживаются личинки щелкунов и медля- ков, гусеницы подгрызающих совок и др. Глубокие почвенные пробы (до 65 см), применяющиеся при учете некоторых вредителей, обитающих и зимующих в глубоких слоях почвы, позволяют учитывать личинок колорадского жука, хрущей, некоторых долгоносиков (серого свекловичного и др.). Для учета большинства вредных объектов достаточна глубина раскопки 20-45 см. Подробное описание последовательности действий при проведении раскопок дается В.Ф. Палием (1970). Мы приводим его здесь в мало измененном виде. Раскопки производятся следующим образом: крупные растения на избранном для раскопок месте срезают, оставляя 2-А см от поверхности почвы. Выдергивать и отбрасывать растения нельзя, так как при этом могут быть отброшены и многие насекомые и другие беспозвоночные. Затем на поверхности почвы выбирают пло- щадку требуемых размеров. Размеры площадки удобнее всего установить с помощью специально сделанной для этого квадратной или прямоугольной деревянной или металлической рамки. Можно сделать это также при помощи рейки, на которой обозначены длина, ширина и глубина предполагаемой ямки. В первом случае до- стигается большая точность, однако переносить большую раму трудно, особенно во время экспедиционных или маршрутных обследований. В. Ф. Палием (1970) сконструирована складная рама, которая в сложенном состоянии представляет собой рейку, а в разложенном — квадрат или прямоугольник. При помощи переходных отверстий и трех винтов может быть выбран необходимый размер (рис. 106). Края намеченной площадки окапывают лопатой или совком, ограничивают, а затем снимают рамку. Извлечение вредителей из почвенных проб проводится методами ручной выборки, просеивания и промывки (флотации).
134 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Рис. 106. Переносная рамка для раскопок. 1 — в рабочем положении, 2 — сложенная для переноски (по Палию, 1970). При проведении исследований первым методом около отграниченной площад- ки кладут лист фанеры (в условиях стационарных обследований), большой кусок светлой материи или пустой развернутый мешок (последний всегда найдется в экспедиционной автомашине). На лист фанеры, материю или мешок складывают небольшими порциями выкопанную из ямки почву и просматривают, разминая и тщательно перетирая комочки земли. Почву при этом надо рассыпать очень тонким слоем, чтобы в нем не могли укрыться мелкие насекомые. Просмотренную почву рекомендуется ссыпать в кучу и перебрать вторично перед засыпкой ямки. Так последовательно выбирают почву из ямки на всю заданную глубину и тщательно просматривают ее. При этом надо следить за тем, чтобы стенки ямки были строго отвесными, а не наклонными внутрь, то есть размер дна ямки должен строго со- ответствовать размеру, отмеренному на поверхности площадки. Пробные площадки располагаются на участке равномерно, так, чтобы обсле- довать и края, и середину участка. Пробы на обследуемом участке размещают по диагонали (особенно, если участки большие и измеряются десятками гектар; при этом первую пробу выкапывают на расстоянии примерно 20 м от края обследуе- мого участка) или равномерно по всей площади в шахматном порядке. На одно- родных участках небольшой площади пробы размещают по двум пересекающимся прямым. На узких длинных участках — окраинах дорог, вдоль оросительных каналов и т.п. — пробы размещают «змейкой». Примеры расположения проб на обследуемых участках показаны на рис. 107.
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 135 Количество почвенных проб за- висит от характера обследования, особенностей биологии обследуемого объекта или объектов и от величины участка. Как правило, чем больше площадь, тем большее число проб следует брать. При обследовании отчетливо пересеченного рельефа ко- личество проб должно быть довольно большим (обследуются разнообразные микростации), а при обследовании сглаженного или равнинного рельефа количество проб может быть неболь- шим (в пределах десяти, часто 6-8). Во втором случае количество проб зависит только или почти только от обследуемой площади. Если вредите- ли встречаются отдельными очагами, число проб следует увеличить. На- против, если вредители встречаются в большой численности и распреде- Рис. 107. Различные типы расположения почвенных проб на обследуемых участках, ляются по участку равномерно, число почвенных проб можно уменьшить. На участке с однородным раститель- ным покровом пробы размещают использующиеся при проведении учетов вредителей сельскохозяйственных культур (по Палию, 1970). равномерно в шахматном порядке или по диагоналям поля. Наоборот, на участке с выраженным рельефом пробы располагают в соответствии со стадиальными различиями, часто неравномерно. При проведении почвенных раскопок следует обращать максимальное внима- ние на тщательность и качество просмотра выбираемой из ямки почвы. Для придания большей объективности при просмотре почвы были предложены различные приспособления и методы. Широко используется метод просмотра по- чвенных проб с использованием почвенных сит. Почву накладывают небольшими порциями на сито, которое потряхивают, и она постепенно просыпается на подо- стланный мешок. Оставшиеся комочки растирают. Через короткие промежутки времени просеянную землю осматривают, выбирая упавших насекомых. Крупные представители почвенной фауны остаются сверху на сите. Сита помогают достичь значительно большей тщательности и объективности в работе. Однако просматривать увлажненную, сырую землю с ситами невозможно, так как ячейки очень быстро забиваются и сита требуют прочистки; иногда это бывает так часто, что просмотр практически становится невозможным. Поэтому сита применимы лишь при тщательных стационарных исследованиях.
136 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Метод промывки (флотации; см. ниже) в практике защиты растений применя- ется для учета легко всплывающих объектов — яиц озимой мухи, опомизы, пше- ничного трипса, пупариев свекловичной мухи и др. Широко распространенная в практике защиты растений методика промывки проб в полевых условиях обычно заключается в следующем. Три металлических таза заполняют до половины водой. В первый таз погружают почвенную пробу и тщательно размешивают палочкой. Затем погружают во второй таз вторую пробу и тоже размешивают. В третий таз погружают третью пробу, которую также перемешивают. К этому времени значи- тельная часть насекомых в первом тазу всплывает. Их собирают с поверхности воды в пробирку и снова перемешивают пробу. Так же поступают со второй и третьей пробами. После этого снова возвращаются к первому тазу и собирают остальных насекомых, всплывших после вторичного перемешивания. Затем то же делают со второй и третьей пробами. Почвенные обследования в системе мероприятий по защите растений обычно проводят осенью и весной. При этом устанавливается зимующий запас вредителей и его состояния до зимовки и после нее. Кроме того, может возникнуть необхо- димость в проведении почвенных раскопок летом, например, для установления причины выпадения растений на посевах пропашных культур в начале лета или для выявления численности гусениц подгрызающих совок на парах перед посевом озимых во второй декаде августа и в некоторых других случаях. Для взятия почвы сконструированы также специальные буры. Один из них, нашей конструкции, описан ниже. 2.9.2. Ловушка для сбора и изучения миграций почвообитающих насекомых Ловушка для изучения миграций педобионтов (рис. 108, А, Б) состоит из 8 тонких металлических пластин (7) размером 150 х 400 мм, 7 цилиндров (2) из жести высотой 150 мм и диаметром 75 мм, имеющих продольный разрез шириной 10 мм, 7 крышек из жести (3) диаметром 90 мм и 7 цилиндрических емкостей (4) высотой 110 мм и диаметром 73 мм (стаканы объемом 250 мл). Для установки ло- вушки необходима лопата или острый нож с длинным лезвием, который можно за- менить буром, способным прорезать в почве отверстие диаметром 75 мм. Выбрав место для установки ловушки, лопатой необходимо сделать разрез в почве длиной 400 мм и глубиной 150 мм, в который погружается пластина (7) таким образом, чтобы ее верхний край был вровень с поверхностью почвы. Отступив на 10 мм от каждого из концов погруженной в почву пластины, под углом в 90° по отноше- нию к ее плоскости устанавливаются еще 2 пластины. В результате повторения описанной операции еще несколько раз, участок почвы зигзагообразно разделяется пластинами, с оставлением лишь щели шириной 10 мм. Снаружи от каждого из углов, образованных смежными пластинами, ножом или буром прорезается вер- тикальное отверстие диаметром около 75 мм и глубиной 260 мм. Далее в каждое из полученных отверстий погружается по одному цилиндру (2) таким образом,
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 137 Рис. 108. Ловушка для изучения миграций педобионтов (по М. Цурикову, С. Цу- рикову, 2001). Обозначения см. в тексте. чтобы разрез совпадал со щелью между смежными пластинами (7) (рис. 108, В), а верхний край был вровень с поверхностью почвы. В отверстия вставляются ем- кости (4) при помощи специального приспособления (5) длиной 30 мм, по форме напоминающего ножницы, принцип работы которого заключается в следующем. При сближении ручек противоположные вершины приспособления, погруженные на V глубины в емкости (4), расходятся в разные стороны, упираются во внутрен- ние стенки и таким образом позволяют опускать и поднимать емкость для сбора беспозвоночных. На вершины приспособления (5) целесообразно надеть короткие обрезки резиновой трубки соответствующего диаметра, чтобы улучшить сцепление при манипуляциях с емкостью (4). Сверху отверстия в почве закрываются крыш- ками (3) и засыпаются тонким слоем почвы или растительными остатками для того, чтобы исключить попадание в ловушку беспозвоночных, перемещающихся по поверхности почвы. Принцип отлова почвообитающих насекомых заключается в следующем. Пе- добионты, мигрирующие в почве на глубине до 150 мм, сталкиваются с направля- ющими пластинами (7), движутся вдоль этой преграды и через щель цилиндра (2) попадают в емкости (4). На дно последних целесообразно положить несколько кусочков картона или просто пару листочков, сорванных с дерева, чтобы мелкие беспозвоночные могли укрыться от хищников. Ловушки для изучения миграции педобионтов лучше всего осматривать ежедневно. Однако если конструкцию емко- стей для сбора беспозвоночных слегка усложнить, разделив объем каждой из них на 3 секции двумя горизонтальными сетками с различным диаметром отверстий (чтобы крупные, средних размеров и мелкие беспозвоночные были изолированы друг от друга), то интервал между учетами можно увеличить до 5 суток.
138 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых 2.9.3. Бур для оперативной установки почвенных ловушек При установке ловчих банок, цилиндров и других емкостей в качестве по- чвенных ловушек приходится делать углубления в почве, часто задерненной и пронизанной корнями растений, в том числе деревьев и кустарников. Чаще всего энтомологи делают эти углубления обычной лопатой, малой саперной или склад- ной туристической лопаткой. Иногда для этой работы используется большой нож. Если ловушек надо поставить значительное количество и, тем более, периодиче- ски менять их местоположение, то такая работа сопряжена со значительными трудностями. Предлагаемая нами конструкция бура для изготовления углублений (Цуриков М., Цуриков С., 2001) для почвенных ловушек позволяет значительно облегчить этот труд. Для изготовления бура (рис. 109, Л, Б) потребуется стальной стержень (7) длиной 420 мм и диаметром 10 мм; изогнуть его, как показано на рис. 109, Б, предварительно вставив в наибольший из отрезков стальную трубку (2) длиной 120 мм и внутренним диаметром 11 мм. К верхнему концу стержня (7) нужно подвижно прикрепить пластиковый шар (3) диаметром 70 мм так, чтобы он мог свободно проворачиваться вокруг оси стержня (7). В 3 мм от противоположного конца стержня (7) необходимо просверлить отверстие диаметром 5 мм, ось кото- рого должна быть перпендикулярна плоскости изгиба стержня (7). Далее следует Рис. 109. Бур для изготовления углублений для почвенных ловушек (по М. Цури- кову, С. Цурикову, 2001). Обозначения см. в тексте.
Глава 2. Сбор наземных насекомых 139 взять стальной стержень (4) длиной 380 мм с диаметром 14 мм и заострить 25 мм его вершинной части. Затем следует изготовить 2 стальные полукруглые пластинки (5 и б) радиусом 50 мм и толщиной 2 мм, к которым надо приварить пластинки (7 и 8), размеры и место прикрепления которых показаны на рис. 109, В. В 25 мм от заостренной вершины стержня (4) нужно приварить пластинки (5 и 6) так, как показано на рис. 109, Г, причем внутренние края пластинок (5 и б), а также режу- щие края пластинок (7 и 8) необходимо остро заточить. К противоположному от пластин (5 и б) краю стержня (4) нужно приварить стальной желоб (9) (размеры и место сварки см. на рис. 109, Д). Далее необходимо найти кусок стальной трубки (10) длиной 30 мм с диаметром 17 мм и пружину (77) такого же размера, длиной 50 мм, изготовленную из проволоки с диаметром около 1 мм. Пружину (77) и трубку (70) надо надеть на вершину стержня (7), который нужно прикрепить к желобу (9) при помощи заклепки (72) так, как показано на рис. 109, Е. Пружина (77) служит для удержания трубки в положении, фиксирующем конструкцию бура в разложенном состоянии. Если трубку (70) снять с желоба (9), то бур можно сло- жить вдвое, как показано на рис. 109, Л. Несмотря на определенную сложность в изготовлении, бур значительно облег- чает и ускоряет процесс установки почвенных ловушек, причем скорость бурения высока даже в почвах, изобилующих корнями или мелкими камнями. Благодаря вертикальным пластинкам (7 и 8), углубление в почве имеет ровные стенки, что также важно для быстрой и аккуратной установки ловушек. 2.9.4. Бур для взятия почвенных проб Бур для взятия почвенных проб предназначен для исследования численности и видового состава почвенных беспозвоночных. Основу бура (рис. ПО, Л, Б) состав- ляют 2 створки (7) и (2), изготовленные путем продольного разрезания стальной трубы диаметром 80 мм и длиной 200 мм. Один из концов створок (7) и (2) необходимо срезать под углом 20 градусов и вдоль срезов следует приварить полукруглые пластинки (3) и (4) шириной 5 мм расположенные под прямым углом к продольным стенкам этих створок. Внутренний и вершинные края каждой из пластинок (3) и (4) нужно заострить так, чтобы получились внутренние резцы. С противоположного от резца конца к каждой из створок (7) и (2) необходимо приварить части шарнира (5) так, чтобы эти створки могли раскрываться и закрываться, образуя цилиндр (важно, чтобы в сомкнутом положении не было смещения створок в стороны друг от друга). К одной из частей шарнира (5) необходимо приварить Т-образную ручку (6) длиной 150 мм и диаметром 8 мм. На сомкнутые створки (7) и (2) надо надеть металли- ческое кольцо (7) с внутренним диаметром 78 мм, сделанное из прута диаметром 7 мм. Пользоваться буром нужно следующим образом. При ввинчивании бура в почву при помощи ручки (6) кольцо (7) постепенно сдвигается вверх, оставаясь на поверхности земли (это кольцо необходимо для первых нескольких оборотов,
140 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых так как глубже бур направляет стенки отверстия). Погрузив бур на необходимую глубину, его извлекают из почвы и кладут на горизонтальную поверхность, после чего следует снять кольцо (7) и открыть створку (рис. ПО, Б). Далее можно от- делять слои почвы и исследовать их отдельно. 2.9.5. Бур и ловушка для взятия проб из нор и дупел животных Бур для взятия проб субстрата из нор и дупел животных предназначен для исследования энтомофауны труднодоступных микробиотопов (нор и дупел жи- вотных). Бур (рис. 111, Л, Б) состоит из стального троса (7) с воротом на конце, используемом сантехниками, цилиндрической емкости (2) диаметром 100 мм для исследования нор и конусовидной емкости (3) диаметром 100 мм для дупел животных. Для прикрепления троса (7) к емкостям (2) и (3) необходимо специ- альное приспособление, которое изготавливается из 2 металлических дисков (4) и (5) диаметром 104 мм и толщиной 2 мм. Диск (4) имеет центральное отверстие диаметром 6 мм и трех отверстий диаметром 5 мм в 20 мм от центрального от- верстия. Диск (5) имеет три отверстия диаметром 5 мм, совпадающие с такими же отверстиями диска (4), а также два прямоугольных лепестка (15 х 20 мм), расположенных с противоположных сторон диска, согнутых под прямым углом к плоскости диска (5) и имеющих по одному отверстию диаметром 5 мм. Кончик
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 141 2 Рис. 111. Бур для взятия проб субстрата из нор и дупел животных (ориг.). Обозначения см. в тексте. троса (7) диаметром 5 мм нужно пропустить сквозь центральное отверстие диска (4), раскрутить жилки этого кончика на протяжении 30 мм, отогнуть их в разных направлениях под прямым углом и, приложив диск (5) так, чтобы лепестки были направлены в противоположную от троса (7) сторону, прочно скрепить оба дис- ка при помощи болтов (6) и гаек (7). К полученному таким образом наконечнику можно прикреплять емкости (2) и (3), представляющие собой цилиндрический сосуд для емкости (2) и сосуд с округленным дном для емкости (3), изготовленные из металла, толщиной 2 мм. На внешних стенках емкости (2) имеются 3 продольные прорези, не доходя- щие до конца, один из краев которых отогнут на 10 мм, что обеспечивает захват субстрата при вращении емкости. Данная конструкция предназначена для нор жи- вотных и служит для соскабливания субстрата с ровных поверхностей. На внеш- них стенках емкости (3) продольные прорези приближаются к концу (не сходятся друг с другом всего на 30 мм). Как и в варианте с емкостью (2) один край отогнут, но всего на 7 мм, так как эта емкость предназначена для проникновения внутрь трухи деревьев или субстрата гнезд, что требует большей мощности при захвате органических остатков. Крепление емкостей (2) и (3) к приспособлению троса (7)
142 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Рис. 112. Ловушка для беспозвоночных- ботробионтов (ориг.). Обозначения см. в тексте. производится при помощи 2 болтов (8) и (9), ввинчивающихся в пред- варительно нарезанную резьбу в от- верстиях у основания верхнего края емкостей. Эти отверстия должны совпадать с отверстиями в лепестках диска (5). Пользоваться буром нужно следующим образом. В исследуемую нору необходимо погрузить бур, причем благодаря гибкому тросу (У) емкость (2) может проникать даже в извилистые ходы, после чего следует сделать несколько вращательных движений при помощи ворота и быстро извлечь емкость (2) из норы. Собранное содержимое можно вытряхивать сквози прорези емкости или отвинтить скрепля- ющее приспособления троса (У). Дупла животных исследуются таким же образом, но при помощи емкости (5), причем, воспользовавшись простым приспособлением в виде шеста с рогулькой на вершине, имеется возможность погружения емкости (3) в дупло на различной высоте и, воспользовавшись гибкостью троса, проводить забор пробы, не влезая на дерево. Для исследования обитателей и посетителей нор животных удобно использо- вать специальную ловушку (рис. 112). Данная ловушка состоит из сосуда (У) для сбора беспозвоночных и резиновой трубки (2). Длина и диаметр трубки (2) зависят от места расположения и диаметра норы исследуемого животного. Изготавливается ловушка чрезвычайно быстро и просто. Один конец трубки (2) прикладывается к входу в нору, а второй должен быть расположен над сосудом (У), установленным вертикально. Допустимо не- большое раскапывание входа в нору для более удобной установки ловушки. 2.9.6. Ловушка для мелких беспозвоночных мирмекофилов Ловушка для мелких беспозвоночных мирмекофилов предназначена для ис- следования энтомофауны симбионтов муравьев. Ловушка (рис. 113, А, Б) состоит из трубки (У) диаметром 25 мм, изготовленной из металлической сетки с ячейками 1,5 мм, заостренного наконечника (2), сосуда (3) для сбора беспозвоночных и де- ревянного стержня (4) диаметром 24 мм. У одной из вершин трубки (У) (в 20 мм от края) необходимо сделать прямоугольную вырезку для установки сосуда (3), представляющего собой стеклянный сосуд высотой 55 мм и внешним диаметром 23 мм (пенициллиновый пузырек). С противоположной от вырезки стороны не- обходимо просверлить отверстие диаметром 4 мм для выталкивания сосуда (3) при выборке материала. В край трубки (У) (со стороны вырезки) на глубину 20 мм необходимо вставить и скрепить заклепками наконечник (2), представляющий со-
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 143 Рис. 113. Ловушка для мелких мирмекофилов (ориг.). Обозначения см. в тексте. бой обрезок трубки длиной 70 мм и диаметром 24 мм, край которой нужно сплюснуть, после чего края срезать под углом 45 градусов. Полученный таким образом наконечник (2) следует укрепить, поставив у плоского кончика заклепку. Вершину стержня (4) необходимо погрузить в свободную часть трубки на глубину 50 мм и зафиксировать при помощи гвоздей. Ловушкой следует пользоваться следующим образом. В муравейник крупных муравьев (на- пример, рыжего лесного) необходимо погрузить ловушку, предварительно поместив в сосуд (3) приманку (сладкую или мясную). При этом, слег- ка покачивая из стороны в сторону конструкцию, ее легко можно доставить на нужную глубину. Крупные муравьи не могут проникнуть сквозь ячейки сетки трубки (7), а мелкие беспозвоноч- ные, живущие совместно с муравьями легко про- ходят внутрь и скапливаются в сосуде (3). 2.10. Сбор беспозвоночных методом флотации и на экскременты Метод флотации основан на том, что животные всплывают при замачивании почвы или экскрементов животных в жидкостях. Один из самых простых способов применения метода флотации — добавлять в почву, положенную в ванночку, воду и кисточкой или пинцетом вылавливать всплывающих беспозвоночных животных. Подкладывая под ванночку попеременно белую и черную бумагу, можно менять фон, что облегчает выборку. Этот простой и эффективный метод широко используется для выборки насе- комых, развивающихся в навозе (пластинчатоусых, карапузиков и др.), подстилке, почве, трухлявых пнях и т.п. Чаще всего для этого используется обычное металли- ческое или пластмассовое ведро, которое на 2/3 или 3/4 заполняется водой. В воду помещается исследуемый субстрат, который размешивается деревянной палкой, металлическим прутом, лопаткой и т.п. Всплывающие насекомые выбираются пинцетом и помещаются в морилку. После замаривания, перед помещением на ватный матрасик мокрых насекомых, добытых методом флотации, желательно подсушить на фильтровальной бумаге.
144 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Рис. 114. Ведро с сеткой для выборки насекомых мето- дом флотации (по Цурикову, 1998). Обозначения см. в тексте. Для более эффективного вылова насекомых методом флотации нужно взять круг из металлической сетки с ячейками 2 см (рис. 114, 2), диаметр которого должен быть немного большим, чем диаметр дна ведра (7). К этому кругу не- обходимо прикрепить груз (5), чтобы сетка обладала достаточным весом для погружения субстрата в воду. После сбора с поверхности воды насекомых, содер- жимое ведра следует вылить в плоскую емкость (например, таз), чтобы выбрать личинок и тех насекомых, которые, по каким либо причинам остались под водой. Для проведения сборов и учетов почвенной мезофауны, в составе которой содержатся личинки и имаго насекомых, олигохеты и др., нередко пользуются стационарными установками, содержащими несколько расположенных друг над другом емкостей с ситом на дне. При этом каждое ниже расположенное сито имеет ячею все меньшего диаметра. В этих установках почвенные пробы на ситах либо промываются водопроводной водой (установка Морриса), либо просеиваются (установка Ширка). Описания таких установок приводят С.П. Гапонов и Л.Н. Хи- цова (2005). В полевых условиях часто используется экспедиционная промывная установка (установка Григорьевой), включающая колонку емкостей с ситами имеющими ячею разного диаметра, как и в установке Морриса. Пользоваться такой установкой можно только вблизи водоема, из которого вода доставляется в установку ведрами. Иногда для извлечения личинок насекомых из почвы применяют взмучива- ние пробы в насыщенном растворе соли, в котором они под действием разницы в осмотическом давлении поднимаются на поверхность раствора соли, где их и собирают. Хорошо известен инстинкт многих насекомых (например, многих мух) — лёт на «свежие» экскременты животных и человека. При наличии на маршруте про- ведения сборов достаточного количества экскрементов парнокопытных млекопи- тающих, верблюдов, лошадей их желательно предварительно собрать в полиэти- леновый пакет, а затем выложить в исследуемом биотопе.
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 145 При отсутствии экскрементов диких животных (в горах, пустынях) можно воспользоваться собственными экскрементами. В основном ими привлекаются мухи. Собравшихся над экскрементами мух аккуратно накрывают сачком. Они поднимаются в вершину мешка, который приподнимают и аккуратно захлестыва- ют. Затем, забравшись в него с головой, выбирают мух эксгаустером. Первый автор настоящей книги узнал об этом своеобразном методе сбора, будучи еще студентом, в конце 1960-х годов, от известного диптеролога К.Б. Городкова в Тебердинском заповеднике и неоднократно успешно его применял. 2.11. Сбор насекомых с помощью эклекторов Сбор насекомых с помощью эклекторов основан на использовании либо од- ного из таксисов насекомых (обычно фототаксиса или термотаксиса), либо 2-3 таксисов одновременно (фото- и термотаксиса или фото-, термо- и гигротаксиса). Соответственно бывают фото-, гигро- и термоэклекторы. Кроме того, разра- ботан ряд эклекторов комбинированного характера, в основу действия которых положено проявление сразу двух или трех таксисов насекомых. 2.11.1. Традиционные полевые фотоэклекторы Подвижных насекомых из травостоя, подстилки, трухи, навоза можно вы- брать при помощи фотоэклектора. Они удобны при проведении стационарных исследований, проводимых в течение длительного времени. С их помощью можно устанавливать даты начала и конца вылета многих насекомых. Нередко фотоэклек- торы применяют при выведении паразитов из насекомых-хозяев в лабораторных условиях. В зависимости от места применения эклекторы могут быть полевыми и лабо- раторными. В литературе описан ряд ловушек, принцип действия которых основан на ис- пользовании положительного фототаксиса беспозвоночных (Плигинский, 1910а; Якобсон, 1921; Баскина, Фридман, 1926; Богданов-Катьков, 1947; Кузнецов, 1952; Фасулати, 1971; Clements, 1980; De Meyer et al., 1985, Цуриков M., Цуриков С., 2001; Thuroczy, 2001; и др.). Некоторые из них, наиболее обычные и представля- ющиеся нам наиболее эффективными, в том числе оригинальной конструкции, описываются ниже. Наиболее простая конструкция полевого домикообразного фотоэклектора пред- ставляет собой раму, на которую вместо мешка биоценометра помещают ящик с двух- или четырехскатной крышкой (рис. 115). Ящик снаружи покрывают белой эмалевой или масляной краской для предохранения от солнечного перегрева и порчи от дождя, внутри — черной масляной краской. Сбоку или сверху в ящике делают отверстие, в которое вставляют стеклянную колбу или широкую пробирку.
146 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Рис. 115. Различные конструкции полевых фотоэклекторов (по Фасулати, 1971). При работе с полевым фотоэклектором следует следить за тем, чтобы края сосуда или пробирки не выступали внутрь фотоэклектора, а были точно на уров- не его стенок, так как выступающие края мешают насекомым попадать в сосуд. Стенки сосуда, примыкающие к фотоэклектору, следует обернуть снаружи на 3-5 см черной бумагой, чтобы насекомые, попавшие в сосуд, не возвращались назад в фотоэклектор. Выставляют фотоэклектор на обследуемый участок так, чтобы сторона с сосудом была обращена на север, в противном случае сосуд будет перегреваться, и насекомые уйдут из него или погибнут. 2.11.2. Фотоэклектор для хортобионтов Специальный фотоэклектор для хортобионтов (рис. 116) состоит из фанерно- го ящика (У) без дна размером 500 х 300 х 300 мм, пластины (2) прямоугольной формы размером 492 х 292 мм, изготовленной из фанеры и имеющей 6 круглых отверстий, диаметром 25 мм, в каждое из которых вставлены пластиковые трубки (3) длиной 30 мм (соответствующего диаметра) и куска стекла (4) размером 492 х 292 мм. Пластина (2) с трубками (3) крепится при помощи тонких реек так, чтобы ее плоскость находилась в 50 мм от верхнего края ящика (7). Стекло (4) крепится в 10 мм от верхнего края ящика, причем оно должно быть съемным, для чего на одном из коротких краев ящика (7) необходимо срезать полосу фанеры шириной 14 мм с тем, чтобы стекло (4) могло вставляться в пространство между рейками (рис. 116, В). Для того, чтобы отверстия в трубках (3) можно было закрывать, целесообразно конструкцию дополнить приспособлением (5), изготовленным из цельного куска стальной проволоки диаметром 3 мм П-образной формы, которое необходимо вставить в специально сделанные отверстия (6) в коротких стенках ящика (7) в 5 мм под пластиной (2), а затем концы следует завернуть, как по- казано на рис. 116, Б. Полученный каркас из проволоки необходимо установить таким образом, чтобы с обеих сторон ящика выступали равные по длине отрезки конструкции. Затем ящик (7) необходимо перевернуть и между параллельно рас-
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 147 Рис. 116. Фотоэклектор для хортобионтов (по М. Цурикову, С. Цурикову, 2001). Обозначения см. в тексте. положенными проволочными линиями пришить ленты из плотной ткани (шторки) так, чтобы они закрывали отверстия в трубках (5). Выступающие наружу части приспособления (5) могут служить в качестве ручек для переноса фотоэклектора. Описанная конструкция предназначена для экспресс-анализа состава и числен- ности хортобионтов. Для проведения такого анализа фотоэклектор необходимо по- ставить на участок почвы с травостоем, открыть отверстия в трубках (5), для чего следует потянуть за одну из выступающих наружу частей приспособления (5); в результате шторки смещаются в сторону. Хортобионты, двигаясь к свету, попадают через отверстия в трубках (3) в пространство между пластиной (2) и стеклом (4) и здесь скапливаются. На каждом из исследуемых участков необходимо собирать беспозвоночных фотоэклектором не менее 5-10 минут. Затем шторки приспосо- бления (6) следует совместить с отверстиями в трубках (3), и фотоэклектор можно переносить на следующий участок. Для извлечения собранных хортобионтов мож- но использовать кусок плотной ткани (7) темного цвета размером 520 х 320 мм, для чего необходимо одну из его коротких сторон прикрепить к верхнему ребру
148 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых короткой стороны ящика (У) , что позволит оперативно прикрывать стекло (4), затеняя тем самым внутреннее пространство фотоэклектора. В боковой стенке ящика (У) между пластиной (2) и стеклом (4) необходимо проделать отверстие (8) для того, чтобы можно было вставлять в него стеклянную пробирку или иную ем- кость для сбора беспозвоночных. Хортобионты, двигаясь к свету, попадают через отверстие (8) в пробирку, значительно облегчая процесс сбора животных. После снятия пробирки с собранным материалом, отверстие (8) необходимо заткнуть пробкой (9). Извлечение отловленных хортобионтов можно проводить и путем удаления стекла (4). 2.11.3. Портативный фотоэклектор для сбора хортобионтов Портативный фотоэклектор конструкции М. Цурикова, С. Цурикова (2001) состоит (рис. 117, А-Г) из пластикового или жестяного диска (У), прикрепленного к деревянной рейке (2) длиной 350 мм, камеры фотоэклектора в форме сачка с мешком из плотной темной ткани (3) и проволочной рукоятки (4), пакета-на- копителя (5) и устройства для его крепления (6). Диск (У) диаметром 320 мм в центре имеет отверстие диаметром 100 мм, которое снизу может закрываться округлой пластинкой из жести (7), скрепленной с диском при помощи заклепки (S) (рис. 117, Б). К противоположному от заклепки (8) краю пластинки (7) прикрепля- ется капроновая нить (9) с кольцом (У0), а также тонкая резинка (УУ), второй конец которой крепится к заклепке (У2). Резинка (УУ) служит для закрывания отверстия в диске (У) пластинкой (7), а нить (9) — для открывания этого отверстия. Для удобства проведения описанных операций к нити (9) прикрепляется пластиковое кольцо (10) с внутренним диаметром 30 мм. Для открывания отверстия в дис- ке (У) необходимо потянуть за кольцо (10) и зацепить его за специальный крючок (УЗ), представляющий собой гвоздь диаметром 2 мм, вбитый в основной V3 части рукоятки (2), который следует слегка изогнуть, после чего нужно удалить шляпку. Для закрывания отверстия в диске (У) нужно снять кольцо (10) с крючка (УЗ). Под воздействием резинки (УУ) пластинка (7) плотно закроет отверстие, уперевшись в ограничитель (14). Каркас камеры фотоэклектора и рукоятка (4) сделаны из цель- ного куска проволоки диаметром 7-8 мм. Диаметр горловины мешка (3) должен быть 320 мм, а размеры рукоятки (4) должны равняться длине рейки (2). Обе руко- ятки (2 и 4) крепятся между собой у основания при помощи разъемного шарнира (15), служащего для того, чтобы можно было совмещать горловину мешка (3) с диском (У) (рис. 117, Л, Д). Размеры мешка (3) должны быть достаточными для того, чтобы в него помещался мешок от стандартного энтомологического сачка. Для изготовления пакета-накопителя (5) необходимо взять кусок полиэтиленовой пленки размером 300 х 300 мм, сложить ее вдвое и, проложив сверху неплавкий прозрачный материал, нужно скрепить оба слоя по линиям (рис. 117, Е) терми- ческим сплавлением утюгом или паяльником. Далее нужно провести разрезы по внешним краям линий сплавления, после чего узкий край полученной конструкции
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 149 Рис. 117. Портативный фотоэклектор для сбора хортобионтов (по М. Цурикову, С. Цурикову, 2001). Обозначения см. в тексте. завернуть внутрь и расправить, чтобы получился направленный узким концом внутрь конус (рис. 117, Ж). После этого в пакет (5) помещается вставка из про- волоки (76) диаметром 1-2 мм, назначение которой — сохранение внутреннего объема. Вершинный край пакета складывается вдвое и фиксируется скрепкой (77). Установив нижний край пакета (5) на край отверстия в диске (7) (причем края пакета должны быть распластаны в стороны на 10 мм), нужно прижать его при помощи крепления (6), один из концов которого крепится к заклепке (72), а противоположный конец надевается на специальный стержень со шляпкой (18) и надежно фиксирует пакет-накопитель (5) (рис. 117, 3). Принцип действия портативного фотоэклектора для хортобионтов заключа- ется в следующем. Проведя кошение энтомологическим сачком, нужно быстро поместить его в мешок (5) и прижать последний к диску (7). Затем следует от- крыть отверстие в диске (7), для чего кольцо (70) необходимо зацепить за крючок (73). При этом наиболее активные насекомые (Diptera, Hymenoptera, Homoptera и др.), двигаясь в сторону света, попадают в пакет-накопитель (5). Для ускорения процесса вылета насекомых целесообразно несколько раз несильно встряхнуть конструкцию. Через 2-3 минуты нужно закрыть отверстие в диске (7), извлечь
150 В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых энтомологический сачок из мешка (3) и рассмотреть его содержимое с целью учета малоподвижных и поврежденных экземпляров беспозвоночных. Обработав собранный материал первого учета, можно выпустить животных, удалить мусор из сачка, после чего описанную операцию повторить. Таким образом, сбор активных насекомых возможен в пакет-накопитель (даже из нескольких учетов), что дает возможность специалистам, при исследовании отдельных групп беспозвоночных, избежать неоправданной гибели большинства животных (отказавшись от приме- нения фиксирующих веществ для всего собранного материала). Описанная конструкция портативного фотоэклектора выгодно отличается от других подобных устройств тем, что ее применение позволяет оперативно (в течение 3-5 минут) обработать материал, собранный кошением при помощи эн- томологического сачка. Кроме того, отсутствие фиксирующих веществ позволяет выпускать большинство животных (в том числе редкие и полезные виды) после их учета. Описанная конструкция фотоэклектора применяется для исследования хорто- бионтов. В пакет-накопитель прежде всего влетают представители отрядов Diptera, Hymenoptera, Heteroptera, Thysanoptera и отдельные виды Coleoptera, а также могут попадать Orthoptera, Trichoptera, Lepidoptera и Odonata. 2.11.4. Ловушка-сепаратор (фотоэклектор) Туроци Рис. 118. Ловушка-сепаратор Туроци (по Фурсову, 2003). Ловушка-сепаратор предложена венгерским энтомологом Ч. Туроци (Thuroczy, 2001) для сборов мелких перепончатокрылых. Она с успехом может быть исполь- зована для сбора представителей многих других систематических групп насеко- мых. Ее описание и рисунок (рис. 118) даются по В.Н. Фурсову (2003). Принцип работы ловушки Туроци основан на положительном фототаксисе и отрицательном геотаксисе многих насекомых. Ловушка представляет собой металлический (сварной) контейнер с сеткой (размер ячеек 1 мм), имеющий жесткое соединение с двумя банками (насекомо- улавливателями). Наличие металлического контейнера и сетки делает ловушку более прочной и увеличивает срок ее работы. Контейнер имеет 3 отсека. В пер- вый (внешний, широкий, с подвязанным «фоторукавом») высыпаются выкошенные энтомологическим сачком насекомые вме- сте с растительными остатками (листья, пыльца, веточки и обломки растений). К первому отсеку прикрепляется матерчатый «фото-рукав» из темной (черной) ткани (длиной 15-20 см). После высыпания в «фото-рукав» растительного материала и насекомых рукав завязывается матерчатой
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 151 тесьмой. Второй отсек — конусовидный насекомоулавливатель, герметично при- крепленный к небольшой банке (0,25 л). В этом конусовидном отсеке с помощью сетки селектируются мелкие насекомые, выбегающие на свет в мелкую банку. Третий отсек — герметически прикрепленная (приваренная) сбоку от ловушки крупная банка (0,5-1,0 л), в которую от главного отсека ловушки выходит узкая трубка-насекомоулавливатель. Две банки (0,25 и 0,5 л) прикрепляются к своим металлическим крышкам, приваренным к самой ловушке. Крышка мелкой банки имеет широкое отверстие, а крупная крышка — узкое отверстие для трубки насе- комоулавливателя. Для ловушки используются банки с плотно закручивающимися (на резьбе) крышками. Сначала насекомых собирают кошением по растениям стандартным энтомоло- гическим сачком (20-30 взмахов). Затем растительные остатки с мелкими насеко- мыми внизу мешка сачка высыпают в «фото-рукав» ловушки Туроци. Насекомые, попавшие в герметичную ловушку, выбираются из-под растительных остатков и двигаются в сторону света. Мелкие насекомые (диаметром около от 0,2 мм до 1,0 мм и длиной до 5-6 мм) проходят через сепаратор-сетку (размер сетки 1,0 мм) и интенсивно выбегают в маленькую банку. Более крупные насекомые медленно проходят в крупную банку через узкую трубку-насекомоулавливатель. В крупную банку необходимо вложить несколько листов фильтровальной бумаги для уменьше- ния влажности и повреждений насекомых. Крупных насекомых можно выпустить или отдельно заморить эфиром. Сборы насекомых кошением добавляются (за- сыпаются) в ловушку через 10-15 минут (3^4 раза), каждые 45-60 минут, «фото- рукав» развязывается, а растительные остатки выбрасываются. Затем в ловушку засыпают новые пробы. В мелкий насекомосборник (маленькую банку) ловушки Туроци собираются насекомые различных групп размерами 0,2 мм — 3,0 мм — мелкие перепончато- крылые (Chalcidoidea, Ichneumonoidea, Proctotrupoidea, Cynipoidea, Bethyloidea и др.), а также мелкие Diptera, Coleoptera, Heteroptera, Collembola, Acari и некоторые другие членистоногие. В крупную банку собираются более крупные насекомые (от 5 мм до 2 см) — Orthoptera, Coleoptera, Diptera, Lepidoptera, иногда Odonata, a также много крупных пауков. В маленькую сборную банку очень быстро выбегают муравьи и пауки, а также выползают мелкие гусеницы (длиной до 5 мм). Эти и другие членистоногие могут повредить других мелких насекомых (особенно хрупких мелких перепончатокры- лых). Поэтому маленькую банку-насекомосборник необходимо как можно чаще менять (откручивать каждые 10-15 минут сборов). После снятия (откручивания) одной банки, сразу накручивается новая чистая банка. Для сборов в полевых ус- ловиях необходимо брать несколько сменных банок: 5-6 шт. маленьких (0,25 л) и 1 крупную банку (0,5 л). Насекомые в маленькой банке замариваются с помощью вложенного в банку кусочка ваты, смоченного эфиром или этилацетатом. Свежезаморенных насекомых в лаборатории с помощью кисточки высыпают из банок и раскладывают на ватных матрасиках для последующей обработки.
152 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Часть проб насекомых в полевых условиях может фиксироваться в 90-100% спир- те (внутри мелких банок). Преимущество ловушки описанной конструкции — возможность интенсивного сбора мелких насекомых (менее 1 мм, особенно мелких перепончатокрылых), что крайне затруднительно при обычном кошении, когда насекомые сильно поврежда- ются. Кроме того, как известно, мелких насекомых (размером 0,2-1,0 мм) трудно выбирать из сачка. Выборка мелких насекомых в ловушке Туроци производится как в течение 10-15 минут после сбора и «засыпки» материала, так и позднее, через 3(МЮ минут экспозиции в ловушке, так как некоторые мелкие насекомые (сбитые кошением) очень медленно передвигаются в ловушке. Одновременно мож- но использовать несколько ловушек Туроци, что значительно увеличивает выборку материала, при значительной экономии времени. Недостатками ловушки являются ее вес и достаточно большие размеры, необходимость смены многих мелких банок и их транспортировка в полевых условиях. 2.11.5. Полевые термоэклекторы Существует много конструкций термоэклекторов, но принцип работы у всех один. Он заключается в использовании термотаксиса при воздействии температуры на обитателей исследуемого субстрата. Широкое применение нашли электрические термоэклекторы для учета насекомых лесной подстилки, определения заражен- ности клещами зерна, муки и других продуктов. В полевых условиях можно использовать специальное устройство — полевой термоэклектор (рис. 119, Л, Б), состоящий из короткого конусообразного мешка (7) с металлическим обручем (2). Рис. 119. Полевой термоэклектор (ориг.). Обозначения см. в тексте.
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 153 К узкому концу мешка прикрепляется мешочек из мельничного газа (3) для сбора насекомых, главным образом жуков. К обручу мешка с помощью бельевых или самодельных прищепок (4) прикрепляется диск из жести (5), внешняя поверх- ность которого должна быть окрашена в черный цвет (желательно матовый!). На обруче мешка целесообразно сделать кольцо или крючок (6) для прикрепления конструкции к веткам деревьев и т.п. Работает конструкция следующим образом. В мешок помещается субстрат, закрывается диском, после чего конструкцию следует повесить на освещенное солнцем место так, чтобы плоскость диска была перпендикулярна к лучам солнца. Диск быстро нагревается, и жуки и другие насекомые, избегая жары, скапливаются в мешочке из мельничного газа. Здесь важно, чтобы конус мешка был коротким, так как, чем короче расстояние от диска до узкого конца мешка, тем быстрее его содержимое нагреется, и жуки покинут субстрат. В сырую или пасмурную погоду данную конструкцию следует подвеши- вать перед костром или любым другим источником тепла. Скорость извлечения насекомых в этом случае будет даже большей. Металлический диск, в какой-то мере, можно заменить полиэтиленовой пленкой черного цвета. 2.11.6. Лабораторные фотоэклекторы Самая простая конструкция лабораторного фотоэклектора, в частности, для выбора микроартропод — конус из свернутого соответствующим образом листа ватмана. Он укрепляется на стене широкой частью вверх. К нижнему узкому горлышку фотоэклектора прикрепляется пенициллиновый или другой маленький пузырек, заполненный примерно до половины высоты (или меньше) фиксирую- щей жидкостью — 70% спиртом или 4% формалином. Над фотоэклектором укре- пляется электрическая лампочка мощностью 60-100 Вт. В эклектор насыпается почвенная проба. Микроартоподы, обладающие отрицательным фототаксисом, Рис. 120. Лабораторные фотоэклекторы для извлечения микроатропод.
154 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Рис. 121. Термоэклектор в раз- резе (по Фасулати, 1971). будут стремиться уйти вглубь почвенного слоя. Опускаясь в течение нескольких дней все ниже и ниже, они будут падать в пузырек с фиксирующей жидкостью. В лабораторных условиях для извле- чения из проб мелких беспозвоночных (очень мел- ких насекомых, почвообитающих клещей) обычно используется серия эклекторов, с электрическими лампочками (рис. 120). Поскольку при выборке микроартропод с по- мощью фотоэклектора, снабженного электриче- ской лампой накаливания, используется не только световой эффект, но и тепловой, из-за некоторого нагрева воздуха над пробой, то, по существу, такой эклектор уже представляет собой аппарат комбинированного действия. Для ускорения выгонки и уменьшения смерт- ности микроартропод, в частности коллембол, А.Н. Тимофеев (1996) рекомендует использовать увлажняющую камеру, которая позволяет увели- чить градиент влажности между верхним и нижним слоями лежащей на сетке почвы. Это способствует более активному перемещению коллембол, обладающих положительным гигротаксисом. Увлажняющая камера представляет собой обычную стеклянную банку ем- костью 1 л с водой, толщина слоя которой составляет всего 0,5 см. В эту банку с водой помещаются пузырек с фиксатором эклектора и нижняя часть воронки из ватмана или картона, так чтобы она упиралась в края банки. Пары воды про- никают через стенку воронки и ее нижнее узкое отверстие и увлажняют нижние слои почвенной пробы, привлекая, тем самым, коллембол. Таким путем удается сохранить живыми многих особей, которые могли бы погибнуть в процессе их миграции сквозь высыхающие слои почвы. Лабораторный термоэклектор, работа которого основана на проявлении термо- таксиса, изображен на рис. 121. 2.11.7. Термофотоэклекторы (комбинированные эклекторы) Принцип их действия основан на одновременном проявлении фототаксиса и термотаксиса при совместном воздействии света и температуры на беспозвоноч- ных животных, находящихся в пробе. Электрические комбинированные эклекторы нашли широкое применение при проведении учетов насекомых лесной и луговой подстилки, для определения зараженности клещами, зерна, муки и других про- дуктов. Комбинированный термогигрофотоэклектор (аппарат Тулгрена) изображен на рис. 122.
Глава 2. Сбор наземных насекомых 155 Рис. 122. Термогигрофотоэклектор (аппарат Тулгрена) (по Фасулати, 1971). А — общий вид; Б — разрез (схема). 1 — цилиндр; 2 — сетка с материалом исследо- вания; 3 — воронка; 4 — банка с фиксатором. Приемы работы с ним заключаются в следующем. Отобранная проба помеща- ется на сетку под лампу мощностью 1000 Вт на расстояние 25 см. Через каждые 2 часа расстояние между лампой и пробой уменьшают на 5 см до тех пор, пока оно не станет равным 5 см. В таком положении пробу оставляют еще на 24 часа. Мелкие организмы, населяющие почву и подстилку с отрицательным термо- и фототаксисом перемещаются в более влажные нижние слои почвенной пробы до тех пор, пока не провалятся через ячейки сетки в банку с фиксатором или водой. Существует большое количество модификаций аппарата Тулгрена. Упрощен- ный вариант такого аппарата, открытая воронка которого изготовлена из картона, представляет собой обычный лабораторный фотоэклектор или, точнее фототер- моэклектор (см. выше). 2.12. Особенности сбора некоторых специфических групп наземных насекомых 2.12.1. Тли Рекомендации приводятся по Г.Х. Шапошникову (1952), В.Б. Голубу и др. (1980). Кормовые растения являются важным видовым признаком тлей, поэтому собирают их только с растения, точно указывая его вид. Для уточнения определе-
156 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых ния растения собирают гербарий. Материал, собранный с неизвестного растения, не представляет ценности. Тли часто вызывают характерные повреждения листьев, побегов, иногда ветвей и корней. Большинство видов тлей строго приурочено к определенным частям растений, и тем самым место обитания их на растениях является характерным признаком для каждого вида и должно быть обязательно отмечено. Для определения вида большинства тлей необходимо иметь взрослых бес- крылых девственниц. В отличие от личинок это наиболее крупные и широкие, интенсивно окрашенные тли, с хорошо развитыми трубочками и хвостиком, если вообще они имеются у данного вида. Надежным признаком взрослой особи является ее способность к отрождению полупрозрачных личинок. Определение некоторых видов возможно также и при обязательном наличии крылатых тлей. Если в колонии только нимфы, то из них надо воспитать крылатых. С этой це- лью срезанное растение с тлями или недозревший галл (не имеющий трещин, через которые вылетают крылатые) можно поместить в банку или большую пробирку, завязав их марлей. Для более медленного засыхания растения полезно вложить туда мокрую вату. Срезанное растение с тлями можно поставить в сосуд с водой и накрыть изолятором. Через 3-5 дней появившихся крылатых особей надо собрать. Тлей одного вида следует собирать в течение всего периода вегетации рас- тений и иметь все его формы. Таким образом, можно изучить биологию вида, в частности, его циклические связи в данной местности. Для этого необходимо собирать основательниц — весной (в начале цветения деревьев и кустарников и в период отрастания травянистой растительности), бескрылых и крылатых дев- ственниц — весной и летом, полоносок, самцов и амфигонных (яйцекладущих) самок — осенью. У однодомных видов последние обычно можно обнаружить в период завершения вегетации их растений-хозяев. Осенние формы двудомных видов лучше собирать на листьях деревьев и кустарников (первичный хозяин) в период листопада, когда тли возвращаются с травянистой растительности и от- кладывают зимующие яйца. Во время экскурсий тлей удобно собирать вместе с кормовым растением в большие пробирки (например, длиной 10-15 см и диаметром 3 см), помещая туда этикетки с указанием места и даты сбора, вида растения. В лаборатории сборы обрабатывают. Если материал нельзя разобрать немедленно, то его можно хранить несколько дней в холодильнике. При разборе материала тлей предва- рительно слегка замаривают, помещая в пробирку с тлями на несколько минут ватный тампон, смоченный в эфире или хлороформе, а затем отжатый. Тлей с растений снимают препаровальной иглой, кисточкой или пинцетом и вместе с этикеткой или номером помещают в небольшие пробирки, которые хранятся в емкостях с 70-75% спиртом.
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 157 2.12.2. Кокциды, червецы, щитовки Методика сбора кокцид для последующего их препарирования и определения разработана Н.С. Борхсениусом (1973). Лучшим материалом для микроскопиче- ских препаратов из щитовок, подушечниц, ложнощитовок, кермесов, алейродид и некоторых мучнистых червецов служат молодые особи вскоре после их линьки на самку. Для этого червецов следует фиксировать в 70% спирте, а щитовок за- сушивать вместе с растением. Что касается большинства мучнистых червецов и войлочников, то хорошие тотальные препараты можно получить и из самок, начавших яйцекладку. Из самок всех кокцид, закончивших яйцекладку, получить хороший микроскопический препарат значительно труднее. Для сбора червецов и щитовок надо иметь садовые ножницы (секатор) для срезания веток и веточек с колониями червецов и щитовок, садовый нож для срезания тонкого слоя коры с кокцидами со ствола или толстых веток, лопату для выкапывания травянистых растений. Летающих самцов кокцид можно отлавливать различными типами ловушек. Собирают кокцид в течение всего вегетационного сезона, но лучший срок обследования леса и сада — июнь, июль, а травянистой растительности — май, июнь, июль. Искать кокцид следует в щелях, трещинах коры веток и ствола, в различных пятнах на листьях и плодах, в наростах поврежденных частей. Живут они и на корнях растений. Нахождению червецов, как и тлей, помогают муравьи. 2.12.3. Трипсы При сборе с растений соцветия или колосья помещают в мешочки (20 х 30 см), сшитые из плотного легкого материала, или в бумажные пакетики, которые плотно завязывают. Растения слегка подсушивают, а затем вынимают, стряхивая над разо- стланным листом бумаги. Выпавших трипсов собирают кисточкой в пробирку со спиртом. Можно их вылавливать с растений кошением сачком или эксгаустером. Учет трипсов на растениях дело очень трудоемкое, поэтому было предложено несколько способов его ускорения. Так, например, внутри обрезанной с обоих концов пластиковой бутылки или стекла от фонаря «летучая мышь» укрепляется сетка, а стекло на 3/4 закрашивается черными лаком или краской. На сетку поме- щается проба растений, стекло ставится на чашку Петри с водой и закрывается крышкой с прикрепленным к ней комочком ваты, смоченным скипидаром. Трипсы, стремясь уйти от источника запаха, выбираются из растений, устремляются вниз и попадают в воду. Нижняя, неокрашенная, часть стекла играет роль фотоэклек- тора. Через час прибор снимается, и в чашке Петри подсчитываются плавающие в воде трипсы. Извлекаются трипсы из пробы растений и с помощью простейшего фото- эклектора — картонной коробки, в одну из стенок которой вставляется пробир- ка. Достоинство этого метода в том, что с его помощью учитываются трипсы,
158 В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых отрождающиеся из яиц. Это дает возможность получить более полное пред- ставление об общей численности популяции трипсов. Основной недостаток — длительность учета (не меньше 10 дней). Трипсы, живущие на листьях, учитываются путем простого погружения рас- тений в 70% спирт. После прополаскивания растения удаляются, а все трипсы остаются в спирте. Для подсчета их отфильтровывают. При определении численности трипсов в естественных биотопах учет произво- дится на площадках. Для этого на металлической рамке площадью в 1/40 м2 укре- пляется мешочек, и рамка быстро опускается на землю. Все растения на площадке, ограниченной рамкой, оказываются в мешке. Затем рамка слегка приподнимается с одного края, и растения срезаются ножницами. Мешок плотно завязывается. Потери трипсов, таким образом, сводятся к минимуму. В дальнейшем эти пробы обрабатываются по способу Эванса. Трипсы, вылетевшие из почвы, обычно собираются с помощью фотоэклекто- ров, достаточно даже — небольших деревянных ящиков с пробиркой в боковой стенке. Для учетов трипсов в воздухе применяются различного рода ловушки: во- дяные, липкие и засасывающие. Водяные ловушки — плоские сосуды с водой, в которые добавляется несколько капель 40% формалина и немного какого-нибудь вещества, понижающего поверхностное натяжение воды (последнее нужно для того, чтобы трипсы тонули и не выползали из ловушки). Цвет ловушки имеет значение только для трипсов, живущих на цветах (наиболее привлекателен белый цвет). Липкие ловушки для трипсов делают цилиндрическими и в виде щитков. В первом случае это металлический цилиндр, на котором укрепляется полоса прозрачного пластика с клеем. Во втором — лист стекла, смазанный вазелином с обеих сторон, или лист фанеры, на котором укрепляется калька с клеем (вместо клея могут быть использованы вазелин или автол). Ловушки устанавливаются на подставках. Многие виды трипсов часть своего развития проходят в почве. Учеты их численности проводятся с помощью почвенного бура или металлического полого кубика. Работа с кубиком более трудоемка, чем с буром, но при изучении послой- ного распределения трипсов в почве дает более точные результаты. Из почвенных проб трипсы извлекаются промывкой в простом аппарате, состоящем из крупного и мелкого сита. Из промывного остатка трипсы извлекаются флотацией в 10% растворе соли с добавлением бензина или керосина. Все трипсы оказываются на границе воды и керосина над массой растительных остатков, где их собирают пи- петкой и подсчитывают. Разборка проб дает неудовлетворительные результаты, так как при самом тщательном просмотре удается найти не больше 30% даже хорошо заметных личинок трипсов.
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 159 2.13. Сбор и воспитание гусениц чешуекрылых В целях сохранения гусениц для коллекции и в то же время для определения вида по взрослой фазе в каждом случае необходимо иметь серию гусениц (или, по крайней мере, две гусеницы одного вида), часть из которых фиксируют, а осталь- ных используют для выведения бабочек. Только в тех случаях, когда собраны внешне идентичные гусеницы в одних и тех же условиях (на одном и том же кормовом растении, с одинаковым характером повреждения и в одно и то же время) и одного возраста, можно быть в какой-то степени уверенным, что это действительно один вид. Самым надежным способом получения гусениц является выведение их из яиц. При этом в ряде случаев от- падает необходимость в доведении гусениц до бабочки, так как отложившая яйца самка часто уже известна. Для изучения морфологических особенностей и видов и сроков их развития часто приходится сохранять каждый возраст гусениц воспитываемого вида. Методы массового разведения насекомых в производственных целях здесь не рассматриваются. Для изучения этих вопросов мы можно рекомендовать очень полный справочник по массовому размножению насекомых для биологической защиты растений А.Л. Монастырского и В.В. Горбатовского (1991). 2.13.1. Сбор гусениц Гусеницы нередко встречаются на стволах деревьев, дорогах и пр. Обычно это гусеницы, ползущие окукливаться или случайно упавшие с кормового растения. Собирать их полезно, но наибольший интерес представляют гусеницы, найденные в своих характерных экологических условиях, непосредственно на своем кормовом растении. В таких случаях известно не только кормовое растение (это важно, как для выяснения биологии гусениц, так и для определения вида), но и характер по- вреждения, образцы которого необходимо собрать и сохранить. Хорошим и простым способом сбора гусениц является в ряде случаев кошение сачком по траве и кустам. Гусениц часто собирают также стряхиванием с отдель- ных растений. С травянистых растений они стряхиваются рукой в подставленный сачок, с кустарников и ветвей деревьев — сильным ударом палкой на предвари- тельно расстеленное на земле полотно. Гусениц, активных ночью, целесообразно собирать при свете фонаря на кор- мовых растениях. Во время экскурсии собранных гусениц помещают в обычные стеклянные бан- ки емкостью 0,5 л, металлические коробки или специально изготовленные садки из оргстекла. Вместе с гусеницами в банки кладут части кормовых растений, на которых они были собраны. Емкости для сбора гусениц должны иметь плотно закрывающиеся крышки (для стеклянных банок, например, полиэтиленовые) с
160 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых мелкими отверстиями для вентиляции. Банки с гусеницами нельзя держать на солнце во избежание перегрева. 2.13.2. Воспитание гусениц Собранных гусениц помещают в садки по одному виду и снабжают порядко- вым номером. Под соответствующим номером в журнал заносят сведения о месте и времени сбора, кормовом растении, характере повреждения и пр. Если имеется несколько гусениц одного вида, их доводят до взрослого состояния, после чего часть гусениц фиксируют, а остальных оставляют для окукливания. Шкурки последней гусеничной линьки, часть куколок, оболочки куколок и вылетевших бабочек сохраняют и этикетируют. Если куколок мало (2-5), то фиксировать часть из них не стоит, пока не вылетела хотя бы одна бабочка. При наличии только одного экземпляра неизвестной гусеницы его доводят до бабочки, но обязательно сохраняют личиночные шкурки и оболочку куколки. Всех гусениц, видовая принадлежность которых не установлена, воспитывают отдельно. Воспитание гусениц, в особенности мелких, удобнее всего проводить в не- больших садках (например, обыкновенных стаканах или банках), которые за- крывают марлей или более плотной материей при помощи резинового кольца или веревочки. Не следует помещать в один садок много гусениц, так как некоторые виды в тесноте проявляют каннибализм. Для воспитания очень крупных гусениц или для больших серий одного вида иногда пользуются большими деревянными или металлическими садками, которые с одной или нескольких сторон затянуты густой проволочной сеткой или марлей. Кормовое растение для гусениц меняют 1-2 раза в день или ставят в воду, чтобы обеспечить его свежесть на несколько дней; сосуд с водой прикрывают ватой, чтобы гусеницы не тонули. Удобным способом является воспитание гусениц в природных условиях на растущих кормовых растениях, для чего ветку кормового растения с посаженными на нее гусеницами накрывают марлевым или капроновым мешочком-изолятором. Если ставится задача вывести гусениц из яиц, то пойманных в природе бабочек помещают по одной в небольшие садки и подкармливают слабым раствором сахара. Бабочек, которые не откладывают яиц в таких условиях, помещают в большие садки вместе с кормовым растением. Отложившую яйца самку умерщвляют, эти- кетируют и снабжают номером, а яйца под этим номером помещают в отдельный садок для выведения из них гусениц. Если яиц много, то часть их следует зафик- сировать. Вышедшим из яиц гусеницам необходимо сразу же положить кормовое растение. Пересаживание мелких гусениц с завядшего корма на свежий производят мягкой кисточкой. Мокрый корм класть гусеницам нельзя. В садках необходимо поддерживать чистоту, не ставить их на солнце и как можно меньше беспокоить линяющих и окукливающихся гусениц; последних лучше отсаживать в отдельные садки. Окукливание различных видов происходит в разных условиях, и если эти условия неизвестны, в садки следует помещать
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 161 кроме слоя песка (предварительно просеянного и хорошо прокаленного) слой мха, несколько кусочков коры деревьев, веточек разной толщины и т.п. Зимующих гусениц и куколок необходимо с осени держать при более или менее естественной температуре, но зимой не сильно промораживать (не ниже -5°С). Куколок уже в январе можно внести в теплые помещения, тогда как гусе- ниц, которые весной приступают к питанию, следует держать на холоде, пока не появится возможность обеспечить их свежим кормом. Воспитание минирующих гусениц производится следующим образом. Листья с минами помещаются в небольшие широкие цилиндры, широкие пробирки или чашки Петри, на дно которых кладется слой фильтровальной бумаги; пробирки затыкаются корковыми пробками или ватными (марлевыми) тампонами, чашки Петри закрываются. Если листья очень большие, то можно часть от них отрезать. Обычно никакого дальнейшего ухода не требуется, кроме ежедневного осматри- вания таких садков для извлечения из них вылетевших бабочек; при осмотре следует открывать пробку для проветривания садка. Когда развитие минера за- тягивается (например, если гусеница еще молодая), то черешок листа или часть растения опускают в пробирку с водой, которую затем укрепляют в садке; в этих случаях приходится следить за влажностью и плотно закрывать садок пробкой не рекомендуется. 2.14. Сбор и выведение паразитических перепончатокрылых и других насекомых При подготовке этого раздела использованы работы М.Н. Никольской и А.М. Герасимова (1937), Н.Н. Богданова-Катькова (1947), И.А. Рубцова (1950), Р. Винигера (Wyniger, 1953), W. Меша (Mesch, 1955); В. Таленхорста (Thalenhorst, 1955), В.А. Тряпицына и др. (1965), К.К. Фасулати (1971), В.П. Приставко (1979), М.Н. Цурикова, С.Н. Цурикова (2001), В.Н. Фурсова (2003); А.с. 843898; и др., а также собственный опыт авторов этой книги. Основной упор делается на опи- сание методов выведения паразитических перепончатокрылых в связи с большой важностью этого направления исследований в теоретическом и практическом аспектах. При этом следует иметь в виду, что почти все описанные ниже приспо- собления и приемы работы пригодны для содержания и воспитания насекомых самых разных систематических групп. 2.14.1. Сбор имаго паразитов Сбор имаго паразитических насекомых проводят методами и приспособлени- ями, использующимися для сбора всех других насекомых — энтомологическим сачком, ловушками различных типов, на свет. На цветущих растениях, куда мно- гие насекомые слетаются для питания, паразитов можно вылавливать руками,
162 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых пробиркой или сачком. Массовые сборы дает кошение сачком. Косить следует на однородном растительном сообществе, выбирая из сачка накошенное перед тем, как перейти к кошению на других растениях. Многие паразитические перепончатокрылые хорошо собираются на свето- ловушки. К ним относятся, прежде всего, наездники надсем. Ichneumonoidea. Например, наездники родов Ophion, Netelia, Enicospilus и другие, ведущие сумеречный образ жизни. Среди наездников надсем. Chalcidoidea отмечено при- влечение светом наездников сем. Encyrtidae (Шарков, 1985). Из сачка паразиты извлекаются эксгаустером с помещением в морилку и последующим хранением в сухом виде на матрасиках, в смонтированном виде на энтомологических булавках или же в фиксирующем растворе. Для сбора паразитических перепончатокрылых насекомых сем. Encyrtidae и некоторых других семейств, а также дорожных ос семейства Pompilidae весьма эф- фективны ловушки Мерике (см. выше) ярко-голубого или белого цвета. Отмечено, что использование пластиковых ловушек (тарелок) Мерике белого и голубого цве- тов для привлечения хищников и паразитов, трофически не связанных с листвой деревьев, более эффективно, чем желтого цвета, (Фурсов, 2003а). При использовании ловушек Мерике в полевых условиях в качестве обычного фиксатора в ловушках используется обычная вода с несколькими каплями детер- гента (шампуня). Вместо воды в полевых условиях в ловушки Мерике можно на- лить глицерин, который не высыхает и может стоять с уловом 3-7 дней. Материал по паразитическим перепончатокрылым, собранный с помощью ловушек, должен храниться в 70-75% этиловом спирте, без доступа солнечного света и желательно в холодильнике. Для хранения материала в полевых условиях удобно использовать пластиковые пакеты на пластиковом замке, которые прода- ются в хозяйственных магазинах. 2.14.2. Выведение паразитов Работу по выведению паразитов чаще всего проводят с перепончатокрылыми, реже — двукрылыми, в основном, тахинами. Методы выведения паразитических насекомых используются и для выведения галлообразователей, а также, нередко, для изучения биологии скрытноживущих фитофагов. Наиболее ценный материал получается путем выведения паразитов из различ- ных стадий насекомого-хозяина. Поэтому при сборах внимательно осматривают и собирают всех подозрительных на заражение насекомых в различных стадиях их развития. Показателем зараженности яиц служит их почернение; зараженные личинки и гусеницы характеризуются вялостью или неподвижностью, причем на них иногда можно обнаружить прикрепленного снаружи паразита. Зараженные куколки несколько меняют свой цвет и внешний вид. В.Н. Фурсов (2003) указывает на следующие признаки зараженных (паразити- рованных) хозяев (насекомых и других членистоногих).
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 163 1. Зараженные яйца хозяев обычно меняют цвет, чернеют, а оболочка заражен- ных яиц, из которых вылетели паразиты яиц, имеет одно или несколько небольших округлых «вылетных» отверстий паразитов. 2. На теле личинки хозяина заметны наружные паразиты (эктопаразиты) — их яйца, личинки, куколки или коконы, которые сплели личинки паразита. 3. От погибшего хозяина остаются иногда лишь небольшие остатки, около которых могут находиться личинки, куколки и коконы паразитов. 4. На теле погибшего хозяина (личинки, куколки) или на его коконе визуально заметны летные отверстия паразитов. 5. Заметны различия в поведении личинок хозяев. Личинки хозяев проявляют пассивность в питании, медлительность и малоподвижны. Возможно, что они за- ражены паразитами. 6. Иногда личинки (гусеницы) некоторых бабочек проявляют усиленную актив- ность и более интенсивное питание в то время, когда остальные (незараженные) личинки становятся медлительными. 7. Иногда личинки и куколки хозяев затвердевают, мумифицируются, а затем в них паразиты прогрызают вылетные отверстия. Для окончательного выявления личинок внутренних паразитов (эндопаразитов) необходимо проведение вскрытия яиц, личинок или куколок хозяев в физиологи- ческом растворе (Шевырев, 1912; Фасулати, 1971; Тряпицын и др.., 1982). Иногда «зараженные» личинки хозяев визуально совершенно неотличимы от «незараженных». В таких случаях необходимо лабораторное содержание личинок и их «докармливание» на пищевом субстрате. Что касается коконов различных насекомых, то все они без исключения должны браться для вывода паразитов, так как даже при заражении личинки или гусеницы вылет паразита происходит уже после коконирования хозяина. Собранный материал рассаживают в лаборатории по отдельным пакетам, про- биркам, стаканам, садочкам в зависимости от его объема; на этикетке, помимо обычных данных, помечается название и стадия хозяина, а затем отмечают срок вылета паразита. Если хозяин не определен, к паразиту прикладывают остатки его хозяина, по которым иногда возможно произвести определение. Нередки случаи вторичного паразитизма многих перепончатокрылых. Факт этот устанавливается только вскрытием и анализом остатков зараженного хозяина после вываривания их в 4-10% растворе едкого кали (КОН). Количество личи- ночных шкурок паразита, найденное под лупой или бинокуляром, послужит для определения степени паразитизма. При «пассивном» выведении проба с растениями (листьями, ветками, семенами и другими частями) изолируется до появления паразитов. При этом в случае крупных проб (много листьев с минами, галлами, группа стеблей и др.) для выведения насе- комых удобно использовать прозрачные полиэтиленовые пакеты с фильтровальной бумагой, которую необходимо менять каждые 1-2 дня для уменьшения влажности в пакете. Выводящихся насекомых выбирают кисточкой или эксгаустером.
164 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Рис. 123. Общий садок для выведения паразитов (по Фурсову, 2003). Рис. 124. Садок-ящик для выведения паразитов с несколькими пробирками (по Фасулати, 1971). Для установления точных взаимоот- ношений паразита и хозяина необходимо индивидуальное выведение: каждая за- раженная личинка, гусеница или куколка выводится в отдельном садке или пробир- ке. Массовый материал по паразитизму данной стадии данного хозяина выводят в общем садке. Если предполагают вы- вести мелкие виды паразитов, применяют специальные садки. Наиболее простая конструкция их — тип фотоэклектора: плотно закрывающийся ящик любых раз- меров, в зависимости от объема материа- ла. На боковой стенке ящика просверлено одно или несколько отверстий, в которые вставляется пригнанная по отверстию пробирка или стеклянная банка; край отверстия пробирки или банки должен быть на одном уровне с внутренней по- верхностью ящика. Материал помещают в ящик, который ставится пробирками к свету. Выводящиеся паразиты летят на свет в пробирку, откуда их периодически выбирают, вынимая пробирки из ящика (рис. 123, 124). Этот способ может быть также применен для выведения перепончатокрылых, являющихся семяедами или галлообразователями. В таком случае в садок закла- дываются семена, листья или стебли растений с вздутиями и искривлениями, и выведение производят вышеописанным способом. Желательно, чтобы влажность воздуха в лаборатории не была ниже, чем в природе, иначе лучше держать ящик в инсектарии. Небольшие количества семян для выведения семяедов можно по- мещать в пробирки или банки, заткнутые ватой, которую, в случае надобности, можно регулярно смачивать. Для сборов массового растительного материала (стебли, галлы, семена и пло- ды) и последующего выведения из них насекомых в лаборатории удобно исполь-
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 165 зовать белые мешки из плотной материи. Размер мешков может быть различным (10 х 20 см, 15 х 30 см и др. Затем в лаборатории к мешкам с пробами (листья, стебли, семена, галлы и т.д.) подвязывают- ся 0,25 или 0,5-литровые стеклян- ные банки (рис. 125). Насекомые вылетают из мешков на свет и Рис. 125. Выводной садок-сепаратор (по Фур- сову, 2003). собираются в банках, которые пе- риодически проверяются. Вылетевших насекомых фиксируют сухими (на ватных матрасиках) или в 70% этиловом спирте. Можно также налить немного глицерина на дно банки, тогда вылетевшие насекомые сразу зафиксируются в глицерине. Данный тип ловушки-сепаратора широко используется для массового выведения растительноядных (Зерова и др., 1989; Зерова, Серегина, 1994) и паразитических перепончатокрылых насекомых (Зерова и др., 1986, 1992; Фурсов, 2003). При «активном» выведении проводят выкармливание личинок хозяев на их кормовых растениях, постепенное доращивание и дальнейшее выведение из них паразитов. При этом могут быть использованы различные типы садков (Фурсов, 2003). Наиболее простой полевой садок, или изолятор, — мешок из плотной матерча- той ткани, закрывающий целиком растение, его часть или ветку (рис. 126). Растение остается расти в нормальных условиях с изолированными насекомыми в садке. Этот тип полевого садка очень широко используется для выведения и наблюдений за вредителями растений и выведения паразитов. Другой тип садка — деревянные, металлические или пластиковые ящики, в которые помещают растущие в почве или срезанные растения, на которых «дора- щиваются» хозяева и их паразиты, фитофаги (рис. 127, 128) и не паразитические насекомые. Растения могут быть помещены в сосуды с водой, чтобы сохранить Рис. 126. Полевой садок, или изолятор (по Фасулати, 1971; Фурсову, 2003).
166 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Рис. 127. Садки для выведения па- разитов и непаразитических насеко- мых (по Фасулати, 1971; Фурсову, 2003). Рис. 128. Садки-банки (по Фурсову, 2003). их живыми в течение длительного времени в лаборатории. Для выведения паразитов из их хозяев и доращивания фитофагов удобно использо- вать конструкцию садка из обычной пласти- ковой бутылки (рис. 129). Такой садок для вентиляции должен иметь 1-2 отверстия, заклеенных капроновой сеткой. Некоторым насекомым-хозяевам и их паразитам (а также паразитам растений и грибов, выводимым в лаборатории) необ- ходимо приготовить грунт для окукливания личинок. Для этой цели надо использовать стеклянные и пластиковые банки и про- бирки с чистым влажным песком или по- чвой (предварительно прокипяченными или прожаренными), в которых содержат хозяев, предположительно зараженных паразита- ми. В грунте (песке) необходимо сделать маленькие отверстия, в которые уходят ли- чинки, ищущие укрытия для окукливания. При отсутствии под рукой специально приготовленных садков для выведения пара- зитов можно воспользоваться почти любыми емкостями. Главные условия успешного вы- ведения паразитов — возможность менять пищу для хозяина и чистить эту емкость, доступ воздуха и возможность наблюдений за хозяином и выводя- щимися паразитами. В качестве таких емкостей можно использовать чашки Петри, стеклянные банки различного объема, биологические пробирки большого диаметра (даже химические пробирки, хотя они хуже), банки из-под детского питания и других продуктов, медицин- ские пузырьки и т.п. (рис. 130). Качественные результаты выведения паразитов требует соблю- дения следующих условий (Фурсов, 2003). 1. Желательно индивидуальное выведение (проба — это отдель- ные яйцекладки или отдельные, то есть одиночно отложенные, яйца хозяев, или отдельно разложенные личинки, куколки и имаго хозяев разных видов). Материал должен быть не смешанным (выведенным Рис. 129. Садок из пластиковой бутылки для выведения паразитов и непаразитических насекомых (по Фурсову, 2003).
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 167 Рис. 130. Пузырьки с пробами для выве- дения наездников: растения с яйцеклад- кой, гусеницей и коконом (по Фурсову, 2003). не из разных хозяев вместе, а только из одного хозяина). Для этого материал раскладывается на небольшие пробы, в каждой их которых проба только одно- го хозяина. 2. Выводные пробы должны содер- жаться вне доступа прямого солнечно- го света или обогрева. 3. Выводные пробы надо проверять ежедневно (если возможно) и обязатель- но регулярно, чтобы оценить состояние проб или свежесть пищи в пробах. 4. Необходимо использовать чистые пробирки, чашки Петри или другие контейнеры для проб, чтобы избежать загнивания и плесени. Для изучения особенностей развития паразитических и растительноядных перепончатокрылых в условиях лаборатории проводят специальные наблюдения и эксперименты. По В.Н. Фурсову (2003) возможными и необходимыми являются следующие наблюдения. 1. Проведение вскрытия растительного материала (галлы, мины на листьях, стебли, корни, плоды и семена растений), в котором развиваются хозяева и их па- разиты. Вскрытие позволяет точнее и достовернее установить трофическую связь того или иного вида паразита с конкретным видом хозяина. Вскрытие позволяет также выяснить стадию развития хозяина, на которой он был заражен паразитом. 2. Проведение вскрытия зараженного хозяина на различных стадиях раз- вития — яйца, личинки или куколки хозяина. Вскрытие позволяет установить наличие у хозяина личинок первичных, вторичных и третичных паразитов. Про- водится учет и фиксирование личинок и личиночных шкурок, обнаруженных в зараженном хозяине. 3. Проведение наблюдений за экспериментальным заражением хозяина их потенциальными (или только что выведенными) паразитами в лабораторных ус- ловиях. Они могут выявить характерные поведенческие различия у близких (или ранее неразличимых) видов паразитов. 4. Разведение лабораторной культуры паразитов на их природном или альтер- нативном хозяине и наблюдения за особенностями их развития. Для проведения точного анализа зараженности хозяев паразитическими пере- пончатокрылыми насекомыми или другими паразитами необходимо обратить вни- мание на соблюдение ряда условий (Мейер, 1937; Тряпицын и др., 1982; Фурсов, 2003). К таким условиям относятся: 1. Зараженный материал хозяина должен быть собран из нескольких (разных) мест зараженного участка.
168 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых 2. Пробы зараженного материала собираются последовательно по времени и на разных стадиях развития хозяина. 3. Необходимо повторное взятие проб личинок и куколок хозяина на том же самом зараженном участке, что и при сборе яиц хозяина. 4. Процент зараженности устанавливается (подсчитывается) по количеству за- раженных и незараженных яиц, личинок и куколок хозяина, а не путем подсчета вылетевших паразитов. В заключение этого раздела приведем 3 оригинальные конструкции садков (Цуриков М., Цуриков С., 2001), в которых можно содержать и выводить самых разных насекомых. 2.15. Компактные садки для насекомых 2.15.1. Складной садок Складной садок (рис. 131) характеризуется возможностью компактного скла- дывания и скоростью приведения в рабочее положение. Он может быть использо- ван при проведении исследований, как в полевых условиях, так и в лаборатории. Каркас садка (рис. 131, Л, Б) изготовлен из обрезков стальной проволоки диа- метром 3 мм и состоит из двух горизонтально расположенных деталей (7 и 2) и четырех вертикальных стоек (3-6). Размеры каркаса могут быть произвольными. Нами был испытан вариант садка с длиной деталей (7 и 2) и стоек (3-6) 400 мм. В средней части деталей (7 и 2) необходимо сделать петли диаметром 4 мм, а на 2 Рис. 131. Складной садок (по авторскому свидетельству № 1579487). Обозначения см. в тексте.
Глава 2. Сбор наземных насекомых Ф 169 вершинах — кольца таких же размеров (рис. 131, А). Один из концов стоек (3-6) также необходимо согнуть в кольцо диаметром 4 мм. Далее следует скрепить детали (7 и 2), а также вершины этих деталей и стоек (3-6) так, как показано на рис. 131, Л. Для фиксации садка в положении, при ко- тором все углы между деталями (7 и 2) и стойками (3-6) составляют 90°, необхо- димо конструкцию дополнить жесткими стальными пружинами (7) длиной 80 мм, изготовленными из проволоки диаметром 1,5 мм. При этом следует крепко при- крепить концы пружин (7) к смежным элементам (1-6) каркаса, для чего целесоо- бразно сделать при помощи напильника неглубокие круговые бороздки у вершин упомянутых элементов, а также в средних частях деталей (7 и 2), чтобы исключить смещение пружин (рис. 131, Л). Таким образом, каркас садка имеет кубическую форму и может компактно складываться благодаря пружинам (7). При этом не- обходимо сначала сложить детали (7 и 2), повернув их вокруг оси скрепления, а затем следует стойки (3-6) прижать к деталям (7 и 2). Для изоляции внутреннего пространства каркаса садка необходимо изготовить чехол (8) из мельничного газа, размеры которого должны соответствовать размерам каркаса, после чего нужно пришить к чехлу лишь две противоположные стойки (3 и 5 или 4 и 6). Описанное крепление чехла к каркасу позволяет складывать садок в компактный сверток (рис. 131, Б). Если этот сверток выпустить из рук, садок мгновенно примет исходную форму благодаря действию пружин (7). 2.15.2. Шаровидный раскладной садок Шаровидный раскладной садок, как и описанный выше складной садок, от- личается компактностью и скоростью приведения в рабочее положение. Он также может быть использован при проведении исследований, как в полевых, так и в лабораторных условиях. Каркас садка (рис. 132, А, Б) состоит из 6 узких стальных пластин (7) длиной 300-400 мм и шириной 6 мм. В 5 мм от вершин этих пластин, а также в их центре необходимо проделать отверстия диаметром 2 мм. Вершины пластин скрепля- ются при помощи стальных заклепок (2 и 3), как показано на рис. 132, Л. Далее следует, слегка растягивая в стороны, поворачивать вокруг продольных осей по- следовательно одну пластину за другой так, чтобы получился шаровидный каркас (рис. 132, Б). Затем при помощи капроновой нити (4), к одному из концов которой должен быть привязан проволочный крючок (5) (диаметром 2 мм), нужно скрепить полученную конструкцию, последовательно связывая отрезки между централь- ными отверстиями каждой из пластин (7), причем один из отрезков должен быть скреплен при помощи крючка (5) (рис. 132, Б). Такое крепление каркаса садка позволяет прочно удерживать сферическую форму и в то же время, отцепив крю- чок (5) от центрального отверстия смежной пластины (7), каркас можно легко и быстро сложить. Далее необходимо каркас садка накрыть куском мельничного газа (6), с системой стягивания, состоящей из капроновой нити (7) и кусочка резины
170 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Рис. 132. Шаровидный раскладной садок (по М. Цурикову, С. Цурикову, 2003). Обозначения см. в тексте. размером 20 х 20 х 3 мм (рис. 132, Б). Для изоляции внутреннего пространства садка необходимо большим и указательным пальцами левой руки придерживать за края кусочек резины (8), а пальцами правой руки потянуть за узел нити (7). 2.15.3. Универсальный садок Универсальный садок отличается от приведенных выше садков возможностью менять форму и размеры. Предназначен для использования при проведении ис- следований в полевых и лабораторных условиях. Каркас садка (рис. 133, Л, Б) состоит из 12 элементов, каждый из которых из- готовлен из двух обрезков алюминиевой или стальной проволоки (7 и 2) длиной 200 мм и диаметром 3 мм, а также пластиковой трубки (3) длиной 30 мм и диа- метром 5 мм. Одну из вершин обрезков проволоки (7 и 2) необходимо согнуть в кольцо с внутренним диаметром 3 мм, отверстие которого должно быть направ- лено вдоль оси обрезков проволоки (7 и 2) (рис. 133, Б). Затем нужно собрать заготовку для элементов садка, для чего обрезки прово- локи (7 и 2) необходимо скрепить трубкой (3), как показано на рис. 133, Б. Из- готовив 12 описанных заготовок, следует концы восьми из них согнуть в кольца с внутренним диаметром 3 мм, отверстия которых должны быть направлены перпен- дикулярно оси обрезков (1 и 2). Получатся элементы (4) каркаса садка (рис. 133, В). Для изготовления элементов (5) каркаса садка необходимо нарезать резьбу на вершинных концах обоих отрезков проволоки (7 и 2) (на расстоянии 20 мм)
Глава 2. Сбор наземных насекомых 171 оставшихся 4 заготовок. Далее на каждую резьбу необходимо навинтить по одной гайке (б) (рис. 133, В). Полученные элементы (4 и 5) необходимо собрать, как по- казано на рис. 133, Г, для чего вначале вершины элементов (4) попарно сложить и сквозь их кольца продеть вершины элементов (5). После этого конструкцию нужно скрепить при помощи гаек (7). Полученный каркас садка может изменять свои размеры и форму благодаря элементам (4 и 5), которые способны растягиваться и сжиматься. Некоторые из возможных вариантов форм показаны на рис. 133, Д. Особая ценность универ- сального садка заключается в том, что в случае изоляции им модельного растения (для проведения экспериментов с насекомыми-фитофагами), в зависимости от увеличения и изменения конфигурации стеблей и листьев в процессе роста, можно соответствующим образом растягивать каркас. Мельничный газ, марля или поли- Рис. 133. Универсальный садок (по М. Цурикову, С. Цурикову, 2003). Обозначения см. в тексте.
172 В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых этиленовая пленка, которыми накрывается каркас, должны иметь определенный запас площади, учитывая возможность увеличения размеров каркаса. Размеры элементов садка могут быть различны (в зависимости от задачи исследования) и отличаться от указанных в приведенном авторами описании. 2.16. Некоторые рекомендации по методике проведения сезонных сборов беспозвоночных Описанные выше приспособления для сбора насекомых и других беспозвоноч- ных предназначены, в основном, для работы в течение вегетационного периода. Однако такими сборами полевые исследования часто не ограничиваются, т.к. в позднеосенний и ранневесенний периоды активность многих беспозвоночных, хотя и резко снижается, но полностью не прекращается. Более того, некоторые насекомые остаются активными и зимой, под снегом. В связи с этим возникает вопрос о методах сбора в эти периоды. Ниже излагаются отдельные методы, ис- пользованные авторами в этих условиях (Цуриков М., Цуриков С., 2001). 2.16.1. Метод отлова беспозвоночных в период первых заморозков В период осеннего похолодания и первых заморозков беспозвоночные на- чинают скапливаться (порой большими группами) в различных, подходящих для зимовки местах: под лежащими на почве стволами деревьев, в кучах растительных остатков и т.п. Для эффективного сбора беспозвоночных в этот период надо, прежде всего, исследовать рельеф местности и отметить места возможных затоплений во время весеннего таяния снега. Искать участки зимовок следует выше границы затопления биотопа (что особенно относится к пойменным участкам). Ее можно определить по ряду признаков — наличию остатков весенних наносов мусора в припоймен- ных участках, по видовому составу растительности на пойменных лугах, и т.д. Далее вдоль полосы весеннего затопления следует обследовать трухлявые пни, верхний слой почвы под бревнами и прочими крупными предметами, лежащими на земле, а также кучи листвы, коры и прочих растительных остатков. Кроме того, беспозвоночные скапливаются в дерне с большим количеством растительных остатков, в том числе сухих, особенно на участках с густой травянистой раститель- ностью. Следует помнить, что значительное удаление района поисков от верхней границы затопления также снижает шансы найти массовые скопления животных. Наиболее обильные сборы могут быть сделаны через 2-3 дня после начала по- холодания, когда большинство беспозвоночных уже скопилось в местах зимовки, а грызуны, болезни и мороз еще не успели снизить их численность. Этот метод дает хорошие результаты в отношении сборов, прежде всего, има- го и личинок Coleoptera, Heteroptera, Hymenoptera, Aranei, гусениц Lepidoptera,
Глава 2. Сбор наземных насекомых 173 Acari, Diptera, Siphonaptera, Homoptera, Neuroptera, Collembola, Lumbricomorpha, Geophilomorpha и Lithobiomorpha. 2.16.2. Способы отлова беспозвоночных под снегом Ниже описываются два способа сбора беспозвоночных под снегом — ранней зимой, во время выпадения первого снега, и в разгаре зимы. Используя оба спо- соба, можно проводить сборы беспозвоночных, в том числе насекомых, в течение всего зимнего периода. Первый способ отлова беспозвоночных под снегом применим в очень корот- кий период — во время выпадения первого снега, когда почва еще не промерзла и температура воздуха составляет примерно +2 °C. Для проведения отлова животных необходимо слепить ком из снега диаме- тром примерно 30 см. После этого его следует прокатить в одном направлении для того, чтобы получился цилиндр из снега. При этом почва оголяется от снега, и беспозвоночные, главным образом хортобионты и герпетобионты, прилипают к поверхности снежного цилиндра, откуда их можно легко собрать эксгаустером, пинцетом или приспособлением для мягкого захвата беспозовночных (см. выше). Несмотря на узкие временные рамки применения данного способа отлова, авто- ры настоятельно рекомендуют его использовать, так как при этом можно собрать уникальные материалы о видовом составе и распределении по биотопам видов беспозвоночных с позднеосенней активностью. Описанный способ отлова наиболее эффективен для сбора Collembola, Aranei и Coleoptera (имаго и личинок). Кроме того, на поверхности снежного кома были обнаружены Hymenoptera, Diptera, Acari, Heteroptera и Homoptera. Второй зимний способ сбора беспозвоночных зимой заключается в вырезании участка подстилки с последующим ее оттаиванием. Для этого вначале с намечен- ного участка с поверхности почвы аккуратно удаляется снег (чтобы не повредить ее верхний слой). Затем вырезается участок подстилки, дерна или почвы опреде- ленного размера, помещается в мешок из плотной ткани, а затем подвешивается в теплом помещении на несколько часов над емкостью для сбора воды. Необходимо исключить резкое нагревание пробы, чтобы беспозвоночные постепенно выходи- ли из анабиоза. После полного оттаивания (когда вода перестанет капать) проба тщательно изучается методом ручной разборки, как это было описано выше при разборе почвенных проб. Для этого отбираются небольшие порции подстилки или почвы, помещаются в центр большого листа однотонной бумаги (лучше всего белой) и пальцами или пинцетом перебираются. При этом следует разламывать и перебирать каждый комок почвы и каждый стебель растения. Для предотвращения размокания бумаги при контакте с влажной пробой желательно предварительно накрыть ее большим обрезком стекла. Можно, также разбирать пробы на пластине из любого легко моющегося материала. Для максимального сохранения беспоз- воночных, если нет необходимости в их фиксации для дальнейшего изучения,
174 В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых весь обработанный материал можно поместить в пластмассовую или деревянную емкость с последующим постепенным охлаждением. Для этого целесообразно неоднократно выносить разобранную пробу на холод, каждый раз, увеличивая продолжительность холодного периода. После охлаждения содержимое емкости можно высыпать в месте взятия пробы, прикрыть его листьями, травой или рас- тительными остатками и засыпать снегом. Описанная методика в наших исследованиях оказалась наиболее эффектив- ной для отлова имаго и личинок Coleoptera, Collembola, Aranei, Acari, Heteroptera, Homoptera, Hymenoptera, гусениц, куколок и имаго Lepidoptera, Stylommatophora, личинок и имаго Diptera, Thysanoptera, Psocoptera, Pseudoscorpiones, Diplura, Lumbricomorpha, Tylenchida, Lithobiomorpha и Geophilomorpha. Кроме того, в про- бах встречаются единичные экземпляры Blattoidea, Dermaptera, Julidae, Isopoda, Siphonaptera, личинки Neuroptera и Raphidioptera. Наряду с изучением видового состава беспозвоночных, их биотопического рас- пределения и степени агрегированное™, описанная методика позволяет в зимний период получать материал для предварительной оценки численности и плотности популяции в зимовочных стациях отдельных видов, в том числе вредных. Для это- го, следует вырезать участки замершей подстилки определенной площади, напри- мер, 0,25 кв. м. Четырехкратная повторность обеспечивает возможность подсчета плотности популяции на 1 кв. м. Проведение многолетних зимних исследований позволит накопить материал для составления долговременных прогнозов числен- ности экономически опасных видов насекомых. Кроме описанного метода ручного сбора беспозвоночных в зимний период, неплохие результаты дает отлов беспозвоночных, активных под снегом, с помощью специальных ловушек для сбора и изучения миграций насекомых-герпетобионтов и для сбора и изучения миграций почвообитающих насекомых (см. выше). 2.16.3. Метод отлова беспозвоночных в период таяния снега В период таяния снега, когда почва еще непроницаема для талых вод, каждое понижение на лугах, в степи и т.п. заполняется водой. При этом зимующие в верх- нем слое дерна беспозвоночные всплывают на поверхность временных водоемов, что можно эффективно использовать для изучения видового состава и численности герпетобионтов и хортобионтов. Для отлова беспозвоночных в этих временных водоемах надо взять сачок с мешком из прочной ткани и, погрузив край его обруча под воду, собирать скопившихся на поверхностной пленке водоемов животных, а также плавающие растительные остатки. В ветреную погоду работа значительно облегчается, так как весь мусор и плавающие беспозвоночные скапливаются на одном из краев водоема. Собрав беспозвоночных и растительные остатки в ме- шок сачка, материал надо принести в лабораторию и немедленно (пока животные малоподвижны и более или менее равномерно распределены внутри пробы) ото- брать одну долю пробы определенного объема, к примеру, 100 мм, и тщательно
Глава 2. Сбор наземных насекомых 175 ее разобрать. При этом остальная часть материала должна быть изолирована, так как беспозвоночные, оказавшись в теплом помещении, начинают немедленно разбегаться. Разбирать и учитывать всех собранных животных иногда бывает не- возможно из-за огромного количества накопившихся в мусоре беспозвоночных. Подсчитав количество экземпляров животных в одной доле, можно рассчитать приблизительное количество беспозвоночных, находящихся во всей пробе путем умножения количества беспозвоночных, обнаруженных в одной доле на общее количество долей такого же объема во всей пробе. Описанный метод, несмотря на неточность получаемых результатов, может быть использован для сравнительной оценки обилия животных на различных участках биотопов. При этом целесоо- бразно вычислять площадь поверхности временных водоемов, чтобы можно было подсчитывать относительную численность беспозвоночных на единицу площади. Кроме подсчета обилия беспозвоночных, описанный метод позволяет собирать ценные сведения о видовом составе герпетобионтов и хортобионтов, зимующих в дерне и верхнем слое почвы исследуемых биотопов. Для этого следует поме- стить неразобранную часть пробы в мешок из плотной ткани темного цвета, а в горловину мешка вставить край стеклянного сосуда (пробирка, банка, колба и др.), после чего горловину следует герметично перевязать резинкой или веревкой. Через 1-2 часа подавляющее число беспозвоночных попадет в стеклянный сосуд, а остальных (малоподвижных и поврежденных) можно легко отловить, перебрав пробу вручную. Наибольшую эффективность описанный метод показал для отлова Collembola, Coleoptera (имаго и личинок), Aranei, Homoptera и Hymenoptera. Кроме того, при разборе проб встречаются Heteroptera, Diptera, Lepidoptera (большей частью гусе- ницы) и Thysanoptera. 2.16.4. Метод весеннего учета вылетающих с зимовки насекомых с помощью капроновой сетки А.В. Кулик (1986) предложил учитывать вылетающих с зимовки насекомых (например, вредной черепашки, других зимующих в фазе имаго клопов, жуков, перепончатокрылых и т.д.) методом накрывания участков почвы с заранее рассчи- танной их площадью капроновой сеткой. Вылетающие и мигрирующие насекомые неизбежно задерживаются сетью. Их можно подсчитывать визуально или собирать с помощью эксгаустера на одном из краев сетки. 2.16.5. Методика сбора энтомологического материала в период выкармливания птенцов вблизи гнезд Начиная с мая и всю первую половину лета, насекомоядные виды птиц вы- кармливают птенцов насекомыми. Этот период можно эффективно использовать при исследовании состава местной энтомофауны. Для этого достаточно обсле-
176 В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых довать открытые участки почвы (дороги, тропинки, противопожарные полосы и т.п.), расположенные на опушках, полянах, а также вдоль лесополос. Во время кормления птенцов теряется большое количество остатков насекомых (надкрылья Coleoptera и Heteroptera, крылья и части тела Hymenoptera, Odonata, Lepidoptera и др.), а порой и целые экземпляры мертвых животных. Энтомологу с опреде- ленным опытом работы не представляет большого труда по остаткам определить семейство, род или даже вид многих насекомых, особенно имеющих крупные раз- меры. Наиболее богатые сборы остатков можно сделать в случаях, когда участок почвы, лишенный растительности расположен на границе открытого биотопа и участка с древесной растительностью, особенно под нависающими ветвями де- ревьев и кустарников. Дело в том, что птицы, отловив насекомое, часто садятся на ветку дерева или куста в удобном для себя месте и отделяют мягкие части животных для кормления ими птенцов. При этом жесткие части тела насекомых падают на почву и образуют целые скопления остатков. Применение описанного метода можно особо рекомендовать при исследовании распространения редких и охраняемых видов насекомых, так как большинство из них имеют крупные размеры и могут быть легко определены даже по остаткам. В этом случае может быть сэкономлено значительное количество времени и сохра- нена определенная часть животных, так как при обнаружении остатков насекомых нередко отпадет необходимость в их отлове.
Глава 3. СБОР 0К0Л0В0ДНЫХ И АМФИБИОТИЧЕСКИХ НАСЕКОМЫХ 3.1. Накопители околоводных насекомых Описаны методики сбора беспозвоночных-герпетобионтов, принцип действия которых основан на создании для животных искусственных мест концентрации — приманочных куч из различных природных материалов (листва, сено, кора и т.п.) (Старк, 1930; Чувахин, 1957; Фасулати, 1971; Гиляров, 1975а; и др.). Известны ловушки для термитов (Grase, 1989; Pearce, 1990), в которых также используется принцип создания благоприятного микроклимата (влажный участок), резко кон- трастирующего с окружающей средой (сухая полупустыня). Эти методики могут быть использованы для сбора насекомых, обитающих в различных условиях, в том числе на околоводных участках. Основным недостатком приманочных куч является невозможность качественной обработки скопившихся беспозвоночных из-за существенных потерь в процессе извлечения животных из субстрата. Предложенная авторами настоящего пособия ловушка лишена этого недо- статка, исследование ее содержимого проводится в лаборатории, что позволяет обнаружить даже самых мелких беспозвоночных. Накопитель для околоводных беспозвоночных (рис. 134) представляет со- бой кусок пористого пенопласта размером около 500 х 500 х 200 мм. Ловушку необходимо установить на одном из речных наносов, состоящем из различного мусора (большей частью растительных остатков), смытого во время половодья и сконцентрированного на поворотах рек, в местах затопления деревьев и т.п. Необходимым условием эффективной работы ловушки является наличие в куске пенопласта большого количества пор и отверстий различного диаметра (от 1 до 10 мм). Отверстия можно легко сделать шилом, гвоздем, спицей и т.п. Принцип действия описан- ной ловушки заключается в привлечении мелких беспозво- ночных, смытых со своих мест обитания во время половодья и сконцентрированных в наносах, искусственных убежищах (су- хие полости, недоступные для врагов). Накопители для около- водных беспозвоночных лучше всего устанавливать на верши- нах наносов и прикреплять при помощи веревки или проволоки Рис. 134. Накопитель для околоводных насеко- мых (по М. Цурикову, С. Цурикову, 2001).
178 В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых к стволам или ветвям деревьев, корягам и т.п. Собирать ловушки нужно в начале падения уровня воды в реке, когда прекращается активное пополнение наносов мусором. Для этого необходимо каждый накопитель поместить в отдельный по- лиэтиленовый пакет, принести в лабораторию и там приступить к разбору мате- риала. В теплом помещении большинство находящихся в порах беспозвоночных начинает активно покидать свои убежища, и их легко можно собрать эксгаустером. Во избежание потери части материала, целесообразно накопитель поместить в полиэтиленовый пакет больших размеров, дно которого должно быть обращено к источнику света. В этом случае наиболее активные виды беспозвоночных будут скапливаться в углах пакета, что значительно облегчит вылов беспозвоночных. По- сле отлова всех животных, вышедших из своих убежищ, необходимо приступить к извлечению беспозвоночных, находящихся внутри пор, для чего следует разру- шить накопитель, последовательно отламывая кусочки пенопласта, и внимательно осматривая все поры и трещины. По мнению авторов, кусочки пенопласта можно повторно использовать для сбора беспозвоночных, если поместить их в сетку с ячейками 10-20 мм. Наибольшую эффективность в наших исследованиях описанная ловушка пока- зала для отлова Coleoptera, Aranei, Collembola и Heteroptera. Кроме того, в ловушку попадали Diptera, Homoptera, Hymenoptera и Lithobiomorpha. Наряду со сбором обширного материала по видовому составу околоводных беспозвоночных, использование накопителей позволяет сохранить множество животных, в том числе и важные виды энтомофагов. 3.2. Рама для отлова околоводных насекомых Для отлова околоводных насекомых (рис. 135) можно изготовить из полосы жести квадратную раму 25 х 25 см и высотой 10 см. Данная конструкция на 3 см погружается в почву у границы с урезом воды, и внутреннее пространство зали- вается водой. Насекомые (жуки, клопы, двукрылые и др.) покидают свои убежища и всплывают на поверхностную пленку воды, где их можно легко собрать. При- менение этой методики позволяет получать сопоставимые данные, на основании которых возможно сравнение различных участков прибрежной полосы. 3.3. Ловушки для отлова вылетающих амфибиотических насекомых (имагоуловители) Для сбора и изучения амфибиотических насекомых (поденок, стрекоз, ручей- ников, веснянок, кровососущих и некровососущих двукрылых и др.) исследова- телями сконструирован ряд специальных простых и легких ловушек для отлова вылетающих из воды имаго (Жадин, 1960; Савицкий и др., 1986 и т.д.).
Глава 3. Сбор околоводных и амфибиотических насекомых Ф 179 Необходимо отметить, что более громозд- кие стационарные конструкции на плотах, или заглубленные до дна водоема, дают большую погрешность при исследованиях вылета на- секомых, так как сами являются подходящим субстратом для заселения организмами пери- фитона, компонентом которого являются мно- гие виды хирономид, мошек, ручейников и др. Рис. 135. Рама для отлова около- водных насекомых. 3.3.1. Стационарные неразборные имагоуловители Рис. 136. Схема ловушки-конуса для амфибиотических насеко- мых (по Савицкому и др., 1986). Обозначения см. в тексте. Несколько конструкций стационарных имагоуловителей изображено на рис. 136-140. Принцип действия ловушки состоит в том, что вылетающие из воды насеко- мые используют внутреннюю поверхность конуса для обсыхания, поднимаются по ней в вершину конуса. Сборщик забирается внутрь конуса и собирает сидящих на его стенках насекомых с помощью эксгаустера или пробирки с последующим помещением их в фиксатор или морилку. Ловушка (рис. 136) представляет собой конус (7) из синтетической сетки или марли высотой Н = 1 м, крепящийся на металлический обруч (2) радиусом R = 56,4 см, что обеспечивает площадь захвата водной поверхности в 1 кв. м. Вверху конуса делается тесемочная петля (3) для крепления ловушки, в рабочем со- стоянии, когда ее нижняя, расширенная часть, опускается в воду. Ловушка устанавливается так, чтобы металлический обруч, с прикрепленным к нему конусом, погружался на 2-3 см в воду, препятствуя попаданию в конус насекомых из воздуха и выползанию из него амфибионтов перед линькой или сразу после линьки на имаго. Способ фиксирования ловушки-конуса в одном месте водоема может быть различным, в зависимости от особенностей места проведения исследований. Универсальным способом крепления ловуш- ки (рис. 137) является ее крепление на плотике (7), сделанном из пенопластовых пластин, дере- вянных брусков, жердей и т.п. В центре плотика ставится П-образная стойка (3), к которой на крючке крепится конус (4). Для удержания на месте плотик крепится веревками (2) к кольям. В глубоких местах устанавливаются два якоря
180 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Рис. 137. Крепление ловушки-конуса для сбора амфибионтов на плотике (по Савиц- кому и др., 1986). Обозначения см. в тексте. Рис. 138. Крепление ловушки-конуса для отлова амфибионтов в неглубоких участ- ках водоема на вбитых в грунт кольях (по Савицкому и др., 1986). Обозначения см. в тексте. для того, чтобы ловушку не разво- рачивало ветром. В неглубоких местах ловушку- конус (7) устанавливают, прикрепляя ее с помощью петли (2) к горизон- тальному деревянному брусу (5), который, в свою очередь, прибивают к двум вертикальным кольям, глубоко забиваемым в грунт (конструкция в виде «футбольных ворот») (рис. 138). На лужах, в ручьях, мелких про- токах, озерах и болотах, ловушка- конус может устанавливаться на бе- регу, при помощи наклонного шеста (рис. 139). Этот способ очень удобен и дает хорошие результаты, т.к. ло- вушка на шесте легко осматривается с берега простым поворотом шеста. Ловушка может ставиться на участ- ках с любой глубиной, на топких бе- регах, т.е. там, где установка ловушек другим способом невозможна или затруднена. Несколько более сложна, но очень удобна в эксплуатации, уста- новка ловушки-конуса (7) при по- мощи тросика (2), передвигающегося на блоках (5), как это показано на рис. 140. В этом случае, передвигая тро- сик по блокам, можно подтягивать ловушку для осмотра к берегу. Осла- бляя и усиливая натяжение тросика можно также регулировать глубину погружения ловушки, что важно при работе на каналах и в других водо- ёмах с резко изменяющимся уровнем воды. Особенно удобна постановка ловушек на тросике в местах прове- дения долговременных наблюдений. Осмотр ловушек и выборка из них насекомых производятся следу-
Глава 3. Сбор околоводных и амфибиотических насекомых Ф 181 ющим образом. Вылетающие из воды насекомые, как пра- вило, более или менее дли- тельное время обсыхают, сидя на растениях других предме- тах. Попав в конус, они под- нимаются по его внутренней поверхности, откуда их со- бирают вручную или эксгау- стером любой конструкции. Для этого конус осторожно снимают, выносят на берег и внимательно осматривают, Рис. 139. Установка ловушки-конуса для отлова амфибионтов на наклонном шесте (по Савицкому и др., 1986). начиная с нижней, расширенной части. Если же сборщик находится на лодке (лучше — резиновой), то он приподнимает нижний расширенный край ловушки и забирается в нее с головой и туловищем, опуская после этого ее нижний край. Находясь внутри ловушки, сборщик выбирает насекомых. При осмотре ловушки через каждые 2 часа насекомые не успевают полностью обсохнуть и сбор их не вызывает сложностей. Если в ловушке видны летающие насекомые, их прикрыва- ют сложенной сеткой ловушки и осторожно извлекают. При переносе и осмотре ловушки следует следить за тем, чтобы в неё не попадали летающие и прыгающие насекомые извне. Извлеченных насекомых помешают в энтомологические морилки и после умерщвления помещают в фиксирующую жидкость (формалин, спирт, для генети- ческих исследований — жидкость Карнуа) или укладывают на ватные матрасики. В том случае, если насекомые предназначаются для определения и постановки Рис. 140. Крепление ловушки-конуса для отлова амфибионтов на тросике (по Савицкому и др., 1986). Обозначения см. в тексте.
182 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых в коллекцию, их лучше хранить в сухом виде, если для определения биомассы или генетических исследований — их лучше фиксировать в спирте или жидкости Карнуа (Савицкий и др., 1986). 3.3.2. Складной имагоуловитель Рис. 141. Складной имагоулови- тель (по: Ettinger, 1979). Обозначения см. в тексте. Данная конструкция была предложена для изучения вылета на мелководьях стоячих водо- емов (Ettinger, 1979). Рама ловушки состоит из двух прямоугольных секций (47,3 х 31,5 см), изготовленых из алюминиевого уголка (1,5 х 12,7 х 12,7 мм) и соединенных петлями с одной стороны (рис. 141). Сетка натягивается на раму с помощью планок, прикрученных болтами к уголкам. Треугольные стороны ловушки (47,3 х 47,3 х 31,5 см) также затягиваются сеткой и усиливаются снизу полоской резины (7). Кро- ме того, эти стороны усиливаются алюмини- евыми полосками (2) длинной 32 см, которые при сборке и разборке ловушки фиксируются соответствующими болтами (3, 4). Площадь за- хвата ловушки при соблюдении размеров равна 0,1 кв. м. 3.3.3. Плавающая ловушка-садок Данная ловушка была разработана для изучения вылета комаров в водоемах на территории город- ских и сельских поселений в Индии (Girikumar, Venkateswara, 1984). Ловушка изготавливается из двух пластиковых конусов с открытыми вершинами, с диаметром большого отверстия 17 см (авторы применяли аба- журы для ламп). Два конуса (3, 7) располагаются один над другим на расстоянии 15 см от их вершин, направленных вверх (рис. 142). Две деревянные рейки (6), 25 см высотой, используются как опора, удерживающая колпаки друг над другом. Верхушка Рис. 142. Плавающая ловушка-садок (по: Girikumar, Venkateswara, 1984). Обозначения см. в тексте.
Глава 3. Сбор околоводных и амфибиотических насекомых Ф 183 верхнего колпака оборудована дверцей, кото- рая помогает при изъятии вылетевших кома- ров. Эта дверца снабжена резиновой трубкой (2), вставленной в садок, что позволяет замаривать комаров. Верхний конус также снабжен проволочной ручкой (7) для удоб- ства переноски ловушки. Дополнительный пластиковый конус (5) с диаметром входного отверстия 1 см крепится к открытой вершине нижнего конуса. Два конуса и деревянные подпорки снаружи обтянуты мельничным газом (4). Пенопластовый поплавок (S) тол- щиной 1-2 см, наружным диаметром 19 см и внутренним — 17 см, прикреплен к нижней кромке нижнего конуса с помощью прово- лочных скоб. Вес ловушки, имеющей 23 см в высоту и 54 см в поперечнике, составляет всего 150 г (Girikumar, Venkateswara, 1984). Рис. 143. Самофиксирующая ло- вушка Боруцкого (по Жадину, 1960). Обозначения см. в тексте. 3.3.4. Самофиксирующая ловушка Боруцкого Иногда используется самофиксирующая ловушка Боруцкого (рис. 143), состоящая из стеклянного стакана (7) с горлышком с пробкой (4), трубки, расширяющейся в сере- дине (2), стеклянной конической воронки (5). В стакан залита фиксирующая жидкость — спирт или формалин (5), в расширяющуюся трубку заходит вода (6), из которой выходят амфибионты (Жадин, 1960). 3.3.5. Самофиксирующая ловушка Кашмэна В основу действия данной ловушки положен другой принцип фиксации насе- комых — с помощью клейкого вещества. Ловушка (рис. 144) представляет собой пря- моугольный ящик без дна (28 ><19x9 См) из досок, скрепленных с помощью водоне- проницаемого столярного клея и гвоздей (5). В каждой стороне ящика имеются отверстия Рис. 144. Самофиксирующая ловуш- ка Кашмэна (по: Cushman, 1983). Обозначения см. в тексте.
184 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых диаметром 1 см, закрытые с внутренней стороны стальной сеткой (4), диаметром 0,5 мм. Плавучесть ловушки поддерживается пенопластовыми поплавками (6), прикрепленными к каждой стороне. Сверху на ящик помещается кусок пленки (5) с клейким участком в середине нижней, обращенной к воде, стороны. Поверх пленки кнопками (7) закрепляется крышка из чистого прозрачного оргстекла (2). Тонкий нейлоновый шнур, обвязанный вокруг одной из кнопок, с грузом на сво- бодном конце (7), служит якорем (Cushman, 1983). 3.3.6. Антометр Многие амфибиотические насекомые используют крупные цветки кувшин- ковых (семейство Nymphaeaceae Salisb.) для укрытия. В ночное время, после закрытия, цветки удобно собирать без каких-либо специальных приспособлений, в дневное же время для сбора цветков с населяющими их насекомыми В.В. Не- гробовым был сконструирован антометр (рис. 145), названный автором «сачок- биоценометр БС-1» (Негробов, Хмелев, 1999). Прибор изготавливается из двух металлических стержней (7 и 2) длиной 30 см, скрепленных крест-накрест шарниром (5) (по принципу ножниц) таким образом, чтобы стержни могли свободно двигаться относительно друг друга. На концы стержней надеваются деревянные ручки (4 и 5), а к другим концам при- крепляются обручи (6 и 7), изготовленные из дюралюминия, диаметром 30 см и толщиной 6 мм. Чтобы обручи плотно прилегали друг к другу, стержни от места их скрепления по направлению к ручкам сгибаются так, чтобы ручки не соприка- сались. Внутрь каждого обруча вставляется кольцо (8 и 9), изготовленное из того же материала (по принципу пялец). Для приведения сачка в рабочее состояние необходимо между одним из об- ручей и кольцом натянуть кусок полиэтилена (70), а в другом обруче таким же образом закрепить полиэтиленовый пакет (77). Далее сачок подводится к цветку, быстрым движением зажимается между обручами, а затем срезается с растения и оказывается в пакете. Если цветок необходимо сохранить, в пакет помещается кусочек резины, пропитанный хлороформом или эфиром. Зажав цветок между обручами необходимо выждать пока все насекомые будут умерщвлены, а затем освободить цветок, предварительно стряхнув в пакет антобионтов (Негробов, Хмелев, 1999). 3.4. Выведение амфибионтов в лабораторных условиях Для амфибиотических насекомых, обитающих в стоячих водоемах, выведение в лабораторных условиях (из субстратов или индивидуальное), как правило, не со- ставляет труда. Выведение осуществляется в разнообразных контейнерах-аквариу- мах, в крышке которых делается отверстие для вентиляции, затянутое мельничным
Глава 3. Сбор околоводных и амфибиотических насекомых Ф 185 Рис. 145. Антометр В. Негробова (по Негробову и Хмелеву, 1999). Обозначения см. в тексте. газом. Для более успешного выведения желательно хранить в холодильнике запас воды из того водоема, в котором были собраны личинки. Перед добавлением воды в контейнер она должна прогреться до комнатной температуры. Необходимо учесть, что многие виды окукливаются и выплаживаются в зоне уреза воды в почве, растительных наносах или других субстратах, иногда доста- точно далеко от водоема. Таких насекомых на стадии личинки последнего возраста или куколки следует помещать в контейнер с постоянно влажным субстратом. Так, куколок мокрецов рекомендуется помещать в пробирки или другие стеклянные
186 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых сосуды на кусочек влажной ваты (Глухова, 1979). Отверстие сосуда закрывается кусочком влажной ваты. Необходимо следить за тем, чтобы вата, на которой на- ходится куколка, была влажной до момента выхода из нее взрослого насекомого. Вылетевших имаго следует фиксировать только после полного затвердения по- кровов и приобретения ими окончательной окраски. Для выведения насекомых, обитающих в водотоках на течении, для аэрации используются компрессоры, однако реофилы, как правило, требовательны и к температуре воды, поэтому при работе с ними предпочтительнее выведение в природе. 3.5. Выведение амфибионтов в природе Для выведения амфибиотических насекомых в природе существует ряд кон- струкций садков, наиболее удобными и легкими из которых являются конструкции, предложенные Н.Ю. Клюге (Kluge, 2004; рис. 146). К тому же, они сконструиро- ваны для выведения наиболее уязвимых и «капризных» при вылете амфибион- тов — поденок. Первый вариант (рис. 146, Л, Б) состоит из двух алюминиевых рамок (3), при- крепленных снаружи (с двух противостоящих сторон) нитями к кубу, сшитому из капроновой сетки (7), которая имеет 5 одинаковых по размеру стенок — 4 боковых и дно. Второй вариант (рис. 146, В, Г) состоит из двух стенок, изготовленных из тонкого полупрозрачного пластика (77) и трех (2 боковых и дно) — из единого ку- ска капроновой сетки (72). Сетка имеет размер ячеи 0,4 мм, чтобы детрит, прони- кающий из воды внутрь садка, также легко проходил сквозь дно, не задерживаясь внутри. К сторонам из тонкого пластика с помощью растворителя — хлороформа приклеиваются (73) стенки из толстого полупрозрачного пластика (70). В обоих случаях сетчатый куб продолжается наверх рукавом из хлопчатобу- мажной ткани (2), имеющим такую же ширину и высоту, как капроновая часть. Это позволяет открывать и закрывать садок шире или уже в зависимости от по- ведения вылетающих насекомых. Рамки снабжаются 4 поплавками, изготовленными из пенопласта, два из кото- рых неподвижно прикрепляются к рамкам (4), два других (5) присоединяются к садку перед его сборкой металлическими скобками (6). С помощью гибкой метал- лической шпильки со шнуром (7) завязывается матерчатый рукав и поддерживает- ся его форма, не позволяя имаго насекомых вылететь из садка. Груз под садком (9) предотвращает его переворачивание ветром, что особенно важно во время дождя, когда матерчатый рукав намокает и становится тяжелым. Длинной кордовой нитью (S) садок привязывается к какому-либо предмету на берегу (ветви, камни и т.д.). Половина садка находится в воде, вторая половина — над водой. Садок не дол- жен превышать 12 см по высоте (без матерчатой части) и 12 см по ширине. При больших размерах затрудняется поиск внутри него экзувиев мелких видов, при
Глава 3. Сбор околоводных и амфибиотических насекомых Ф 187 Рис. 146. Два варианта конструкций садков для выведения субимаго из личинок (по Kluge, 2004). А-Б — 1-й вариант садка из капроновой сетки с алюминиевыми рамками: А — в со- бранном виде, готовый к использованию; Б — в разобранном виде; В-Г — 2-й вари- ант садка из капроновой сетки и полупрозрачного пластика: В — в собранном виде, готовый к использованию; Г — схема в горизонтальной проекции, иллюстрирующая метод скрепления пластиковых стенок, капроновых стенок и неподвижных поплавков. Д — пробирка для выведения имаго из субимаго. Обозначения см. в тексте.
188 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых меньшем — неудобно осматривать внутреннее пространство садка двумя глазами в поисках экзувиев и вылетевших насекомых. Внутри садка не должно быть мест, где личинки или экзувии могли бы скры- ваться: рамки и швы должны быть снаружи. Не должно быть и посторонних суб- стратов (камней, песка, листьев и т.д.). При изучении поденок, у которых из воды вылетает субимаго, необходимо для каждого садка иметь отдельную пробирку около 10 см длиной и 2,5-3 см в диаметре, закрытую ватой. Внутрь пробирки следует поместить кусочек бумаги, несколько более короткий и более широкий, чем пробирка, который должен быть неподвижно прижат к ее стенке. Этот кусочек бумаги выполняет 3 функции: 1) служит комфортабельной присадой для субимаго, 2) адсорбирует воду, 3) явля- ется этикеткой. Важно пересадить субимаго из садка в пробирку, не дотрагиваясь до них руками или пинцетом, а накрывая сидящих на стенках садка особей про- биркой, или же собирая их с помощью тонкой палочки, на которую заползает по- денка, если поместить палочку перед ней. Важно помнить, что нельзя помещать пробирку с субимаго на прямой солнечный свет, она всегда должна находиться в тени или в коробке. Время развития субимаго большинства видов — 24 часа. Все стадии развития поденок фиксируются 75% или более концентрированным спиртом (Kluge, 2004). 3.6. Природосберегающие методы сбора амфибионтов 3.6.1. Сбор паутин по берегам водоемов Хорошие результаты по изучению фауны мелких амфибионтов (двукрылых, ручейников, поденок) дает осмотр расположенных на береговой растительности паутин. Желательно выбирать насекомых из паутины индивидуально, так как изъ- ять их из целиком снятой и зафиксированной паутины бывает трудно. К тому же, если водоем обследуется не однократно, а в течение некоторого периода, можно, разрушая каждый раз паутину на определенном отрезке береговой линии, соста- вить некоторое представление о динамике вылета насекомых. 3.6.2. Сбор экзувиев стрекоз Этот метод сбора особенно эффективен для исследования фауны Anisoptera, многие из которых (Aeschnidae) на стадии имаго летают достаточно высоко и с большой скоростью, что затрудняет их сбор энтомологическим сачком. К тому же, при использовании этой методики стрекозы, во-первых, не изымаются из природы, во-вторых, могут быть правильно определены, в-третьих, может быть проведен их количественный учет на определенном отрезке береговой линии.
Глава 4. СБОР НАСЕКОМЫХ-ГИДРОБИОНТОВ 4.1. Основные методы сбора гидробионтов Сбор насекомых-гидробионтов на различных стадиях развития, а также пре- имагинальных стадий амфибиотических насекомых, сводится к сбору их в составе основных биологических подсистем водных объектов — бентоса (биота дна), на- селения зарослей и перифитона (биота искусственных и естественных субстратов), нектона (биота толщи воды), нейстона и плейстона (биота поверхностной пленки). Ниже описываются наиболее обычные методы сбора насекомых в составе этих группировок, в основном в соответствии с «Руководством по методам гидробио- логического анализа...» (1983). Зообентос (животные в составе бентоса) внутренних водоемов условно де- лят на три группы, основываясь на размерах животных. Чаще всего принима- ется следующая размерная классификация: 1) макрозообентос — более 2-3 мм, 2) мезо- (мейо-) зообентос — 0,5-3 мм, 3) микрозообентос — менее 0,5 мм. По другой классификации (Константинов, 1979) к мезозообентосу относятся орга- низмы размером 0,1-2 мм, к макрозообентосу более крупные, к микрозообенто- су — меньшей величины. Кроме того, существует мнение, что к макрозообентосу следует относить все организмы видимые невооруженным глазом. Наиболее объ- ективным представляется подход к разделению на данные размерные группы по соотношению размеров организмов и частиц грунта. Так к микробентосу относят организмы, размеры которых меньше частиц грунта; к макробентосу — суще- ственно превосходящие по размеру эти частицы, а к мезобентосу — занимающие промежуточное положение (Жирков, 2010). В любом случае, в макрозообентос попадают крупные организмы, из числа насекомых — личинки ручейников, хирономид последних возрастов и т.п. В со- став мезо- и микрозообентоса входят ранние преимагинальные стадии насекомых, которые с ростом переходят в состав макрозообентоса. Так как в большинстве слу- чаев определение насекомых по ранним преимагинальным стадиям невозможно, мы более подробно остановимся на методах сбора макрозообентоса и аналогичных макроскопических размерных группировок в составе других биологических си- стем водных объектов, порекомендовав всем заинтересованным в изучении более мелких организмов обзорную статью Е.А. Курашова (2007). Следует учесть, что работа на водных объектах требует использования специ- альной экипировки. Болотные сапоги или костюм химзащиты лучше надевать по- верх обуви, иначе нога может затянуться в мягкий грунт. Если специальной обуви нет, следует заходить в воду в легких хлопчатобумажных штанах и матерчатых кроссовках или кедах. В холодное время года рекомендуется использовать термо- бельё, летом необходим головной убор для защиты от солнца.
190 -Ф" В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Существуют следующие основные группы методов сбора и изучения гидро- бионтов: 1) методы активного лова с использованием специальных орудий (сачки, дно- черпатели, зарослечерпатели, драги, скребки и др.) и руками; 2) методы активного привлечения насекомых (лов на свет над и под водой, ловушки с приманками, феромонные ловушки); 3) методы сбора и изучения насекомых-гидробионтов с помощью бесприма- ночных и дрифтовых ловушек и искусственных укрытий; 4) природосберегающие методы (проведение наблюдений). Применение методов каждой группы предполагает использование опреде- ленного набора орудий и приспособлений для сбора гидробионтов, в том числе насекомых. 3 1 9 Рис. 147. Сачок Бальфур-Брауна (по Рындевичу, 2004). Обозначения см. в тексте. 4.2. Методы активного лова гидробионтов 4.2.1. Сбор сачком. Конструкции гидробиологических сачков Обычный водный сачок предназначен для отлова насекомых, обитающих в воде (многие клопы, жуки, личинки стрекоз, поденок, ручейников и др.). Сачок для сбора гидробионтов может иметь вид обычного энтомологического сачка, но с обручем меньшего диаметра (не более 25 см) и, главное, с толстой ручкой. Основание мешка изготавливают из плотной материи а основная, рабочая часть, мешка шьется из ткани, хорошо пропускающей воду — капроновой сетки или марли. Через эту ткань процеживается вода после извлечения сачка из водоема. Сачок насаживают на толстую проволоку диаметром 2,5—4 мм и прикрепляют к прочной палке, окрашенной зеленой масля- ной краской, длиной 2-2,5 м. Целесообразнее использовать специаль- ный гидробиологический сачок Бальфура- Брауна (рис. 147). Обруч изготавливается из полоски не- ржавеющего металла (7). Диаметр обруча 20-25 см, ширина — 3-5 см. По всей длине обруча через равные промежутки сверлится четное число отверстий (чтобы оба конца пропущенной в них веревки оказались сна- ружи) диаметром 0,5 см (2), сквозь которые продевается капроновый шнур (3) и завязы- вается прочным узлом напротив ручки. К ка- проновому шнуру с внутренней стороны об- руча пришивается мешок (4), Мешок состоит из верхней части шириной 8 см, которая из-
Глава 4. Сбор насекомых-гидробионтов Ф 191 готавливается из плотной бязи (б). Нижняя часть шириной 25 см изготавливается из мельничного газа (7). Все швы мешка промазываются водоустойчивым клеем. Обруч с мешком крепится к металлической ручке двумя болтами (5, 9). Ручка сачка (8) изготавливается из алюминиевой трубки, часто используют разборную ручку из нескольких состыкованных частей (Balfour-Browne, 1928; Шатровский, 1999; Рындевич, Цинкевич, 2000; Рындевич, 2004). Кроме мельничного газа для изготовления сачка можно использовать мешок для мягкой стирки белья. Он сделан из крепкого материала с подходящей ячеёй (Брехов, 2006). Надо отметить, что некоторые преимущества имеет сачок Бальфур-Брауна с квадратной рамкой, так как позволяет использовать сачок как скребок для сбора перифитонных организмов с крупных погруженных предметов — камней, свай и т.д. К тому же, для сачка с квадратной рамкой проще рассчитать площадь одного зачерпывания, что может использоваться при изучении зоофитоса плавающих растений (например, рясковых). Сбор беспозвоночных животных водным сачком проводят несколькими мето- дами. При проведении сборов методом кошения сачок опускают в воду на нужную глубину так, чтобы его отверстие было перпендикулярно ее поверхности, и ведут в сторону, несколько отклонив обруч (описывают плавные восьмерки). При проведении общих сборов водных насекомых сачком некоторое время проводят по подводным объектам (водорослям и макрофитам, корягам и т.п.), после чего сачок вытаскивают, двигая его на себя (как это делают рыбаки при вытаскивании из воды подсака с достаточно крупной рыбой). Поднимать сачок над поверхностью воды, до тех пор, пока вода не стекла из мешка сачка, нельзя: несколько резких подъемов над водой сачка, заполненного водой, может привести к его поломке, не говоря уже о ненужном подъеме тяжести. При кошении по зарослям макрофитов взмахи следует делать параллельно берегу, постепенно приближаясь к нему. Рекомендуется делать не более 10 взмахов за один отбор проб и не проводить кошение по дну, так как сачок очень быстро заполняется грунтом и водными растениями (Рындевич, Цинкевич, 2000). При выборочной поимке водных насекомых сбор проводят следующим об- разом: сачок опускают в воду, подводят под насекомое и поднимают вверх. Для того чтобы сачок двигался в воде быстрее, его разворачивают ребром и лишь в непосредственной близости от объекта поворачивают в нормальное положение (Душенков, Макаров, 2000; Ярошенко и др., 2006). При работе на течении всегда следует двигаться против течения, чтобы под- нятая со дна муть не отпугивала насекомых на еще не обловленных участках. При этом на каменистом грунте следует взмучивать грунт впереди ногой или шестом, выгоняя насекомых из укрытий. Целесообразно передвигаться против солнца, чтобы падающая тень не отпугивала гидробионтов. При количественном учете делается 100 двойных взмахов с выемкой из сачка по мере наполнения не более чем на V3, чтобы не портить материал. Части пробы
192 ф- В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых складываются в отдельный полиэтиленовый пакет для последующей обработки в лабораторных условиях. Иногда стоит ограничить пробную площадку колышками, а еще лучше — стенками из мелкого мельничного газа. При количественном учете личинок и куколок комаров рекомендуется ис- пользовать сачок диаметром 20 см. Медленное равномерное проведение сачка на протяжении одного метра пять раз дает количество личинок на площади 1 м2 (Жадин, 1960). Пробы разбирают в кювете с белым дном или (что особенно удобно в полевых условиях) на светлой клеенке или полиэтилене. Сначала осматриваются попавшие в сачок макрофиты, ветки и другие крупные предметы. Затем постепенно про- мывается грунт. Извлеченных из воды насекомых (и других беспозвоночных) помещают в баночку или пробирку с 70% спиртом или 4% формалином. Морилки для замари- вания водных насекомых использовать не рекомендуются, так как в них вместе с насекомыми попадает много воды, после чего насекомые сильно деформируются, крылья их слипаются, личинки загнивают и т.п. 4.2.2. Метод сбора взмучиванием Сбор с предварительным взмучиванием — наиболее эффективный метод при сборе плохо плавающих насекомых (Helophoridae, Hydrochidae, Hydraenidae, часть Hydrophilidae, личинок и куколок Brachycera) на небольших глубинах. Ногой, шестом или ручкой сачка взмучивается донный грунт и растительность, после чего всплывшие насекомые собираются с поверхностной пленки небольшим сачком из мелкого газа или аквариумным сачком. Для сбора видов, обитающих на плавающих растениях и кочках, необходимо погрузить эти растения в воду и слегка встряхнуть. Находящиеся на них насекомые всплывают на поверхность, после чего собираются при помощи сачка (Рындевич, Цинкевич, 2000). 4.2.3. Ловушка для личинок комаров-звонцов Данная ловушка предназначена для сбора личинок комаров-звонцов и, воз- можно, иных водных личинок, обитающих на дне водоемов. Ловушка (рис. 148, Л, Б) состоит из каркаса (7), изготовленного при помощи сварки трех прутов металлической проволоки диаметром около 6 мм и длиной 400 мм как показано на рисунке. К вершине прута, приваренного перпендикулярно крестообразной плоскости каркаса (7), жестко крепится металлический уголок (2) длиной 300 мм, к которому в средней части следует привязать капроновую веревку (3). Длина нити (3) выбирается в зависимости от расстояния до места исследования. По всей длине прутов каркаса (7), приваренных крестообразно на расстоянии 40 мм друг от друга, следует просверлить отверстия диаметром 2 мм. Сквозь полученные от- верстия нужно протянуть леску (4) толщиной 1 мм, чтобы получились параллель-
Глава 4. Сбор насекомых-гидробионтов Ф 193 Рис. 148. Ловушка для личинок комаров-звонцов (ориг.). Обозначения см. в тексте. ные линии на двух противоположных секторах каркаса, как показано на рисунке 148. Изготовленную таким образом конструкцию нужно забрасывать в водоемы с илистым дном, после чего, нужно вытаскивать ловушку за нить (3). При этом уголок (2) одновременно выполняет роль рыхлителя ила и утяжелителя ловушки. Потревоженные личинки комаров-звонцов, опасаясь сноса течением, прикрепля- ются к леске (4), благодаря чему их можно легко извлечь на поверхность. 4.2.4. Методика сбора скребком Составными частями скребка являются округлая в верхней части или полно- стью квадратная рамка со стороной 20-30 см с прикрепленной к нижнему краю под углом 45° заточенной стальной пластинкой (ножом) 2-3 см шириной. Рамка насаживается на шест длиной 1-1,5 м. К рамке пришивается округлый в концевой части мешок, который состоит из плотной прочной ткани для прикрепления к об- ручу и мельничного газа № 23 в концевой части (рис. 149). Такой скребок может одновременно служить и сачком-промывалкой. Однако мешок из мельничного газа быстро изнашивается. Поэтому мешок для скребка можно изготовить из более прочного материала, например из капронового газа № 10 или даже из рогожи. Перед прикреплением мешка рамку скребка следует обмотать узкой лентой из плотной ткани для уменьшения трения мешка о рамку. На нижней части рамки для прикрепления мешка необходимо просверлить отверстия, так как широкая
194 -Ф" В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Рис. 149. Скребок. Э режущая грунт пластина не позволит пришить мешок непосредственно на рамку (Руководство по методам..., 1983). Если к одной сторон рамы приварить штырь (скребок Дулькейта), то можно собирать и количественные пробы, повернув скребок вокруг оси штыря на 360°. Зная радиус окружности, мы легко найдем площадь облова. Количественный сбор бентоса и перифитона можно осуществлять и скребком без штыря, проводя по дну 25-100 см. При этом необходимо делать не менее 3 обловов (Крылов, 2006). При работе на сильном течении рекомендуется несколько модифицировать скребок. Оптимальная высота и ширина скребка составляет 15 см. Скребок боль- шей величины оказывает значительное сопротивление потоку, меньшей — хуже захватывает грунт. Ось рукояти должна находится в плоскости створа скребка, иначе им будет трудно работать на больших глубинах. Нож целесообразно вы- двинуть вперед на 15-20 см, его кромку загнуть вниз на 15-20°. Мешок-уловитель следует изготовить из плотной и прочной ткани типа брезента, в его боковой стен- ке необходимо сделать окно для выхода воды, затянутое мельничным газом и не доходящее до слепого конца мешка на 5-10 см. Для облегчения работы скребком со льда и на большой глубине к основанию скребка следует привязать веревку, за которую тянет помощник сборщика (Паньков, Шадрин, Панькова, 1998). При работе со скребком на каменистых грунтах следует иметь с собой напиль- ник для заточки стальной пластины, которую при перевозке в целях безопасности необходимо скрыть куском разрезанного вдоль шланга. 4.2.5. Драги и тралы Драги и тралы чаще используются в морской гидробиологии, однако они на- ходят свое применение и при исследовании крупных пресноводных водоемов и водотоков. Данные приборы хорошо улавливают, как животных обитающих на поверхности грунта, так и представителей нектоно-бентоса. Соблюдая общие принципы устройства приборов при работе на пресноводных водоемах, как правило, их приходится модифицировать, уменьшая размеры и заменяя дель на мелкоячеистую ткань. Болгарская драга (рис. 150) представляет собой соединение в одном при- боре зубчатого сачка (с зубьями длиной до 10 см) и драги; шестом, идущим вверх от рамы, регулируют глубину погружения в грунт. Пресноводные модификации обычно не превышают в длину 30—40 см и снабжаются зубьями длиной 2,5-3 см по нижнему и верхнему краям (Жадин, 1960).
Глава 4. Сбор насекомых-гидробионтов Ф 195 Трал Агассица (Сигсби) со- стоит из двух боковых дуг (1), соединенных двумя поперечными перекладинами — металлическими стержнями (2), сплющенными на концах (рис. 151). В этих концах проделаны отверстия для крепле- ния уздечки трала (3). Иногда эта уздечка состоит из двух полови- нок, из которых одна несколько короче другой; каждая половина уздечки заканчивается петлей (ога- ном) для прикрепления к тросу. К боковым железным полосам дуг прикреплены четыре кольца, через которые пропускается стальной трос или прикрепляются две цепи, Рис. 150. Болгарская драга (по Жадину, 1960). служащие подборой для мешка трала. Мешок (4) дела- ется из дели с мелкой ячеей и для прочности перепле- тается редкой сетью из прочной бечевы, а снаружи по- крывается брезентовым фартуком. Боковые дуги также затягиваются делью. При работе с тралом бывают случаи, когда мешок закидывается на раму и закрывает отверстие. Во избе- жание этого через отверстия перекладин, служащие для прикрепления уздечки, вставляются железные штанги, оканчивающиеся наверху кольцами. Начиная примерно с середины высоты дуги, штанги расплющиваются и служат для удержания мешка трала; через отверстия на нижнем конце штанг пропускается прочная бечева, кото- рой скрепляются нижние края фартука, что удерживает мешок от закидывания на раму. Для предупреждения закручивания троса уздечки трала соединяются с ним через роликовоподшипниковый вертлюг (Жадин, 1960). Бимтрал (рис. 152) состоит из двух дуговых баш- маков (1), затянутых частой делью и в верхней части соединенных деревянным брусом (бимом) (3). Сзади к нижнему краю башмаков прикреплена с большой сла- биной цепь или трос (2). К цепи, биму и задней части башмаков привешивается мешок (мотня) (4) из частой дели; можно изготовить комбинированный мешок из дели разной частоты. Иногда мешок делают в виде вер- Рис. 151. Трал Агассица (по Жадину, 1960). Обозначения см. в тексте.
196 ф- В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых ши (с внутренним конусом). Верхняя часть мешка, прикрепляемая к биму, заходит несколько вперед (по сравнению с нижней, прикрепленной к цепи) и при работе накрывает собой придонную подвижную фауну (Жадин, 1960). Хорошие сборы нектоно-бентоса дает малый мальковый бимтрал, отличаю- щийся тем, что вместо нижней цепи у него имеется металлический циллиндр, вращающийся на оси (Жадин, 1960). Количественная драга Гордеева (рис. 153) состоит из следующих основных частей: рамы (2) с ножом (3) и полозьями (У), мешка, двустворчатой крышки (3, 4) с замыкающим тросом (77) и стопорного устройства вспомогательного троса (76). 14 7 4 5 6 9 10 И 17 Рис. 153. Количественная драга Гордеева (по Жадину, 1960). Обозначения см. в тексте.
Глава 4. Сбор насекомых-гидробионтов Ф 197 На нижней стороне крышки драги имеется крюк (5) и стопорный стержень (б) с крючком (7). Направляющая планка стопорного устройства (9) и кольцо для вспомогательного троса (77) крепятся к неподвижной горизонтальной пластинке стопорного устройства (70). Там же расположен качающийся стержень (72) с дугой (73). Драга опускается на дно в открытом виде, и кошка (75) стопорного устройства начинает работать в момент соприкосновения прибора с грунтом. По- сле прохождения драгой заданного длиной троса на катушке (74) пространства трос кошки выдергивает стопор крышки прибора и крышка закрывает отверстие, заканчивая тем самым облов (Жадин, 1960). Для сбора количественных проб водных жесткокрылых В.Г. Дядичко (2009) сконструирована специальная гидроэнтомологическая драга ДГЭ, позволяющая наиболее адекватно оценить показатели обилия водных жесткокрылых. 4.2.6. Дночерпатели Универсального дночерпателя, пригодного для работы на всех типах грунта, нет, поэтому рекомендуется несколько конструкций дночерпателей, каждая из ко- торых применяется для отбора проб при определенном характере донных осадков (Руководство по методам..., 1983). На мягких илистых грунтах применяется коробочный дночерпатель Экмана- Берджа на тросе или облегченная модель ковшевого дночерпателя Петерсена. Для работ на водохранилищах удобна модифицированная в Институте био- логии внутренних вод РАН (ИБВВ РАН) модель дночерпателя Экмана-Берджа — дночерпатель автоматический коробчатый ДАК (Баканов, 1979), хорошо работа- ющая на довольно плотных грунтах и при волнении. На очень мягких илах, например в профундали озер, дночерпатель Экмана- Берджа опускают очень медленно, контролируя по натяжению троса достижение дна, с тем, чтобы прибор не зарывался в грунт. Лучшие результаты получаются при использовании дночерпателя модели Боруцкого с высоким (до 40 см) коробом, причем на корпус следует добавлять ограничитель глубины погружения прибора в грунт в виде решетчатой рамы. В реках на песчаных грунтах отбор осуществляется дночерпателем Петерсена с малой площадью захвата. На плотных и особенно на задернованных грунтах следует применять утяжеленную модель дночерпателя Петерсена, или дночер- патель «Океан». Эти типы дночерпателей, работающие без посыльного груза, удобны для работ на водохранилищах и других крупных водоемах даже во время сильного волнения. Перечисленные виды дночерпателей применяют для отбора проб с лодки или катера. Спуск и подъем облегченных моделей дночерпателей с площадью захвата 1/40 м2 лучше выполнять с помощью механической лебедки с лодки, но можно отбирать пробы, удерживая дночерпатель руками. Утяжеленными и большими моделями дночерпателей (площадь захвата 1/25 м2) работают только при помощи
198 -ф- В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых электрической лебедки с судна. В прибрежной зоне водных объектов на глубинах до 2,5 м для отбора бентосных проб применяют дночерпатели, опускаемые на штанге. Это коробочный дночерпатель Заболоцкого с площадью захвата 1/40 м2, работающий на относительно мягких грунтах, и трубчатый дночерпатель Морду- хай-Болтовского (1/250 м2), которым отбирают пробы на плотных задернованных почвах (Руководство по методам..., 1983). Дночерпатель Заболоцкого (рис. 154) состоит из корпуса-коробки (У), от- крытого сверху и снизу, с площадью входного отверстия 15,8 х 15,8 см = 250 см2, или 1/40 м2; нижние края корпуса остро заточены. Снизу корпус закрывается двумя створками (2), вращающимися на осях, вделанных в стенки корпуса. При замыкании щек их нижние края заходят друг за друга на 0,5 см; створки изготав- ливаются из более тонкого, чем корпус, металла и нижние края их затачиваются. С верхней стороны корпус закрывается двумя крышками (3). К неподвижной раме (4), прикрепленной к стенкам корпуса, крепится латунная направляющая трубка (5) с прорезью (б) в виде прямой щели с верхним (прямоугольным) и нижним (закругленным) изгибами. По направляющей трубке (9) вверх и вниз двигается железный стержень (7) с ввинченным в него небольшим болтом (S), который при движении стержня скользит по прорези направляющей трубки, заходя при пово- ротах стержня в изгибы прорези. Верхний конец стержня соединен через трубку Рис. 154. Дночерпатель Заболоцкого в открытом (А) и закрытом (Б) виде (по Жа- дину, 1960). Обозначения см. в тексте.
Глава 4. Сбор насекомых-гидробионтов Ф 199 4 2 5 6 7 в А Б Рис. 155. Дночерпатель Мордухай- Болтовского в открытом (А) и за- крытом (Б) виде (по Жадину, 1960). Обозначения см. в тексте. с деревянной штангой, а нижний конец — с подвижной рамой (70) с шарнирами на концах и в середине (77). Эта рама представляет собой коромысло, концы кото- рого на шарнирах соединяются с верхними краями створок дночерпателя. Перед работой дночерпатель открывается и закрепляется штифтом на стержне, затем на- жимом на штангу он врезается в дно и штанга поворачивается, освобождая штифт из верхней прорези. Новым нажимом на штангу дночерпатель закрывается, затем поворотом штанги штифт вводится в нижнюю прорезь и дночерпатель вынимается из воды (Жадин, 1960). Описанный дночерпатель изготавливается в Эксперимен- тальной мастерской ИБВВ РАН (Экспериментальная мастерская, 2005). Дночерпатель Мордухай-Болтовского (рис. 155) состоит из отрезка железной трубы диаметром 6 или 11,3 см, со стенками толщиной 2-3 мм, снизу зточенны- ми. К трубе с помощью болтов (9) прикреплены тупоугольные дуги (3), верхними концами охватывающие муфту (7). Нижние концы дуги (72) снабжены прорезью для стопорного винта (70). Крепким завинчиванием этих винтов труба устанав- ливается в вертикальном положении; отпуская винты, трубу можно привести в наклонное положение, вращая ее на болтах как на оси. В муфте свободно ходит полный шток (3), который верхним своим концом насаживается на штангу. В шток сверху вставлен стержень (2) с насадкой (77) на верхнем конце. Нижним концом стержень прикреплен к металлической крышке с рези- новой прокладкой снизу (7). Вокруг стержня навита спиральная пружина (4). На шток на- варена шпонка (5), которая при вертикально движении штока ходит по прорези муф- ты (б). При опускании дночерпателя в воду его крышка поднята и труба открыта. Проба берется давлением на штангу и вынимается с поворотом, подобно тому, как это делается при работе с дночерпателем Заболоцкого. На вынутом из воды приборе открывают крышку, оттягивая ее вместе со штангой, и освобождают винты, удерживающие трубку в вертикальном положении. Отклонив дугу с крышкой в сторону, в нижнее отверстие трубы вводят деревянный шомпол, которым выталкивают пробу грунта (Жадин, 1960). Существует модификация данного дно- черпателя ДЧТ-6/26 с шестью трубками (Баканов, 1979), использующаяся для из- учения агрегированности бентоса. В Экс- периментальной мастерской ИБВВ РАН изготавливается трубчатый дночерпатель, с
200 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых высотой столба грунта 30 см, диаметром столба грунта 8 см (Экспериментальная мастерская, 2005). Дночерпатель Боруцкого (рис. 156) представляет собой модификацию дночерпателя Экмана-Берджа. Он состоит из прямоугольного корпуса, щек Рис. 156. Дночерпатель Боруцкого в откры- том (А) и закрытом (Б) виде (по Жадину, 1960). (створок), закрывающих корпус сни- зу, верхних крышек и спускового аппарата. Площадь отверстия корпуса 250 см2, то есть 1/40 м2. Высота кор- пуса 35^40 см. Створки вращаются на осях, вделанных в стенки корпуса, и захлопываются с помощью спирально закрученных пружин; тонкими цепоч- ками или стальными тросиками они при открытом положении дночерпа- теля соединяются со спусковым аппа- ратом. Этот последний помещается на раме, укрепленной на верхних стенках корпуса, и состоит из двух рычажков, круглой пластинки и двух спираль- ных пружинок, надетых на рычажки. В центре пластинки и в рамке имеется круглое отверстие для закрепления троса, на котором дночерпатель опускается в воду. Общий вес дночерпателя должен быть не меньше 7 кг, иначе он недостаточ- но глубоко погружается в грунт. Перед спуском в воду створки раскрываются, и цепочки через отверстия на концевых лапках надеваются на штифты спускового аппарата. Когда дночерпатель погрузится в ил, по тросу пускается посыльный груз, который ударяет по втулке спускового аппарата и тем самым освобождает цепочки створок, которые с силой захлопываются (Жадин, 1960). На основе данного дночерпателя в Экспериментальной ма- стерской ИБВВ РАН разработан стратифицированный дночерпа- тель ДЧС (рис. 157) для изучения вертикального распределения организмов в толще грунта путем послойной отсечки грунта толщиной 30 мм. Выпускаются две модели ДЧС-100 (площадь пробы грунта 1/100 м2) и ДЧС-250 (1/40 м2) (Экспериментальная мастерская, 2005). Дночерпатель Петерсена (рис. 158) применяется в виде раз- личных моделей с площадью облова в 1/10, 1/5, 1/40, 1/100 м2 и Рис. 157. Дночерпатель стратификационный ДЧС (по: Экспери- ментальная мастерская, 2005).
Глава 4. Сбор насекомых-гидробионтов Ф 201 Рис. 158. Дночерпатель Пе- терсена (по Близняку, 1952). различного веса — от 1 до 40 кг и более. Он со- стоит из двух изогнутых ковшей, вращающихся на скрепляющей их оси. К внутренней стороне одного из ковшей прикрепляется замыкающий тросик, который проходит от этого ковша к другому, пере- даваясь через блок, находящийся на его внутренней поверхности. Отсюда тросик, огибая ось с закре- пленным на ней блоком, поднимается через щель в верхних полукруглых крышках к замыкающему приспособлению. Ковши дночерпателя сверху за- крыты металлическими стенками с одним-двумя затянутыми сеткой окнами. Для утяжеления на каждом ковше снаружи прикрепляются свинцовые или чугунные пластины; сверху от них приварива- ются кольца для цепи, поднимающей дночерпатель. Замыкающее устройство состоит из двустенной узкой рамки (обоймы), в центре которой на оси подвижно прикреплен неравноплечий рычаг с коротким плечом в виде крючка, а длинным — в виде широкой пластинки, играющей роль противовеса. Своей верхней частью замыкающее приспособление крепится к рабочему тросу. Перед работой дночерпатель раскрывается до отказа, в кольцо цепи вставляется конец крючка, рабочий трос натягивается, и в таком положении дночерпатель опускает- ся на дно водоема. При соприкосновении с грунтом устройство своей тяжестью погружается в него, трос дает слабину и цепь соскакивает с крючка. После этого дночерпатель медленным натяжением троса закрывается и вытаскивается на по- верхность (Жадин, 1960). Дночерпатель «Океан» (рис. 159), как и дночерпатель Петерсона, состоит из двух ковшей (7), но верхние крышки (2) его свободно откидываются вверх, не оказывая сопротивления при спуске прибора. Другой его особенностью является применение центрального груза (4) и уменьшение веса грузов на ковшах. Для раскрывания дночерпателя при спуске и закрывания его после соприкосновения с грунтом служит блокируемый сбрасыватель троса (5), состоящий из неравно- плечего коромысла, обоймы и двух грузов на концах коромысла. Нижнее ребро коромысла несет крюк для подвески кольца троса, раскрывающего дночерпатель. На длинном плече коромысла на тросе подвешен груз (6), причем длина этого троса рассчитана так, чтобы груз касался дна несколько раньше самого дночер- пателя. Второй груз закрепляется непосредственно на коротком плече коромысла. Коромысло свободно вращается в обойме, к верхней части которой через вертлюг присоединяется трос от лебедки, а к нижней — конец троса, запирающего дночер- патель. При подъеме дночерпателя перед началом работы кольцо раскрывающего троса (3) надевают на крюк сбрасывателя, и трос выбирают втугую. При этом крышки откидываются вверх, дночерпатель раскрывается, и в таком виде он спу-
202 В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Рис. 159. Дночерпатель «Океан». А — положение перед спуском, Б — на дне, В — при подъеме (по: Жадину, 1960). Обозначения см. в тексте. Рис. 160. Дночерпатель ДАК (по: Эксперимен- тальная мастерская, 2005). скается в водоем. В момент соприкосновения с дном крышки под действием соб- ственного веса закрываются. После срабатывания сбрасывателя и освобождения кольца раскрывающего троса натяжение троса лебедки через обойму передается на закрывающий трос, и он плотно закрывает крышки, а затем стягивает ковши дночерпателя (Жадин, 1960). Дночерпатель ДАК (рис. 160) отличается от обычного дночерпателя Экмана- Берджа тем, что закрывание его створок обеспечивается двумя парами стальных пружин, расположенных вертикально по бокам коробки. Открывание прибора про- изводят путем сжатия пружин с помощью специальных ручек; в таком положении пружины фиксируются одним концом Г-образного рычага, второй (горизонталь- ный) конец которого заходит под спусковую втулку. При движении этой втулки вниз она нажимает на конец рычага и пружины освобождаются. Автоматическая приставка (рис. 161) состоит из обоймы (2), крепящейся к раме дночерпателя с помощью двух металлических полос, стопорной вилки (4) с трубкой (3) в верхней части, на которую надевается пружина, эксцентрика с кулачком (6) и стопорными штифтами (7, 9). Трубка стопора может перемещать-
Глава 4. Сбор насекомых-гидробионтов Ф 203 Рис. 161. Автоматическая приставка дночерпателя ДАК (по Баканову, 1979). Обозначения см. в тексте. ся вверх-вниз по втулке, прикрепленной к верхней части обоймы; на конец трубки навинчена шайба (7). Эксцентрик вращается в обойме на оси (S), в желобе по его ободу проходит трос (5), один конец которого закреплен на кулачке, другой — соединен с тросом лебедки (Баканов, 1979). Сегодня в Эксперименталь- ной мастерской ИБВВ РАН изготавливаются модели ДАК-100 с площадью пробы грунта 1/100 м2, ДАК-250 (1/40 м2), ДАК-400 (1/25 м2) (Экспериментальная ма- стерская, 2005). При выемке грунта из дночерпателя любой кон- струкции обязательно следует смыть водой частицы грунта с внутренних поверхностей стенок в емкость с пробой или промывалку, так как там могут оставаться искомые животные. Места отбора проб (станции) располагаются в пределах разных биотопов. Число станций зависит от характера водоема. Количество отобранных проб на станции может быть различным в зависимости от структуры группировок зообентоса и площади захвата грунта дночерпателями, но должно быть достаточным для получения статистически достоверного материала. При отборе проб дночерпателями с площадью захвата 1/25 м2 следует брать не менее двух выемок, а при меньшей площади — не менее четырех-пяти выемок. Отбор проб дночерпателем проводят с заякоренной лодки или судна. Сначала измеряют глубину: на мелководье размеченным шестом, в более глубоких местах ручным лотом (размеченным в мокром состоянии тросом с грузом). В случае применения лебедки для спуска и подъема дночерпателя обычно используется блок-счетчик, показывающий длину держащего дночерпателя троса. При отборе проб лодка или судно должны быть ориентированы таким образом, чтобы во время дрейфа трос дночерпателя не заносило под корпус судна, что может привести к преждевременному закрытию прибора. Дночерпатель опускается плавно в открытом состоянии. Достижение им дна обнаруживается по ослаблению натяжения троса. В зависимости от конструкции дночерпателя производится закрытие прибора и захват определенного объема грунта. Затем начинают подъем прибора. Дночерпатель с отобранным грунтом помещают в таз, кювету, ящик или на промывательный станок (на крышку), от- крывают его, и грунт либо смывают струей воды в отверстие крышки на сито
204 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых промывательного станка, либо слегка приподнимают над приемной емкостью, освобождая дночерпатель от грунта. Остатки грунта на стенках прибора смывают в основную пробу. Из забракованной пробы можно отобрать образец грунта для проведения механического анализа донных отложений. Для тех же целей при нормально отобранной пробе перед промывкой грунта отбирают небольшое ко- личество грунта и помещают в баночку. Промывка добытого дночерпателем грунта проводится на водоеме сразу по- сле отбора проб. На практике используют несколько методов разделения грунта и организмов. При работе с большими объемами пробы промывку грунта осущест- вляют на станке, который состоит из деревянного корпуса с набором ящиков-сит. Размеры станка определяются объемом отобранных проб. Сверху на станке поме- щается съемная крышка с бортиками по краю для приема грунта из дночерпателя и с отверстием в середине крышки, через которое грунт смывается на верхнее сито. После смыва грунта с крышки на сито, крышку снимают и из содержимого на верхнем сите выбирают крупных животных, а также камни, остатки раститель- ности и другие крупные объекты, которые сохраняют для последующего осмотра. Оставшийся грунт промывают несильной струей воды из шланга во избежание порчи организмов таким образом, чтобы через отверстия верхнего сита на второе попали организмы макробентоса, на нижележащее сито организмы мезобентоса, а остаток пробы смывается в приемный ящик или за борт. Таким образом проис- ходит разделение бентосных организмов по размерным группам. На тех участках крупных водцых объектов, где бентофауна состоит в основном из олигохет и ли- чинок хирономид, а отбор проводится также с судна большими дночерпателями, рекомендуется на промывочном станке промывать грунт лишь на первом сите с крупной ячеей для отделения крупных животных и других объектов, а остаток промывать весь сразу или частями на ситах из мельничного газа № 23. Сито в виде мешка прикрепляется к четырехугольной раме, которая удерживается верев- ками за бортом судна и может быть поднято до уровня борта для приема грунта или опущено в воду не менее чем до половины мешка для промывки. Необходимо следить за уровнем погружения сита в воду и избегать заплескивания воды сверху, чтобы животные не были вымыты из мешка. Сито следует слегка приподнимать и опускать, чтобы ускорить и улучшить процесс разделения грунта и организмов. Через такое же сито промывается за бортом грунт при отборе проб малыми дно- черпателями с лодки. При этом сито можно держать в руках. Для промывки небольших количеств грунта используют небольшие сачки-про- мывалки, состоящие из металлического обруча диаметром 20-30 см, к которому пришивается такой же мешок, как у скребка. Для выборки фауны из песчаного грунта пробу перед промывкой подвергают отмучиванию. Для этого пробу по- мещают из дночерпателя в таз, сверху наливают воду до половины глубины таза. Рукой вода с грунтом приводится в состояние движения так, чтобы поднять в воду животных. Не давая мути и организмам сесть на дно, воду из таза выливают в сачок-промывалку с мешком из газа соответствующего номера для макро- и
Глава 4. Сбор насекомых-гидробионтов Ф 205 мезобентоса. Процесс отмучивания повторяют до тех пор, пока промывные воды не становятся чистыми. После этого остаток грунта в тазу просматривают, всех оставшихся животных выбирают, а грунт выбрасывают. Сбор организмов с промывных сит проводят сразу после промывки проб. Тщательно осматривают крупные объекты, отобранные на верхнем сите промы- вочного станка и собирают обнаруженные на них организмы. Из отмытой пробы макробентоса животных лучше выбирать сразу на водоеме, так как живые формы заметнее и их легче отбирать. При этом грунт помещают маленькими порциями в металлические или пластмассовые кюветы и приливают небольшое количество воды. Для разделения грунта с примесью значительного количества растительного субстрата и организмов можно применять метод флотации. При этом небольшие порции грунта из пробы помещают в насыщенный раствор поваренной соли. Всплывающие организмы быстро, пока они не осели вновь, собирают небольшим сачком или ложкой. Затем грунт тщательно просматривают для сбора моллюсков и других не всплывших организмов. Пробы фиксируют целиком в 4-10% растворе формалина, а выбор животных проводят в стационарных условиях (Руководство по методам..., 1983). 4.2.7. Бентометр Бентометры, как правило, используются в условиях мелководных быстротеку- щих рек. Бентометр Садовского (рис. 162) представляет собой круглый, открытый снизу и сверху металлический цилиндр высотой до 75 см. Площадь основания ци- линдра 0,1 м2 (диаметр отверстия около 35,8 см). Бентометр вдавливается в грунт с помощью двух ручек (7), прикрепленных близ верхнего края цилиндра; нижний край цилиндра для облегчения вхождения в грунт делается зубчатым (2). Стенки цилиндра имеют два больших окна размеров 38 х 38 см, стоящие одно против другого. Переднее окно (3) для меньшего ослабле- ния корпуса прибора вырезано не целиком, а в виде отдельных отверстий, оно закрыто снаружи плотно припаянной металлической нержавеющей сеткой с отверстиями диаметром не более 0,5 мм. К краям заднего окна снаружи приварена сплошная рама (4), состоящая из двух полос шириной 2 см. В боковых полосках этой рамы укреплены штифты со шляпка- ми для надевания съемной рамы (5) с пришитым к ней сачком из конгресс-канвы или мельничного газа. При работе прибор устанавливается на дно реки передним окном против течения, вода при этом свободно входит в переднее окно и выходит наружу через сачок. Удерживая бентометр одной рукой, 1 Рис. 162. Бентометр Садов- ского (по Жадину, 1960). Обозначения см. в тексте.
206 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых другой достают камни со дна и обтирают их пальцами — смываемые животные относятся течением в сачок. Перебирая камень за камнем, учитывают все донное население с пространства 0,1 м2, заключенное внутри бентометра (Жадин, 1960). 4.2.8. Каменодоставатели Богатые группировки бентоса и перифитона концентрируются на крупных камнях и различного рода топляке. Крупные предметы со дна можно изъять с помощью каменодоставателей (или камнещупов), которые опускаются в воду на шесте или тросе. Рис. 163. Донные клещи Куз- нецова (по Жадину, 1960). Обозначения см. в тексте. Каменодоставатель Рубцова состоит из двух противостоящих железных лап — двухпалой и трех- палой, укрепленных на шесте. В открытом состоя- нии лапы удерживаются пружиной, а закрываются натяжением троса, идущего вдоль шеста. Донные клещи Кузнецова (рис. 163), опуска- ющиеся на тросе, состоят из двух противостоящих лап (У) с пальцами (3), подвижно соединенных бол- том (2). Дистально части лап загнуты под прямым углом и заострены. На рукоятях лап пробиваются отверстия (4) для крепления уздечки троса (5). При опускании на дно лапы раздвигаются и нетолстой ниткой (6) удерживаются в открытом состоянии. Когда камнещуп достигнет дна и ляжет на камень, нитка подергиванием троса обрывается и лапы охватывают камень, который затем осторожно вы- нимается из воды. Длина рукояти клещей — 20 см, длина лапы — 25 см (Жадин, 1960). 4.2.9. Зарослечерпатель На сегодняшний день известно более 25 приборов для сбора фауны зарос- лей водной растительности, однако все они имеют существенные недостатки и ограничения в применении. Наиболее универсальным и эффективным является зарослечерпатель конструкции Н.Н. Жгаревой (1979). Зарослечерпатель Жгаревой (рис. 164) состоит из двух подвижных рам высо- той 500 мм, шириной 206 мм, которые разводятся на угол в 85° и при захлопы- вании забирают объем 1/50 м3. Рамы (7) по краям снабжены зубчатыми ножами (2), которые действуют по принципу ножниц. Боковые стенки рам затянуты двумя газовыми мешками (3), один из которых съемный и снабжен стаканчиком для из- влечения из прибора и промывки пробы. Рамы шарнирно соединены на осевой трубе (4), через которую проходит опорная штанга (5). Удобнее пользоваться
Глава 4. Сбор насекомых-гидробионтов Ф 207 Рис. 164. Зарослечарпатель Жгаревой (по Жгаревой, 1979). Обозначения см. в тексте. 30-35 см Рис. 165. Орудия для сбора водных растений (по Близняку, 1952). Обозначения см. в тексте. разъемной штангой. Прибор на штанге устанавливается на выбранном горизонте и фиксируется стопорным винтом (6). Для зарядки прибора рамы с помощью ру- чек (7) разводятся и закрепляются замковой скобой (S), которая и удерживает их в раскрытом положении. Прибор погружается в заросли на нужный горизонт. При помощи тросика (9) скоба срывается и сжатые на штоках при зарядке запирающие пружины (70) приводят в действие рамы, которые при захлопывании вырезают объем воды с растениями. 4.2.10. Грабли, вилки, кошки Для сбора насекомых обитающих на водных растениях применяются такие качественные орудия лова как грабли, вилки и кошки (рис. 165). Грабли (А) состоят из железного бруска длиной 30 см, сечением 1 х 1 см, с вертикальными зубцами длиной 4 см. На концах бруска прикрепляются кольца, соединяемые уздечкой со снастью (Близняк, 1952).
208 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Вилки (Б) применяются для сбора растений на глубинах до 2 м (вместе с корневой системой) (Близняк, 1952). Кошки (В) применяются для сбора водных растений на более значительных глубинах; однако они менее удобны, так как нередко разрывают корни растений (Близняк, 1952). Кроме того, для подрезки корней водных растений применяется угловатый нож в виде серпа (Г). 4.2.11. Метод выплескивания Этот метод необходим для сбора интерстециальных обитателей линии уреза (Georissidae, Heteroceridae, Saldidae и т.д.). Наиболее удобен на открытых мелко- водьях. Руками или любой емкостью вода выплескивается на берег, после чего вымытые из почвы насекомые собираются аквариумным сачком. На заросших мел- ководьях следует с корнем выдергивать растения, которые сразу же осматривать на предмет наличия насекомых, а лишь потом переходить к выплескиванию, оставляя растения в зоне исследования. Как правило, линия уреза обитаема гидрофильными насекомыми не более чем на 1 м от уреза воды. На крупных реках зона может рас- пространяться и далее, но, как правило, в таких случаях маркируется наносами, остающимися после вхождения реки в межень. 4.2.12. Осмотр различных погруженных субстратов Камни с животными собирают вручную на доступной глубине. Для количествен- ных сборов применяют рамку, ограничивающую площадь дна 0,25 м2. Выбираются все камни в пределах площади, ограниченной рамкой. Камни осторожно отделяют от грунта, так как подвижные животные быстро убегают, и помещают в таз с водой либо все сразу, если их немного, либо порциями по мере осмотра предыдущих. Камни из таза по одному тщательно осматривают, и всех обнаруженных животных помещают в банку с фиксирующей жидкостью. Внимательно исследу- ются все наросты, которые могут оказаться домиками личинок ручейников или хирономид. Вода из таза с подвижными животными, покинувшими камни, про- фильтровывается через сачок-промывалку из газа № 23. Остаток из сачка пере- носится в банку с фиксирующей жидкостью. Каждая банка снабжается этикеткой (Руководство по методам..., 1983). Во всех случаях, когда это возможно, желательно поместить предмет в отдель- ных полиэтиленовый пакет и осматривать и промерять площадь в лаборатории. Когда такой возможности нет, следует осматривать предмет на светлой клеенке или полиэтилене. Необходимо сразу собрать всех видимых обитателей, а затем продолжать осмотр до полного обсыхания, причем осматривать все полости, сни- мать кору, отделять влагалища листьев, разламывать субстрат в поисках минеров (в растениях) или комменсалов (в губках).
Глава 4. Сбор насекомых-гидробионтов Ф 209 При работе с растениями их вырывают с корнем, причем предварительно ножницами можно срезать надводную часть растений (для пол у погруженных). Тщательно осматривают корневую систему, так как здесь можно обнаружить специфических обитателей (Руководство по методам..., 1983). Для количественного учета обитателей погруженных в воду предметов на пло- щадь, следует пользоваться методикой, применяющейся для осмотра камней (см. выше). Сырой вес макрофитов при дальнейшем пересчете обилия беспозвоночных на 1 кг массы растений определялся после просушивания их на фильтровальной бумаге. 4.2.13. Сбор обитателей мхов и торфа Пробы зоофитоса моховых ассоциаций на переходных и верховых болотах от- бирают с помощью квадратной рамки с длиной стороны 15,8 см, площадь которой составляет 1/40 м2, дважды в пределах определенной растительной ассоциации для обеспечения адекватного сравнения с макрозообентосом. Такая площадь образцов мха к тому же считается достаточной для выявления и оценки обилия обитаю- щих во мхах хирономид (Панкратова, 1970). Там же из-под слоя отобранного мха можно отбирать пробы верхнего слоя торфа. Вместо рамки можно использовать хорошо заточенный почвенный бур. При первичной обработке проб мхов часто вместо метода флотации приме- няют различные типы термоэклекторов, использующиеся в почвенной зоологии (Fairchild, O’Neill, Rosenberg, 1987). Для сбора насекомых в обводненном сфагнуме часто прибегают к «вытапты- ванию», когда сборщик, вытаптывая мох, искусственно создает наполняющееся водой микропонижение в сфагновом покрове. Скапливающихся в микроводоеме насекомых затем собирают небольшим сачком (например, аквариумным). 4.3. Методы активного привлечения насекомых-гидробионтов 4.3.1. Лов на свет над водой Основной спецификой лова на свет гидробионтов является необходимость размещения под источником света горизонтальной простыни на почве, так как многие жуки и клопы с плавательными конечностями не способны садиться на вертикальную поверхность. Для лова насекомых-гидробионтов на свет обычно используются те же источ- ники света, что и для сбора наземных насекомых (см. выше в соответствующем разделе). Кроме того, для сбора амфибионтов и гидробионтов в качестве источника света В.Д. Иванов (СПбГУ; устное сообщение) предложил использовать детекторы валют. Такой детектор, работающий на аккумуляторах, располагается на пластико- вом контейнере, заполненном водой с детергентом (шампунем) на берегу водоема.
210 •ф- В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Удобство метода состоит в небольшом весе необходимого оборудования, возмож- ности получать данные о биотопическом распределении прилетающих насекомых, так как радиус распространения ультрафиолетового излучения в данном случае не велик, а само оно плохо заметно для посторонних. Утром после лова рекомендуется поблизости осматривать паутины. 4.3.2. Привлекающие горизонтальные поверхности Водных насекомых привлекают горизонтальные красные и черные поверхно- сти, в то время как желтые и белые — не привлекают. В частности, водные жуки хорошо летят на автомобили соответствующих «привлекательных» цветов (Kriska et al., 2006). 4.3.3. Подводные светоловушки Подводные светоловушки используются для сбора морских и пресноводных беспозвоночных и рыб с начала XXI века (Николаева, 2001). Наиболее простая подводная светоловушка с лампой накаливания (рис. 166) изготавливается из двухлитровой пластиковой бутылки, перевернутой вниз горлыш- ком, с четырьмя прорезанными вертикальными отверстиями (У). Снаружи крепятся четыре прозрачные направляющие двускатные лопасти (2). Снизу подвешивается съемный контейнер из темного пластика (3) с одним или двумя «окнами», затяну- тыми мелкой сетью (4), для сбора попавших в ловушку животных. На дно контейнера помещается груз (5), вес которого должен быть достаточным для удержания ло- вушки в вертикальном положении. В качестве источника света используется лампа накаливания (8 В, 20 Вт) (6), подключаемая через трансформатор. Лампа размещается в центре ловушки и не изолируется от воды (Николаева, 2001, 2004). Серьезным недостатком такой конструкции является сильный нагрев лампы и, следовательно, окружающей воды, что ведет к нарушению чистоты эксперимента. Кроме того, при питании от аккумулятора, интенсив- ность света со временем снижается, и его цвет пере- ходит в область красной части спектра, практически индифферентной для большинства членистоногих. По- Рис. 166. Подводная светоловушка из пластиковой бу- тылки (по Николаевой, 2001). Обозначения см. в тексте.
Глава 4. Сбор насекомых-гидробионтов Ф 211 этому в настоящее время более целесообразным представляется использование в качестве источников света белых светодиодов (Николаева, 2005, 2007, 2008; Жердев, Лынов, 2010). Так как светодиоды имеют высокую чувствительность к электротехническим характеристикам источников питания, а для питания от батарейки необходим га- сящий резистор, в светоловушке рекомендуется использовать готовые изделия со 2 3 4 5 6 Рис. 167. Светодиодный фонарик, расположен- ный в призме из стекла (по Николаевой, 2005). Обозначения см. в тексте. светодиодами. Разработана подводная светоловушка, в которой в качестве источника света используется модифицированный налобный фонарь, оснащенный 4 светодиодами белого света (Николаева, 2005). Источником питания служат 3 элемента ААА, рас- полагающиеся во влагостойком контейнере (У) на крыше ловушки, над уровнем воды. Один комплект батареек обеспечивает работу ловушки в течение 3^4 ночей. Сам фонарик со светодиодами (4) помещается на держателе (5) в водонепроница- емый призматический сосуд из оргстекла (3) в центре ловушки (рис. 167). На дно призмы помещается свинцовый груз, обернутый фольгой (6). Ограничивающие пластины из оргстекла (2), расположенные в верхней части призмы, опираясь на крышу ловушки, предотвращают избыточное погружение сосуда. Вершина при- змы находится на 3 см выше уровня воды, герметично закрыта. Все четыре диода располагаются на одной вертикальной линии с одной стороны, поэтому создается направленный поток с углом рас- сеивания 120°. Н.Е. Николаевой (2005) Пред- ложена модификация ловушки, наиболее удобная для установки в мелких стоячих водоемах. Данная ловушка представляет собой про- зрачную конструкцию с мешком и контейнером для сбора улова (рис. 168, 169). Две усеченные пирамиды из оргстекла (6, 8) на- правлены меньшими основаниями навстречу друг другу. Обе части подвижно соединены между собой при помощи петель (7) на концах четырех нитей (5), служащих для извлечения ловушки из воды. Пет- ли пропущены сквозь отверстия в смежных основаниях пирамид. При установке ловушки в рабочее состояние размер петель допускает возникновение между двумя ее ча- стями зазора шириной около 1 см,
212 •ф- В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Рис. 168. Общий вид подводной све- толовушки со светодиодами в рабочем положении (по Николаевой, 2005). Обозначения см. в тексте. в результате чего образуется входное от- верстие (2). Боковые грани пирамид рас- полагаются под углом 65° к основаниям, что определяет направление движения животных к входной щели при их по- пытке приблизиться к источнику света. Верхняя пирамида немного выше и уже, чем нижняя, и может свободно заходить в нее на 3^4- мм, закрывая входное от- верстие. Внутри ловушки располага- ется призма из оргстекла с фонариком внутри (У) и грузом (9), контейнер с батарейками (4) крепится к пенопла- стовой платформе (3). К основанию нижней пирамиды прикреплен мешок из прочной мелкоячеистой ткани (10), в который вшито кольцо с резьбой (11), изготовленное из пластиковой крышки для банки. Контейнером является банка емкостью 0,25 л (12), закрепленная при помощи кольца. В банку помещается груз, а ловушка прочно крепится к пла- вучей платформе из пенопласта. При размещении ловушки на по- верхности воды контейнер самопроиз- вольно погружается под тяжестью свин- цового груза и увлекает за собой нижнюю часть ловушки, при этом пенопластовая платформа удерживает ее верхнюю часть у поверхности. Ловушка принимает вертикальное рабочее положение, а входное отверстие раскрывается на ширину петель. При извлечении ловушки из воды натяжение нитей и петель приводит к тому, что сначала поднимается ее нижняя часть, а входное отверстие закрывается, предотвращая потери пойманных животных с потоком выходящей воды. В резуль- тате улов отцеживается и собирается в контейнер. Для того чтобы собрать остатки улова со стенок мешка, ловушку желательно еще 2-3 раза погрузить в воду до основания нижней пирамиды и вытащить. Удачная конструкция подводной светоловушки со светодиодами, предна- значенная для проведения сборов насекомых-гидробионотов в мелких пресных водоемах, предложена В.Н. Жердевым, В.А. Лыновым и А.Е. Шевыревой (2010). Она устроена следующим образом (рис. 170). Основу ловушки составляет пластиковая бутылка емкостью 1,5 л, в которой на высоте 8 см от дна проделаны ловчие горизонтальные прямоугольные отверстия, размером 2 х 1 см на расстоянии 3 см друг от друга. Под ними, до высоты 3 см от
Глава 4. Сбор насекомых-гидробионтов Ф 213 Рис. 169. Схема конструкции подводной светоловушки с размещенным в центре источником света (по Николаевой, 2005). дна, просверливаются круглые отверстия для фильтрации воды диаметром 1-2 мм. Между ловчими и фильтрующими отверстиями в произвольном месте оставляется промежуток шириной 6 см по которому сливается вода. На отверстия для филь- трации надевается «рубашка», которая является направляющей для гидробионтов в ловчие отверстия. «Рубашка» представляет собой марлевую полосу, которая охватывает всю фильтрующую поверхность. На высоте 18 см от дна просверливаются стравливающие отверстия. К осно- ванию цилиндра прикрепляется груз, масса которого больше силы выталкивания, возникающей при погружении ловушки (авторами ловушки использовался груз
214 •ф- В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых крышка резиновое кольцо -резиновые упоры фонарь '/1 отверстия для стравливания воздуха 11ГГЕЕЕЕЕЕПППГ’! ГлессссппсгбзЫ - фильтрующие отверстия марлевая “рубашка” груз Рис. 170. Подводная светодиодная ловушка на основе пластиковой бутылки (по Жердеву, Лынову, Шевыревой, 2010). А — схема, общего вида светоловушки; Б — фрагмент нижней части светоловушки. массой в 600 г). В качестве источника света используется фонарик с 14 светодио- дами белого света, который крепится к горлышку бутылки при помощи резинового кольца и полосок резинок в качестве упоров. Перед погружением емкость герме- тично закрывается и погружается в воду вертикально на дне. Ловушки устанавливались на мелководье, на глубине 90 см, с 20.00 до 6.00 часов. В числе собранных беспозвоночных встречались ресничные черви, пау- кобразные, ракообразные, клопы, бокоплавы, водяные ослики, жуки, личинки поденок, стрекоз и ручейников. 4.3.4. Методы сбора и изучения насекомых-гидробионтов с помощью бесприманочных и дрифтовых ловушек и искусственных укрытий Описано большое количество конструкций ловушек для гидробионтов (Долгов, Никитинский, 1927; Павлович, 1947; Hunderford, Spangler, Walker, 1955; Kuuscla, Pulkkinen, 1978; Ettinger, 1979; Cushman, 1983; Aiken, Ronghley, 1985; Hilsenhoff, 1987; Richoux, 1988, Цуриков M., Цуриков C., 2001; и др.). Некоторые из них описаны ниже.
Глава 4. Сбор насекомых-гидробионтов Ф 215 4.3.5. Ловушка из двух пластин Ловушка (рис. 171, Л, Б) состоит из двух картонных или фанерных пластин (1 и 2) размером 300 х 300 мм и более, между которыми нужно проложить 2-3 прутика или стебля травы (3) диаметром около 5 мм для того, чтобы между пла- стинами оставалось небольшое пространство. Рис. 171. Ловушка для гидробионтов из двух пластин (по М. Цурикову, С. Цури- кову, 2001). Обозначения см. в тексте. Описанная конструкция устанавливается на поверхности воды у берега водо- ема. Она обвязывается капроновой нитью (4), свободный конец которой прикре- пляется к какому либо предмету, расположенному на берегу (куст, колышек и т.п.). Учеты гидробионтов, использующих данную ловушку в качестве укрытия, следует проводить один раз в 2-3 суток. Для этого необходимо осторожно приподнять конструкцию и положить ее на кусок полиэтиленовой пленки, разложенный на берегу. Затем, удалив нить (4), нужно поднять пластину (У) и выбрать скопившихся беспозвоночных. С целью исключения потерь гидробионтов, целесообразно из- готовить сачок с большим диаметром обруча, с его помощью быстро изолировать ловушку, плавающую в воде, а затем вытащить ее на берег и исследовать. 4.3.6. Вороночные (бутылочные), «типа верши», ловушки Для изготовления такой ловушки (рис. 172) от пластиковой бутылки отрезается верхняя треть и вставляется горловиной во внутрь нижней части. Затем две со- ставные части скрепляются тугими металлическими зажимами (2) как показано на рисунке 172. На дно ловушки можно положить приманку (небольшие кусочки мяса, печени, рыбы и т.д.) (У) для того, чтобы привлечь хищных насекомых. Насе- комые скапливаются в задней части ловушки. Для изъятия насекомых необходимо снять металлические зажимы и вынуть часть ловушки с горловины (Рындевич,
216 "v* В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Рис. 172. Вороночная ловушка (по Рындевичу, 2004). Обозначения см. в тексте. Цинкевич, 2000; Рындевич, 2004). Перед изъятием насекомых бутылку необходимо слегка встряхнуть, чтобы насекомые не могли спрятаться в приманке (Ярошенко и др., 2006). Как правило, используют 1,5-2 л бу- тылки, но для сбора крупных насекомых следует использовать бутылки с диаме- тром горлышка более 3 см (5 л, бутылки от соков и молочных продуктов). Всегда следует отмечать на берегу ленточкой или буйком место установки ловушки или закреплять ее шнуром или проволокой. Располагать ловушку следу- ет входом по течению, чтобы, во-первых она не забивалась дрифтом, во-вторых — чтобы по течению распространялся запах приманки. Бесприманочные ловушки использу- ются, когда нет возможности часто посе- щать водоем (Дядичко, 2004) или в слу- чаях изучения редких и краснокнижных видов водных насекомых. В частности, в Европе для изучения динамики чис- ленности плавунцов Dytiscus latissimus и Graphoderus bilineatus, занесенных в Рис. 173. Вороночная ловушка Хольмена (по: Anonymous, 2005). Обозначения см. в тексте.
Глава 4. Сбор насекомых-гидробионтов Ф 217 Красную книгу МСОП используются именно такие ловушки (Dijk, 2006; Koese, Cuppen, 2006; Kalnins, 2006). Особенно удачна ловушка конструкции М. Хольмена (Anonymous, 2005), состоящая из двух пластиковых бутылок и закрепленная на шесте (рис. 173), которая позволяет пойманным насекомым долгое время оста- ваться живыми. Пластиковые бутылки (7, 2) крепятся к шесту (3), погруженному в донный грунт двумя эластичными резиновыми креплениями (5). От второй пластико- вой бутылки отрезается верхняя часть (6) без горлышка, чтобы диаметр внутрен- него входного отверстия был 31-32 мм (7). Между собой бутылки скрепляются металлическими зажимами-скобами (5), которые страхуются стопорными камня- ми (9). На дно первой пластиковой бутылки помещается груз (70), водные расте- ния (77) помещаются в обе бутылки. Дно второй пластиковой бутылки, снабженное отверстием для доступа атмосферного воздуха диаметром 5-10 мм (72) должно находится не менее чем в 5 см над поверхностью воды. 4.3.7. Искусственные укрытия В водотоках (реках, ручьях и т.д.) перпендикулярно руслу на глубине до 20 см укладываются пучки травы с крупными стеблями, ветки деревьев или кустарников, связанные при помощи проволоки. Узкая часть пучка должна на- ходится на берегу и быть закреплена проволокой или шнуром. Периодически пучки вынимаются и осматриваются в кюветах. Некоторые водные насекомые являются очень хорошими пловцами и могут покинуть искусственное убежище до того, как его вынут из воды. Чтобы избежать этого, перед поднятием пучка, за ним по течению ставится сачок, куда попадают насекомые, успевшие выплыть из укрытия (Миноранский, Джумайло, 1980; Рындевич, Цинкевич, 2000). Еще удобнее связывать небольшие пучки, которые потом можно достать сачком, без потери скопившихся насекомых. 4.3.8. Искусственно помещенные в воду субстраты В практике гидробиологических работ все более широкое применение на- ходит полуэкспериментальный метод установки в водоемах искусственных субстратов. Применяются деревянные пластинки, предметные стекла, полиэтиле- новые плавающие плитки, хворостяные ящики, заполненные камнями, сучьями и другими предметами, куски известняка в металлических сетках и т.д. Фауна, развивающаяся на плотных субстратах, состоит из форм, живущих на поверх- ности субстратов и не способных зарываться в грунт. Они образуют особый комплекс, отличающийся прикрепленными формами, строящими на субстрате не- подвижные домики или обладающими другими средствами прикрепления. Среди них находят убежище и пищу ползающие и бегающие формы беспозвоночных, в том числе — насекомые.
218 •ф- В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых По имеющимся данным, результаты, полученные с искусственных субстратов, довольно полно отражают фауну макробеспозвоночных конкретного участка водо- ема. При этом ряд организмов предпочитают искусственный субстрат, а другие встречаются более часто в естественной среде (Руководство по методам..., 1983). В качестве искусственных субстратов можно использовать куски оплавив- шейся пустой породы и каменноугольного шлака, материал, выбрасываемый из топок котельных, встречающийся повсеместно. Выбирают куски с гладкой по- верхностью, на которой допускается наличие крупной пористости и неровности. В «рукав» длиной 25 см из безузловой полиэтиленовой ориентированной сетки, используемой для расфасовки фруктов и овощей, помещают 15 кусков субстрата размером приблизительно 7><6хЗ см. Последние укладываются по возможности плотнее. Неровность соприкасающихся поверхностей создают многочисленные ниши, которые будут колонизироваться беспозвоночными. Концы сеточки завя- зывают рыболовной леской или мягкой алюминиевой проволокой (Руководство по методам..., 1983). Искусственные субстраты могут быть использованы для проведения иссле- дований на малых реках и в прибрежных участках крупных рек на песчаных, песчано-илистых, каменисто-песчаных и каменистых грунтах. При размещении субстратов в водоеме надо стремиться получить максимальную информацию. Известно, что во внутренних водоемах наиболее продуктивными являются фитофильные биоценозы. Поэтому искусственный субстрат следует помещать, прежде всего внутри сообществ прибрежно-водной растительности, среди воздуш- но-водных и погруженных растений. Кроме того, субстраты ставятся на границе макрофитов и свободного грунта, а также на характерном для данной станции участке грунта, удаленном от растительности. В реках с быстрым течением необходимо предусмотреть фиксацию субстратов в выбранном для экспозиции месте. Для этого с помощью капронового шнура субстрат привязывают к прочно закрепившейся коряге, прибрежному кустарнику или к специально забитому металлическому штырю. В случае каменистого русла руками расчищается от камней для субстрата соответствующая площадь грунта. Окружающие камни будут фиксировать субстрат. Целесообразно иметь план-схему местонахождения субстратов, помеченных номерами. При составлении плана-схемы могут учитываться особенности берего- вой линии, расположение относительно заметных предметов и строений на берегу, а также примерное расстояние до субстрата в метрах. Устанавливать субстраты следует по окончании весеннего половодья на глубину не более 0,5 м с учетом сезонного изменения уровня воды. Наиболее оптимальным сроком нахождения субстрата в воде является 1-1,5 месяца. Для получения удовлетворительных результатов на каждой станции не- обходимо ставить не менее трех субстратов (Руководство по методам..., 1983). Субстрат в воде отыскивают осторожным ощупыванием ногой отмеченного на плане участка. Поднимать субстрат следует рукой, подставив под него сачок
Глава 4. Сбор насекомых-гидробионтов ’Ф* 219 из капронового газа № 23 для того, чтобы животные не смывались водой. По- том сеточку с субстратом переносят в пластмассовое ведро, заполненное водой. Сачок промывают в ведре, а оставшихся на нем животных выбирают пинцетом. Закрытые крышками ведра с вложенными в них этикетками можно отправить в лабораторию в том случае, если есть необходимость и возможность быстрой до- ставки проб (в течение дня). В лаборатории сеточку разрезают. Куски субстрата обмывают сильной струей воды на двух металлических решетках, вставленных одна в другое. Больший напор воды достигается сужением диаметра резиновой трубки, надетой на водопрово- дный кран. Размеры ячей сита первого решета могут быть очень большими, так как оно нужно лишь для того, чтобы удержать субстрат. Вместо металлического сита в нижнем решете может использоваться капроновое. Животных, скопившихся на нижнем сите, направленной струей воды собирают в одном месте и, перевернув сито вверх дном, смывают в кювету, расчерченную на квадраты, для ознакомления с фауной. Каждый кусок субстрата внимательно просматривают. Прикрепившихся животных снимают пинцетом. В экспедиционных условиях поступают несколько иначе. Поднятую сеточку с субстратом помещают в ведро, заполненное водой, как указывалось выше, разрезают. Каждый кусок субстрата «прополаскивается» в ведре с тем, чтобы животные смылись в воду. Оставшихся на субстрате беспозвоночных переносят пинцетом в приготовленную баночку с водой. Воду из ведра пропускают через сачок из капронового газа № 23, сшитый на конус. Вершина сачка, в которой собралась основная масса беспозвоночных, выворачивается и несколько раз погружается в приготовленную широкогорлую баночку, поставленную в кю- вету. Последняя нужна для того, чтобы избежать потери животных. Собирают беспозвоночных, оставшихся в ведре и на сачке. Для быстрейшего извлечения животных куски субстрата можно погрузить в подсоленную воду. Весь матери- ал фиксируется в 4% растворе формалина. Затем куски субстрата помещают в новую сеточку, которую завязывают и опускают вблизи прежнего места экспо- зиции. Дальнейшая разборка и обработка материала производится по окончании экспедиционных работ. Сбор макробеспозвоночных с помощью искусственных субстратов можно считать не только методом качественного, но и полуколичественного сбора, так как в данном случае мы имеем дело с приблизительно однородной и разновеликой поверхностью, доступной для организмов, и одинаковым временем колонизации субстратов последними (Руководство по методам..., 1983). 4.3.9. Дрифтовые довушки Отбор проб дрифта в реке заключается в отцеживании из потока сносимых течением организмов специальным прибором — ловушкой (рис. 174). Основной элемент ловушки — сетчатый мешок, имеет конусообразную форму, в широкой
220 В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Рис. 174. Различные конструкции дрифтовых ловушек (А-Д) (по Барышеву, 2006). 1 — колья для установки в реке, 2 — плотная ткань, 3 — газ (ткань для сит), 4 — ко- нус из плотной ткани. Стрелками указано направление течения. части пришит к рамке, формирующей входное отверстие определенной площади. Ловушка простой конструкции показана на рисунке 174, А. Рамка может быть пря- моугольная, либо круглая. Площадь рамки варьирует от 0,0075 до 0,1 м2 (Барышев, 2006). Ловушка подобной конструкции имеет ряд недостатков: сетка ловушки со временем забивается растительными остатками; затруднен точный учет количества процеженной воды; для установки ловушки требуется конструкция, закрепленная на дне. Ячейки фильтрующей сетки в процессе лова забиваются сносимыми потоком частицами, что уменьшает фильтрующую способность ловушки. Это сокращает объем проходящей воды, возникают обратные потоки, которые могут вымыть из мешка уже пойманные организмы. Конструктивные варианты решения этой про- блемы основаны на увеличении площади фильтрующей сетки. Так, в конструкции, предложенной Кушингом, ловушка имеет узкое входное отверстие, за которым следует широкая сеть (рис. 174, Б). Применение этой ловушки оправдано, когда необходима большая экспозиция. Альтернативный вариант решения проблемы — отвод части потока трубой со сливом в сетчатый мешок (рис. 174, В). Подобные
Глава 4. Сбор насекомых-гидробионтов Ф 221 устройства могут быть удобны при взятии проб с большой экспозицией, напри- мер при учете суммарного суточного дрифта. К недостаткам можно отнести воз- можность взятия пробы только при резком перепаде уровня воды (крутой порог, водопад), а также то, что некоторые организмы (например, личинки Simuliidae) могут прицепляться к внутренней поверхности трубы, так и не дойдя до сетки. Время приемлемой работы ловушки простой конструкции (рис. 174, А) зависит от ее экспозиции, количества сносимого потоком детрита, длины сетчатого мешка и размера ячеи. Проблема забивания сетки может быть решена не только кон- структивным путем, но и подбором времени экспозиции ловушки. Сеть с мелкой ячеей забивается быстрее, чем с крупной. По этой причине оптимальная экспо- зиция для ловушек с сетью разного размера ячеи неодинакова. Размер ячеи сетки (мельничный газ, ткань для сит) применяется обычно от 0,1 до 0,5 мм. В России газ нумеруется, исходя из числа ячеек на 1 см (сеть с ячеей 0.1 мм — № 70, с ячеей 0,5 мм — № 14). Крупноячеистую сеть применяют для изучения сноса только крупных организмов, например при оценке кормовых условий для рыб, мелкоячеистую для максимально полного учета организмов в дрифте. Экспозиция ловушки — важный методический параметр. При малой экспозиции не удается набрать достаточное для статистического анализа количества организмов, в то время как при чрезмерно долгом сборе пробы из-за забивания сети невозможно определить объем прошедшей воды. Таким образом, в идеале ловушка для дрифта должна экспонироваться в течение максимального времени, за которое не проис- ходит существенного ухудшения фильтрующей способности. Количество детрита, сносимого потоком, зависит от множества факторов и может быть очень большим, например в период паводка. В подобных условиях экспозиция должна исчисляться минутами. Для межени экспериментальным путем найдены следующие значения экспозиции: газ № 14 (0,5 мм) — 30-60 мин, газ № 19 — 15-30 мин, газ № 23 — 10-20 мин, газ № 30 (0,25 мм) — 5 мин, газ № 43 — 2 мин, газ № 70 (0,1 мм) — 13 мин (Барышев, 2006). Для количественной характеристики дрифта необходимо знать, какой объем воды был процежен ловушкой при экспозиции. Для этого создан ряд конструкций со встроенным счетчиком прошедшей воды. Одно из подобных устройств при- ведено на рисунке 174, Г. Подобные конструкции сложны и не позволяют брать пробы дрифта по поверхности. Поскольку дрифт по поверхности отличается от дрифта у дна, при оценке, например кормовых условий для рыб, погрешность может быть существенна. Большинство исследователей учитывают объем воды косвенно, рассчитывая его из скорости течения, экспозиции и площади входного отверстия ловушки. Скорость течения измеряется гидрологической вертушкой непосредственно перед стоящей ловушкой либо в том месте, где она будет уста- новлена. В последнем случае используется определенный экспериментально коэф- фициент фильтрации ловушки. Некоторые авторы принимают его равным единице. Показано, что у ловушек с конусообразным мешком коэффициент фильтрации варьирует от 0,85 до 0,96.
222 В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Ловушка для отбора пробы устанавливается на определенную глубину. При сборе дрифта с поверхности Эллиотт использовал плавающую ловушку, собира- ющую дрифт в слое воды 7 см от поверхности. Иногда ловушка верхним краем на 1-2 см поднимается над поверхностью. Многие исследователи полностью по- гружают ловушку и устанавливают ее у дна или на некотором удалении от него. В малых реках ловушку можно установить так, что будет облавливаться вся толща воды. Состав и количественные характеристики дрифта по поверхности и в толще воды могут существенно различаться. Изучение дрифта только в толще воды или только по поверхности недостаточно для его количественной характеристики в целом. Эллиотт устанавливал ловушку под водопадом и облавливал весь водоток, что, на взгляд автора, перспективно при изучении дрифта в ручьях. На участках, где глубина позволяет облавливать несколько горизонтов, целесообразно с одной точки брать две пробы дрифта — одну из толщи воды, погрузив ловушку на по- ловину глубины, другую с поверхности, захватывая 5 см в глубину. Для взятия пробы дрифта ловушка устанавливается в реке на определенное время. Фиксация ловушки руками удобна только при экспозиции менее 5 мин. При необходимости установить ловушку на большее время можно использовать вбитые в дно реки металлические штыри или колья. Каменистые грунты многих рек не дают воз- можности надежно вбить колья. В этом случае дрифт с поверхности собирается плавающей ловушкой (рис. 174, Д), закрепленной оттяжками, для сбора дрифта из придонных горизонтов ловушку крепят к массивному основанию, устанавли- ваемому на дно. В реках со значительными глубинами ловушку опускают с лодки на нужную глубину. Улов переносят в сосуд с водой. Из пробы, находящейся в сосуде, вынимают крупные растительные фрагменты — листья, ветки и т.д. Следует обращать вни- мание, чтобы вместе с растительными частицами не удалялись животные. Далее с помощью промывного сачка пробу отделяют от воды. Для промывного сачка используют газ немного мельче, чем в ловушке. Пробу фиксируют 4%-ным рас- твором формалина или 70% раствором спирта. В лаборатории пробу разбирают с использованием камеры Богорова, иногда модифицированной: размеры 105 х 130 мм, ширина канавки 14 мм, глубина 8 мм. До сих пор не существует унифицированной единицы измерения количе- ственных характеристик дрифта. Для оценки интенсивности дрифта в толще воды (ловушка при сборе пробы полностью погружена) обычно указывают количество (или массу) организмов на объем воды: на 1 или 100 м3 (Барышев, 2006). Для оценки дрифта по поверхности ловушка погружается в воду не полно- стью, а заглубляется нижней кромкой на несколько сантиметров и об лавливает поверхность. В этом случае пересчет характеристик дрифта на объем воды не- возможен. Для сопоставления собственных данных исследователю достаточно указать число (массу) организмов, пойманных ловушкой за определенное время. Для сравнимости результатов указывают число (массу) организмов, проплывших за определенное время (обычно 1 ч) через створ определенной ширины. Иногда
Глава 4. Сбор насекомых-гидробионтов 4* 223 ловушка устанавливается так, чтобы ее верхний край выступал над поверхностью воды на 1 см, численность (массу) вычисляют на 1 м2 облавливаемой площади за 1 ч. Однако и эти расчеты не обеспечивают полной сравнимости результатов, поскольку не учитывают скорость течения в точке взятия пробы. Представляется рациональным рассчитывать характеристики поверхностного дрифта на площадь поверхности (1 м2) (Барышев, 2006). В малых реках (с расходом воды менее 5 м3/с), а также на перекатах средних рек пробы дрифта отбираются ловушкой площадью 0,1 м2 (0,2-0,5 м) (рис. 174, А) с конусообразным мешком длиной 1,2 м из газа № 23. В дно реки вбивают металлические или деревянные колья, к которым одновременно крепят две ловуш- ки — одну погружают на половину глубины потока, другую заглубляют нижней кромкой на 5 см. Первая ловушка учитывает дрифт в толще воды (интенсивность дрифта), вторая — в поверхностном слое. Экспозиция составляет в период ме- жени 15 мин, в паводок — 5 мин. Скорость течения измеряют гидрологической вертушкой. Дрифт в толще воды (интенсивность дрифта) пересчитывают на 1 м3 потока, по поверхности — на 1 м2. Две пробы дрифта (с поверхности и из толщи) позволяют вычислить численность и массу организмов в столбе потока над 1 м2 дна и определить характеристики дрифта в целом. Большое внимание уделяется поведению организмов, активно всплывающих в дрифт. Оцениваются следующие характеристики: миграционная активность, время пребывания в дрифте и дистанция дрифта. Для оценки миграционной активности разработано два способа. 1. Два участка дна: один с донным населением, другой (контрольный) с чи- стым грунтом (искусственным или отмытым от организмов естественным), огора- живают сеткой с трех сторон (выше по течению и с боков) так, чтобы организмы из дрифта не могли оседать на этих участках. По истечении времени (1 сут.) на чистом грунте учитывают количество организмов, поднявшихся против течения. На участке с естественным населением учитывают, насколько уменьшилась его плотность, что соответствует количеству снесенных организмов. Контрольный участок позволяет учесть организмы, переместившиеся вверх по течению, и вне- сти соответствующую поправку. 2. В реку устанавливают отмытые от организмов камни и учитывают, сколько организмов осело на них за 1 сут. Можно принять, что это число будет близко к числу организмов, снесенных выше по течению с участка такой же площади. Дистанцию дрифта можно выявить тремя путями. По методу Уотерса, речку полностью перегораживают сетью из газа. Пробы дрифта берут ниже по течению, удаляясь от сетки до тех пор, пока интенсивность дрифта не достигнет значений, которые были до установки сетки. Другой способ заключается в искусственном вовлечении организмов в дрифт выше сетки, в простейшем случае — рыхлением субстрата. Некоторые исследователи выпускали в поток известное количество организмов определенных видов (Барышев, 2006).
224 4* В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых 4.4. Природосберегающие методы (проведение наблюдений) 4.4.1. Наблюдения с маской и аквалангом Нередко при исследовании вопросов синэкологии, экологии и этологии от- дельных видов возникает необходимость провести наблюдения в природе за гидробионтами. Такие наблюдения можно проводить с использованием маски и трубки-воздуховода ныряльщиков или акваланга. Использование маски с трубкой позволяет проводить длительные наблюдения в поверхностном слое воды. Иссле- дование состава и экологии гидробионтов в более глубоких слоях возможно только с аквалангом и после обязательной специальной подготовки аквалангиста под ру- ководством инструктора. При погружении аквалангиста на берегу или плавающем средстве должен обязательно находиться сопровождающий, ведущий наблюдение за исследователем под водой, с которым он должен иметь связь. Погружение с аквалангом позволяет вести и съемку объектов фото- или кинокамерой. 4.4.2. «Корейское окно» Далеко не всегда требуется погружение с маской или аквалангом, а часто оно просто невозможно, например, при исследовании гидробионтов мелких водоемов, включая временные, а также болот. Для проведения наблюдений без погружения используются различные модификации так называемого «корейского окна». Суть конструкции- заключается в том, что изготавливается застекленная деревянная или фанерная рама. Она помещается стеклом на поверхность воды, а наблюдатель с Рис. 175. «Корейское окно» для исследования гидробионтов (по М. Цурикову, С. Цурикову, 2001). Обозначения см. в тексте.
Глава 4. Сбор насекомых-гидробионтов 4* 225 берега, лодки или плота ведет наблюдения за гидробионтами, опустив голову в по- лость этой рамы с не застекленной стороны сверху. Ниже описывается улучшенная модель «корейского окна», разработанная М. Цуриковым и С. Цуриковым (2001). Устройство (рис. 175, А) состоит из пенопластового каркаса (7) и прямоуголь- ного куска стекла (2). Каркас (7) представляет собой толстостенную коробку без дна размером около 250 х 200 х 200 мм с толщиной стенок около 30-40 мм. Для изготовления каркаса (7) можно использовать упаковочные элементы различной бытовой техники (радиоприемники, магнитофоны и т.п.). Размеры стекла (2) не- обходимо подбирать, исходя из размеров каркаса (7) таким образом, чтобы стекло было на 15-20 мм шире и длиннее внутреннего отверстия каркаса (рис. 175, Б). Далее следует герметично приклеить стекло (2) к каркасу (7), для чего целесоо- бразно сделать выемку глубиной 5 мм вдоль внутреннего периметра отверстия каркаса, соответственно размерам стекла, после чего выемку следует покрыть слоем клея и погрузить в нее края стекла. Описанная модификация «корейского окна» выгодно отличается от деревянных конструкций легкостью, устойчивостью и удобством в работе. Благодаря легкости каркаса, конструкция устойчиво держится на поверхности воды, что значительно упрощает процесс ее использования, как с берега, так и с плавающего средства. 4.4.3. Мечение водных насекомых Бранкуччи (Brancucci, 1975) маркировал водных жуков путем точечного со- скабливания верхнего окрашенного слоя кутикулы надкрылий. При этом исполь- зовался миниатюрный электромотор, вращающийся со скоростью 12000 об./мин, с тонкой зубоврачебной фрезой. Питание осуществлялось от 6-вольтовой батарейки. В.И. Климов (1979) предложил для этих же целей устройство, состоящее из электродвигателя МЭД-40 для детского моделирования и батарейки для карман- ного фонаря 3336Л. В качестве рабочего органа использовался вал электродви- гателя, выступающий за пределы корпуса на 10-12 мм. Конец вала подвергался двусторонней плоской заточке. Скорость вращения вала — около 3000 об./мин, при напряжении 4,5 вольта вполне достаточна для нанесения меток. В лаборатор- ных условиях питание электродвигателя осуществлялось и от сети переменного тока напряжением 220 вольт с использованием выпрямляющего и понижающего устройства от обычной электробритвы. Метки, представлявшие собой 6 арабских цифр на каждом из надкрылий, становились плохо различимыми через 4-5 меся- цев (Климов, 1979).
Глава 5. ОБРАБОТКА МАТЕРИАЛА ДЛЯ КОЛЛЕКЦИИ Существуют четыре основных способа хранения энтомологического мате- риала: 1) на ватных слоях (матрасиках), 2) в смонтированном виде на энтомо- логических булавках, 3) в консервирующих жидкостях, 4) в виде постоянных или временных препаратов на предметных стеклах. Кроме того, имеются особые способы хранения насекомых, например, в бумажных пакетиках (чешуекрылые), в надутом состоянии (гусеницы) и др. При подготовке к длительному хранению и составлению различных коллекций энтомологический материал соответствующим образом обрабатывается. 5.1. Разборка материала Разборка представляет собой начальный этап обработки собранного в поле материала и подготовки его к длительному хранению. Важное условие, которое необходимо соблюдать при выполнении этой работы — дифференциация разных сборов, т.е. сборов с разных дикорастущих растений или культур, из разных био- топов, стаций различных фаз развития одного вида, проводимых разными методами, в разное время суток и т.д. Насекомые, собираемые для коллекции, обычно замариваются в поле. Если на- секомые доставлены в лабораторию живыми, их необходимо как можно быстрее заморить или поместить в жидкий фиксатор. Затем материал раскладывается на чи- стый светлый (или контрастирующий по цвету с объектами) лист бумаги. Материал очищается от мусора, а необходимые сведения (где, когда, кем собран материал, биотоп, стация, названия видов и все другие необходимые сведения) заносятся в первичную документацию или полевой дневник, если такие сведения не были за- несены еще в поле. При необходимости материал дополнительно раскладывается по таксонам в отдельные кучки. Разборка материала проводится в основном с по- мощью мягкого глазного или самодельного пинцета, изготовленного из металличе- ских упругих пластин (см. выше) а очень мелких объектов — с помощью мягкой (колонковой) кисточки. При захвате насекомого пинцетом необходимо оберегать его от повреждений, особенно вершину брюшка, так как расположенные здесь половые органы очень часто используются при определении вида. Разборку материала и последующее раскладывание его на матрасики надо по возможности проводить в тот же день, когда он собран. Сохранение неразобранно- го материала на открытом воздухе в течение суток приводит к тому, что насекомые становятся сухими и ломкими, а при продолжительном хранении в морилках они к тому же могут покрыться плесенью. Для ускорения разбора материала можно рекомендовать к использованию специальное устройство (рис. 176).
Глава 5. Обработка материала для коллекций 4* 227 Рис. 176. Устройство для сортировки сборов мелких беспозвоночных (ориг.). Обозначения см. в тексте.
228 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Для изготовления устройства (рис. 176, Л, Б) следует взять два деревянных колеса (7 и 2), имеющих центральное отверстие диаметром 8 мм. Колесо (7) должно иметь внешний диаметр 50 мм и высоту 15 мм, причем желательно, чтобы его нижняя поверхность была ровной, а верхняя — полушаровидной (рис. 176, В). В отверстие колеса (7) следует вставить и приклеить столярным клеем деревянный стержень (3) диаметром 7 мм и длиной 36 мм. Далее нужно надеть на стержень (3) колесо (2) высотой 9 мм и диаметром 35 мм, обе по- верхности которого должны быть ровными. Таким образом, колесо (2) может свободно вращаться вокруг стержня (3), а для того, чтобы колесо (2) не могло сниматься со стержня (3), на торец последнего необходимо установить диск из жести (4) диаметром 11 мм и прикрепить его при помощи двух гвоздей (5). Затем необходимо изготовить из плотной бумаги круг (6) диаметром 35 мм с отверстием в центре диаметром 16 мм, причем этот круг должен иметь бортики высотой 2 мм по внешнему и внутреннему краю. Такие бортики легко изгото- вить путем надрезов на глубину 2 мм с интервалом 2 мм по внешнему и вну- треннему краям круга (6), после чего следует полученные лепестки отогнуть под прямым углом к плоскости круга и промазать клеем для скрепления. Круг (6) нужно приклеить к верхней плоскости колеса (2), а к диску (4) необходимо при- клеить кружок из бумаги (7) диаметром 15 мм, имеющий бортик высотой 2 мм (рис. 176, А, В). Далее следует склеить из бумаги 8 прямоугольных емкостей (5) размером 9 х 7 х 2 мм (см. рис. 176, Б) и поместить их на верхнюю по- верхность круга (6). С целью исключения утери или повреждений емкостей (8), целесообразно изготовить бумажный чехол, склеенный из короткого (высотой 15 мм) цилиндра (9) диаметром 35 мм и диска (70) диаметром 35 мм. Описан- ным чехлом необходимо в конце работы накрывать верхнюю часть устройства. Для надежного крепления устройства к металлической поверхности предметного столика бинокулярного микроскопа наиболее подходящим является магнитный диск (77), который следует прикрепить к нижней поверхности колеса (7) при по- мощи гвоздей (72). Магнитный диск (77) с успехом может быть заменен любым подходящим предметом, имеющим достаточный вес для того, чтобы устройство не приходилось придерживать рукой при поворачивании кольца (2). Описанное устройство устанавливается на предметном столике бинокулярного микроскопа так, чтобы при увеличении в 7,5 раз в поле зрения помещалась вся верхняя поверхность устройства, а при увеличении в 12,5 раз — лишь кружок (7) (раз- меры устройства связаны с возможностями бинокулярного микроскопа МБС-2, который использовали авторы в своей работе). Для сортировки необходимо смесь мелких беспозвоночных (предварительно усыпленных) поместить на кружок (7), установить такое увеличение бинокулярного микроскопа, при котором в поле зрения будет вся верхняя площадка устройства, включая емкости (8). Далее следует взять правой рукой пинцет, зажим или вакуумный магнит, при помощи которых нужно выбирать отдельные виды (семейства, группы) и помещать их в отдельную емкость (5). При этом большим и указательным пальцами левой
Глава 5. Обработка материала для коллекций Ф 229 руки необходимо проворачивать кольцо (2), тем самым, приближая к пинцету с насекомым нужную емкость, что значительно ускоряет процесс сортировки мелких беспозвоночных. 5.2. Укладывание насекомых на ватные слои (матрасики) и их хранение На ватных слоях, или матрасиках, насекомые хранятся или до окончательной их монтировки на энтомологические булавки, или постоянно, в зависимости от целей коллекции и характера материала. Ватный матрасик представляет собой бумажный конверт с вложенным в него ровным слоем ваты (рис. 177). Конверт изготавливается из плотной и достаточно жесткой бумаги, лучше всего — из оберточной (крафта), можно из кальки. Кон- верты должны быть слегка (на 2-3 мм) короче и уже коробки, в которой они будут храниться. Коробки для матрасиков изготавливаются из тонких дощечек (не толще 7 мм), фанеры или картона с плотно закрывающейся крышкой. Наиболее удобные размеры коробки для хранения матрасиков — 250 х 150 х 100 мм. В крайнем случае, при отсутствии под рукой такой коробки можно временно воспользоваться коробкой из-под конфет или печенья. Надо только следить за тем,, чтобы крышка закрывалась достаточно плотно. Металлические коробки для длительного хране- ния матрасиков непригодны, так как в них появляется плесень. Ватные слои изготавливаются из свернутой в рулон ваты. Серая комковатая, так называемая техническая, вата почти непригодна. Толщина ватных слоев должна быть 5-10 мм. Если ватный слой будет тоньше 5 мм, то крупные насеко- Рис. 177. Ватный матрасик с насекомыми.
230 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых мые будут слишком возвышаться на нем, у них могут обломаться ноги и усики. Слишком толстые матрасики невыгодны, так как их поместится в коробке мало. На ватный слой, вложенный в конверт, кладется листок тонкой светлой бумаги. На этом листке будет написана этикетка. Желательно, чтобы ватный слой и этикетка были слегка меньше конверта, иначе при закрывании конверта их края будут из- гибаться, а лежащие на вате насекомые — сдвигаться со своего места. Под слой ваты можно подложить лист плотной бумаги, в этом случае ватный слой можно будет извлекать из конверта. Укладка насекомых на матрасики должна быть системной. Насекомые рас- кладываются в том порядке, который соответствует характеру исследований: в систематическом, по стациям, кормовым растениям, методам сбора и т.д. Разобранных насекомых помещают на ватном слое кучками или рядами. При проведении фаунистических сборов рекомендуется насекомых разных система- тических групп (например, отрядов) раскладывать на разных матрасиках. Это значительно облегчит в дальнейшем разбор и монтировку материала и его опре- деление (особенно если материал будет передаваться на определение специали- стам по отдельным группам). Насекомых размещают на матрасике, как правило, в один слой, близко друг к другу, но так, чтобы они не соприкасались усиками и ногами. Допускается укладывание или высыпание друг на друга лишь насекомых, имеющих твердые покровы, слабо выступающие и прижатые к телу усики и ноги (например, цикадовых). Насекомых очень часто кладут брюшком вниз. Крупных насекомых, имеющих большие крылья (например, прямокрылых), укладывают на бок. В таком положении насекомые занимают меньше места, и крылья у них меньше повреждаются. Мух, мелких перепончатокрылых можно укладывать на брюшко или на бок. Крупных насекомых желательно слегка придавливать к вате, чтобы они лучше держались на месте. Разумеется, какая-либо фиксация насекомых на матрасике с помощью клея абсолютно не допускается. Дневных бабочек надо хранить не на ватных слоях, а в бумажных пакетиках (рис. 178). Чешуекрылых помещают на матрасики лишь в том случае, если сбор проводится в больших масштабах, и нет возможности их сразу помещать в бумаж- ные конвертики или же накалывать и расправлять (что обычно бывает в практике защиты растений). В случае укладки бабочек на ватный матрасик их следует укла- дывать со сложенными вверх крыльями: так они меньше повреждаются. Насекомых, которые в дальнейшем будут монтироваться на энтомологические булавки (особенно для демонстрационных коллекций), рекомендуется предвари- тельно расправлять еще на вате. При этом крылья и длинные усики расправляются вдоль тела, передние ноги — вперед, средние и задние — назад. Насекомых, име- ющих легко обламывающиеся длинные ноги, лучше укладывать с подогнутыми ногами. Для предотвращения исчезновения яркой окраски брюшка некоторых насекомых их предварительно обрабатывают ацетоном. У некоторых крупных насекомых (таких, как саранчовые, кузнечики, мед- ведки) толстое, мясистое брюшко при хранении на ватных слоях очень быстро
Глава 5. Обработка материала для коллекций 231 Рис. 178. Хранение дневных чешуекрылых (по Коз- лову, Нинбургу, 1971). А — умерщвление бабочки сдавливанием груди, Б, В — изготовление пакетика и укладывание в него бабочки. загнивает, и материал может оказаться непригодным для последующего изучения. Таких насекомых пред- варительно препарируют. Для этого у насекомого, например саранчи, лезвием бритвы или острым скальпелем делается небольшой надрез в вершин- ной части брюшка, в мембране между спинными и брюшными склеритами (тергитами и стернита- ми). Необходимо соблюдать осторожность, чтобы половые органы насекомых не были повреждены. Затем тонким пинцетом вытаскиваются внутрен- ности брюшка и ватой, накрученной на пинцет, вычищается полость брюшка. После этого из ваты скатываются маленькие шарики, которыми заполня- ется брюшко, не слишком плотно, так, чтобы можно было соединить края надреза и восстановить форму брюшка. Отпрепарированных таким образом насеко- мых укладывают на матрасики. Различные сборы (по датам, биотопам и т.д.) на матрасике разделяются пунктирной линией, про- веденной шариковой авторучкой или очень мягким простым карандашом. Сборы можно разделять также черной ниткой или хорошо заметным пустым промежутком. На листе бумаги, которым накрывают заполненный материалом ватный слой, пишется этикетка или несколько этикеток (если на одном матрасике помещается материал разных сборов). Этикетки ватного матрасика называются оригинальными, первичными, или полевыми. Этикетки отделяют друг от друга линией, проведен- ной карандашом или шариковой авторучкой. Линии, разграничивающие этикетки, должны соответствовать разделительным линиям или интервалам на вате, разгра- ничивающим разные сборы. В каждой этикетке указывается географический пункт сбора, биотоп или стация, кормовое растение или сельскохозяйственная культура, другие сведения экологического характера, дата и сборщик. На рис. 177 показано правильное оформление матрасика (реально на одном матрасике умещается гораздо больше сборов насекомых, особенно мелких, чем это показано на рисунке). При необходимости в этикетке приводятся дополнительные сведения — время суток, метеоусловия, метод сбора, номер пробы и т.д. На этикетке полезно также сделать запись результатов предварительного анализа материала — общее число собранных
232 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых особей, количество их по отдельным таксонам (если в этом есть необходимость и определение не вызывает сомнений), интересующих исследователя особо. Нередко бывает так, что среди большого количества насекомых, хранящихся на матрасике, нелегко быстро отыскать нужный вид. Поэтому предварительный анализ материала существенно облегчает последующую его камеральную обработку. Чтобы сборы и этикетки не были перепутаны, конверт каждого матрасика нумеруется на наружной стороне одного из его лацканов. При этом желательно указать в самом общем виде географический или административный пункт или район, где проводились сборы, а также год и фамилию сборщика или еще систе- матическую или хозяйственно-важную группу насекомых, материал по которой находится на данном матрасике. Заполнение оригинальной этикетки производится одновременно с укладкой насекомых на ватный матрасик, т.е. непосредственно после проведения сбора. Одновременно все сведения, содержащиеся на ориги- нальной этикетке, заносятся в полевой дневник, как правило, в «расширенном формате». Дублирование сведений, содержащейся на оригинальной этикетке и в полевом дневнике — обязательное условие успешной полевой энтомологической работы. Повторяем, что раскладка материала и заполнение оригинальных этикеток и полевого дневника производятся одновременно и в день проведения сборов. Не- редко в полевых условиях эту работу приходится проводить ночью в палатке при свечах, с соблюдением правил пожарной безопасности. Мы даем такую подробную инструкцию по оформлению ватных сборов, имея в виду то факт, что качество материала при постановке коллекции и ее оформле- нии, проведении таксономических и эколого-фаунистических исследований зави- сит, прежде всего, от первичной обработки собранного материала и правильности его оформления. Для предохранения материала от уничтожения вредителями (жуками-кожееда- ми, гусеницами молей и др.) на дно коробок с матрасиками насыпают нафталин, «антимоль», другой инсектицид или эффективное отпугивающее средство от жу- ков-кожеедов (см. ниже). Чтобы легче было извлечь матрасики, на дно коробки кладется широкая полоска плотной бумаги, концы которой лежат поверх матра- сиков (рис. 179). Вытягивают матрасики из коробки за оба конца этой полоски. Матрасики укладывают в коробке плотно, но так, чтобы это не угрожало целост- ности насекомых. Когда коробка полностью заполнена, а обработка материала в ближай- шее время не предусмотрена, линия стыка между крышкой и коробкой заклеивается скотчем или любой другой липкой лентой, что уменьшает вероятность проникновения кожеедов. Коробки с материалом на вате следует Рис. 179. Фанерный ящик с ватными хранить в сухом месте в плотно закрыва- матрасиками. ющемся ящике, шкафу или в защищенном
Глава 5. Обработка материала для коллекций Ф 233 от прямого солнечного света месте. Дно ящика, в котором хранятся коробки с матрасиками, надо густо пересыпать нафталином. Хранение матрасиков открыто, без коробок, совершенно недопустимо, так как через некоторое время в матраси- ках появятся вредители, материал будет непоправимо испорчен. В Зоологическом институте РАН и других научных учреждениях, в которых осуществляется по- стоянная работа с коллекциями, весь поступающий коллекционный материал, в том числе только что собранный, проходит обработку в дезинсекционной камере. Насекомые на вате при надлежащем уходе могут храниться десятки и сотни лет, не утрачивая научной ценности. 5.3. Монтирование насекомых на энтомологические булавки Наиболее часто применяемый способ хранения имаго насекомых в коллек- ции — в смонтированном виде на энтомологических булавках. В таком виде их обычно определяют и изучают. Само монтирование на булавки осуществляется несколькими способами. Насекомые могут монтироваться на булавки (накалы- ваться на булавки непосредственно или наклеиваться на картонные пластинки с накалыванием последних на булавки) в день сборов, в «свежем виде», т.е. не высохшими, или же после снятия их с ватных матрасиков. В энтомологической практике монтирование насекомых чаще всего происходит по второму варианту. Перед монтированием материал, хранящийся на ватных слоях, должен быть раз- мочен. В тех случаях, когда требуется срочная постановка небольшого материала, включающего в основном мелких насекомых, об- ходятся без размачивания (опытные энтомологи). 5.3.1. Размачивание материала Размачивание насекомых, хранившихся на матрасиках, проводится во влажной камере. Камера представляет собой эксикатор с плотно закрывающейся крышкой (рис. 180). Вместо экс- икатора можно использовать широкий стеклянный цилиндр, закрывающийся сверху (рис. 180) сте- клом. В крайнем случае, можно воспользоваться простой тарелкой, эмалированной кастрюлей или миской, накрытой плотно прилегающей крышкой или колпаком. На дно эксикатора насыпают промытый и прокаленный речной песок. Толщина его слоя должна быть не менее 1 см. Песок разравнивают и утрамбовывают (не слишком сильно), затем за- Рис. 180. Влажные камеры для размачивания насекомых (по Фасулати, 1971).
234 ф- В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых ливают кипяченой водой. Вода наливается с таким расчетом, чтобы песок был очень влажным, но вода не должна выступать на его поверхности. Песок регуляр- но смачивается кипяченой водой, чтобы он был постоянно мокрым. Сверху песок застилается 1-3 слоями фильтровальной бумаги. Для предотвращения появления плесени на дно эксикатора желательно положить несколько кристаллов тимола или карболовой кислоты (фенола). При размочке насекомых влажная камера должна быть плотно закрыта. Крупных насекомых можно снимать с ватных слоев и раскладывать в эксика- торе на листе светлой бумаги. В тех случаях, когда или существует риск повредить ноги и усики насекомого во время перекладывания, или насекомые мелкие, или их много, материал кладется в эксикатор прямо на вате — целиком матрасик или вырезанная его часть. Рядом с материалом или на него кладется листочек бумаги с шифром соответствующей этикетки или оригинальная этикетка, т.е. лежавшая на матрасике. Чаще всего, особенно при больших сборах, во влажную камеру кладется сразу весь матрасик. Следует подчеркнуть, что при написании этикеток для материала, уже смонтированного на булавки, надо пользоваться только ори- гинальной этикеткой, чтобы до минимума свести возможные (и в конечном итоге неизбежные) ошибки при переписывании. Время размочки материала, необходимое и достаточное для монтирования на булавки, зависит от ряда факторов: размеров насекомых, твердости их покровов, температуры окружающей среды, способа последующей монтировки (будут ли насекомые накалываться на булавки или наклеиваться на картонные площадки), степени высыхания насекомых, лежавших на матрасиках, целостности экземпля- ров и т.д. В самом общем виде рекомендации по данному вопросу заключаются в сле- дующем: чем насекомые крупнее, тем продолжительнее должна быть размочка; чем выше температура окружающей среды, тем короче время размочки. При накалывании насекомых обычно требуется большая степень размягченности их покровов, чем при наклеивании. Если усики, ноги и крылья при монтировке будут расправляться, то время размочки надо удлинить. В наибольшей степени на длительность размочки влияют размеры насекомых и твердость их покровов. Пределы времени размочки — от 10-15 часов до нескольких суток. Обычно на- секомых мелких и средних размеров размачивают 1-2 суток. Более точно сроки размочки устанавливают опытным путем в каждом отдельном случае. В качестве теста на степень размягченности покровов можно использовать подвижность усиков и ног: размачивание необходимо продолжать до тех пор, пока после небольшого смещения пинцетом, препаровальной иглой или энтомологической булавкой нога или усик насекомого остаются в новом положении, а не возвра- щаются в исходное. Однако держать насекомых во влажной камере еще дольше не следует, так как покровы могут оказаться настолько мягкими, а отдельные органы настолько податливыми, что расправить насекомых будет довольно труд- но, а голова, ноги, усики могут просто отвалиться. Кроме того, на насекомых в
Глава 5. Обработка материала для коллекций 235 эксикаторе, несмотря на предпринятые меры, может появиться плесень. После извлечения из влажной камеры насекомые должны сразу же монтироваться на булавки. 5.3.2. Накалывание на энтомологические булавки Накалывание — самый распространенный способ монтировки на энтомологи- ческие булавки взрослых насекомых средних и крупных размеров (рис. 181). Все энтомологические булавки (не считая минуций — особых очень тонких, маленьких булавок без головок) имеют примерно одинаковую длину — 30-40 мм, но толщина их различна. В зависимости от толщины они обозначаются номерами: ООО, 00, 0, 1, 2, 3, 4, 5. Чем толще булавка, тем больше ее номер. Булавки тоньше, чем № 00 и толще, чем № 3, применяются редко и для насекомых умеренной зоны практи- чески не нужны (почти нет очень крупных насекомых). Булавки выпускаются и продаются в пачках по 100 шт. При выборе номера булавки для накалывания руководствуются следующим принципом: чем крупнее насекомое, тем толще должна быть булавка. Для круп- ных жуков, прямокрылых, стрекоз, бабочек применяются толстые булавки — № 3. Насекомых средней величины накалывают на булавки № 1 и 2, а мелких и очень узких — на булавки № 0 и 00. Перед использованием с булавок предварительно следует снять слой парафина, которым они покрыты для предохранения от ржавчины. Если этого не сделать, то при накалывании парафин соберется на спинной стороне насекомого и может скрыть необходимые для исследования структуры покровов. Чтобы счистить пара- фин, достаточно воткнуть два-три раза булавкой в пластинку из поролона, мягкого пенопласта, сложенную в несколько раз плотную тряпочку или бумагу. Булавку надо втыкать до самой головки. Насекомых накалывают в строго определенных местах (рис. 182). При накалывании крупный экземп- ляр насекомого берут тремя пальца- ми левой руки, держа его спинной стороной кверху. Так же можно брать и многих насекомых средних размеров. Насекомых размером меньше 8-10 мм рискованно брать в руки. Их кладут на листочек плот- ной светлой бумаги, зажатый между пальцами левой руки, а правой втыкают булавку в нужное место Удобно также накалывать мелких насекомых, лежащих на столе на Рис. 181. Способы накалывания насекомых. А — мелких, Б — крупных.
236 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Рис. 182. Накалывание насекомых различных систематических групп. А, Ж — прямокрылых, Б — клопов, В — мух, Г— стрекоз, Д— перепончатокрылых, Е — жуков, 3 — бабочек. Точкой указано место, в которое должна входить булавка при накалывании. светлой бумаге. При накалывании крупных насекомых с плотными хитиновыми покровами булавку следует вращать пальцами, чтобы она легче входила в плотные покровы. При накалывании нужно внимательно следить за тем, чтобы булавка вошла в тело не косо, а совершенно отвесно, перпендикулярно к продольной и по- перечной осям тела (рис. 183). Насекомое должно быть наколото так, чтобы не мешало впоследствии брать булавку пальцами. Для этого над верхней стороной тела наколотого экземпляра булавка должна выступать на 1 см, т. е. выдаваться на своей длины. Соответственно, под экземпляром насекомого булавка должна выступать примерно на 3/4-2/3 своей длины. Ниже опускать экземпляр нельзя, так как на булавке не хватит места для этикеток.
Глава 5. Обработка материала для коллекций 237 Рис. 184. Пинцет с изогнутыми концами для на- калывания насекомых на минуции. Рис 183. Правильно (А, Б) и неправильно (В, Г) наколо- тые насекомые (по Козлову, Нинбургу, 1971). Как было отмечено выше, очень мелкие насе- комые с мягкими покровами и нежными крыльями (главным образом мелкие мухи, частично перепон- чатокрылые) накалываются не на обычные булавки, а на особые, очень тонкие и короткие булавки без го- ловки — минуции (рис. 181, Л). Накалывание на них производится обычно не в спинную сторону, а в грудь сбоку (лучше с правой стороны), чтобы оставить не- поврежденным другой бок. Минуции с наколотыми насекомыми втыкаются в небольшие треугольные (размером примерно 6 х 2-3 мм) или прямоугольные (примерно 11 х 4 мм) картонные площадки или в брусочки из пробки, пенопласта (в крайнем случае, из плотного поролона) длиной 11-12 мм и сечением 3—4 х 3—4 мм. Перед тем как воткнуть минуцию в картонную площадку, последняя слегка накалывается препаровальной иглой; минуция после этого входит в картон легко и не гнется. Картонная площадка или брусочек с на- колотым на минуцию насекомым накалывается на обычную энтомологическую булавку №1,2 или 3. Накалываются насекомые на минуции с помощью пинцета (лучше с изогну- тыми концами; рис. 184). Если минуция втыкается в картонную площадку, то эта операция проводится перед накалыванием площадки на обычную булавку, если же минуция вкалывается в брусочек из пенопласта или другого материала, то в ряде случаев удобнее брусок вначале наколоть на булавку, а затем вколоть в него минуцию с насекомым. 5.3.3. Наклеивание на картонные пластинки Многих мелких или имеющих мягкие покровы насекомых (таких, как ци- кадовые, листоблошки, клопы, жуки, многие перепончатокрылые, двукрылые) очень часто наклеивают на кусочки из плотной белой бумаги или тонкого карто- на, вырезанные в виде прямоугольников размером обычно 4-5 х 12 мм или тре- угольников — 3x7 мм (рис. 185). Треугольники нередко делают несколько более
238 ф- В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых ров и формы для наклеивания мелких насекомых (увеличено). крупными. Однако сильно увеличивать размеры площа- док не следует, иначе будет неудобно рассматривать объ- екты и этикетки Для наклеивания насеко- мых обычно применяют спе- циальный энтомологический клей, получаемый раство- рением в грушевой эссенции (амилацетате) мелко нарезан- ного целлулоида. До полного растворения и образования густой гомогенной массы целлулоид выдерживают в эссенции 2-3 суток. Вместо грушевой эссенции и целлулоида можно использовать ацетон и оргстекло. Применяют также растворимый в воде синтетический клей — специальный для наклеивания насекомых (зарубежного производства) или для склеивания бумаги (ПВА, обойный клей и т.п.). Можно воспользоваться бесцвет- ным лаком для ногтей, который хорошо растворяется ацетоном или жидкостью для снятия лака, изготовленной на основе ацетона. Иногда используют растворенный в воде густой вишневый клей (камедь). В крайнем случае, можно пользоваться очень густым вареным сахаром. Рис. 186. Несколько картон- ных пластинок с насекомы- ми на одной булавке. Приготовленный энтомологический клей налива- ют в маленький пузырек, который плотно закрывает- ся корковой пробочкой. В нижнюю поверхность про- бочки втыкается энтомологическая булавка. Головка булавки должна быть неглубоко погружена в клей. При открывании пузырька капельку густого клея, которая удерживается на головке булавки, наносят на вершину картонного треугольника или на про- дольную ось прямоугольника ближе к его вершине. Количество клея, наносимого на площадку, зависит от размеров экземпляра насекомого: чем он мельче, тем меньше должна быть и капля. Затем пинцетом очень аккуратно в эту каплю клея переносится насекомое. Экземпляр не должен утопать в клею. Почти вся поверхность насекомого должна оставаться чистой, иначе невозможно будет его определить. Особенно нужно следить за тем, чтобы были свободными от клея усики, а также вершина брюшка. При необхо- димости усики и ноги расправляют. Площадки с наклеенными насекомыми накалы- вают на булавки. Часто на одну булавку накалывают
Глава 5. Обработка материала для коллекций Ф 239 по нескольку (2-5 штук) картонных площадок с наклеенными на них насекомыми одного и того же вида (рис. 186). В процессе определения часто требуется изучить структуру вентральной (нижней) стороны тела насекомого или его гениталии. Для отклеивания насеко- мых применяют тот же растворитель (грушевая эссенция, ацетон, вода), на основе которого был приготовлен клей. 5.4. Особенности монтирования на энтомологические булавки различных насекомых Ниже описываются особенности обработки и монтирования на энтомологи- ческие булавки насекомых, наиболее часто коллекционируемых и относящихся к важным в практическом отношении группам. 5.4.1. Стрекозы Стрекозы либо постоянно хранятся на ватных матрасиках, либо накалывают- ся на энтомологические булавки, как правило, № 2-3. При накалывании булавка втыкается в середину средне- или заднегруди (см. рис. 182, Г). Для сохранения рисунка на груди и брюшке стрекоз обрабатывают ацетоном. После замаривания насекомое опускается в ацетон так, чтобы голова не погружа- лась в жидкость. В ацетоне стрекоз выдерживают не менее двух часов, после чего их переносят на 1 час или более в эфир или хлороформ. Извлеченных из эфира насекомых подсушивают и укладывают на матрасики или накалывают на булавки. Крупные стрекозы нуждаются в особом препарировании, чтобы избежать отпаде- ния брюшка при высушивании. Для этого у заморенной стрекозы между восьмым и девятым сегментами брюшка втыкается соломинка, которая осторожно протал- кивается вперед до тех пор, пока не упрется в голову насекомого. Соломинка со- единит грудь с брюшком и придаст ему большую прочность. Диаметр соломинки должен быть чуть меньше диаметра брюшка, а длина — примерно на 2 см больше длины брюшка. Оставшийся снаружи конец соломинки отрезается ножницами. 5.4.2. Прямокрылые Прямокрылые накалываются на энтомологические булавки чаще всего № 2 и 3. У крупных насекомых брюшко предварительно препарируется — очищается от внутренностей и заполняется комочками ваты. Накалывают прямокрылых по- разному: в заднюю часть переднеспинки, в основание правого надкрылья или в заднеспинку (см. рис. 182, А, Ж). Короткие усики направляются вперед, длин- ные — назад, по бокам вдоль тела. Крылья, если расправляют (техника расправ- ления описана ниже), то обычно только с одной, правой, стороны.
240 В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых 5.4.3. Цикадовые и листоблошки Большинство цикадовых (кроме самых крупных) и всех листоблошек наклеи- вают на картонные треугольники головой в правую сторону, нижней поверхностью вниз и слегка вперед так, чтобы без особого труда можно было рассмотреть тело сверху и снизу, а также генитальный сегмент. Крупных цикадовых накалывают на энтомологические булавки. Накалывание производится в щиток, слегка сбоку, с правой стороны. 5.4.4. Полужесткокрылые, или клопы Крупные виды клопов, имеющие твер- дые покровы, накалываются в щиток, не- много сбоку (с правой стороны), чтобы не повредить хоботок (см. рис. 182, Б). Мелкие виды, а также клопов с мяг- кими покровами независимо от размеров наклеивают на картонные прямоугольники головой вперед (рис. 187). Обширный ма- териал мелких клопов явно одного вида из одного пункта и одного укоса или одной пробы, наклеенных на картонные прямо- угольники, накалывают на одну булавку по несколько штук (см. рис. 186). Иногда клопов наклеивают на треугольники. Одна- Рис. 187. Наклеивание мелких клопов ко этого слеДУет избегать при монтировке клопов с длинными ногами и усиками, так как они легко отламываются при со- на картонные прямоугольники. трясениях коробки и соприкосновении насекомых друг с другом (см. также: Определитель насекомых Европейской части СССР, 1964, т. 1; Определитель насекомых Дальнего Востока СССР, 1998, т. 2). Рис. 188. Наклеивание мелких жуков на картонный треугольник. 5.4.5. Жесткокрылые, или жуки Жуки больших и средних размеров накалываются на энтомологические булавки в основание правого над- крылья (см. рис. 182, Е) так, чтобы булавка вышла снизу между второй и
Глава 5. Обработка материала для коллекций Ф 241 третьей парой ног. Если у жука крылья будут расправляться (для демонстрацион- ной коллекции), то булавка вкалывается в середину заднеспинки. Мелких жуков наклеивают обычно на картонные треугольники нижней поверхностью вниз, го- ловой влево (рис. 188); иногда их наклеивают на прямоугольники головой вперед (от булавки) или боковой поверхностью вниз. 5.4.6. Чешуекрылые, или бабочки Бабочки накалываются на энтомологические булавки № 00, 1 (мелкие — моли, листовертки, огневки и др.) или № 1-3 (более крупные — белянки, нимфалиды, совки и др.) в середину среднегруди (см. рис. 182, 3). Крылья бабочек расправ- ляются. Рис. 189. Хранение мелких насекомых и микро- препаратов в стеклянных (А) и виниловых (Б) трубочках, накалываемых на энтомологические булавки (по Фурсову, 2003). Буквой «Б» обо- значены комочки ваты, которыми затыкается с обеих сторон виниловая трубочка. 5.4.7. Перепончатокрылые Перепончатокрылые средних и крупных размеров накалываются на энтомоло- гические булавки № 0-3 в середину среднеспинки (см. рис. 182, Д); крылья при необходимости расправляются (главным образом для демонстрационных коллек- ций). Мелких (менее 3 мм) паразитических перепончатокрылых хранят в 70-75% спирте или другой фиксирующей жидкости или же в сухом виде в маленьких стеклянных пробирочках или отрезках виниловой трубки длиной примерно 10 мм и диаметром 4-6 мм от системы для переливания крови (рис. 189). Особенно удобен этот метод для хранения в сухом виде насекомых размером 0,3-1,0 мм (Фурсов, 2003). В одну такую пробирочку можно поместить до 100 и даже 200 очень мелких насекомых (обыч- но паразитических перепончато- крылых). Стеклянная пробирочка затыкается маленькой пробочкой, вырезанной из корковой пробки, а отрезок виниловой трубочки затыкается ватными комочками с обеих сторон. Пробирочка или отрезок трубочки накалывает- ся на энтомологическую булав- ку, желательно № 3. На эту же булавку снизу подкалываются географическая и экологическая этикетки. Более крупных паразитиче- ских перепончатокрылых можно хранить в сухих чистых хими- ческих пробирках, изолируя их
242 В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Рис. 190. Монтирование на картонные треуголь- нички мелких перепончатокрылых и двукрылых. с обеих сторон ватными тампонами для того, чтобы насекомые не ломались при встряхивании. В эту же пробирку выше экземпляра насекомо- го (или нескольких экземпляров) помещается этикетка со сведениями географического и эко- логического характера. Отверстие пробирки по- верх этикетки также затыкают ватой. Хранение паразитических перепончатокрылых на ватных слоях допустимо только для более крупных ви- дов размером не менее 3—4 мм. Монтировка видов в открытом виде разме- ром от 2 до 4-5 мм состоит из наклейки их на картонные треугольники или накалывания на минуции. Наклеивать паразитических перепон- чатокрылых лучше на правый бок, ориентируя головой вперед или спинной стороной вперед и головой влево, как это часто используется и при монтировании мелких двукрылых (рис. 190). 5.4.8. Двукрылые Двукрылые обычно накалываются на энтомологические булавки № 0-2. Чаще всего булавка втыкается в среднеспинку, несколько отступив (обычно вправо) от ее средней линии для того, чтобы одна половина среднеспинки оставалась непо- врежденной. Мелких двукрылых (злаковых, минирующих мух и др.) принято на- калывать на минуции или, в крайнем случае, на булавки № 00. При этом их удобно накалывать косо в бок (лучше правый) для того, чтобы структуры, поврежденные на одном боку, оставались целыми на другом (см. также: Определитель насекомых европейской части СССР, 1969, т. 5, ч. 1). Можно также их наклеивать на треу- гольнички из картона или прозрачного пластика (рис. 190). Пластиковые плашки также удобны для наклеивания препарированных гениталий. 5.5. Расправление насекомых 5.5.1. Необходимое оборудование для расправления Крылья бабочек, а также ряда других насекомых — стрекоз, златоглазок, для демонстрационных целей — прямокрылых, перепончатокрылых, двукрылых и др. принято расправлять.
Глава 5. Обработка материала для коллекций Ф 243 Для проведения этой работы пользуются специальными расправилками, которые могут быть как фабричными, так и самодельными, изготовленными из дощечек, пробки, пенопласта и т д. (рис. 191, 192, 193). Главная часть распра- вилки — две дощечки, на которых расправляют крылья. Они должны быть из мягкого дерева, лучше всего липовые, гладко обструганные. Верхняя часть доще- чек делается несколько наклонной к срединной щели, в которую помещают тело расправляемого насекомого. Эта щель снизу закрыта тонкой пластинкой пробки или торфа, приклеенной к нижней стороне дощечек. В эту пластинку втыкают булавки с наколотыми насекомыми. Дощечки расправилки на концах прибивают к поперечным брусочкам, соединяющим их, высотой примерно 2 см; снизу к ним прибивают третью нижнюю тонкую дощечку, на которой стоит расправилка и в которую упираются концы булавок расправляемых насекомых, если булавки про- калывают насквозь пробковую пластинку. Часто посредине расправилки между верхними и нижней дощечками помещают также брусочки, не дающие верхним дощечкам прогибаться при работе. Такого типа расправилки просты по устройству и надежны в употреблении: их необходимо иметь несколько (узкие — с шириной верхних дощечек по 15 мм, средние — шириной по 25 мм и широкие — по 40 мм и более). Соответственно и срединная щель в них делается 3-5 мм, 5 мм, 7-5 мм и шире. Длина расправилок — 35 см — вполне достаточна и удобна. Для самых мелких насекомых на минуциях делают расправилки с щелью шириной 1-2 мм и шириной дощечек по 15 мм, причем в щели на глубине 2 мм вклеивают пластин- Рис. 191. Устройство расправилки для насекомых с неподвижными дощечками (по Павловичу, 1947). Обозначения см. в тексте.
244 В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых i t I f о Ч | IV,J мм - w Рис. 192. Размеры широкой расправилки (по Павловичу, 1947). Рис. 193. Универсальная расправилка с раздвижными дощечками. ки, вырезанные из мягкого пенопласта; на таких приспособлениях можно расправлять самых мелких чешуекрылых. Иногда в магазинах учебно-наглядных пособий продаются расправилки (рис. 193) с раздвижными дощечками — универсаль- ные расправилки. Они удобны тем, что могут быть приспособлены к насекомым с разной толщиной тела, но не очень на- дежны в прочности закрепления дощечек, что ведет иногда к поломкам и порче ма- териала. Такую расправилку можно сде- лать самим. У раздвижных расправилок подвижной делается только одна дощечка; торф для вкалывания булавок, на которых наколоты насекомые, приходится вклеивать толстым слоем в желобообразную планку, служащую основанием расправилки, чтобы не приклеивать его к верхним дощечкам. Для расправления насекомых необходимы также препаровальные иглы, канце- лярские или энтомологические булавки, пинцет, ножницы и бумага (лучше всего прозрачная — калька) или целлофан. 5.5.2. Расправление чешуекрылых Чешуекрылых лучше расправлять только что умерщвленных, так как их крылья, ноги и усики более эластичны и не ломки. Однако на практике чаще приходится расправлять высушенных, а затем размоченных бабочек. При расправлении ширина щели расправилки должна быть чуть больше толщины брюшка бабочки, а ширина дощечек — немного больше длины крыльев. Для большинства видов фауны России стандартные универсальные расправилки вполне пригодны. И лишь для расправ-
Глава 5. Обработка материала для коллекций 245 ления наиболее крупных чешуекрылых (отдельных видов бражников, парусни- ков и некоторых других) приходится применять специально изготовленные расправилки с широкими дощечками. Порядок расправления крыльев бабочек средних и крупных размеров следующий (рис. 194). Перед расправлением производится накалывание бабочки на булавку. При этом надо особенно строго следить за перпендикулярностью булавки к осям тела бабочки, иначе после расправления крылья окажутся заметно перекошенны- ми по отношению к телу. Затем булавка с бабочкой втыкается в дно желобка расправилки. При этом опять надо очень внимательно следить за тем, чтобы бу- лавка вошла в дно строго перпендикуляр- но к его поверхности. Брюшко и грудь бабочки должны свободно помещаться в желобке. Если экземпляр двигается по булавке и вращается вокруг нее, то для фиксирования он обкалывается по бокам булавками, которые втыкаются в дно и стенки желобка, не протыкая тела бабочки. Рис. 194. Последовательные этапы рас- правления бабочки и положение левой руки при расправлении (по Павловичу, 1947). Обозначения см. в тексте. Булавку с насекомым втыкают в дно желобка на такую глубину, чтобы осно- вания крыльев находились на одном уровне с поверхностью дощечек. Если они окажутся выше или ниже этого уровня, то крылья не удастся ровно расправить. Ноги насекомого подгибают под брюшко так, чтобы они не выскакивали и не мешали при расправлении и, по возможности, не касались дна и стенок желобка. Придав объекту нужное положение, приступают непосредственно к расправ- лению крыльев. Для этого берут приготовленную заранее полоску из кальки, па- пиросной бумаги или тонкой писчей бумаги, плотного целлофана (чтобы можно было его достаточно сильно натянуть, не порвав), на худой конец — газетной, шириной для экземпляров средних размеров около 0,5 см, для крупных — около 1 см, и просовывают ее между крыльями. Можно предварительно осторожно развести пинцетом сложенные в покое крылья. Затем полоской прижимают передние и задние крылья с одной стороны тела к дощечке. При этом полоска накладывается ближе к основанию крыльев и немного отступив от внутреннего края дощечки.
246 В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Когда крылья лягут на поверхность дощечки (рис. 194, А), полоску укрепля- ют впереди переднего крыла с помощью канцелярской (с колечком) или толстой (№ 3-5) энтомологической булавки (рис. 194, Б). Затем слегка натягивают бумагу, удерживая ее за задний край левой рукой. Одновременно берут правой рукой препаровальную иглу и подвигают ею переднее крыло немного вперед. Крыло тянут, зацепив иглой за основание самой толстой жилки, не протыкая его и не царапая (рис. 194, В, Г). Вслед за передним крылом слегка подвигают вперед и заднее той же иглой (рис. 194, Д). Чтобы крылья не отходили назад в тот момент, когда поднимают препаровальную иглу, полоску бумаги натягивают сильнее. Во время перемещения крыла натягивать полоску надо очень слабо, иначе сотрутся крыловые чешуйки. Подвигая крылья вперед, следят за тем, чтобы переднее крыло все время слегка покрывало заднее. Крылья перемещают вперед до тех пор, пока они не займут нужное положение. У расправленной бабочки задний край перед- него крыла должен быть перпендикулярен к туловищу и стенке желобка и слегка накладываться на передний край заднего крыла (рис. 195). В расправленном со- стоянии между передним и задним крылом снаружи остается небольшая выемка. Окончательно расправленные с одной стороны тела крылья прижимают полоской бумаги, натянув ее посильнее и закрепив задний конец булавкой (рис. 194, Е). Точно так же расправляют крылья с другой стороны. После этого проверяют, симметрично ли расправлены обе пары крыльев. При необходимости ослабляют натяжение полоски бумаги с одной стороны тела и добиваются симметричности. Убедившись, что все сделано правильно, берут полоски бумаги шире прежних (обычно до 1 см, но можно и шире — это ускорит процесс расправления, но ка- чество в отдельных случаях может снизиться) и плотно накрывают ими наружные части крыльев. Эти полоски укрепляют булавками параллельно первым. Если Рис. 195. Правильно наколотая и расправленная бабочка (A-В) и укрепление брюшка бабочки в желобке расправилки в нужном положении (Г, Д).
Глава 5. Обработка материала для коллекций 247 бабочка больших размеров, втыкают булавку еще посередине наружной полоски, в выемку между крыльями. Полоски, закрывающие крылья целиком и плотно при- жимающие их к поверхности расправилки, не дают им сморщиваться. Если после расправления бабочки стало видно, что ее брюшко направлено вершиной вниз, а не располагается горизонтально, то под брюшко надо подложить кусочек ваты или сложенную углом узкую полоску бумаги или еще создать опору из двух энтомологических булавок, как это показано на рисунке 195, Г, Д. Можно таким способом придать брюшку горизонтальное положение еще перед началом расправления крыльев. Крылья расправленной бабочки должны быть строго горизонтальными. Сразу после снятия высушенной бабочки с расправилки они будут направлены немного вверх в соответствии с расположением верхних поверхностей дощечек распра- вилки. Через некоторое время крылья опустятся под собственной тяжестью и примут горизонтальное положение. Усики бабочек при расправлении вытягивают параллельно переднему краю крыльев и укрепляют узкой полоской бумаги или булавками. Правильно наколотая и расправленная бабочка после ее высыхания изображена на рисунке 195, А-В. Как правило, на одной расправилке расправляют одновременно (или в разное время) несколько бабочек (см. рис. 193). Расправилку с насекомыми следует держать в сухом, но не жарком месте. Надо оберегать расправленных насекомых от пыли и прямого солнечного света. Бабочек средних размеров при обычных условиях (когда температура воздуха +18-22 °C и относительная влажность не превышает 80%) высушивают 10-20 дней. У не- достаточно высушенных бабочек крылья быстро опустятся. Чтобы установить, достаточно ли высохла бабочка, надо освободить крылья с одной стороны и по- пытаться пинцетом отвести их. Если крылья совершенно не сдвигаются с места, кажутся жестко прикрепленными к туловищу, то насекомое можно снимать с расправилки. Если же крылья сохранили хоть какую-то подвижность, бабочку необходимо оставить на расправилке еще несколько дней, после чего вновь про- верить ее состояние. Следует всегда учитывать состояние атмосферного воздуха, а также то, расправляется ли свежий материал или размоченный в эксикаторе. Во втором случае время сушки короче, чем в первом. Мелких чешуекрылых (таких, например, как луговой мотылек и другие ог- невки, моли и т.п.) расправляют так же, как и более крупных. При этом часто пользуются не стандартными расправилками, а специально изготовленными из корковой пробки или подобного материала с вырезанной узкой щелью для брюшка. Накалывать на булавки или минуции мелких бабочек очень удобно на тонкой материи, натянутой на горлышко банки. Очень мелких бабочек можно накалывать под лупой. Если с первого раза не удалось проколоть бабочку в надлежащем месте (придерживать чем-либо мелкие экземпляры нельзя), то ее слегка прикалывают этой булавкой или минуцией к натянутой материи, на которой она лежит, а затем
248 В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых прокалывают, как надо (в середину среднеспинки), второй минуцией, а первую вы- нимают. Часто мелких бабочек накалывают, положив на кусочек бумаги, который держат в левой руке. Нередко уже в полевых условиях производят предварительное расправление мелких бабочек. Бабочке раздвигают крылья, заставляя их опуститься вниз. Если тело очень мягкое (недавно умерщвленные бабочки), то для этого достаточно подуть на нее сзади. Когда крылья приведены в желаемое положение, бабочку глубоко вкалывают в дно энтомологической коробки и при помощи булавки или препаровальной иглы расправляют крылья, которые прижимаются ко дну коробки и приводятся в более или менее горизонтальное положение. Мелких чешуекрылых, только что собранных и наколотых на булавки (не на минуции), часто также пред- варительно расправляют, подкладывая под них кусочек бумажки, согнутой углом, концы которой будут подпирать крылья снизу. В лабораторных условиях предва- рительно расправленных чешуекрылых размачивают и расправляют окончательно. 5.5.3. Расправление других насекомых Так же, как чешуекрылых, расправляют стрекоз, сетчатокрылых, ручейников и других насекомых, имеющих большие крылья. Для их расправления применяются те же расправилки, что и для бабочек. Расправлять этих насекомых проще и бы- стрее, чем бабочек, так как не нужно заботиться о сохранении чешуек. Для круп- ных стрекоз обычные расправилки часто оказываются слишком узкими. В этом случае приходится делать особые расправилки с очень широкими дощечками и широким желобком. Жуков, перепончатокрылых и двукрылых расправляют, как правило, только для демонстрационных целей. Для научных коллекций расправляют только тех насе- комых, у которых при определении большую роль играют особенности строения крыльев, их жилкование. Перепончатокрылых и двукрылых расправляют на пластинках прессованного торфа, обтянутых папиросной бумагой, или на пластинках из мягкого пенопласта или мягкой древесноволокнистой плиты. Можно использовать корковые пробки, в которых вырезан желобок. У наколотого на пластинку насекомого отводят в сторо- ну крылья, расправляют ноги: переднюю пару вперед, а вторую и третью — назад. Усики должны быть расположены так же, как и у бабочек. Насекомое укрепляют на торфяной пластинке канцелярскими или энтомологическими булавками. Расправление жука заключается в том, что его ноги укрепляют в следующем положении: первая пара — вперед, остальные две — назад. Не следует при этом отводить их далеко в стороны. Ноги должны располагаться почти параллельно телу жука — в этом случае они меньше страдают от случайных повреждений. Усики, если они невелики, направляют вперед, а у длинноусых жуков — назад, по бокам туловища. Усики не должны закрывать ноги насекомого. Жуков расправляют на торфяных пластинках, закрепляя ноги и усики булавками. Когда нужно показать
Глава 5. Обработка материала для коллекций 249 крылья жука (в демонстрационной коллекции), их расправляют, но только с одной, правой, стороны. Надкрылья приподнимают и слегка отводят вперед, а крыло устанавливают перпендикулярно туловищу. При расправлении крыльев удобно пользоваться пробками с желобком, так как в обычную расправилку широкое тело жука не помещается. Прямокрылых, а также для демонстрационных коллекций крупных клопов, цикадок и др. расправляют по тем же правилам, что и жуков. Крупный жук или другое из перечисленных насекомых должны сохнуть не меньше двух недель. Мелкие насекомые высыхают значительно быстрее, нередко за один-два дня. Про- верить, высохло ли окончательно насекомое, можно тем же способом, который был описан для бабочек. Расправление насекомых в естественных позах. Отдельным музейным экс- понатам необходимо придать естественную позу. В этих случаях насекомых не накалывают на булавки. Расправление ведется на торфяных или пенопластовых пластинках. Вначале укрепляют в нужном положении туловище насекомого. Для этого его обкалывают со всех сторон энтомологическими или канцелярскими булавками. Затем с помощью булавок и полосок бумаги различных размеров фиксируют в нужном положении ноги, крылья и усики насекомого, придавая ему естественную позу. Пользоваться клеем при расправлении не следует. 5.6. Сохранение материала в консервирующих жидкостях 5.6.1. Общие правила хранения материала в консервирующих жидкостях Личинок многих насекомых (клопов, жуков, чешуекрылых, двукрылых и др.), яйца и куколки насекомых, взрослых мелких насекомых, имеющих нежные по- кровы (первичнобескрылых, трипсов, мелких паразитических перепончатокрылых, некоторых двукрылых и др.), а также клещей хранят в консервирующих жидкостях В качестве консервирующих жидкостей чаще всего применяют 70-80% спирт или 4-5% формалин; в крайнем случае, 3% раствор карболовой кислоты или 5% — салициловой кислоты. Применяются также специальные составы консер- вирующих жидкостей (главным образом для гусениц бабочек и личинок жуков), позволяющие лучше сохранить их естественную окраску, волоски и щетинки на теле и предохранить от побурения и почернения. Взрослых насекомых сразу помещают в консервирующую жидкость (усыплен- ных в эфире или живых). Личинок чаще предварительно фиксируют кипятком или в специальных смесях, что предохраняет их от сморщивания и изменения окраски при длительном хранении. Существует несколько способов хранения насекомых в консервирующих жидкостях. Избираемый способ хранения зависит от размеров консервируемых насекомых и, разумеется, от имеющихся возможностей.
250 В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Рис. 196. Пробирка Эппендорфа. Рис. 197. Планшет для пробирок Эппендорфа. А — планшет; Б — крышка. Наиболее удобный и надежный способ хранения мелких объектов, в отношении сохранности материала и его транспортиров- ки, — в пробирках Эппендорфа (рис. 196). Они изготавливаются из полимерного материала, устойчивого к агрессивным средам, имеют коническую форму и плотно закрывающуюся, связанную с пробиркой пробку. Они бывают различной емкости, обычно 1,5 или 2 мл. В такой же степени удобны пластиковые микропробирки типа Эппендорфа цилиндрической формы (часто с делениями) со связанной пробкой. В на- стоящее время такие пробирки Эппендорфа и аналогичные им поставляются соответ- ствующими фирмами на базы химопторга и специализированные магазины медицин- ского оборудования. Заполнять спиртом пробирки Эппендорфа и подобного типа микропробирки удобно с помощью специ- альных пластиковых пипеток. В каждую пробирку вместе с материалом вкладывается очень маленькая этикетка, написанная остро заточенным карандашом средней твердости (лучше всего с маркировкой «ТМ») с гео- графическими и экологическими данными, относящимися к данной пробе, датой сбора и фамилией сборщика. После определения материала в каждую пробирку вкладывается еще и определительная этикетка, на- писанная также карандашом. Хранить и транспортировать такие пробирочки, благодаря наличию плотно закрывающейся пробки, в принципе, можно в любой упаковке, не заботясь об их положении. Тем не менее, удобнее их хранить в специальных пластиковых планшетах с глубокими лунками, с плотно закрывающейся крышкой (рис. 197). Традиционный и весьма удобный способ хранения насекомых мелких и сред- них размеров — в маленьких стеклянных пробирках, помещенных в банку с кон- сервирующей жидкостью. Для этой цели обычно используют пробирочки длиной 20-50 мм и диаметром 5-10 мм. Часто применяют и более мелкие, если объекты очень малы. Такие пробирочки изготавливают обычно по специальным заказам в стеклодувных мастерских. Можно их изготовить и самостоятельно, нарезая сте- клянную трубочку на отрезки необходимой длины и запаивая их на одном конце. Можно пользоваться просто отрезками стеклянной трубки, которые затыкаются
Глава 5. Обработка материала для коллекций 251 ватными пробочками с двух сторон, а также маленькими медицинскими пузырь- ками (например, из-под пенициллина). В пробирку вначале помещаются насекомые (проба), а затем этикетка, напи- санная простым карандашом. Желательно, чтобы та сторона этикетки, на которой сделана надпись, была обращена к стенке пробирки, чтобы ее можно было про- читать, хотя бы частично, не извлекая объект или объекты из пробирки (но так положить этикетку удается далеко не всегда). Во всех пробирках этикетки должны быть написаны при консервации материала, а не позже. Переписывание этикеток впоследствии не допускается. Пробирочку с законсервированными насекомыми и вложенной туда этикеткой затыкают смоченной консервирующей жидкостью ватной пробочкой, которая не должна торчать из пробирки; она делается плотной и хорошо пригнанной к стен- кам пробирки, так как в волокнах рыхлой пробки мелкие насекомые запутываются, и материал может оказаться непригодным для изучения. Нужно также следить за тем, чтобы в пробирке не образовался пузырек воздуха. Насекомые должны за- нимать лишь часть пробирки со спиртом; если они заполняют ее полностью, то материал при понижении крепости спирта может начать разлагаться. Пробирки с материалом, закупоренные ватными пробочками, опускаются пинцетом в банку или склянку со спиртом или другой консервирующей жидко- стью. Склянка должна быть с достаточно широким горлышком, чтобы из нее без труда можно было извлечь пинцетом пробирки. Лучше всего использовать банки с притертыми пробками объемом 0,5-1 л (рис. 198). Вместо стеклянных банок для хранения заспиртованного материала можно применять пластмассовые с плотно прилегающей прокладкой под крышкой. Разводить спирт для консервации (до 70-80%) надо дистиллированной, от- стоявшейся кипяченой или дождевой водой. При разведении спирта водопрово- дной водой образуется осадок, обволакивающий насекомых, в особенности если вода богата соединениями железа. При необходимости спирт фильтруют. Спирт в банках надо периодически доливать; нельзя допускать значительного снижения его крепости, иначе материал начнет разлагаться. Завинчивающиеся крышки на банках, в которых хранится законсервированный и не использую- щийся часто материал, сверху заливают расплавленным парафи- ном во избежание испарения жидкости. Притертые пробки тоже заливают парафином или смазывают вазелином. Другой способ хранения насекомых в консервирующих жидкостях — непосредственно в банках, без заключения их в пробирки. Так консервируют, как правило, достаточно крупных насекомых. При этом необходимо, чтобы консервирующая жид- Рис. 198. Хранение пробирок с энтомологическим материалом в стеклянной банке с притертой пробкой.
252 В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых кость полностью покрывала насекомых. В банку кладется этикетка, общая для всех насекомых. Затем банку закрывают пробкой, которую, если насекомые не подлежат в ближайшее время обработке или изучению на учебных занятиях, за- ливают парафином или (притертую пробку) смазывают вазелином. Так же можно хранить материал и в крупных пробирках или пузырьках с хорошо пригнанными и пропарафиненными пробками без помещения их в общую банку. Материал хранят также в пенициллиновых пузырьках с фиксирующей жидко- стью, с плотно закрывающейся пластиковой или резиновой пробочкой. При этом резиновую пробочку, чтобы она не выскакивала, закрепляют на пузырьке скотчем или проволокой. Пузырьки следует хранить в вертикальном положении. При любом способе хранения на банку или пузырек приклеивают этикетку, в которой приведены основные сведения о хранящемся материале: порядковый номер банки, номер пробы или число проб, названия видов (если они известны), хранящихся в банке, и т.д. Если в данной емкости хранится только одна проба, то на банке обычно пишут ту же этикетку, которая находится внутри, вместе с материалом. Это существенно облегчит поиски пробы при последующем изучении. Банки и отдельно хранящиеся пузырьки со спиртовым материалом обязатель- но, не реже одного раза в год, доливаются 70% спиртом, во избежание высыхания материала. Банки с формалином надо беречь от воздействия низких температур — хранить его при температуре ниже +5 °C недопустимо из-за выпадения фор- мальдегида. 5.6.2. Особенности консервации различных насекомых Тли хранятся в маленьких пробирках (куда вкладываются этикетки) в ем- костях с 70-80% спиртом. В таком виде их можно пересылать специалисту для определения. Очень полезно перед помещением тлей в спирт выдержать их предварительно в смеси четыреххлористого углерода с 96-99% спиртом (в соотношении 1:1), на- литой в небольшие стеклянные бюксы с притертыми пробками. Материал в этой смеси выдерживают от 10 минут до 3 часов, в зависимости от степени опыления и интенсивности окраски вида. Несколько дольше должны находиться в смеси особи, отличающиеся большим содержанием жира. Обезжиренных насекомых переводят в пробирки со спиртом для хранения указанным выше способом. Мате- риал после такой обработки получает и сохраняет очень чистый вид. Изготовление препаратов в дальнейшем значительно облегчается. Апробирована жидкость для фиксации и сохранения тлей следующего соста- ва: 1 часть фенола, 1 часть уксусной кислоты и 8 частей дистиллированной воды (Голуб и др., 1980). Спустя годы после фиксации цвет, форма и мягкость тлей не изменялись. В течение ряда лет объекты не обезвоживались, сохраняли эластич- ность и были пригодны для изготовления препаратов. Фиксировать и хранить длительное время можно все виды тлей. Однако опыленные и опушенные объекты
Глава 5. Обработка материала для коллекций 25 плохо смачиваются, их предварительно следует опускать на несколько секунд спирт, а затем уже переносить в указанную жидкость. Кокциды. Всех червецов, за исключением видов, имеющих твердую спинн\т поверхность тела, собирают в пробирки с 70% спиртом (по описанной выше ме тодике сбора тлей). Червецов с каждого растения, а также различные виды их одного растения кладут в разные пробирки. Червецов, имеющих яйцевые мешк или какие-либо своеобразные восковые покровы, параллельно со спиртовым мате риалом хранят в сухом виде. Таких червецов складывают в картонные коробки н вату вместе с кусочком растения, к которому они приклеены. Ползающих червеце замаривают в обыкновенной энтомологической морилке, в которую их опускаю в пробирках, заткнутых ватой. Хранить таких червецов очень удобно в ящик на ватных слоях. На дно ящиков (под вату) необходимо насыпать нафталин иг другое аналогичное средство, чтобы избежать порчи кокцид или даже полного и уничтожения кожеедами и молями. Щитовок и ложнощитовок, имеющих твердую спинную поверхность тел; желательно хранить на коре, листьях или веточках в сухом виде. Щитовок скл2 дывают вместе с кусочками растений в конверты на вату. Червецов хранить конвертах нельзя, так как они легко опадают с растения и могут быть повреждень Все сухие сборы следует просушивать (листья, веточки и кора растений додже хорошо просохнуть), лишь после этого образцы можно заворачивать или закрывзт коробки крышкой, иначе они покрываются плесенью, мицелий грибов прорастае через тело кокцид, и последние становятся непригодными для определения. При этикетировании кокцид кроме обычных сведений указывают также. им= ется ли спиртовой сбор к сухому материалу, и наоборот. Личинки клопов, имеющие мягкие покровы (слепняки, лигеиды. многи щитники и др.), при высыхании, как правило, сильно деформируются. Поэтому и следует хранить в 70-80% спирте или в 4-5% формалине, а личинок с твердым покровами (кружевницы, личинки старших возрастов черепашек и др.) — в виде, наклеенными на картонные прямоугольники. Личинок ручейников сначала фиксируют в 96% этиловом спирте, которы спустя некоторое время после сбора становится желтоватым ввиду экстракции в? ществ из тела личинки и ее домика. Затем сборы переносят в чистый 70% этане.- так как при длительном хранении в 96% этаноле личинки становятся жестким? (Иванов, Григоренко, Арефина, 2001). Личинки жуков хранятся в консервирующих жидкостях, куда их помешаю живыми или усыпленными в эфире, но лучше после предварительной фиксашп Крупных личинок жуков фиксировать надо обязательно. Собранных личине хищных жуков, пластинчатоусых и других крупных личинок до фиксации клд дут в баночки или пробирки (в зависимости от величины личинок) с почвой ил холодной водой. Последний способ имеет то преимущество, что в воде лич ин кт долго оставаясь живыми, не повреждают друг друга. В почве же, в тесноте, он нередко наносят друг другу раны челюстями.
254 В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Предварительная фиксация личинок жуков, особенно крупных (таких как ли- чинки пластинчатоусых), позволяет сохранить их светлую и даже белую окраску. Если же консервировать необработанных личинок, то их тело быстро теряет есте- ственную окраску, и определить их во многих случаях будет невозможно. Существует несколько способов фиксации. Самый простой из них и наибо- лее подходящий для крупных личинок — обработка кипятком. Для этого берут какую-либо посуду (химическую пробирку или стакан, металлическую банку, фарфоровый тигель и т.п.), в которую наливают воду и опускают личинок. Затем воду нагревают до кипения. После того, как вода закипела, посуду снимают с огня, дают воде успокоиться, а потом снова доводят до кипения, и так повторяют 2^4 раза. Если покровы личинок достаточно плотные, можно просто их варить 2-3 минуты на слабом огне. Если покровы нежные, то, наоборот, личинок только обливают кипящей водой, но не кипятят. Затем дают воде остыть, вынимают из посуды личинок, кладут их на лист фильтровальной бумаги, чтобы отсосалась излишняя вода, после чего консервируют в 70% спирте. Приблизительно через неделю спирт в банке с личинками следует заменить свежим 70%, так как свежие личинки выделяют воду, и крепость спирта понижается. Другой способ фиксации — в хромовой смеси, имеющей следующий состав (в частях по объему): • формалин (40%) — 80; • раствор хромовой кислоты в воде — 180; • ледяная уксусная кислота — 10. В этой смеси хорошо фиксируются мелкие и средние личинки жуков (напри- мер, долгоносиков), личинки крупных жуков — хуже. В хромовой смеси материал держат в среднем 10-20 дней (но не больше месяца), затем промывают в воде и переносят в консервирующую жидкость, обычно — спирт. Вначале объекты по- мещают в 96% спирт, а через несколько дней переносят в 70%, где и хранят. Для фиксации мелких мягких личинок рекомендуется жидкость такого состава (в частях по объему): • этиловый спирт (96%) — 750; • серный эфир — 250; • ледяная уксусная кислота — 30; • формалин (40%) — 3. После фиксации в течение примерно 10 дней материал переносят в 70-80% спирт. Фиксировать личинок можно также в жидкости следующего состава (в частях по объему): • формалин (40%) — 5-6; • этиловый спирт (96%) — 15; • ледяная уксусная кислота — 2; • дистиллированная вода — 30. Через несколько дней личинок переносят в 80% спирт, который спустя еще несколько дней (особенно если личинки довольно крупные) следует сменить.
Глава 5. Обработка материала для коллекций 255 При фиксации на теле крупных мягких личинок рекомендуется сделать не- сколько наколов иглой, что ускорит пропитку тканей фиксирующей жидкостью. Хранить фиксированный материал надо в темном шкафу, так как свет обесц- вечивает и размягчает фиксированных в спирте личинок. В качестве консервирующей жидкости для личинок жуков чаще всего при- меняется 70-80% спирт. Вместо него могут использоваться следующие смеси (в частях по объему): • этиловый спирт (96%) — 75; • глицерин — 25; или: • этиловый спирт (75%) — 99; • ледяная уксусная кислота — 1. Молодых нежных личинок после фиксации кипятком лучше помещать в раст- вор Мак-Грегора (в мл): • формалин (40%) — 10; • раствор буры (5%) — 10; • глицерин — 2; • вода дистиллированная — до 100. Можно также хранить личинок в глицерине или в глицерин-желатине, куда их переносят из кипятка, но покровы при этом дубеют. Для хранения личинок жуков и вислокрылок (Megaloptera) используют также жидкость KAAD (Вшивкова, 2001), которая составляется следующим образом (в частях по объему): • керосин — 1; • этанол (96%) — 10; • ледяная уксусная кислота — 2; • ионный детергент — 1-5. Для фиксации крупных личинок рекомендуется впрыскивание KAAD в ротовое отверстие (в результате быстрой фиксации сохраняется естественный цвет покровов) и суточное содержание личинки в KAAD с последующим перемещением в спирт. Крупных личинок жуков для демонстрационных целей иногда надувают воз- духом и в таком виде хранят (см. ниже). Гусеницы чешуекрылых. Живых гусениц обычно фиксируют кипящей водой, причем, если гусеницы небольшие (до 3 мм), то их достаточно опустить в кипяток и оставить там на короткий срок (меньше 1 минуты) без кипячения. В крайнем случае, гусениц можно не проваривать, а только ошпаривать кипятком. Крупных гусениц следует выдерживать 1-2 минуты в горячей воде, осторожно доводя ее до кипения. Кипячение гусениц производят в химической пробирке, которую надо постоянно слегка встряхивать; для очень крупных гусениц используют химические стаканы. После окончания кипячения содержимое пробирки или стакана выливают на часовое стекло или в чашку Петри, а затем пинцетом осторожно вынимают гусеницу и переносят на часовое стекло в воду. Оттуда гусеницы переносятся в
256 В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых 70-80% спирт. За неимением спирта гусениц можно сохранить в 4% формалине или денатурате. Следует иметь в виду, что фиксированная кипячением гусеница растягивается, поэтому точное измерение ее длины нужно делать до кипячения. При описанном выше способе фиксирования и консервирования гусениц их окраска быстро теряется, а рисунок изменяется. О.И. Мержеевской (1965) предло- жен специальный состав жидкости, который позволяет сохранять зеленый, розовый, белый, желтый и другие цвета в течение 5-6 месяцев, а рисунок из темных тонов — более 5 лет. В состав этой жидкости входят 96% этиловый спирт, салициловая кислота, химически чистая поваренная соль и дистиллированная вода. Жидкость приготавливается следующим образом: 2 г салициловой кислоты растворяются в спирте, и объем раствора доводится до 100 мл; одновременно готовятся 100 мл 1% водного раствора поваренной соли. Оба раствора смешиваются, и полученная жидкость сохраняется в темной склянке. Жидкость годна к употреблению через сутки. В ней фиксируются и хранятся живые или усыпленные эфиром гусеницы. Помещать фиксированных гусениц удобнее всего в пробирки сообразно их количеству и величине, по одному виду (или номеру) в каждую пробирку, закла- дывая их сверху комочком ваты, во избежание перемещения в пробирке. Гусениц хранят часто в надутом состоянии (технику надувания см. ниже). Этот способ применяется в основном для демонстрационных целей. Перепончатокрылые. Мелких (менее 3 мм) паразитических перепончатокры- лых фиксируют в 70-75% спирте, что позволяет хорошо сохранить у них общую форму тела, в особенности форму члеников усиков (но иногда раздувается брюш- ко). Насекомых помещают в спирт живыми или заморенными в эфире. Двукрылые. Личинок мух следует фиксировать кипятком или в хромовой смеси (см. выше). После фиксации личинок хранят в 70-80% спирте или 2-5% формалине в маленьких пробирках или пузырьках. Часто обходятся без пред- варительной фиксации: материал после умерщвления сразу закладывают в спирт или формалин, где и хранят. Взрослых галлиц также хранят в спирте. Двукрылых, имеющих длинные, легко обламывающиеся конечности (комары-долгоножки) следует хранить на ватных слоях. Яйца и куколки насекомых обычно хранятся в 70-80% спирте. Куколок часто хранят также сухими после предварительной фиксации в кипятке или над паром. 5.7. Сохранение формы тела гусениц чешуекрылых, личинок жуков, двукрылых и других насекомых с мягкими покровами Нередко, особенно при создании демонстрационных биологических коллекций, требуется, чтобы гусеницы бабочек или личинки жуков (в основном крупных) были показаны в естественной позе (рис. 199). Для этого применяют особые спо- собы их обработки.
Глава 5. Обработка материала для коллекций 257 Рис. 199. Надутая и смонтирован- ная в естественной позе гусеница пяденицы. 5.7.1. Надувание препаратов Наиболее распространенный способ сохранения формы тела гусениц бабочек — надувание. Перед замариванием гусениц, подлежащих надуванию, следует подержать без пищи. Особенно это относится к круп- ным гусеницам с яркой окраской, а также к таким, у которых тело в густом длинном опушении. Бледно окрашенных, зеленых, голых и мелких гусениц можно надувать, не выдерживая предварительно без пищи. В морилку, где замариваются предназна- ченные для надувания гусеницы, кладется больше, чем обычно, фильтровальной бумаги, так как перед отмиранием гусеницы выделяют много жидкости. Филь- тровальная бумага предохраняет гусениц от грязи и влаги. Заморенные гусеницы сразу же извлекаются из морилки, иначе они могут потерять окраску. При надувании гусениц требуется оперативность и четкость в работе. Любая заминка может привести к неисправимой порче покровов. Поэтому надо иметь все необходимое под рукой. Оборудование и материалы, которые могут потребоваться во время надувания, следующие: фильтровальная бумага (10-15 листов размером примерно 15 х 20 см), соломинки разной толщины, нитки, пинцет глазной, сте- клянные трубочки с оттянутыми концами (или пипетки), деревянные держатели, резиновая груша, резиновая трубка, препаровальная игла или толстая (не менее 3-го номера) энтомологическая булавка, стекло от керосиновой лампы или неболь- шой лист жести (размером примерно 10 * 10 см), спиртовка или электроплитка (лучше лабораторная, небольшая), ножницы, лезвие бритвы. Препарирование и надувание гусеницы производится следующим образом. Раскладывают на столе фильтровальную бумагу в два-три слоя. Кладут на нее гусеницу головой к себе. На брюшной стороне заднего конца гусеницы около анального отверстия лезвием бритвы делают небольшой надрез. Затем гусеницу берут за головной конец пальцами левой руки, а правой осторожно надавливают на брюшко перед самым надрезом. Из надреза выдавливается капелька жидкости. По- сле этого начинают осторожно надавливать на гусеницу около головы, постепенно перенося нажим все дальше назад. Обычно эту операцию приходится повторять несколько раз. Чтобы не повредить покровы гусеницы и сохранить в них крася- щие вещества, надавливать на них надо относительно слабо. Особенно осторожно приходится выдавливать содержимое из волосистых гусениц. При выдавливании внутренностей необходимо следить за тем, чтобы гусеница не запачкалась; если у конца брюшка скопится много грязи и влаги, гусеницу передвигают на чистое место. Если на покровы попадает влага, ее немедленно удаляют с помощью по- лоски фильтровальной бумаги.
258 В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых После того, как удалены все внутренности гусеницы, ножницами отрезают торчащий наружу конец кишки. Отпрепарировав гусеницу, приступают к надува- нию ее покровов, предварительно дав полежать шкурке 10 минут для сокращения кожной мускулатуры. Гусеницу надувают или просто соломиной, вставленной в анальное отверстие, или, что удобнее, резиновым баллоном со стеклянным наконечником. Шкурка перед надуванием привязывается возле анального отвер- стия к соломине ниткой, а затем помещается в обыкновенное ламповое стекло, укрепленное на подставке в горизонтальном положении, или удерживается над небольшим листом жести. Под ламповым стеклом (или жестью) ставят спиртовую горелку (рис. 200). Это необходимо для того, чтобы шкурка во время надувания находилась в горячем воздухе и затвердела в надутом состоянии в заданной позе. Закрепив шкурку, надавливают на баллон или осторожно дуют в соломину. Через некоторое время шкурка снова спадает, и поэтому нужно ритмично надавливать на баллон или дуть в соломинку так, чтобы струя воздуха была слабой, но не- прерывной. Осторожно накачивают в шкурку воздух, выходящий из нее через дыхальца, и равномерно поворачивают шкурку до затвердевания. При нагревании и надувании шкурки следует остерегаться следующего: во-первых, чрезмерного растягивания шкурки, придающего гусенице неестественный вид (или даже при- водящего к разрыву шкурки); во-вторых, слишком долгого, а тем более слишком сильного нагревания, изменяющего цвет гусеницы, в-третьих, соприкосновения ее со стенками нагревательного прибора, так как это может ее обжечь и испортить. Нагревать шкурку необходимо 10-15 минут. Чтобы убедиться в том, что она вы- сохла окончательно, нужно время от времени ее вынимать и пробовать пальцами или надавливать головкой энтомологической булавки. Если кожица окажется за- твердевшей, процесс препарирования можно считать законченным. Тогда в аналь- ное отверстие гусеницы вставляется и закрепляется клеем или ниткой соломина, спичка или тонкая палочка подходящего диаметра (если надувание производилось через соломину, то она оставляется в шкурке). Гусеница, подколотая на соломинку энтомологической булавкой, помещается в ящик. Длина соломинки внутри гусе- ницы должна составлять приблизительно V2-2/3 длины гусеницы. Аналогичным образом препарируются личинки проволочников, ложнопро- волочников, пластинчатоусых и усачей. При этом препаровальной иглой делают прокол в анальное отверстие личинки, кладут ее на лист фильтровальной бумаги, нажимая стеклянной палочкой в направлении от головы к «хвосту», выдавливают все внутренности. Выдавливание продолжают катанием стеклянной палочки по шкурке личинки, пока не перестанут выдавливаться остатки внутренностей. После выдавливания кожу личинки надевают на препаровальную иглу местом прокола и так подсушивают над пламенем спиртовки или в горячем воздухе (рис. 200). При нагревании образующимися внутри шкурки парами личинка распрямляется и приобретает естественную форму. Шкурку не следует слишком интенсивно на- гревать, ибо при перегреве, от сильного давления паров, личинка может чрезмерно раздуться и изменить свои размеры и форму. Нужно следить также и за тем, чтобы
Глава 5. Обработка материала для коллекций 259 Рис. 200. Приспособление для надувания гусениц (по Козлову, Нинбургу, 1971). А — общий вид, Б — стеклянный наконечник с надетой на него шкуркой гусеницы. у личинки не обгорели ножки. Высушенная таким образом личинка полностью сохраняет и форму, и окраску. 5.7.2. Методы фиксации формы и окраски личинок жуков Для демонстрационных коллекций достаточно широко используется методика сохранения формы и окраски личинок жуков, главным образом, пластинчатоусых, проволочников, ложнопроволочников и усачей, предложенная М.С. Гиляровым (1937). Она заключается в следующем. Сразу после замаривания личинок жуков из них выдавливаются внутренности через небольшой разрез на заднем конце тела. После двукратного или трехкрат- ного выдавливания их 2-3 раза промывают уксусной кислотой для того, чтобы свернулись оставшиеся возле хитинового покрова белки. Шкурку внутри про- мывают из пипетки 5-6 раз спиртом возрастающих крепостей, от 70 до 96° или абсолютным. После этого шкурку промывают еще 2-3 раза хлороформом, а затем надувают, придав ей естественную форму. Далее с помощью шприца ее заполняют насыщенным раствором парафина в хлороформе. Так как хлороформ испаряется, его испарение нужно ускорить продуванием через длинную тонкую соломинку. Процедуру наливания раствора (парафина в хлороформе) и просушивание нужно повторить несколько раз, пока на внутренней стороне шкурки не образуется слой
260 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых парафина, удерживающий форму шкурки. После этого при помощи пипетки с «грушей» шкурку дополняют расплавленным парафином. К парафину желательно добавить порошок мела. Когда парафин внутри шкурки застынет, нагретым шпа- телем сглаживают в месте надреза края шкурки и освобождают личинку снаружи от приставшего парафина. В таком виде экспонат может храниться долго. Для сохранения формы и окраски животных П.И. Савинский (1953) реко- мендует пользоваться таким методом. Объект после умерщвления его эфиром помещают на бумагу и расправляют, придавая нужную форму. Поверхность вы- сушивают до полной сухости. На 3/4-2/3 всей поверхности объекта накладывают формовой слой — расплавленную смесь канифоли (4 части) и парафина (1 часть) так, чтобы этот слой (примерно в 2 мм толщиной) прикреплял объект со всех сторон к бумаге. Для прочности при фиксировании крупных объектов наклады- вают еще слой гипса в 2-3 мм. Для сохранения при фиксации густых щетинок вместо названного формовочного слоя объекты опудривают толченой канифолью и сразу опрыскивают из пульверизатора концентрированным раствором канифоли в спирте. При этом способе расположение щетинок и форма их не нарушаются. У гусениц (непарного шелкопряда и др.) форма и расположение щетинок, если они густые и длинные, хорошо фиксируются при наложении обычного формового слоя (канифоль + парафин). После того как формовой слой станет твердым, пре- паровальными ножницами разрезают непокрытую формовым слоем поверхность и удаляют внутренности, не допуская отделения поверхности объекта от формо- вого слоя. У гусениц большая часть внутренностей может быть оставлена. Для фиксации окраски и удаления воды из тканей внутрь тела животного насыпают поваренную соль. Отсыревшую в теле соль заменяют сухой, и объект высушива- ют в сушильном шкафу при невысокой температуре. После полного высыхания объект освобождают от формового слоя, для чего его помещают в бензин. Осво- божденный объект пропитывают и покрывают парафином в сушильном шкафу при температуре около 70°, после этого всю поверхность объекта покрывают даммарным лаком. Для прочности изнутри накладывают слой гипса со столярным клеем. Такие препараты хранятся очень долго без изменения. Окраска сохраняется лучше, чем при других способах фиксации. 5.7.3. Изготовление объемных силиконовых препаратов личинок насекомых В последнее время для изготовления объемных тотальных препаратов насеко- мых с мягкими покровами (гусениц бабочек, ложногусениц пилильщиков, личинок жуков и мух), особенно для демонстрационных коллекций, все шире применяются методики заполнения очищенных покровов таких насекомых силиконами. Ниже дается описание одной из методик, описанной Р.И. Мишустиным (2003). Для изготовления силиконовых тотальных препаратов рекомендуется исполь- зовать прозрачные силиконовые герметики («Soudal», «Alda», «Devcon», «Мах», «Akfix»), а также герметики с добавлением акрила.
Глава 5. Обработка материала для коллекций Ф 261 Выдавленный из тубы силикон сохраняет преданную ему форму и начинает застывать уже через 5-20 минут, в зависимости от температуры (5-40 °C). Повы- шенная влажность или присутствие капельной влаги ускоряет полимеризацию. После застывания герметик напоминает эластичную резину и устойчив к низким и высоким температурам. Для изготовления препаратов, кроме прозрачного сили- конового герметика, необходим специальный пистолет для выдавливания силикона из тубы, который можно приобрести в тех же хозяйственных магазинах, где про- даются силиконовые герметики. Кроме упомянутого пистолета потребуются одно- разовые шприцы различного объема (1-5 мл) с набором игл различного диаметра. Для препарирования крупных объектов лучше использовать иглы с наружным диаметром 1,2-0,6 мм, но укороченные до 20 мм, вновь заостренные и приту- пленные так, чтобы они не прокалывали случайно покровы препарата. Для пре- парирования гусениц первых возрастов, личинок мух, перепончатокрылых, тлей, а также мелких пауков, пригодна только инсулиновая игла — диаметром 0,4 мм и менее. Чтобы избежать соскакивания иглы со шприца при сильном надавливании на поршень, игла крепится часовым винтом или шурупом малого размера. Кроме того, понадобятся препаровальные иглы и энтомологические булавки. В начале работы с силиконовым герметиком необходимо извлечь из одно- разового шприца поршень и заполнить шприц (на х12~13 объема). Далее следует вставить поршень так, чтобы между ним и силиконом не было воздуха. В шприце не должно быть воды и пузырьков воздуха, так как в противном случае, силикон застынет, появятся комочки и сгустки, которые закупорят иглу. Необходимо вы- давить лишний воздух со стороны иглы, причем давить на поршень шприца надо до тех пор, пока на кончике иглы не появится «колбаска» силикона, которую затем следует удалить. Чтобы застывший силикон не закупоривал иглу, ее нужно вколоть в пузырек с 96% спиртом сквозь резиновую пробочку. В этом случае силикон в кончике иглы не застынет. Для препарирования гусениц бабочек можно использовать свежефиксирован- ный материал, гусениц, находившихся более года в высушенном (ссохшемся) виде, а также, образцы, хранившиеся долгое время в спирте (96-70%) и в смеси спирта и глицерина в пропорции 3:1. Свежефиксированный материал содержит в себе большое количество воды, и поэтому вначале требуется удаление пищевых остатков и внутренних органов. Положив гусеницу, головой к себе, на фильтровальную бумагу, необходимо акку- ратно надавить на нее. Давить надо так, чтобы внутреннее содержимое гусеницы продвигалось от головы к задней части гусеницы. Около анального отверстия препарата делается надрез лезвием, или прокол препаровальной иглой или энтомо- логической булавкой. Через образовавшееся отверстие выдавливается внутреннее содержимое. Необходимо выполнить эти манипуляции так, чтобы не испачкать поверхность препарата. Промывку внешних покровов гусеницы, до и после сили- конизации, лучше всего проводить теплой водой, с добавлением пенных моющих средств. Если гусеница имеет густые длинные волоски, и есть уверенность, что
262 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых на ней не осталось гемолимфы, то ее можно опустить в 96% спирт, затем дать спирту стечь на фильтровальную бумагу. При этом нужно некоторое время подуть на гусеницу, распушая волоски булавкой. После того, как из гусеницы удалено все ее содержимое, можно приступить к заполнению препарата силиконом. Игла шприца вводится в анальное отверстие объекта и проводится сквозь все тело гусеницы, до головы. Давя на поршень, по- степенно вынимая иглу, нужно заполнить силиконовым герметиком всю полость гусеницы. Во время заполнения гусеницы силиконом в брюшных конечностях гусениц скапливается влага, это приводит к тому, что они со временем дефор- мируются, ссыхаются. Исправить данный дефект практически невозможно, но его можно предотвратить. После того, как гусеница уже практически заполнена силиконом, очень острой иглой делаются проколы на концах брюшных конечно- стей. Затем, надавив на бока гусеницы пальцами, следует добиться того, чтобы жидкость в конечностях вытеснилась силиконом и вышла через проколы. Если через проколы выступил силикон, его можно снять иглой. Заполнение гусеницы герметиком нужно продолжать до такого состояния, когда убираются вмятины по бокам гусеницы. Можно контролировать степень заполнения препарата так, чтобы объект выглядел естественнее. Для изучения внешней морфологии объекта, наи- более удобны максимально раздутые препараты. Аналогичным образом препарируются и гусеницы, долгое время находившиеся в спиртовых растворах, с той лишь разницей, что сильно обезвоженные экзем- пляры могут требовать размачивания в воде. Кроме того, если свежая гусеница извлечена из спирта после фиксации, то ее поверхность необходимо промыть водой. Иначе гемолимфа, попавшая на поверхностные покровы при препариро- вании гусеницы, сразу же свернется, и ее практически невозможно будет смыть, или счистить. Описанная методика может быть применена также и для тлей (Aphidinea), личинок жуков (Coleoptera), мух (Brachycera), ручейников (Trichoptera). Работа с насекомыми разных таксономических групп может потребовать усовершенство- ваний и дополнений к данной методике, особенно в связи с необходимостью мак- симально возможного сохранения прижизненной окраски. Например, поскольку зеленые участки покровов личинок или гусениц полупрозрачны, в этом случае можно попробовать наполнять их полость герметиками зеленого цвета. Крепление готового препарированного объекта может быть самым разнообраз- ным. После полимеризации силикона, экспонат может быть наколот на булавку или приклеен к плашке из картона.
Глава 6. ЭТИКЕТИРОВАНИЕ КОЛЛЕКЦИОННОГО МАТЕРИАЛА 6.1. Виды этикеток. Составление текста этикеток Этикетирование — исключительно важный этап работ при сборе, обработке материала и постановке коллекции. Материал, не имеющий этикеток, какой-либо научной ценности не представляет. Сильно снижается его ценность и тогда, когда при этикетировании не соблюдены правила, допущена небрежность, не включены необходимые сведения. Известно немало случаев, когда отсутствие этикеток или ошибка, допущенная при этикетировании, не давали возможности довести ис- следования до конца, заводили их в тупик или являлись причиной неправильных выводов. В таких случаях приходится предпринимать специальные, порой много- трудные и связанные с большими затратами времени и средств исследования по расшифровке этикеток, исправлению ошибок, организации повторных экспедиций и т.д. Умение составлять этикетки несомненно, один из важнейших критериев уровня подготовленности энтомолога. Ниже изложены основные правила и даны рекомендации по составлению различных этикеток (см. также: Городков, 1977; Голуб и др., 1980). Этикетки бывают географические, экологические и определительные. Географические и экологические этикетки делятся на следующие две катего- рии. 1. Первоначальные, или полевые (оригинальные); они составляются при про- ведении сборов и сопровождают материал, временно хранящийся на ватных слоях и в спирте; они представляют собой листок бумаги, которым прикрываются сверху лежащие на матрасике насекомые. 2. Постоянные; это этикетки для наколотых насекомых, а также для насекомых, постоянно хранящихся в спирте или другой фиксирующей жидкости; их пишут при проведении сборов, т.е. они являются, по существу, и полевыми и постоян- ными. На полевых этикетках географические и экологические сведения обычно со- вмещаются. Постоянные этикетки, подкалываемые под насекомых, чаще всего бывают раздельными: верхняя — географическая, нижняя — экологическая; ино- гда удается все сведения уместить на одной этикетке. На географических и экологических этикетках следует записывать как можно больше сведений, которые могли бы помочь при проведении исследований. При этом на полевых этикетках обычно можно записать больше данных, чем на эти- кетках, подкалываемых под экземпляр, вследствие их небольших размеров. Географические этикетки (как полевые, так и постоянные) должны включать следующие основные данные (о содержании этикеток для материала, хранящегося на ватных матрасиках, уже было сказано выше).
264 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых 1. Место сбора, как можно более точное. При этом приводятся следующие сведения. 1а. Название населенного пункта (города, поселка или села), которое можно найти в «Большом атласе России», «Большом атласе СССР» или «Атласе мира» (различные годы издания), в одном из вариантов общедоступных электронных карт, или расстояние от него в километрах с указанием направления по отноше- нию к странам света. Если место сбора находится в непосредственной близости от населенного пункта, то вместо указания расстояния ограничиваются словом «окрестности» или «близ». 16. Название горной системы, хребта или горы, озера, реки, ущелья, урочища и т.д. Для большого озера указывается еще его берег (южный, северный и т.д.), для большой реки — верхнее, среднее или нижнее ее течение. В горах следует ука- зывать высоту над уровнем моря. При этом слова «над уровнем моря» опускают (например: «2000 м»). Для горной системы (страны) или хребта указывается их часть, где проведены сборы (например: «Центр, Копетдаг», «зап. часть Гиссарск. хр.»); в особенности на это нужно обращать внимание, если поблизости от места проведения сбора нет крупного населенного пункта. 1в. Координаты данного пункта в градусах и минутах (или даже в секундах), установленные на крупномасштабной карте или с помощью персонального на- вигатора GPS. 1г. Название крупной административной единицы — страны, края, области. Разумеется, на этикетке не обязательно указывать все приведенные выше све- дения, а лишь те, которые помогут быстро и точно отыскать место сбора по карте или на местности. При этом надо избегать указаний мелких населенных пунктов без сведений о более крупной административной единице. С другой стороны, не следует ограничиваться указанием только крупного административного деления или географического района, не сообщив сведений о пункте сбора. Одинаково малоценными будут, например, этикетки: «деревня Ивановка» или «Сибирь», «ущелье Ипай-Кала», или «Средняя Азия». При составлении постоянных этикеток (см. ниже) недопустимо и считается научно безграмотным использование названий административных районов внутри области и названий отдельных хозяйств (колхозов, совхозов, опытных станций и т.д.), так как этикетки «живут» многие десятки лет, а название пункта местного значения, хозяйства, района и их границы, как показывает опыт, меняются намного быстрее и неоднократно. На оригинальных же этикетках указания районов или хозяйств (дополненные сведениями о географическом положении и более крупных административных делениях) вполне допустимы и даже необходимы при прове- дении исследований прикладного характера. 2. На географической этикетке после сведений о месте сбора указываются фамилия сборщика (в случае широко распространенной фамилии желательно с инициалами) и дата сбора. Фамилия сборщика должна писаться четко и полностью (не подпись!).
Глава 6. Этикетирование коллекционного материала Ф 265 На полевых этикетках часто указывают название учреждения, сотрудником которого является коллектор. На постоянной же этикетке писать название учреж- дения почти всегда нецелесообразно (за исключением случаев, когда фамилия кол- лектора не установлена). Это объясняется тем, что, во-первых, даже сокращенное название (часто с трудом подающееся расшифровке) займет на этикетке довольно много места в ущерб более ценным сведениям географического или экологиче- ского характера, а, во-вторых, практически весь материал все равно хранится в данном учреждении. Иногда учреждение или лицо заинтересовано в докумен- тальном подтверждении своего права на коллекционный материал (например, при направлении его специалисту на обработку) или в засвидетельствовании его происхождения при обмене или передаче в дар. В этих случаях можно подколоть под каждый экземпляр (или под один экземпляр каждой серии) особую этикетку с названием учреждения или фамилией владельца коллекции. Экологические этикетки включают сведения о конкретных условиях, в кото- рых собраны насекомые. При этом указываются посевы той или иной культуры, лес, луг, болото и т.д., если известно, — название вида растения (для дикора- стущего лучше латинское) или же только семейства, к которому оно относится, фаза развития растения, название вида насекомого-хозяина (или таксона более высокого ранга) и т.д. Кроме того, если необходимо, на экологической этикетке указывается метод сбора насекомых и его особенности. На этикетках для выве- денных паразитов отмечаются даты сбора зараженного хозяина, выхода личинки, ее окукливания и вылета имаго. Если на одной постоянной этикетке невозможно уместить все необходимые сведения, то под экземпляр подкалываются две эти- кетки или больше. Записывать на этикетки следует только абсолютно достоверные сведения. Лучше, например, ограничиться лишь указанием семейства или даже отряда, к которому относится хозяин выведенного паразита, чем записывать видовое или родовое название, в правильности определения которого существует со- мнение (особенно часто так обстоит дело в экспедиционных условиях). Во всех подобных случаях следует сохранять образцы растений или насекомых-хозяев для последующего более точного их определения в лабораторных условиях с привлечением специалистов-ботаников или энтомологов. Если же сомнительные результаты определения все же записываются на первоначальную этикетку, то их следует сопровождать вопросительным знаком или особой оговоркой. Со- храняемые гербарные образцы и особи насекомых-хозяев должны иметь соот- ветствующие этикетки. Первичные (оригинальные) этикетки, укладываемые на матрасики или по- мещаемые в емкости с зафиксированными насекомыми, надо писать сразу же после проведения сбора при его первичной разборке и обработке. Материал каждого сбора или каждого выведения надо этикетировать отдельно и отдельно же записывать о нем сведения в журнале или полевом дневнике. Во всех случаях следует избегать нумерации или шифровки материала. Если все же применяется
266 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых определенная система номеров (например, при индивидуальном выведении пара- зитов или выведении паразитов из неизвестного хозяина), то только в дополнение к подробным этикеткам. Полевые этикетки надо писать так, чтобы впоследствии их не пришлось пере- писывать (кроме переписывания на постоянные этикетки, подкалываемые под на- секомых). Этикетки для сборов, хранящихся на вате, пишут простым карандашом или, что хуже, шариковой ручкой. Этикетки для заспиртованного материала следу- ет писать карандашом или не расплывающейся в спирте тушью; во втором случае для этикеток используется калька или тонкая пергаментная бумага. Этикетка в пробирке с заспиртованным материалом не должна быть слишком большой, чтобы не сдавливать плавающих в спирте насекомых. Этикетки желательно располагать так, чтобы их можно было прочитать, не вынимая из пробирок. При выведении паразитов в фотоэклекторе туда вкладывается подробная этикетка, которую лучше писать простым карандашом. После того как энтомологические объекты, хранящиеся на ватных матрасиках, смонтированы на энтомологические булавки и снабжены постоянными этикетками, полевые этикетки не выбрасываются, а хранятся как документ. Постоянные географические и экологические этикетки, подкалываемые под насекомых на энтомологические булавки, распечатывают на лазерном принтере, изготавливают типографским или фотографическим способом или же пишут от руки. При изготовлении и заполнении постоянных этикеток нужно придерживаться следующих правил и рекомендаций. Все этикетки в коллекции следует делать одинаковыми по размерам. Реко- мендуемые размеры — 18x7 мм. Для этикеток (особенно рукописных) наиболее подходит плотная гладкая бумага. Рукописные этикетки пишутся тушью чертежным пером (не шариковой ручкой и не чернилами!), как можно отчетливее. Писать этикетки удобно на разграфлен- ной по их формату бумаге или на распечатанном на принтере шаблоне, после чего они вырезаются. Текст на рукописных географических этикетках принято располагать на трех или четырех строчках, если использовать очень мелкий шрифт — то даже на пяти. На двух (или трех, если всего четыре) верхних строчках пишется место сбора, на самой нижней — только фамилия сборщика и дата сбора. При указании места сбора вначале приводится название мелкого пункта, за- тем — более крупной административной единицы или географического района. Все географические названия пишутся согласно транскрипции «Большого Атласа России», «Атласа мира» или «Большого атласа СССР». Как было указано выше, на этикетках нельзя указывать административные районы той или иной области, т.к. их границы и названия часто меняются и, кроме того, часто не известно, где точно они проходят; кроме того, при указании административного района невоз- можно установить, хотя бы приблизительно, в каких экологических условиях были собраны насекомые.
Глава 6. Этикетирование коллекционного материала Ф 267 Страны света обозначаются латинскими или русскими заглавными буквами: «N» («С») — север, «S», («Ю») — юг, «W», («3») — запад, «О» («В») — восток, «NW» («СЗ») — северо-запад и т.д. При проведении сборов в горах надо обяза- тельно указывать высоту над уровнем моря, которую нетрудно установить по карте или с помощью персонального GPS навигатора. При указании даты число и год обычно обозначаются арабскими цифрами, месяц — римскими. При этом год можно обозначать лишь тремя или даже двумя последними цифрами (например, не «2009», а «009» или «09»). Сокращенное написание года сэкономит место и уменьшит вероятность ошибки при чтении рукописной этикетки (особенно, если у коллектора плохой почерк). Однако со- кращенное написание года XXI столетия неопытный систематик или фаунист может спутать с написанием такого же года XX столетия (богатые коллекции на- чала XX века хранятся в ряде музеев России и за рубежом!). Многие коллекторы предпочитают месяц также писать арабскими цифрами, что вполне допустимо и, возможно, имеет свои преимущества. В рукописных этикетках число, месяц и год обычно разделяют точкой, в печатных — пропуском. При составлении этикеток допускаются общепринятые сокращения широко употребляемых географических, ландшафтных и административных терминов: автономная область — АО; автономная республика — АР; бархан — барх.; бассейн — бас.; берег — бер.; биостанция — биост.; близ — бл.; болото — бол.; Большой — Бол.; бухта — бух.; верхний — верх.; водохранилище — вдхр.; воз- вышенность — возв.; восточной долготы — в.д.; восточнее, восточный — вост.; Восточный — Вост.; вулкан — вулк.; высота около — выс. ок.; гора — г. (при ука- зании города во избежание путаницы с названием горы сокращение слова «город» в виде «г.» писать не надо: название населенного пункта с названием горы спутать невозможно, тем более что сборы обычно проводятся не в самом городе, а в его окрестностях, которые обозначаются аббревиатурой «окр.»); деревня — дер., д.; долина — дол.; залив — зал.; западной долготы — з.д.; западнее, западный — зап.; Западный — Зап.; заповедник — запов.; канал — кан.; километр — км; колодец — кол.; кордон — корд.; край — кр.; Красный — Кр. (например, Красная Поля- на — Кр. Поляна); курган — кург.; лагуна — лаг.; левый — лев.; ледник — ледн.; метеостанция — метеост.; метр — м; лесхоз — л/х; Малый — Мал.; море — м.; мыс — м. (путаницы с названием моря не бывает); над уровнем моря — н.у.м., н.ур.м. (лучше — alt.); нижний — ниж.; Нижний — Ниж.; низовье, низовья — низ.; низменность — низм.; Новый — Нов.; область — обл.; озеро — оз.; око- ло — ок.; окрестности — окр.; остров — о.; острова — о-ва; перевал — пер.; подножье — подн.; полуостров — п-ов; поселок — пос.; правый — прав.; при- ток — прит.; пролив — прол.; район — р-н; река — р.; северной широты — с.ш.; селение, село — с.; севернее, северный — сев.; Северный — Сев.; склон — скл.; соцветие — соцв.; средний — ср.; станица — стан.; станция — ст.; Старый — Ст. (например, Старый Оскол — Ст. Оскол); течение — теч.; урочище — уроч., ур.; устье — уст.; ущелье — ущ.; хребет — хр.; хутор — хут.; цветки, цветок — цв.;
268 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых центральный — центр.; Центральный — Центр.; южнее, южный — южн. (мож- но — юж). Сокращенные названия административных единиц не должны быть двус- мысленными. Например, следует писать «Воронеж, обл.», а не «Вор. обл.». На рис. 201, А. Б показаны примеры заполнения географических и экологических постоянных этикеток. При изготовлении этикеток компьютерным способом (распечаткой на прин- тере) заранее, до проведения сборов на намеченной к исследованию территории, на них оставляют пустые места для заполнения впоследствии от руки (главным образом, для указания мелких пунктов, дат сборов или еще фамилий сборщиков). Размеры постоянных экологических этикеток такие же, как и географических (иногда их делают слегка меньше). Текст на них располагается обычно также на трех-четырех строчках. Если текст короткий (одно-два слова), то его часто разме- щают на средней строке. Экологические печатные этикетки можно изготовить с учетом возможных занесений дополнительных сведений от руки, оставляя пустые места. 20 км NNO г. Воронежа кордон Веневитиново В. Иванов 15 VII 004 А 30 км В г. Ельца ур. Морозова гора Петров 10 V 997 Б лесополоса на листьях березы на колосьях пшеницы восковая спелость В остепненн. скл., опушка смеш. леса, на Artemisia absinthium д из Palomena prasina сбор 13 VII, выход лич. 14 VII окукл. 15 VU, имаго 21 VH 997 Ж светоловушка на клевере сбор 21-23 час. Eurygaster integriceps Put. я* Sidorov det., 2004 Е 3 Рис. 201. Примеры географических, экологических и определительной этикеток, подкалываемых под насекомых в коллекции. Обозначения см. в тексте.
Глава 6. Этикетирование коллекционного материала Ф 269 Нередко географические и экологические этикетки пишут на английском языке. Определительные этикетки пишутся для каждого экземпляра или каждой се- рии на основании результатов определения материала, как квалифицированным систематиком, так и подготовленным по данной группе специалистом по сельско- хозяйственной или лесной энтомологии, защите растений и т.д. На определительной этикетке должны быть указаны: 1) научное (видовое и родовое) латинское название таксона; 2) фамилия автора вида (полностью или в общепринятом сокращении); 3) пол данной особи; 4) фамилия лица, опреде- лившего экземпляр, в латинской транскрипции; 5) год, когда было произведено определение. Пример определительной этикетки приведен на рис. 201, 3, где два первых слова — родовое и видовое название таксона, «Put.» — сокращенная фамилия автора вида (Puton), «<$» — самец, «Sidorov det., 2004» означает «опре- делил Сидоров в 2004 году» («det.» — сокращенное написание латинского слова «determinavit» — «определил»). Этими данными устанавливается принадлежность каждого определенного экземпляра (или серии экземпляров) к тому или иному таксону; кроме того, они позволяют в любое время легко оценить надежность данного определения в свете тех достижений в изучении группы, которые произошли с момента определения. Нередко по той или иной причине определить экземпляр др вида сразу не удается. В таких случаях на этикетке пишется только родовое название и слово «species» (сокращенно — «sp.») — «вид», например: «Trigonotylus sp., Ivanov det., 2010». В случае ошибочного определения старая этикетка, тем не менее, не снимается с булавки, а новая определительная этикетка подкалывается снизу. Определительные этикетки для экземпляров, смонтированных на энтомологи- ческих булавках, пишутся тушью (хуже — гелевой ручкой) или распечатываются на принтере, если необходимо, оставляют место для вписания видового названия, а также года определения. Их размеры такие же, как у географических и экологиче- ских этикеток. Этикетки с определением для заспиртованного материала пишутся карандашом на белой бумаге или не смываемой спиртом, тушью на кальке; они вкладываются в пробирки или приклеиваются снаружи на банку или пузырек, в котором хранятся насекомые одного и того же вида. 6.2. Накалывание этикеток Накалывание этикеток на энтомологические булавки производится в следу- ющем порядке: первой под насекомое подкалывается географическая этикетка, следующей — экологическая, последней — определительная. Между экземпляром и верхней этикеткой оставляют примерно Х1Ъ~14 длины булавки. Между самими этикетками следует оставлять хотя бы маленький промежуток для, того, чтобы
270 В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Рис. 202. Деревянный брусок в виде лесенки для накалывания на энтомологические бу- можно было прочесть текст нижних этикеток, не раздвигая их каждый раз (от этого этикетки начинают вращаться на булавке, а перекалы- вать их в другое место крайне не- желательно). Коллекция приобретает строгий и опрятный вид, если все этикетки находятся на одном уровне. Для лавки этикеток и наклеенных на картонные пластинки насекомых (по Голубу и др., 1980). этого можно воспользоваться про- стым приспособлением, которое представляет собой деревянный или пенопластовый брусок в виде лесен- ки (рис. 202). С его помощью можно накалывать, как насекомых (или картонные площадки с насекомыми), так и этикетки. Высота верхней лесенки примерно равна длине булавки. В каждой ступеньке просверлен тонким сверлом (или вы- жжен гвоздем, проткнут шилом, спицей) канал. Глубина канала верхней ступень- ки, предназначенной для накалывания насекомых, равна 2/3-3/4 длины булавки, остальных ступенек — меньше. Проколов насекомое, вставляют булавку в самый глубокий канал и опускают ее вниз до упора. Насекомое при этом окажется точно на границе верхней трети-четверти булавки. Таким же способом подкалывают на булавку этикетки, пользуясь при накалывании каждой следующей этикетки все более низкой ступенькой. Неудобством применения описанного ступенчатого бруса является невоз- можность накалывания сразу нескольких этикеток. Кроме того, некоторое время тратится на попадание в единственное отверстие. Описанное ниже устройство лишено этих недостатков. Оно состоит (рис. 203, A-В) из подошвы (7), двух деревянных дощечек (2 и 3) со ступенчатым краем, двух деревянных брусков (4 и 5), многогранника (6) со ступенчатой верхней поверхно- стью, прямоугольного куска металлической сетки (7) (ступенчато изогнутого) и гвоздей (3). Подошва (7) представляет собой прямоугольную пластинку из жести размером 210 х 80 мм. Дощечки (2 и 3) имеют длину 210 мм, толщину 10 мм, их форма и размеры (вид сбоку) показаны на рис. 203, В. Брусок (4) имеет размер 60 х Ю х Ю мм, а брусок (5) — 60 х 28 х Ю мм. Дощечки (2 и 3) прикрепляются к брускам (4 и 5) при помощи гвоздей (3), после чего полученная конструкция кре- пится к подошве, как показано на рис. 203, Я, Б. Далее во внутреннее пространство конструкции следует поместить брусок из пенопласта размером 190 х 60 х 28 мм и ступенчато вырезать его верхнюю часть так, чтобы на виде сбоку все его грани совпадали с гранями ступенек дощечек (2 и 3). Полученную таким образом «ле- сенку» необходимо накрыть сеткой (7), размеры и форма изгибов которой должны совпадать с профилем ступенек «лесенки». Края сетки (7) крепятся при помощи гвоздей (8) с верхними краями дощечек (2 и 3) и брусков (4 и 5) (см. рис. 203, Б).
Глава 6. Этикетирование коллекционного материала Ф 271 Рис. 203. Устройство для накалывания этикеток на энтомологические булавки (по: Цурикову, 2006в). Обозначения см. в тексте.
272 В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Описанная конструкция позволяет регулировать высоту наколки этикеток на энтомологические булавки. Для этого необходимо положить на соответствующие ступеньки устройства накалываемые этикетки (географические, экологические и др.). Их надо прокалывать булавками, погружая последние до упора в подо- шву (7). При использовании этого приспособления можно не заботиться о точно- сти установки этикетки, так как острие булавки, даже в случае попадания в центр проволоки из которой изготовлена сетка, неизбежно соскальзывает и огибает ее, что в конечном итоге приводит к успешному накалыванию этикетки. Этикетки прокалывают либо посередине, либо ближе к ее заднему краю (во втором случае — в целях экономии места, главным образом, когда насекомые смонтированы на картонных площадках). Этикетки располагают обычно длинной стороной вдоль тела насекомого — так они меньше выступают за контуры тела насекомого; при этом текст должен читаться с левого бока насекомого (хотя не- которые энтомологи делают наоборот). Под экземплярами чешуекрылых и других насекомых с расправленными крыльями этикетки принято располагать перпенди- кулярно к продольной оси их тела.
Глава 7. ИЗГОТОВЛЕНИЕ ПРЕПАРАТОВ 7.1. Оборудование для изготовления препаратов Определение многих насекомых часто оказывается возможным только на основе изучения микроскопических (иногда — макроскопических) препаратов. Препарат может быть приготовлен из любой части тела насекомого (и других чле- нистоногих) или из особи целиком (тотальный препарат). Чаще всего пользуются препаратами гениталий, усиков, ротового аппарата, крыльев. Тотальные препараты приготавливаются из мелких организмов, имеющих нежные покровы. Для приготовления микропрепаратов с целью изучения морфологических структур и определения насекомых требуется набор несложных инструментов, изображенных на рис. 204. Часть из этих инструментов может быть изготовлена своими руками. Ниже приводим описание оригинальной несложной самодельной конструкции микроножниц (рис. 205, Я, Б), удобных при препарировании насекомых. Они со- стоят из двух деталей (7 и 2) с режущими краями, пружины (3), изготовленной из Рис. 204. Инструменты для препаровки гениталий насекомых (из «Определителя насекомых европейской части СССР», т. 5, ч. 1, 1969). А — ножницы Веккера; Б — препаровальная игла; В — «солонка»; Г — деревянная подставка для опоры при отрезании конца брюшка; Д — способ разламывания лезвия безопасной бритвы; Е — осколок бритвы, укрепленный на деревянной ручке. Обо- значения см. в тексте.
274 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Рис 205. Самодельные микроножницы (ориг.). Обозначения см. в тексте. тонкой стальной проволоки и пластиковой заклепки (4). Детали (7 и 2) изготавли- ваются из безопасной бритвы с двойным лезвием, для чего следует извлечь лезвие и сделать разрез по линиям, отмеченным пунктиром на рис. 205, В. Далее две полученные таким образом детали (7 и 2) необходимо сложить и скрепить при помощи заклепки (4). Для этого заклепку (4) нужно вставить в от- верстия деталей (7 и 2), помеченных крестиками на рис. 205, В и прижечь горячим паяльником или утюгом с обратной от шляпки стороны. Затем изогнутые концы пружины (3) следует вставить в отверстие деталей (7 и 2), как показано на рис. 205, А. Описанная конструкция предназначена для отрезания частей тела насекомых с целью изготовления препаратов. Для этого необходимо большим и указательным пальцами правой руки сжимать основные части деталей (7 и 2), что приводит к схождению их вершин с острыми внутренними краями, при помощи которых можно легко отрезать необходимую часть тела насекомого. Благодаря упругости пружины (3), автоматически раздвигающей режущие края микроножниц, исполь- зование данной конструкции значительно ускоряет работы по препарированию насекомых. Препараты в зависимости от свойств среды, в которую они заключаются, бывают постоянные и временные. Все среды, которые обычно применяют для из- готовления препаратов, делятся на две группы: 1) среды, не растворимые в воде, но растворяющиеся в органических растворителях и 2) среды, растворимые в воде, или просто вода. Постоянными могут считаться лишь препараты в средах первой группы. Прочие препараты являются временными и требуют перемонтировки через более или менее длительный промежуток времени. 7.2. Постоянные препараты Самый распространенный способ приготовления постоянных препаратов — за- ключение объекта (отдельной части тела или целиком особи) в канадский бальзам.
Глава 7. Изготовление препаратов Ф 275 Наиболее обычная техника приготовления препаратов по этому способу состоит в следующем. Если покровы препарируемых насекомых темные (у свежих или высушенных насекомых) или если нужно очистить хитиновые части тела насекомых от мышц, жирового тела и внутренних органов, то для просветления их предварительно об- рабатывают щелочью (КОН). Если позволяет время, и покровы не слишком тем- ные, то объекты можно выдерживать на толстом препаровальном стекле с лункой (закрытом сверху стеклянной пластинкой) или в коротких стеклянных пробирках (длиной 1 см и диаметром 0,5-1,0 см) в 5-10% растворе КОН в течение 12-24 часов при 20 °C. Для некоторого ускорения процесса раствор КОН можно подо- греть на водяной бане, в термостате (при 40 °C) или под электрической лампой накаливания. Для значительного ускорения процесса просветления препараты недолго ки- пятят в 5-10% растворе щелочи с последующей промывкой. Варить препарат в щелочи надо очень осторожно и обычно не более 1-2 минут. Часто достаточно просто довести щелочь до кипения, а затем перенести препарат в воду (тонкие покровы очень быстро развариваются в щелочи, и препарат может быть непо- правимо испорчен). Кипятить препарат можно в пробирке, а лучше — в фарфоровом тигельке, по- стоянно встряхивая его, иначе щелочь может с силой выплеснуться из тигелька, а тем более из пробирки. Для обесцвечивания темного хитина используют также жавелеву воду (водный раствор гипохлорита калия КСЮ и хлорида калия КС1). Затем наступает этап обезвоживания объекта. Перед заключением в канадский бальзам объект должен был полностью обезвожен, что достигается проведением его через спирты возрастающей крепости, вплоть до абсолютного (100%). В боль- шинстве случаев вполне удовлетворяет перенос из 70-80% спирта, в котором хранились объекты, сразу в 96% или даже в 100% спирт. Абсолютный спирт приготавливается добавлением к 96% спирту добела про- каленного медного купороса. Хранится абсолютный спирт в банке с притертой пробкой. При интенсивном посинении купорос заменяют свежепрокаленным. Если объекты хранились в консервирующей жидкости, то их перекладывают на часовое стекло, откуда выбирают пинцетом наиболее пригодных для препа- рирования (покровы не сморщены, усики, ноги и крылья хорошо расправлены). Насекомых сразу же можно препарировать — отделять необходимые для изучения детали строения. Обезвоживание мелких объектов (трипсы, мелкие перепончато- крылые и др.) можно проводить прямо на предметном стекле, на которое пипет- кой помещают каплю абсолютного спирта и переносят в нее объект, пользуясь пипеткой, иглой, кисточкой или пинцетом. По мере подсыхания капли необходимо 2-3 раза добавлять спирт, отсасывая его при необходимости кусочком фильтро- вальной бумаги. Крупные объекты обезвоживают и просветляют или в тигле, или на предметном стекле с углублением (лункой), или в пробирке. Часовые стекла для этой цели обычно не подходят, потому что абсолютный спирт в них широко
276 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых растекается. Очень удобны медицинские стекла для определения группы крови с несколькими углублениями. Время, необходимое для обезвоживания, зависит от величины объекта, плотности его покровов и других факторов и устанавливается опытным путем. После обезвоживания объект просветляют. Для этого его обычно помещают в гвоздичное масло. Оно может быть заменено очищенным кедровым маслом, эвгенолом, ксилолом, по Эйхлеру — метилбензоатом и бензилбензоатом. После просветления бензилбензоатом его каплю необходимо тщательно оттянуть филь- тровальной бумагой, так как бензилбензоат очень плохо высыхает. Одновременно с просветлением можно и препарировать объекты — отчленять мелкие части тела. При этом вследствие высокой вязкости среды препарирование облегчается, по сравнению со спиртом, а вероятность потери мелких частей тела уменьшается. После просветления и препарирования с помощью фильтровальной бумаги удаляют избыток масла и ненужные части тела насекомого, объект ориентируют, как необходимо для изучения, а затем рядом с ним на предметное стекло наносят каплю канадского бальзама, разведенного в химически чистом ксилоле. Для этого лучше всего пользоваться стеклянной палочкой, которой обводят по стеклу во- круг объекта каплю бальзама. Затем проверяют правильность ориентации объекта в капле бальзама и накладывают на нее чистое сухое покровное стекло. Чтобы избежать образования пузырьков воздуха под покровным стеклом, его ставят наклонно на ребро, подводя к краю капли бальзама до соприкосновения с нею, а затем постепенно опускают противоположный край стекла, держа его тонким пинцетом. Надавливать на покровное стекло для удаления пузырьков воздуха не рекомендуется. Изменить немного положение, в котором лежит объект, можно путем легкого сдвига покровного стекла. При заключении препарата в бальзам нужно следить за тем, чтобы капля была не слишком велика. В противном случае бальзам может выйти за края покровного стекла и даже увлечь за собой объект. В то же время, капля не должна быть слишком мала, так как в этой массе под по- кровным стеклом останется свободное пространство, которое придется заполнять, помещая маленькие капли бальзама около края стекла. Чтобы толстые объекты не сплющивались и не ломались, под покровное стекло подкладывают мелкие куски этого стекла или стеклянные капилляры; при этом следует учитывать, что при высыхании толстый слой бальзама сильно уменьшается. Препараты в канадском бальзаме должны подсыхать несколько дней, прежде чем их можно будет рассматривать под микроскопом, не боясь запачкать объектив. Подсушка препаратов ускоряется в термостате при 30-50 °C. Иногда вместо канадского бальзама пользуются искусственной смолой цедак- сом, который, однако, медленнее сохнет. Иногда тонкие и прозрачные покровы или отдельные хитиновые части тела требуют окраски для того, чтобы лучше рассмотреть особенности скульптуры по- кровов и деталей строения. Окрашивание производят после вываривания в 10-20% растворе КОН и очень тщательной промывки. В качестве красителя обычно ис-
Глава 7. Изготовление препаратов Ф 277 Рис. 206. Оформление предметного стекла с препаратом насекомого (или не- сколькими препаратами; буквами обозначены места расположения препаратов) (по Фурсову, 2003). пользуют кислый или основной фуксин. Тонкие структуры можно рассматривать и изучать без окрашивания под микроскопом с фазово-контрастным устройством. Сразу после приготовления препарата по обеим сторонам от него на пред- метное стекло наклеиваются этикетки (рис. 206). На этикетке с одной стороны препарата указываются место сбора, стация, растение, с которого собрано насе- комое, или хозяин, из которого выведен паразит, при необходимости — характер повреждения растений и другие сведения, фамилия сборщика и дата сбора (или еще дата вылета паразита, номер препарата). На этикетке с другой стороны пре- парата пишут название вида и фамилию определившего вид (или на этой этикетке указывается еще номер препарата). Этикетки приклеиваются клеем БФ-2 или БФ-6 (который со временем не от- стает от стекла) 7.3. Временные препараты 7.3.1. Изготовление временных препаратов Главный недостаток постоянных препаратов состоит в том, что при хранении в спирте и при проведении через спирты теряется естественная окраска объекта, слишком нежные покровы могут сжиматься так, что объект деформируется, а сам процесс приготовления препаратов довольно трудоемкий. Кроме того, оптические свойства бальзама часто не позволяют различить и тщательно изучить тонкие детали строения — скульптуру покровов, волоски и т.д. В последнее время для приготовления препаратов все шире применяются среды, растворимые в воде, так называемые временные препараты. Однако, как показывает собственный опыт авторов, срок годности и хранения таких препаратов, не менее 20-30 лет (мы ведем наблюдение за состоянием «временных препаратов» в течение уже 35 лет, не отмечая какого-либо их ухудшения).
278 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых В практике изготовления препаратов в растворимых в воде средах, наиболь- шее распространение получили гуммиарабиковые жидкости (жидкость Фора и жидкость Берлезе), состав которых представлен в таблице 1. В.Н. Фурсов (2003) приводит состав жидкости Фора с несколько иным соот- ношением компонентов: дистиллированная вода — 100 г, гуммиарабик кристалли- ческий — 60 г, хлоралгидрат — 400 г, глицерин химически чистый — 40 г. Таблица 1 Состав растворимых в воде сред для приготовления препаратов (из: Голуб и др., 1980) Компоненты, единица измерения Среда Жидкость Фора Жидкость Берлезе Гуммиарабик, г 24 30 Хлоралгидрат кристаллический, г 160 200 Глицерин, мл 16 20 Вода дистиллированная, мл 40 50 Для приготовления среды гуммиарабик растворяют в воде в течение 2-3 дней при комнатной температуре или нескольких часов в термостате при 50-60 °C. Затем прибавляют хлоралгидрат и глицерин, и смеси дают отстояться в течение 2-3 суток, лучше в термостате. После этого смесь тщательно фильтруют через стеклянную вату или тонкий слой гигроскопической ваты. Готовый состав хранят в темноте или темной стеклянной посуде с притертой пробкой. В случае необходи- мости среду можно разбавлять дистиллированной водой до нужной концентрации. При приготовлении препаратов в жидкостях Фора и Берлезе объект, хранившийся в спирте, промывают (обычно дистиллированной водой) в течение 2-5 минут в зависимости от объема, помещают в среду на предметное стекло, в которой объект расправляют (или препарируют) в небольшой капле жидкости. Затем добавляют жидкость и накрывают с большой предосторожностью покровным стеклом. Насе- комых некоторых групп перед монтировкой предварительно особым образом обра- батывают (см. ниже). Многих мелких насекомых можно помещать в эти жидкости живыми. Препараты высыхают в термостате при 60 °C в течение суток. Форма и окраска насекомого, если брать недавно зафиксированные экземпляры, сохраняют- ся в таких препаратах лучше, чем в канадском бальзаме. Благодаря более низкому коэффициенту преломления прозрачные и бесцветные части, например крылья, видны яснее. Кутикула сохраняет в этих жидкостях свою гибкость, что облегчает препарирование. Удобны они также и тем, что при необходимости объекты могут быть перемонтированы. Смыть такой препарат можно водой. Постепенно жидкость высыхает. Чтобы избежать быстрого высыхания, надо пользоваться только целыми покровными стеклами, а не осколками. Кроме того, обычно применяют обмазку покровного стекла по краям асфальтовым лаком или замазкой из смеси (7 частей канифоли и 3 части воска), которую при обмазке подогревают. Рекомендуется также обмазывать края покровных стекол лаком
Глава 7. Изготовление препаратов Ф 279 Руйтера, который приготавливают следующим образом: 20% раствор желатина растворяют в насыщенной тимолом воде на водяной бане или в термостате при 37 °C. На каждые 100 мл полученного раствора добавляют 10 мл 5% раствора двухромовокислого калия, и эту смесь хорошо перемешивают. Готовый лак хранят в темноте. Перед употреблением необходимое количество лака разжижают при 37 °C. Окантованные препараты можно сушить на свету при комнатной темпера- туре. Обмазывать края покровного стекла канадским бальзамом нельзя, так как он проникает под покровное стекло и окрашивает препарат. Жидкости Фора и Берлезе затвердевают достаточно хорошо в течение дли- тельного времени (иногда до 2 месяцев). Для достижения более быстрой полной готовности препарата (особенно если срочно требуется перевезти или переслать препараты) в качестве среды используют глицерин-желатин. Его изготовляют, рас- творяя 7 г желатина в 42 мл дистиллированной воды при подогревании в водяной бане в течение 2-3 часов. В раствор при помешивании вливают 50 г очищенного глицерина и для предохранения от плесени добавляют 0,5 г карболовой кислоты. Пропорции в соответствии с потребностями можно сократить. Полученный рас- твор фильтруют в горячем виде через стеклянную вату и охлаждают. Перед при- менением глицерин-желатин расплавляют нагреванием на водяной бане или над спиртовкой. После заключения препарата в среду края покровного стекла очищают от выступившего глицерин-желатина и обмазывают клеем БФ-2, образующим при высыхании плотную пленку. Кроме приведенных выше наиболее обычных сред для приготовления посто- янных и временных препаратов членистоногих применяются различные их моди- фикации, а также особые составы, разработанные специалистами по отдельным группам. Некоторые из этих составов будут указаны ниже. Очень часто используется способ приготовления истинно временных пре- паратов в воде (дистиллированной, кипяченой или водопроводной), глицерине или смеси глицерина и спирта (в соотношении 1:1 или 1:2). Обычно этот способ применяется тогда, когда необходимо срочно изучить и зарисовать в различных положениях хитинизированную часть тела (гениталии, ноги, усики и т.д.), в осо- бенности, если эта часть довольно крупная и имеет сложную структуру, и если исследуемый материал большой. Этот способ требует минимальных затрат време- ни и позволяет проводить повторное изучение объекта в различных положениях. Для приготовления тотальных препаратов мелких форм с нежными покровами и крыльями (тли, кокциды, трипсы, паразитические перепончатокрылые и некоторые другие группы) такой срочный метод не применяется, так как подобным объектам при повторном изучении, как правило, уже не удается придать первоначальную форму. Срочный метод приготовления препаратов состоит в следующем. У сухих или слегка размоченных в воде экземпляров (смачивать экземпляр или часть тела луч- ше всего мягкой колонковой кисточкой) отчленяется с помощью препаровальной
280 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых иглы, энтомологической булавки или специальных приспособлений (см. рис. 204, А) нужная часть тела (например, генитальный сегмент, несколько вершинных сег- ментов брюшка, нога и т.д.). Отломленная часть помещается на предметное стекло или в чашку Петри в каплю воды и выдерживается там некоторое время (от 0,5 до 10-15 минут, иногда и дольше) до размягчения. При необходимости, с помощью двух препаровальных игл или острых энтомологических булавок вычленяется тре- бующаяся для исследования структура (например, эдеагус или лапка). Затем объект помещается в фарфоровый тигель или пробирку с 5-20% раствором едкого кали (КОН) или, что хуже, едкого натра (NaOH). Препарат либо выдерживают в холод- ной щелочи от 15-30 минут до 1-2 суток, либо обрабатывают щелочью в водяной бане, либо кипятят в щелочи на спиртовке от нескольких секунд до нескольких минут, либо только нагревают щелочь до кипения и прекращают обработку. Про- должительность обработки препарата щелочью зависит от ряда обстоятельств — размеров объекта, степени хитинизации структур, температуры щелочи и т.д. и определяется практическим путем. При слишком продолжительной обработке неж- ные части разрушаются и склериты распадаются из-за разрывов мембраны; такой препарат непригоден для исследования. При недостаточной обработке сохраняются мягкие ткани, которые мешают исследованию; в таком случае обработку можно повторить. Если темные, сильно склеротизованные и пигментированные объекты плохо обесцвечиваются в щелочи, то их иногда полезно обрабатывать перекисью водорода (Н2О2). После обработки щелочью в ней же, если надо, проводят даль- нейшее расчленение объекта. Затем объект переносится в воду. Препарирование на этом заканчивается. Изучение и зарисовку объекта производят в воде, глицерине или в смеси глицерина со спиртом. Перед помещением в эту среду препарат надо тщательно отмыть от щелочи в воде. Если объект крупный, то воду следует сме- нить 1-2 раза или даже прокипятить 0,5-2 минуты в воде. Рассматривание и зарисовка объектов в капле воды или других жидкостях проводятся или на простом предметном стекле, или на стекле с лункой, или в спе- циальной стеклянной «солонке». Часто бывает трудно удержать объект во время зарисовки в нужном положении. Для этого в каплю можно погрузить несколько волокон ваты и положить на них препарат. Пользуются также специальной вязкой мастикой (ее можно заменить техническим вазелином или солидолом), маленький кусочек которой помещают на стекло, затем капают на него воду или глицерин, после чего погружают туда препарат и прикрепляют его с большой осторожностью одной стороной к мастике. Следует помнить при этом, что если препарат пере- пачкается о мастику, он может оказаться непригодным для изучения и зарисовки. Для переворачивания и расправления препарата в воде или глицерине пользуются заточенными препаровальными иглами, острыми энтомологическими булавками или минуциями, воткнутыми в спичку. Помимо метода изучения постоянных и временных препаратов на предметных стекле и в солонке, рекомендуем пользоваться самодельным простым устройством, оригинальная конструкция которого описана и изображена ниже (рис. 207, Л, Б).
Глава 7. Изготовление препаратов Ф 281 Рис. 207. Устройство для исследования препаратов (ориг.). Обозначения см. в тексте. Устройство состоит из прямоугольного кусочка стекла (7) размером 75 х 25 х 2 мм, прямоугольной рамки (2), изготовленной из пористой резины и восьми Г-образно изогнутых булавок (3). Для изготовления рамки (2) необходимо взять пластинку из пористой резины размером 50 х 25 х 5 мм и сделать внутри нее прямоугольное отверстие размером 35 х 10 мм. Далее необходимо полученную рамку (2) приклеить к стеклу (7), как показано на рис. 207, А. Затем следует взять восемь энтомологических булавок, согнуть их посередине под прямым углом, после чего отрезать при помощи кусачек 3/4 длины той части булавки, на которой имеется головка. Полученными таким образом булавками (3) следует проткнуть длинные сторону рамки (2) параллельно плоскости стекла (7) на высоте 2,5 мм от последней, как показано на рис. 207, В. Описанное устройство предназначено для исследования препаратов частей тела насекомых и действует следующим образом. К острым концам булавок нуж- но прикрепить по небольшой капле солидола, использующегося в микротехнике, после чего внутреннее пространство рамки (2) следует заполнить глицерином. К каплям солидола следует прикрепить исследуемые объекты. Затем устройство нужно установить на предметный столик микроскопа, после чего можно иссле- довать препараты в проходящем свете. При этом, поворачивая булавки (3) мож- но проводить изучение препаратов, рассматривая их под разным углом зрения (рис. 207, Г).
282 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых 7.3.2. Хранение временных микропрепаратов Приготовленные и изученные временные препараты хранят по-разному. Очень часто их помещают в каплю вареного сахара на картонном прямоугольнике, ко- торый подкалывают под насекомое. Вместо сахара можно использовать обойный клей или специальный энтомологический клей (растворенный в грушевой эс- сенции целлулоид). Для повторного изучения сахар растворяют каплей воды, а энтомологический клей — грушевой эссенцией или ацетоном. Широко распространено хранение препаратов в маленьких пробирочках (диаметром 4-6 мм и длиной 10-12 мм) или в пластиковых трубочках, изготов- ленных в виде отрезков медицинских систем для переливания крови (рис. 208). Микропрепараты хранятся в глицерине или смеси V3 глицерина, V3 спирта (96%) и V воды. Жидкость в пробирки наливается с помощью пипетки и доливается по Рис. 208. Последовательные этапы из- готовления препаратов в отрезках по- лиэтиленовой трубочки (по: Andersson, 1972; Нарчук , 1975). мере высыхания. Стеклянные пробирочки затыкаются пробочками, вырезанными из корковой пробки или куска мягкого пенопласта. Отрезки виниловой трубочки затыкаются с обеих сторон комочками ваты. Пробирки с микропрепаратами подкалываются под соответствующий экземпляр насекомого на одну с ним бу- лавку, либо, чаще, ставятся на отдельной булавке рядом с экземпляром и снабжа- ются номером, соответствующим номеру экземпляра насекомого. Номер экземпля- ру насекомого присваивается только в связи с изготовлением микропрепарата его деталей строения, в дополнение к гео- графической этикетке, и ни в коем случае не заменяет ее. Иногда микропрепараты хранят отдельно в особых ящиках под номерами, соответствующими, номерам экземпляров. В пробирочках можно хранить не только микропрепараты частей тела насе- комых, но и целиком мелких насекомых или даже всех насекомых одной пробы, например, паразитических перепончато- крылых (см. выше). Г. Андерссон (Andersson, 1972) и Э.П. Нарчук (1975) рекомендуют удоб- ный и простой способ хранения препара-
Глава 7. Изготовление препаратов Ф 283 тов гениталий мелких насекомых в небольших отрезках полиэтиленовой трубки, заполненных глицерином и запаянных с обоих концов (рис. 208). В качестве тру- бочки можно использовать синтетические «соломинки» для коктейлей. Наружный диаметр этих трубочек около 3 мм, а внутренний — около 2. Лучше использовать неокрашенные или слабоокрашенные трубочки. Трубочка заполняется глицерином с помощью пипетки и нарезается ножни- цами на отрезки длиною около 15 мм. Затем один конец ее нагревается на огне спиртовки и плотно сжимается холодным пинцетом. Препарат помещается внутрь и таким же образом запаивается другой конец трубки. Герметически закрытый контейнер подкалывается под насекомое. Если нужно посмотреть препарат, за- паянный конец легко отрезается ножницами. В ходе работы, когда необходимость смотреть и сравнивать препараты возника- ет часто, можно в течение довольно длительного времени хранить его в трубочке, запаянной только с одной стороны и подколотой на булавку. Вследствие того, что диаметр трубочки небольшой, глицерин не выливается. Дихлорэтан, часто использующийся для уничтожения вредителей в коллекции и хорошо растворяющий многие синтетические вещества, воздействия на такие трубочки в течение длительного времени не оказывал. 7.4. Особенности приготовления препаратов различных насекомых и клещей 7.4.1. Клещи, тли, листоблошки Для этих, а также других членистоногих с мягкими покровами широко применя- ется способ изготовления тотальных препаратов в канадском бальзаме (см. выше). В последнее время все шире используются в качестве монтирующей жидкости гуммиарабиковые смеси (жидкости Фора и Берлезе). Кроме гуммиарабиковых смесей в качестве монтирующей жидкости для тлей и других подобных насекомых можно использовать глицерин-желатин. 7.4.2. Цикадовые, клопы Для изготовления препаратов гениталий самцов, реже — самок, как правило, применяют метод вываривания в 5-20% растворе КОН (или NaOH) или выдержи- вания в щелочи при комнатной температуре от 15-30 минут до суток (методика приготовления временных препаратов). Техника препарирования заключается в следующем. У сухих или лучше раз- моченных в воде экземпляров отчленяется генитальный сегмент (у клопов-щит- ников, краевиков и ряда других полужесткокрылых генитальный сегмент можно выдавить, воткнув иголку снизу или сбоку близ вершины брюшка). Отломленная часть помещается в каплю воды и выдерживается там несколько минут, чтобы
284 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых хорошо размягчилась, а затем обрабатывается щелочью. После этого с помощью двух препаровальных игл (а у мелких объектов — энтомологических булавок) под бинокуляром генитальный сегмент очищается от остатков других сегментов, разрывается, и вычленяются парамеры и пенис. Необходимо учитывать при этом, что после обработки щелочью парамеры часто изменяют свою форму (обычно более или менее раздуваются при перенесении их из щелочи в воду). Поэтому мы рекомендуем их изучать и зарисовывать, не обрабатывая щелочью. При некотором навыке парамеры можно отчленить от размоченного в воде генитального сегмента, не повредив последний. В ряде случаев можно извлечь пенис из генитального сег- мента (не разрывая последний) через отверстие на его переднем крае с помощью энтомологической булавки, конец которой можно крючковидно изогнуть. При этом генитальный сегмент придерживают другой булавкой, воткнув ее в основание сегмента. Препарирование ведется под бинокуляром. Довольно часто для тщательного изучения эдеагуса клопов и цикадовых тре- буется раздуть его мембранозные участки, которые при этом приобретают пузы- ревидную или мешковидную форму. В таком случае отчлененный и размоченный генитальный сегмент следует поместить в слабый раствор щелочи (концентрация не более чем 10%, часто 1-5% и ниже) и нагревать щелочь до кипения, но не кипятить или кипятить всего несколько секунд. После этого генитальный сегмент надо перенести в воду (лучше дистиллированную или кипяченую, но можно и водопроводную) и в ней энтомологическими булавками вначале отделить пара- меры, а затем извлечь пенис. Если эдеагус сразу не раздулся, его следует пере- нести в другую каплю воды и выждать несколько минут. Если и это не поможет, то можно попытаться развернута эдеагус с помощью энтомологических булавок. При этом действовать надо крайне осторожно и не очень острыми булавками, чтобы не проткнуть случайно мембрану (проколотый эдеагус уже не раздуется). Если эдеагус по-прежнему не раздувается, то его следует опять подержать в ще- лочи — холодной или горячей, после чего вновь перенести в воду. Необходимо отметить, что раздуть эдеагус удается далеко не всегда. Поэтому проводить эту операцию рекомендуется в том случае, если имеется серия экземпляров. Хранят препараты в капле насыщенного раствора сахара или другим описан- ным выше способом. В последние годы стал использоваться метод приготовления препаратов эде- агусов (фаллусов) клопов путем надувания их воздухом под давлением, разрабо- танный, в применении к клопам, Д.А. Гапоном (Gapon, 2000). Подготовительным этапом этой работы является отделение гениталий самца обычным способом (Кержнер, Ячевский, 1964; см. выше). Вычлененный эдеагус помещается в 10% раствор КОН примерно на 1 минуту, а затем — в дистиллиро- ванную воду на то же самое время. Предварительно конец стеклянной микропиллярной трубочки (такие трубочки используются в нейрофизиологических исследованиях) после разогрева над пламе- нем спиртовки вытягивается до диаметра, соответствующего диаметру базального
Глава 7. Изготовление препаратов Ф 285 отверстия эдеагуса. Затем конец трубочки вводится в отверстие эдеагуса, а другой конец трубочки надевается на иглу инсулинового шприца. Если диаметры трубоч- ки и иглы не совпадают, то конец трубочки расплавляется над пламенем спиртовки и доводится до нужного диаметра. С помощью шприца в фаллус нагнетается вода и выталкивается в везику (дистальную часть мембранозного вершинного отдела эдеагуса). В течение этой процедуры эдеагус удерживается на микропиллярной трубочке пальцами или пинцетом. Когда эдеагус будет раздут, вода оттягивается из него с помощью шприца и микропиллярной трубочки. Обычно везика после этого не втягивается назад. За- тем эдеагус приклеивается к трубочке для того, чтобы предотвратить попадание воздуха между ним и трубочкой. С помощью мощного водного микрокомпрессора, велосипедного насоса или большого медицинского шприца (можно использовать ветеринарный шприц) в микрокапиллярную трубочку под постоянным давлением нагнетается воздух. Везика становится раздутой. В этом состоянии она высу- шивается над пламенем спиртовки или обычным феном. При этом наполнение везики воздухом должно контролироваться. Затем фаллус отделяется от трубочки лезвием бритвы или пинцетом или же вершина трубочки отламывается. В заклю- чение фаллус приклеивается на картонную площадку, которая подкалывается под соответствующий экземпляр насекомого. Препараты, изготовленные описанным выше методом, позволяют детально из- учать раздутые эдеагусы с различных сторон и сравнивать их структуры у близких видов. 7.4.3. Бахромчатокрылые, или трипсы Для хранения и определения видового состава трипсов изготовляются посто- янные препараты, которые заливают канадским бальзамом. Если же в хранении препарата нет необходимости, можно использовать глицерин со спиртом (1 часть глицерина, 2 — спирта и 3 — воды). Если трипсы очень крупны, под края по- кровного стекла рекомендуется подкладывать обломки другого покровного стекла, чтобы избежать деформации насекомого. До приготовления препаратов трипсов следует хранить в 94-96% спирте. Как при сборе трипсов, так и при приготовле- нии препаратов применяется мягкая кисточка, смоченная спиртом или ксилолом. Темноокрашенные виды перед изготовлением препарата надо тщательно просвет- лять в гвоздичном или кедровом масле. Крылья, усики и ноги трипса до заливки в бальзаме следует отвести в стороны минуцией, насаженной на деревянную ручку так, чтобы они не закрывались телом трипса; при этом нужно не поломать щетинок. 7.4.4. Жуки Для изучения гениталий жуков обычно применяется методика приготовления временных препаратов.
286 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Сухие экземпляры перед препаровкой размачивают либо во влажной камере в течение 1-2 суток, либо в холодной или теплой воде в течение 0,5-1,5 часа (в за- висимости от размера жука и степени твердости его покровов). О.Л. Крыжанов- ским и В.М. Емецем (1972) предложен более быстрый (несколько секунд) метод размочки: сухие жуки помещаются в тигелек с небольшим количеством воды, и на огне спиртовки вода доводится до момента кипения (но не кипятится). У размоченных экземпляров извлекаются гениталии. При этом часто рекомен- дуют отделять целиком последние брюшные сегменты, а затем извлекать эдеагус. Однако этот метод имеет тот недостаток, что повреждаются, теряются или стано- вятся негодными предпоследний и последний стерниты брюшка, хетотаксия (во- лоски на покровах) и микроскульптура которых важны для определения. Lindroth С.Н. (1969) рекомендует отодвигать надкрылья, делать разрез сверху между вто- рым и третьим сегментами от вершины брюшка и извлекать эдеагус через этот разрез. К видам со сросшимися надкрыльями этот метод неприменим. Предложен еще один, более простой и удобный, метод вычленения гениталий (Freude et al., 1965; Крыжановский, Емец, 1972). Препаровка ведется под биноку- ляром или препаровальной лупой (рис. 209). При помощи острого обломка лезвия безопасной бритвы или лучше плоской иглы для взятия проб крови, которую с од- ной стороны целесообразно заточить, расширяется клоакальное отверстие. Такого расширения достаточно, например, для извлечения гениталий у пластинчатоусых, у жуков-карапузиков. У жужелиц делается разрез дальше вбок, на правую сторону, на глубину 2-3 последних сегментов брюшка (при этом необходимо соблюдать Рис. 209. Препарирование гениталий жуков (по Крыжановскому, Емецу, 1972). А — плоская игла для взятия крови; Б — подрезание тергитов брюшка у жужелицы; В — схема расположения гениталий у жужелиц и их извлечение; Г — схема извле- чения гениталий у жуков-карапузиков; Д — гениталии жужелицы после извлечения; Е — смонтированные на картонном треугольнике гениталии. Обозначения см. в тексте.
Глава 7. Изготовление препаратов Ф 287 осторожность, чтобы не повредить эдеагус). У крупных жуков целесообразно также перерезать сухие ткани (мышцы и др.) сверху и снизу от эдеагуса. Через разрез пинцетом с острыми кончиками, препаровальной иглой или просто толстой энтомологической булавкой (конец последней желательно крючкообразно изо- гнуть) извлекается половая сумка, внутри которой находится пенис с парамерами. После извлечения тем или иным способом эдеагус обрабатывается 5—10*- z щелочью (КОН или NaOH), холодной (в течение в среднем 12 часов) или кипя- щей (несколько секунд), а затем очищается от лигаментов и мускулатуры. Затем эдеагус следует промыть в воде. На этом обычно препаровка заканчивается. После изучения препарат приклеивается раствором сахара на картонном прямоугольничке или треугольничке, который подкалывается на ту же самую булавку, что и жук. Иногда для определения вида решающее значение имеют внутренние струк- туры пениса. При этом часто выворачивают внутренний мешок пениса. Эта про- цедура очень трудоемка, в связи с чем рекомендуется (Крыжановский, Емец. 19"2 • изучать гениталии самцов с внутренним мешком пениса во ввернутом (спокойном» состоянии, тем более, что прикрепление его мембран в этом положении более или менее одинаковое у всех самцов, относящихся к одному виду. По методике этих авторов, эдеагус после промывки в воде переносится в абсолютный спирт и через 1-2 минуты — в каплю молочной кислоты. Через различный промежуток времени (1 час, 1 сутки или больше) процесс просветления заканчивается, и ста- новятся видными детали арматуры внутреннего мешка. Авторы приводят также более быстрый метод просветления, заключающийся в следующем. Эдеагус по- мещается в маленькую пробирку с некоторым количеством молочной кислоты и на огне спиртовки подогревается (но не доводится до кипения). Пробирка энергично взбалтывается, и время от времени просветление контролируется по мелким пу- зырькам, которые выделяются из отверстия пениса. Если выделение пузырьков прекращается, производят еще подогрев жидкости в пробирке; если пузырьки выделяются очень бурно, то подогрев прекращают. Процесс просветления ве- дется до тех пор, пока будут просвечивать темные пигментированные структуры внутреннего мешка. Затем эдеагус промывают в спирте и подклеивают к кусочку картона, как обычно. Для детального исследования личинок жуков рекомендуется определенный алгоритм их обработки (Stehr, 1991), который имеет ряд модификаций в зависи- мости от преследуемых целей. В наиболее общем виде рекомендуется такая по- следовательность работы: 1) зарисовать или сфотографировать общий вид личинки в различных про- екциях; 2) отделить голову и абдомен на уровне 4-го или 5-го сегмента брюшка; 3) отделить кишечник для анализа его содержимого; 4) поместить части личинки в 10% растворе КОН на время, зависящее от размера и консистенции объекта; 5) отделить мягкие ткани;
288 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых 6) переместить части личинки в этанол, а затем в уксусную кислоту на не- сколько минут для нейтрализации КОН; 7) переместить части личинки в 80% этанол; 8) изготовить временные или постоянные препараты. В последние десятилетия все более широкое распространение получают ме- тоды изготовления объемных препаратов гениталий самцов жуков (эндофаллуса) путем заполнения их полости с помощью шприца, насоса, компрессора или друго- го аналогичного приспособления глицерин-желатином, зубной пастой, силиконом (Meurgues, Ledoux, 1966; Berlov, 1992; http://www.zin.ru/Animalia/Coleoptera/rus/ endopha2.htm) или воздухом под давлением (Шиленков, 1996), с последующим их высушиванием. Изложенная ниже методика изготовления вывернутых и максимально раздутых эндофаллусов жужелиц методом заполнения их зубной пастой, основана на ма- териалах, представленных О.А. Берловым в публикации (Berlov, 1992) и на сайте http://www.zin.ru/Animalia/Coleoptera/rus/endopha2.htm. Для выполнения работы по раздуванию эндофаллусов требуется следующее оборудование: микроскоп бинокулярный (МБС или другой), медицинский шприц с тонкой иглой (диаметр иглы должен соответствовать диаметру базального отвер- стия пениса, острый кончик иглы должен быть отрезан и притуплен напильником), тюбик с белой зубной пастой, сертиссер (охотничья закрутка для папковых гильз; они продаются в охотничьих магазинах), нитка, тупая энтомологическая булавка, настольная лампа и стаканчик с горячей водой. Для изготовления препаратов используются размоченные в эксикаторе коллек- ционные экземпляры насекомых, свежезаморенные этилацетатом или кипятком жуки. Предварительно заполненный необходимым объемом зубной пасты шприц надевается на иглу. Шприц вставляется в сертиссер, и винт сертиссера подкру- чивается так, чтобы выжать из шприца пузырьки воздуха. Затем размоченный в воде пенис аккуратно насаживается базальным отверстием на иглу (если отверстие отсутствует, то нужно осторожно расковырять базальную капсулу пениса тонкой булавкой) и плотно привязывается к игле смоченной в воде ниткой. Затем надо медленно поворачивать винт сертиссера так, чтобы давлением зубной пасты заставить выворачиваться эндофаллус. Поворачивая винт, следует наблюдать за расправлением стенок эндофаллуса под бинокуляром и довести эндофаллус до стадии максимального раздувания. Затем конструкция «шприц- сертиссер» с вывернутым эндофаллусом подносится к включенной настольной лампе на расстояние 5-10 мм от лампочки, и эндофаллус сушится до полного затвердевания зубной пасты. Во время сушки нужно периодически контролировать степень растяжения стенок эндофаллуса, добавляя мелкими порциями зубную пасту. Делать это надо крайне аккуратно, иначе эндофаллус может лопнуть. Если в эндофаллус попадут пузырьки воздуха (это будет видно под бинокуляром), то нужно снять пенис с иглы и, легко нажимая на эндофаллус пальцами или пинцетом, выжать зубную
Глава 7. Изготовление препаратов Ф 289 пасту, снова надеть пенис на иглу, привязать, и заполнить новой порцией зубной пасты. Если пузырьки воздуха из эндофаллуса не удалить, то при высыхании эндофаллуса в его стенках образуются вмятины, искажающие видоспецифичную форму. Степень высыхания препарата определяется тупой энтомологической бу- лавкой, осторожно нажимая на стенки эндофаллуса. Общее время сушки зависит от размеров вывернутого эндофаллуса и составляет от 10 минут до 4 часов. После высыхания эндофаллуса, он снимается с иглы, приклеивается ба- зальной частью на картонную пластинку, которая подкалывается под соответ- ствующий экземпляр самца. Приклеивать препарат к картонке нужно очень крепко, чтобы он не оторвался (у некоторых крупных жуков эндофаллусы очень большие). Для этой цели можно использовать клей ПВА или маникюрный лак. Препараты эндофаллусов, заполненных зубной пастой, могут храниться очень долго, не теряя формы. Автор рекомендует методику приготовления препаратов эндофаллуса путем его выворачивания и для раздувания у самок совокупитель- ных сумок (bursa copulatrix). Для быстрого приготовления препарата вывернутого эндофаллуса, когда каче- ство и долговечность полученных препаратов не имеет большого значения, О. Бер- лов рекомендует использовать модифицированный метод М. Стурани (М. Sturani, 1967). Для этого метода используется резиновая груша с баллоном-компенсатором от парикмахерского пульверизатора с резиновым шлангом. В конец шланга встав- ляется игла от шприца и к ней ниткой привязывается эдеагус. Под давлением накачиваемого грушей воздуха эндофаллус будет выворачиваться и раздуваться. Вывернутый эндофаллус как можно ближе подносится к разогретой лампе (60-100 Вт) и сушится. Сушка займет 5-30 минут. К сожалению, препараты, изготовленные этим методом, очень хрупкие и постепенно сжимаются. После снятия такого пре- парата с иглы его надо сразу, не кладя на стол, приклеить на картонную пластинку, которая подкалывается под соответствующий экземпляр самца. 7.4.5. Чешуекрылые Для определения видов насекомых этой группы нередко прибегают к изго- товлению как макропрепаратов (для изучения жилкования крыльев, опушения ног), так и микропрепаратов (ротового аппарата и генитального аппарата бабочек, крючков на подошвах брюшных ног и волосков на теле гусениц и т.д.). Ниже описывается техника изготовления макро- и микропрепаратов бабочек и гусениц в основном по А.М. Герасимову (1952) и А.К. Загуляеву (1965). Структуру жилок бабочек лучше рассматривать на нижней поверхности крыла, где они более отчетливы. У крупных бабочек (например, булавоусых чешуекры- лых) для изучения жилок крыло, не отделяя от тела, слегка смачивают с помощью кисточки ксилолом, толуолом, бензолом, бензином или спиртом. У более мелких бабочек удобно рассматривать жилкование крыльев, отделив их от тела и поместив на предметное стекло. Затем на крыло накладывают покровное стеклышко и на-
290 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых носят каплю одной из вышеуказанных жидкостей на предметное стекло; жидкость подтекает под покровное стекло и смачивает крыло. У мелких бабочек для изучения жилкования необходимо с крыла удалить че- шуйки. Для этой цели крыло у корня отсекается или обламывается и укладывается на сухое или слегка увлажненное предметное стекло. Затем чешуйки удаляются сначала с одной стороны, потом с другой тонкой влажной кисточкой из колон- кового (беличьего) волоса. У очень мелких бабочек (например, мелких молей) чешуйки с крыла лучше счищать головкой тонкой энтомологической булавки; при этом чешуйки удаляются небольшими участками. Если для приготовления макропрепарата крыло отламывалось, то после из- учения оно помещается в каплю 70% спирта на предметном стекле и накрывается покровным стеклом, которое плотно, прижимается. В таком виде препараты и хранятся. Изготовление микропрепаратов производится различными способами. Для того чтобы рассмотреть строение ротового аппарата бабочек, гениталий самца и самки, насекомые обрабатываются следующим образом. С помощью тонкой пре- паровальной иглы отделяют голову и все брюшко у его основания и помещают в пробирку, бюксик, маленький стаканчик или фарфоровый тигелек, куда затем наливают 2-3 мл 10% раствора едкой щелочи (КОН или NaOH) и на слабом огне медленно кипятят до полного их просветления. После этого сильно склеротизо- ванный копулятивный аппарат (обычно темно-коричневого цвета) становится ясно заметным сквозь прозрачные стенки брюшка. Голову необходимо варить до тех пор, пока слегка не посветлеют глаза, что происходит обычно через 2-3 минуты после начала обработки, тогда как гениталии приходится кипятить до 10 минут и более. После окончания варки голову или гениталии вынимают препаровальной иглой и промывают в воде не менее двух раз. Рекомендуется также для лучшего удаления щелочи прокипятить их в 2-3 мл воды. После промывки препараты по- мещают на предметное стекло в каплю смеси: 1 часть глицерина и 2 части спирта. Лучше для этой цели использовать предметные стекла с лунками. После того как диффузия жидкости окончится (обычно она длится 1-2 минуты) и препарат будет лежать спокойно, предметное стекло переносят под бинокуляр, где с помощью препаровальных игл расправляют в нужном положении. Голову рекомендуется класть так, чтобы усики были обращены вверх и в стороны, лоб расположен к ис- следователю, губные и челюстные щупики обращены вниз и в стороны, а между ними спускался хоботок; кроме того, голову необходимо ориентировать таким об- разом, чтобы были видны ямки в основании 1-го членика усиков и начало темени. При рассматривании копулятивного аппарата брюшко ориентируют так, чтобы первые его членики были внизу, а хвостовые вместе с гениталиями вверху; кро- ме того, в большинстве случаев брюшко самца поворачивают на бок так, чтобы тергиты (верхние склериты) сегментов брюшка были слева, а стерниты (нижние склериты) справа. Брюшко самки кладут на спину. Для лучшего рассмотрения деталей копулятивного аппарата необходимо вытянуть гениталии из брюшка. Для
Глава 7. Изготовление препаратов Ф 291 этой цели надо одной иглой слегка придерживать брюшко за первый сегмент (от- счет сегментов ведется от основания брюшка!), а другой, зацепив осторожно за склеротизованные структуры, медленно вытянуть гениталии из брюшка. При вы- тягивании гениталий разрыв перепонок, связывающих их с брюшком, нежелателен, так как при этом гениталии всплывают на поверхность, скользят по жидкости; все это затрудняет работу с ними, а их небольшие размеры увеличивают возможность потери при длительном хранении. Для облегчения удержания препарата в заданном положении в каплю жидкости можно погрузить несколько волоконец ваты и положить на них препарат. Удержа- нию головы в нужном положении помогает также вытягивание усиков из капли на стекло. Для сохранения ориентации гениталий можно вытаскивать несколько первых члеников брюшка из капли на стекло. Этот способ удобен и при одновре- менном сравнивании двух-трех препаратов гениталий близких видов, когда все гениталии кладутся рядом и одинаково ориентируются (при этом надо обязательно записать принадлежность гениталий к определенному экземпляру). В гениталиях самца, после того как они будут выдвинуты и положены на бок, необходимо иглой отогнуть лежащий сверху парный створкообразный орган — вальву, а пенис вытянуть так, чтобы можно было свободно рассмотреть его вер- шинную перепончатую часть. После завершения изучения препараты хранятся как временные одним из описанных выше способов. 7.4.6. Перепончатокрылые Препараты деталей строения и тотальные (мелких паразитических перепонча- токрылых) делают как постоянными (в канадском бальзаме), так и временными (в гуммиарабиковых смесях — жидкости Фора или Берлезе). Кроме того, для срочных наблюдений можно изготавливать временные глицериновые препараты. Методики изготовления постоянных и временных препаратов изложены выше. Для изготовления хорошего препарата из высохших мелких экземпляров ре- комендуется (Никольская, Яснош, 1966) поместить объект в ледяную уксусную кислоту (обычно не более чем на 30-60 минут), с проверкой под бинокуляром, до полного просветления и восстановления нормальной формы с последующим заключением в гуммиарабиковую смесь. Объекты, хранившиеся в спирте, перед перенесением в жидкость Фора (или Берлезе) промываются в воде. Мелких па- разитических перепончатокрылых можно заключать в гуммиарабиковую смесь живыми. Рекомендуется (Никольская, Яснош, 1966) живые экземпляры помещать в ксилол на 1 час, а затем в ледяную уксусную кислоту. Для просветления объектов при изготовлении препаратов очень мелких пара- зитических перепончатокрылых (таких, как трихограмма) применяют выварку в молочной кислоте. Более крупных особей для того, чтобы обесцветить хитин и растворить внутренние ткани, вываривают 5-10 минут или вымачивают несколько
292 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых дней в 10% растворе КОН, предварительно отчленив крылья и усики, которые при обработке щелочью изменяют свою форму. После вываривания объект промывают в воде. Обесцвечивающее действие оказывает также перекись водорода Н2О2 при выдерживании в ней в течение 1-3 дней. Затем экземпляры расчленяют так, чтобы удобно было изучать, определять и зарисовывать представителей конкретной груп- пы перепончатокрылых. Для изучения гениталий осторожно отделяют последние сегменты брюшка и вычленяют из них половые органы. Для целей микроскопических исследований и определения видового состава мелких паразитических перепончатокрылых (наездников родов Trichogramma, Aphytis) объекты после предварительной обработки (просветления в пробирке с молочной кислотой в течение 12-24 часов) можно поместить в каплю молочной кислоты, а затем накрыть покровным стеклом. Такие препараты хранятся в чаш- ках Петри и в бытовом холодильнике около трех дней (Фурсов, 2003). При более длительном хранении таких препаратов кислота высыхает, а насекомые полностью обесцвечиваются. Для изучения строения личинок яйцеедов зараженные кладки яиц насекомых фиксируют жидкостью Буэна. При этом для облегчения проникновения фиксатора хорион яиц прокалывают в фиксаторе. Фиксатор Буэна готовится непосредственно перед употреблением из на- сыщенного (1,2%) водного раствора пикриновой кислоты, концентрированного формальдегида (40%) и ледяной уксусной кислоты в соотношении 15:5:1. Время фиксации от одного час до 24 часов (иногда несколько суток) при комнатной тем- пературе. Фиксированный материал хранят в 70% спирте. Личинок яйцеедов рассматривают в жидкости Фора-Берлезе или делают из них окрашенные препараты, используя борный кармин. Личинок паразитов, вынутых из яиц хозяина, можно заключить в глицерин-желатин (Козлов, 2001). 7.4.7. Двукрылые Обычно делаются препараты гениталий самцов, реже — самок. В ряде групп (ктыри, саркофагиды и др.) многие признаки строения гениталий можно рассма- тривать на сухом материале, особенно в тех случаях (у круглошовных двукрылых), когда во время наколки был отогнут или оттянут кончик брюшка. Однако чаще всего для тщательного изучения гениталий приходится готовить препараты. У дву- крылых их обычно делают временными, для рассмотрения в глицерине или воде. Для подготовки объекта к препарированию наколотое насекомое помещают на несколько часов или на всю ночь во влажную камеру, чтобы избежать его поломки во время препарирования. Отделять гениталии наиболее удобно с помощью нож- ниц Веккера (см. рис. 204, А), а у крупных экземпляров — с помощью обычных глазных ножниц. Кроме того, удобно пользоваться осколком безопасной бритвы (не бывшей в употреблении), укрепленным на ручке-спичке или короткой палочке. В качестве опоры удобен торец укрепленной вертикально спички, которую можно
Глава 7. Изготовление препаратов Ф 293 воткнуть в пластинку из пенопласта, корковую пробку или другой подобный ма- териал (см. рис. 204, Г). Отрезать чаще всего приходится около половины длины брюшка или даже больше, чтобы не повредить втянутые внутрь брюшка генита- лии. Препарирование двукрылых средних и мелких размеров лучше производить под бинокуляром при небольшом увеличении. Отрезанный конец брюшка помещают на некоторое время (обычно на ночь) в 5-10% раствор КОН или кипятят в 10-15% растворе щелочи (чаще около 1 ми- нуты, но вообще продолжительность обработки щелочью определяется опытным путем); после этого конец брюшка промывают в холодной или кипящей воде. Если темные, сильно склеротизованные, структуры плохо обесцвечиваются в щелочи, то их иногда обрабатывают перекисью водорода. После обработки щелочью и промывки в воде препарат помещают в каплю глицерина либо в специальную «солонку» (см. рис. 204, В), либо на обычное пред- метное стекло, либо на стекло с лункой, где его и изучают. При этом для его пере- ворачивания и расправления пользуются тонкими препаровальными иглами (на- пример, энтомологическими булавками или минуциями, вставленными в спичку). Препараты двукрылых принято хранить в мелких пробирках или отрезках полиэтиленовой трубочки в глицерине или смеси V3 глицерина, 73 спирта (96%) и V воды (см. выше). Препараты хранятся либо в отдельной коробке, либо под- калываются на булавку под экземпляр; в последнем случае используются только самые мелкие пробирки (длиной не более 12-15 мм). При исследовании гениталий мелких форм (2 мм и менее) или форм, которые обладают относительно плоскими гениталиями (например, галлицы), иногда из- готавливаются и постоянные препараты в канадском бальзаме или в других средах. Постоянные препараты можно делать на обычных предметных стеклах или, что более удобно, на прозрачных пластинках, изготовленных из толстой фотопленки (эмульсионный слой очищается), покрывая их более короткой пластинкой, вы- резанной из покровного стекла. Такие препараты можно накалывать на ту же булавку, на которую наколот соответствующий экземпляр. Для изучения преимагинальных стадий различных семейств двукрылых су- ществует ряд специальных методик фиксации, подготовки, препарирования и хранения препаратов (Пржиборо, 1999). Например, личинок и куколок бабочниц (Psychodidae) фиксируют горячей во- дой (около 80 °C) и хранят в 70% спирте. Их подготовка к определению ведется различным образом, в зависимости от состояния материала. При загрязнении ли- чинок детритом их очищают тонкой кисточкой и промывают в воде. Если щетинки или все тело личинки покрыты известью, то ее помещают на несколько часов в 1% раствор уксусной или соляной кислоты до исчезновения известкового налета. Для темноокрашенных личинок и для куколок дальнейшая обработка такова: 1) особи накалываются сбоку тонкой иглой и помещаются в 5% раствор КОН, в котором они должны находится до исчезновения общей темной окраски (от 2-3 часов до 2-3 суток);
294 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых 2) тщательная промывка в воде (не менее 2-3 смен воды); 3) выдерживание в концентрированной уксусной кислоте (от одного часа до одних суток); 4) промывка в воде; 5) выдерживание в гвоздичном масле (до одних суток). Можно просматривать объект, делать измерения и определять начиная с пун- ктов 4-5, но удобнее сделать постоянные препараты в канадском бальзаме (личин- ки и куколки монтируются дорсальной стороной вверх). Для светлоокрашенных личинок со слабо различимыми тергальными пластин- ками после пункта два обработка иная: 3) окрашивание кислым фуксином (от нескольких минут до одного часа); 4) обезвоживание путем проведения через спирты все большей концентрации (70%-95%-100%); 5) обезвоживание в карбол-ксилоле; 6) изготовление препарата в бальзаме. Экзувии обрабатываются так же, может лишь сокращаться время каждой ста- дии обработки. Подготовка личинок перистоусых комаров (Chaoboridae) к хранению в баль- замном препарате несколько иная: 1) обезвоживание в 95% и 100% спирте (от 10 минут до 3 часов в каждом); 2) выдерживание в гвоздичном масле (несколько минут). Темноокрашенных личинок перед этим можно просветлить в концентрирован- ной уксусной кислоте, а совсем прозрачных — подкрасить основным фуксином или (если не видны детали хетотаксии), выдержать до 10 минут в 10% растворе AgNO3. Для фиксации личинок Culicidae лучше всего использовать 96% спирт, нагре- тый до 50-55 °C, что способствует лучшему сохранению волосков и раскрыванию стигмальной пластинки. Для длительного хранения спирт следует сменить через 30 минут. При массовом определении личинок хирономид из гидробиологических проб часто используют давленые препараты головы, когда голова, помещенная в каплю глицерина ментумом вверх, немного раздавливается покровным стеклом, чтобы обеспечить рассмотрение верхней губы, мандибул, максилл, ментума и гипофа- ринкса. При изготовлении препаратов целых личинок двукрылых следует в первую очередь учитывать правильную ориентацию личинок на стекле. В ряде случаев не- обходимо рассмотрение личинок в различных проекциях. Оно может быть достиг- нуто двумя способами. Во-первых, изготовлением ряда постоянных (в канадском бальзаме) или временных, но долговечных, препаратов (жидкости Фора и Берлезе, глицерин-желатине и др.), в которых насекомые сориентированы брюшной, спин- ной и боковой стороной вверх. Во-вторых, изготовлением истинно временных препаратов (в глицерине, диметилфталате, репудине), в которых личинку можно поворачивать и устанавливать в необходимом положении.
Глава 7. Изготовление препаратов Ф 295 В случае определения личинок некоторых двукрылых, особенно ряда комаров- звонцов (Chironomidae), и других насекомых с использованием кариологического анализа, следует фиксировать их в жидкости Карнуа (смесь 96% этанола и ледяной уксусной кислоты в пропорции 3:1). При этом личинок изъятых из пробы следует сначала промыть в воде и просушить на фильтровальной бумаге до такой стадии обезвоживания, когда живая личинка не оставляет мокрого следа на бумаге. Затем личинки помещаются в свежеприготовленную жидкость Карнуа, которая сменяется 5 раз в течение первого часа хранения, а затем еще 2-3 раза в течение суток. Взрослых насекомых (цикадовых, клопов, сеноедов и др.) помещают в рас- твор Карнуа живыми или сразу же после их замаривания. Хранить материал для кариологического анализа необходимо в холодильнике.
Глава 8. ПОСТАНОВКА, ОФОРМЛЕНИЕ И ХРАНЕНИЕ КОЛЛЕКЦИЙ НАСЕКОМЫХ Оформление энтомологической коллекции зависит от ее назначения и способа хранения материала (в высушенном состоянии, в консервирующей жидкости или в виде микроскопических препаратов). В основу приведенных ниже описаний емкостей (коробок, ящиков, контейнеров) для хранения коллекций насекомых, основных правил и рекомендаций по их оформлению и хранению положены ма- териалы, изложенные в книге Голуба и др. (1980). 8.1. Энтомологические коробки и ящики Смонтированный на энтомологические булавки, материал хранится в специ- альных картонных коробках, деревянных, фанерных или металлических ящиках или же в пластмассовых контейнерах. Стандартные коробки для коллекций насекомых заводского изготовления в настоящее время можно купить только в энтомологических и зоологических интер- нет-магазинах и у частных лиц, привозящих энтомологическое оборудование, как правило, из зарубежных стран. Кроме того, энтомологические коробки и ящики могут быть изготовлены по специальным заказам учреждений на картонажных и мебельных фабриках и других предприятиях. Коробки и ящики можно также сделать собственными силами из имеющихся материалов. Для временного хранения наколотого материала могут подойти различные плотно закрывающиеся коробки, высота которых достаточна для помещения на дно вкладыша из пенопласта и высоты булавок, втыкаемых в этот вкладыш. Для этой цели можно, например, оборудовать достаточно прочную коробку из-под обуви. Весьма практичными оказываются пищевые пластиковые контейнеры, используемые для разогревания пищи в микроволновых печках. Поскольку они закрываются почти герметично, в них можно хранить наколотых насекомых неопределенно долго (разумеется, с применением средств дезинсекции против кожеедов; см. ниже). Очень часто энтомологические ящики и коробки изготавливаются самими энтомологами. Они изготавливаются из древесины (не хвойных пород), фанеры, ДСП, ДВП или картона. В последнее время получают распространение металли- ческие ящики и специальные, предназначенные для хранения насекомых, пласт- массовые контейнеры. И коробки, и ящики, и контейнеры должны обязательно иметь плотно закрывающуюся крышку — картонную, деревянную или со стеклом. Картонные коробки обычно оклеиваются переплетной тканью, коленкором или лидерином. Ящики часто покрываются светлым мебельным лаком.
Глава 8. Постановка, оформление и хранение коллекций насекомых Ф 297 Желательно, чтобы все коробки в данной коллекции имели одинаковые раз- меры. В учреждениях и учебных заведениях, где нет необходимости в создании больших фондовых коллекций и материал относительно небольшой, наиболее удобны имеющиеся в продаже коробки средних размеров — длиной 35 см, шири- ной 25 см и высотой — 6 см (вместе с крышкой). Коробки таких размеров пригод- ны как для научных, так и для демонстрационных коллекций. В продаже бывают коробки и меньших размеров (26 х 18 х 6 см, 18><13хб см и др.); они менее подходящи для постоянных коллекций, но очень удобны для временного хранения в полевых условиях, если материал сразу монтируется на булавки. В учреждениях, обладающих обширными фондовыми коллекциями, обычно используют большие коробки и ящики длиной 42 см, шириной 36-37 см и высотой 7 см. Такие ящики изготовляются по специальным заказам. На дно энтомологических коробок и ящиков укладывается наполнитель — пластины из прессованного торфа или пенопласта, мягкой древесноволокнистой плиты, каучука, плотного поролона и другого подобного материала толщиной 12-22 мм. В энтомологических коробках, поступающих в продажу, обычно уже имеется наполнитель, или вкладыш. Для самодельных коробок и ящиков или заказанных на промышленных предприятиях и в мастерских наполнитель прихо- дится изготавливать отдельно. Материал для наполнителя должен быть довольно мягким, чтобы булавки с насекомыми можно было втыкать и извлекать без особых усилий. При этом булавки должны хорошо удерживаться на своих местах, не рас- качиваться, не вращаться и не выскакивать при несильных встряхиваниях коробки и ее переворачивании вверх дном. Синтетические материалы, использующиеся в качестве наполнителя, не должны обладать даже слабыми окислительными свой- ствами, иначе энтомологические булавки за более или менее длительный проме- жуток времени (а коллекции хранятся десятки и сотни лет!) придут в негодность. Кроме того, материал для наполнителя следует проверять на устойчивость к парам органических растворителей, в первую очередь дихлорэтана, которым обрабаты- вают хранилища для уничтожения вредителей коллекций. Наполнитель сверху покрывается тонкой бумагой: писчей (лучше нелинован- ной), мелованной, миллиметровкой и т.п. Оберточную или другую плотную бумагу использовать для этой цели нельзя, так как она коробится и булавка протыкает ее с трудом. Малопригодна также фильтровальная бумага — ее осыпающиеся волокна будут оседать на покровах насекомых. Имеющиеся в продаже энтомологические коробки оклеены изнутри бумагой, но часто после длительного употребления коробки, а также в демонстрационных целях, бумагу, покрывающую наполнитель, приходится заменять. Для научных коллекций следует использовать светлую бумагу. В демонстрационных коллекциях цвет бумаги может быть различным, так как он имеет существенное значение при экспозиции объектов (подробнее об этом см. ниже).
298 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых 8.2. Изготовление энтомологических коробок и ящиков Почти всегда практичнее пользоваться купленными энтомологическими ко- робками и ящиками или изготовленными по заказам. При отсутствии готовых ко- робок или возможностей покупки их можно сделать самим. Существует довольно большое количество способов изготовления энтомологических коробок, описания которых можно найти в Интернете. Ниже описаны (главным образом, по Павлови- чу, 1947; Козлову, Нинбургу, 1971; Голубу и др., 1980) наиболее простые способы изготовления картонных коробок и деревянных ящиков для коллекций насекомых. Кроме того, приводим описания разработанных С.Н. Цуриковым оригинальных конструкций жестяных коробок, предназначенных для временного и постоянного хранения энтомологического материала, и маленьких коробочек — только для временного хранения. Основное требование, предъявляемое к энтомологическим коробкам и ящи- кам, — герметичность, т.е. они должны плотно закрываться, чтобы внутрь не проникли пыль и вредные насекомые. Энтомологические коробки и ящики, пред- назначенные для научных коллекций, должны быть обязательно открывающимися. Демонстрационные коллекции в ряде случаев ставят в наглухо закрывающихся коробках. Открывающуюся картонную коробку изготавливают следующим образом (рис. 210). Вначале из картона толщиной 2-3 мм вырезают дно по размерам коробки (например, 350 х 250 мм), затем — две полоски. Первая имеет ширину 3 см и дли- ну, равную периметру дна, вторая шире первой на 2-3 см и короче на 101-12 мм (на учетверенную толщину картона). Обе полоски сгибают, и концы их склеивают полоской бумаги. Если полоски вырезаны точно по размеру дна, первая должна свободно надеваться на вторую, образуя стенки коробки. Верхнюю часть широкой коробки оклеивают тонкой фланелью. Рис. 210. Изготовление картонной энтомологической коробки (по Козлову, Нин- бургу, 1971). Л, Б — узкая и широкая полоски картона; В — склеенная нижняя часть коробки; Г — готовая закрытая коробка. Пунктиром обозначены линии сгиба.
Глава 8. Постановка, оформление и хранение коллекций насекомых Ф 299 Дно и стенки коробки склеивают столярным клеем (костным или «момент»), клеем ПВА или другим синтетическим клеем с помощью полосок бумаги. Для большей прочности место соединения дна со стенками можно снаружи аккуратно оклеить полосками плотной материи, коленкора или лидерина. Затем изготовля- ется крышка. Вырезают из стекла или картона кусок того же размера, что и дно коробки, и полоску картона шириной 2-3 см и длиной, равной периметру стекла. Полоску сгибают и оклеивают коленкором. Когда стенка крышки высохнет, к ней приклеивают стекло или картон. Стекло приклеивают клеем ПВА или другим синтетическим клеем. Изнутри стенку и стекло (или картон) склеивают полосками материи или бумаги. Правильно сделанная крышка должна плотно надеваться на нижнюю часть коробки. Если предполагается, что коробка с коллекцией будет укреплена на стене, то к ее дну прикрепляются колечки или ушки, сделанные из проволоки или жести. На дно коробки укладывают наполнитель — ровную пластину (она может быть составлена из кусков) из прессованного торфа, пенопласта, мягкой древесноволок- нистой плиты, поролона, каучука и других подобных материалов. Наполнитель либо очень плотно подгоняется под размеры коробки, и тогда не требуется его дополнительного укрепления, либо, если он свободно располагается в коробке, приклеивается ко дну клеем ПВА, «момент» или универсальным полимерным клеем, предназначенным для приклеивания потолочных пластин. Наполнитель накрывают сверху листом бумаги. Бумагу укрепляют, загибая ее края вверх и приклеивая их к стенкам коробки, или же прикалывают ее к на- полнителю маленькими штифтами. Приклеивать лист бумаги непосредственно к наполнителю нельзя, иначе булавки с насекомыми будут входить с трудом, а сменить лист аккуратно окажется невозможным. Снаружи коробки обычно оклеивают плотной цветной бумагой или переплет- ной тканью. Готовая коробка изображена на рис. 210, Г. Для изготовления коробки, закрывающейся наглухо стеклом, из картона склеивается только ее нижняя часть. При этом она делается либо из полоски картона шириной 5-6 см, к которой при- клеивается картонное дно, либо по развертке, изготовляемой из прямоугольного куска картона. Затем на дно коробки укладывается наполнитель, который прикры- вается бумагой, и оклеиваются стенки коробки. После этого ставится коллекция. При постановке демонстрационной коллекции надо обращать внимание на хорошее закрепление экспонатов и этикеток, так как глухое заклеивание коробки исключает возможность изменить их положение. Затем приступают к заклеива- нию коробки. Тщательно вытертое с нижней стороны стекло кладется на кромки стенок коробки сверху. Кромки предварительно смазываются в нескольких местах клеем. После наложения стекла выжидают некоторое время, чтобы стекло закре- пилось клеем и не соскакивало с места во время работы. Потом его достаточно прочно будет держать бумажный кант. После этого готовится полоска бумаги для наружной оклейки. Длина ее равняется суммарной длине всех четырех сторон с запасом в 2-3 см, а ширина на 2 см больше высоты коробки. Полоску можно
300 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых делать составной из нескольких кусков, если длина имеющегося листа бумаги мала. Ширина канта на стекле для мелких ящиков — V2 см, для крупных — 3/4. На обратной стороне полоски от ее края откладывается это расстояние и карандашом проводится линия. На эту линию ставится коробка краем стекла и заклеивается полоской бумаги. Нижняя сторона коробки оклеивается оберточной или другой плотной бумагой, переплетной тканью и т.п. Изготовление деревянного наглухо закрывающегося энтомологического ящи- ка начинается с вырезки стекла по размерам будущей коллекции, изготовления дощечек боковых стенок ящика, их обстругивания и сколачивания в рамку. При вычислении длины дощечек необходимо иметь в виду их толщину, чтобы размеры ящика по наружному краю равнялись величине стекла. Рамку можно сделать, не сбивая боковые стенки гвоздиками, а скрепив их клеем «момент», ПВА или сто- лярным, предварительно выпилив шипы и соответствующие им пазы на смежных торцах стенок. Глубина ящика — 5 см. К готовой рамке мелкими гвоздиками прибивается картонное или фанерное дно (картон должен быть не очень тонкий). На дно укладывается наполнитель. Если коллекция будет настенная, то предва- рительно, перед укладкой наполнителя, к дну прикрепляются колечки или ушки. Наполнитель покрывается бумагой, которая прикрепляется одним из описанных выше способов. Стенки ящика изнутри оклеиваются бумагой. Оклеенный ящик оставляют сохнуть (примерно сутки), после чего он заполняется коллекционным материалом. Затем приступают к заделыванию коллекции стеклом. Чистое стекло кладется на грани ящика и приклеивается узкими полосами из тонкой бумаги по всем сторонам ящика, чтобы стекло держалось на ящике во время его оклейки (рис. 211, Л). После этого полоской из плотной бумаги или переплетной ткани, вы- резанной с учетом окантовки стекла, оклеивают боковые стороны ящика (рис. 211, £, В\ а затем — дно. Рис. 211. Заклеивание наглухо деревянного энтомологического ящика и его окле- ивание тканью (по Павловичу, 1947). Обозначения см. в тексте.
Глава 8. Постановка, оформление и хранение коллекций насекомых -ф* 301 Рис. 212. Энтомологический ящик с застекленной крышкой. На перед- ней стенке ящика — внешняя эти- кетка (по Голубу и др., 1980). Очень удобны для коллекции от- крывающиеся деревянные ящики с деревянной или застекленной крышкой (рис. 212). Ниже описывается один из способов изготовления таких ящиков, основное достоинство которого заклю- чается в том, что стенки дна и крышки ящика с каждой стороны делаются из одного куска дерева распиливанием его в месте стыка дна и крышки. Описание последовательности действий при из- Рис. 213. Начало работы по изготовлению деревянного открывающегося энтомоло- гического ящика (по Павловичу, 1947). Обозначения см. в тексте. готовлении такого ящика приводится по работе С.И. Павловича (1947), которая давно уже является библиографической редкостью. Многие деревянные ящики со стеклянной крышкой в Зоологическом институте РАН (Санкт-Петербург) имеют именно эту конструкцию (рис. 212). При изготовлении ящика вначале выстругиваются четыре дощечки по разме- рам коробки и шириной 5 см. Каждая дощечка распиливается вдоль, как показано на рис. 213, Л, Б (линия разреза отмечена по дощечке черточками). На разрезанных частях делаются отметки, указывающие соответствие сторон друг другу. Затем сбивают две рамки, обращая внимание на пометки (рис. 213, В). По величине ящика заготавливают два куска картона (один для дна, другой для крышки) или кусок картона (для дна) и кусок стекла (для крышки). Картон приби- вается гвоздиками к рамке (рис. 214, А). Стекло приклеивают не непосредственно к дереву, так как оно может лопнуть при высыхании и изменении древесины со временем, а с помощью смазанных клеем бумажных полосок, которые сверху за- клеиваются плотной бумагой или подходящей тканью. Затем приступают к оклеиванию ящика. Белой бумагой (б.б.) оклеивают вну- три соединение крышки со стенкой (рис. 214, А). Плотной бумагой или переплет- ной тканью оклеивают крышку и ящик, надрезая ножницами уголки (рис. 214, Б).
302 -ф- В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых \7//////////////////////////////// ткань картон (стенка внутри) В Рис. 214. Оклейка энтомологического ящика и укладка наполнителя (по Павловичу, 1947). Обозначения см. в тексте. После этого вырезают четыре полоски картона. Длина их должна равняться длине стенок ящика изнутри, ширина — на 1 см больше высоты стенок ящика (рис. 214, Г). Полоски картона примеряют, как показано на рис. 214, В, а затем оклеивают их края мягкой тканью (тонкой фланелью). Вместо картона можно использовать фанеру, которую можно не оклеивать тканью. Оклеенные полоски картона или полоски фанеры приклеивают или прибивают маленькими штифтиками или очень маленькими гвоздиками изнутри к стенке ящика. Затем, если коллекция предна- значена для демонстрации и будет укреплена на стене, к дну ящика, у одной из сторон, прикрепляют колечки. В ящик закладывают наполнитель (рис. 214, Г), который оклеивают бумагой (рис. 214, Д, £). Если крышка ящика стеклянная, то работа на этом заканчивается. Если же крышка картонная, то ее оклеивают изну- три светлой тонкой бумагой, а снаружи — плотной или тканью. Готовый ящик со стеклянной крышкой изображен на рис. 212.
Глава 8. Постановка, оформление и хранение коллекций насекомых -ф* 303 Весьма удобны и практичны самодельные жестяные коробки конструкции С.Н. Цурикова разных размеров, в которых можно хранить собираемый в полевых условиях материал, подлежащий немедленному монтированию на энтомологиче- ские булавки, а также и для постоянного хранения в них насекомых. Для изготовления жестяной энтомологической коробки (рис. 215) необходи- мо взять 2 прямоугольных куска жести размерами 340 х 220 мм и 271 х 121 мм толщиной 0,5 мм (желательно оцинкованной). Затем следует произвести разметку, разрезать жесть по непрерывным линиям, и последовательно сгибать по пунктир- ным линиям края деталей так, как показано на рисунке. Особенно важно плотное скрепление треугольных лопастей узких сторон ко- робки с прямоугольными лопастями. Для этого нужно при помощи плоскогубцев с усилием прижать к верхнему краю прямоугольных лопастей коробки согнутые под углом 180° узкие верхние полоски треугольных лопастей (рис. 215). Ко дну. Крепление Рис. 215. Конструкция жестяной энтомологической коробки (ориг.).
304 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых 100x50x5 мм Рис. 216. Деревянная коробочка (ориг.). полученной таким образом коробки, следует приклеить прямоугольную пластинку пенопласта или полиуретана соответствующих размеров. В данной конструкции крышка прочно закрывает коробку, благодаря отогнутым перпендикулярно крае- вым полоскам, образующим бортик высотой 10 мм. Деревянная коробочка для временного хранения и перевозки материала из- готавливается из фанеры или дерева (размеры деталей указаны на рисунке). По- следовательные этапы ее изготовления представлены на рисунке 216. Вначале следует скрепить при помощи 8 гвоздей (или склеить) вертикальные стенки коробочки так, чтобы нижние их поверхности находились в одной плоско- сти. Затем нужно прикрепить нижнюю деталь размером 100 х 60 х 5 мм, после чего на дно полученной таким образом коробочки необходимо поместить кусочек пенопласта (размеры см. на рис.). Крышка коробочки, размером 100 х 50 х 5 мм, вставляется между выступающими вертикально краями длинных вертикальных стенок коробочки, и за счет плотного соприкосновения с ними, надежно удержи- вается. 8.3. Расположение и оформление материала в научных коллекциях В научно-исследовательских систематических коллекциях с таксонами, опре- деленными до того или иного ранга (семейства, рода или вида) материал должен располагаться в соответствии с одной из существующих классификаций, отражая современный уровень систематики представленных в коллекции таксонов.
Глава 8. Постановка, оформление и хранение коллекций насекомых 305 @ *•***>***#**<# ************* ****** ******* ***** &йй*ййй-йЙййй >й- й- Ж й- й й- й- Ж й й ЙЙЙЙ-Й Б Рис. 217. Размещение научного материала в энтомологической коробке. А — по всей ширине коробки; Б — по трем продольным полосам (по Голубу и др., 1980). В фондовых коллекциях российских академических учреждениях и учебных заведениях (Зоологическом институте РАН, Зоологическом музее МГУ и многих других), институтах зоологии Академий наук стран ближнего зарубежья (Укра- ины, Казахстана и др. государств) и их учебных заведений принято размещение материала непосредственно в больших коробках или ящиках. При этом в энто- мологической коробке (или ящике) материал по каждому виду располагают либо по всей ширине коробки, либо предварительно разделив четкой линией, узкой тесьмой или толстой ниткой коробку вдоль на 2-4 полосы (рис. 217). Материал внутри коробки обязательно сопровождается этикетками. Если в данной коробке находится материал по нескольким высшим таксонам (отрядам, семействам), то каждый из них имеет свою этикетку. Если же в коробке располагается материал только по одному высшему таксону, то этикетка с его названием внутри коробки обычно не ставится, так как имеется аналогичная внешняя этикетка на торце коробки; точно так же можно не ставить этикетку и с названием единственного представленного в коробке рода. Этикетки с названиями видов должны иметься внутри коробки всегда. Этикетку с названием семейства следует ставить посредине ширины короб- ки (или, если дно коробки разделено продольно на полосы, посредине полосы). Этикетку с названием рода (подрода) обычно ставят перед материалом с левой стороны или же посредине ширины коробки, позади этикетки с названием семей- ства (если таковая имеется). Этикетка с видовым названием обычно помещается непосредственно перед материалом, с левой стороны от первого экземпляра, по- зади этикетки с родовым названием. Пример этикетирования материала в система-
306 -ф* В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Рис. 218. Этикетирование материала в систематической коллекции. На больших этикетках указываются названия родов и подродов, на маленьких — видов и под- видов. Название каждого таксона сопровождается указанием года его описания и автора данного таксона (по Голубу и др., 1980).
Глава 8. Постановка, оформление и хранение коллекций насекомых Ф 307 тической коллекции приведен на рис. 218 (представленные в коллекции два рода относятся к одному семейству). Для оформления коллекций некоторых систематических групп (например, че- шуекрылых) принята несколько иная этикетировка таксонов: этикетка с названием вида помещается после материала по этому виду, а родовая этикетка — после всего материала по роду. В большинстве других групп такой способ этикетировки больше подходит для демонстрационных коллекций, чем для научно-исследова- тельских. Названия всех таксонов на этикетках пишутся только латинские. На этикетке с видовым названием первое слово (название рода) пишется обычно сокращенно или вообще не пишется, так как либо внутри коробки, либо снаружи имеется особая этикетка с названием рода. Название таксона любого ранга на этикетке сопровождается фамилией его автора (полной или сокращенной), а также годом описания данного таксона (последнее не обязательно). Этикетки прикалываются к дну коробки маленькими штифтиками или энтомо- логическими булавками, лучше укороченными: их обрезают ножницами наискось, чтобы получился острый конец. Булавки с насекомыми погружают в наполнитель достаточно глубоко так, чтобы они были прочно фиксированы и не соприкасались с крышкой коробки при ее закрывании. Но при этом надо стараться, чтобы этикетки, подколотые под насекомое, не сдвигались вверх и не соединялись друг с другом, что может про- изойти, если слишком глубоко втыкать булавку. Насекомых в целях экономии места ставят близко друг к другу, почти не оставляя промежутков как между рядами, так и между соседними экземпляра- ми. Однако надо следить за тем, чтобы они не соприкасались своими крыльями, усиками и ногами. Это в особенности относится к видам с длинными, легко об- ламывающимися конечностями (жуки-усачи, часть клопов, чешуекрылые и др.). Если материал по данному виду представлен из нескольких или многих гео- графических точек, то при постановке коллекции его принято располагать так, что- бы прослеживалось продвижение по ареалу вида с северо-запада на юго-восток. Разумеется, этот принцип при пополнении коллекции новыми материалами часто не соблюдается, иначе пришлось бы каждый раз переставлять материал. Однако при оформлении коллекции, при проведении таксономических ревизий, при зна- чительных пополнениях коллекций и связанных с ними общих перестановках его следует придерживаться. Учитывая, что материал после формирования коллекции будет пополняться, необходимо оставлять для каждого вида свободное место. Площадь свободного места зависит от ряда обстоятельств, в первую очередь от объема уже имеющегося материала и предполагаемого общего объема материала по данному виду. Суще- ствуют лишь самые общие рекомендации, согласно которым незаполненное место должно составлять примерно Х/А-/3 объема коробки, занятого уже поставленным материалом.
308 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Не определенный до вида (или до рода, до семейства) материал, если только его не предполагают обрабатывать как отдельную коллекцию, следует, по возмож- ности, хранить вместе с тем родом, семейством, или хотя бы отрядом, к которому он принадлежит. Однако на практике часто обширные совершенно необработанные материалы помногу лет хранятся отдельно от определенного материала. В таких случаях на каждой коробке с необработанным материалом указывают системати- ческую группу, район сбора и фамилию сборщика. Каждая коллекционная коробка с определенным материалом снабжается внеш- ней этикеткой (см. рис. 212). На ней указываются латинские названия таксонов, материал по которым хранится в данной коробке. Если число видов или родов, представленных в коробке, довольно большое (что обычно бывает в начальной стадии формирования коллекции), то на внешней этикетке можно ограничиться указанием названий семейств. Для небольших коробок целесообразно писать две этикетки: на одной указывать название семейства (нескольких семейств) или еще название отряда, на другой — названия родов и видов. Если материал по данному роду или виду занимает больше, чем одну коробку, то его название на этикетке сопровождается порядковым номером коробки. Этикетки прикалываются кнопка- ми (к деревянным ящикам) или приклеиваются на торце коробки, обращенной к дверце шкафа, в котором хранится коллекция. Наколотые на отдельные булавки маленькие пробирки с хранящимися в них микропрепаратами помещают рядом с соответствующими экземплярами или в отдельную коробку, где находятся только препараты; в любом из этих случаев экземпляры и их препараты нумеруются. Шкафы для хранения коллекций. Коробки и ящики с коллекциями насеко- мых хранят, как правило, в специальных шкафах, изготовленных с учетом раз- меров коробок, с пазами или уголками для их поддержания (рис. 219). Шкафы должны иметь плотно закрывающиеся дверцы и быть обязательно закрытыми, когда коллекциями не пользуются, во избежание проникновения туда вреди- телей. Если нет возможности изгото- вить специальные шкафы, то можно для этой цели использовать книжные, которые необходимо оборудовать пол- ками так, чтобы можно было достать любую коробку, не затрагивая соседних. Желательно, чтобы в систематических Рис. 219. Шкаф для хранения энтомоло- коллекциях на дверцах каждого шкафа гических коллекций. имелась этикетка с указанием высших
Глава 8. Постановка, оформление и хранение коллекций насекомых -ф* 309 таксонов (отрядов, семейств), материал по которым содержится в этом шкафу. Если коллекции очень обширные, то можно лишь пронумеровать шкафы и соста- вить картотеку с указанием в каждой карточке таксона и номера шкафа, в котором хранится соответствующий материал. Кроме того, полезно иметь под рукой (мож- но прикрепить на видном месте) список таксонов, материал по которым хранится в каждом шкафу Такие картотеки и списки нужны для всех типов энтомологических коллекций — справочных, биологических и демонстрационных. В крайнем случае, при отсутствии шкафов, энтомологические коробки мож- но хранить в течение некоторого времени открыто. При этом надо предохранять коллекции, от пыли, прямых солнечных лучей и вредителей. 8.4. Справочные и демонстрационные коллекции Справочные коллекции в основном оформляются так же, как и научно-ис- следовательские. Разница заключается лишь в том, что каждый вид в справочной коллекции представлен небольшим числом экземпляров, нередко — одним-тремя. Для справочных коллекций требуется намного меньше энтомологических коро- бок и места, чем для научно-исследовательских. Они могут быть созданы в любом высшем и среднем учебном заведении, научно-исследовательском учреждении, на любой биостанции, в домах творчества детей, на станциях защиты растений и т.д. Часто справочные коллекции организуются как демонстрационные, предна- значенные для обозрения не только специалистами, но и любителями природы. Если справочная коллекция служит для демонстрационных целей, то все эти- кетки помещаются внутри коробки (рис. 220, 221, 222). Для энтомологических научно-исследовательских и справочных коллекций, не предназначенных для всеобщего обозрения, примерно в одинаковой мере пригодны энтомологические коробки, как со стеклянной, так и с непрозрачной крышкой (те и другие имеют свои достоинства и недостатки). Бумага, которой оклеивается коробка изнутри, должна быть светлой (оттенок не имеет особого значения). Поскольку коробка с демонстрационной коллекцией не открывается часто, ее для избежания проникно- вения вредителей (кожеедов, прежде всего) лучше заклеить наглухо бумагой (см. рис. 211), эстетически подходящей для восприятия самой коллекции насекомых. Описание изготовления наглухо заклеенной коробки для демонстрационной кол- лекции дано выше. В демонстрационной справочной систематической коллекции обычно выстав- ляются наиболее характерные для данной территории представители различных отрядов и семейств насекомых (рис. 220). В справочных коллекциях хозяйственно-важных организмов (например, вреди- телей какой-либо культуры или энтомофагов того или иного вредителя) материал, как и в научно-исследовательских коллекциях, целесообразно располагать в систе- матическом порядке. На каждой коробке этого типа коллекций помимо этикетки с
310 В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Рис. 220. Демонстрационная систематическая коллекция (по Голубу и др., 1980). названиями представленных в ней таксонов следует прикреплять этикетку с назва- нием коллекции, например: «Вредители зерновых культур Воронежской области». Справочные коллекции образцов повреждений, причиняемых вредными насе- комыми, изготовляются и оформляются аналогично коллекциям поражений (при- емы их изготовления и оформления см.: Голуб и др., 1980). На этикетке каждого гербарного листа, помимо обычных сведений (вид растения, место и дата сбора, фамилия сборщика), указывается вид вредителя, семейство и отряд, к которым он принадлежит, а также фаза его развития (имагинальная или личиночная), в которой вредитель причиняет такие повреждения. Вместо натуральных образцов поврежденных частей растений для коллекций практической направленности в ряде случаев проще и удобнее использовать их отсканированные изображения или же фотоснимки, полученные методом контакт- ной печати. В последнем случае объект (например, лист растения, поврежденный листогрызущими или минирующими насекомыми) плотно прикладывается к ли- сту фотобумаги (желательно контрастной), который засвечивается в проходящем свете. После проявления на снимке останется четкий контур объекта и рисунок повреждения.
Глава 8. Постановка, оформление и хранение коллекций насекомых 311 Рис. 221. Демонстрационная биологическая коллекция лугового мотылька (по Голубу и др., 1980). Биологические коллекции, т.е. коллекции, отражающие цикл развития видов, могут быть как научно-исследовательскими, так и справочными. Особенность научно-исследовательских биологических коллекций заключается в том, что различные стадии одного и того же вида сохраняются часто различными способами и раздельно. Так, если взрослые насекомые средних и крупных разме-
312 В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Рис. 222. Демонстрационная справочная коллекция объектов, имеющих хозяй- ственное значение (по Голубу и др., 1980).
Глава 8. Постановка, оформление и хранение коллекций насекомых 313 ров хранятся в энтомологических коробках в смонтированном виде на булавках, то их яйца и куколки, а часто также и личинки — в консервирующих жидкостях в банках. В таких случаях следует составить каталог или иметь особый журнал, в который записываются сведения о том, в какой коробке и какой банке хранится материал по данному виду. Если в энтомологической коробке и в консервирующей жидкости хранится материал, который предположительно относится к одному и тому же виду (напри- мер, выведенный паразит и его преимагинальные стадии, полученные при вскры- тии хозяина), но который еще не определен, то номера или шифры экземпляров в разных фазах развития получают в журнале свое объяснение. Определенный материал по преимагинальным фазам каждого вида следует хранить в отдельном сосуде, на который наклеивается соответствующая этикетка. Хранящиеся в пробирках экземпляры одного и того же вида, собранные в разное время и в разных местах, имеют свои этикетки с указанием местности и даты сбора, фамилии сборщика и стадии развития. В справочных биологических коллекциях насекомых в преимагинальных фазах обычно хранят в маленьких пробирках, плотно закупоренных пропарафиненными пробками. Пробирочки укрепляют с помощью энтомологических булавок или другим способом в одной коробке со взрослыми особями. Биологические демон- страционные коллекции обычно именно так и оформляют — в энтомологических коробках (чаще со стеклянной крышкой), в которых располагают объекты на всех стадиях в высушенном и законсервированном виде (рис. 221). Наиболее полной биологической коллекцией вредителя будет та, в которой не только полностью отражен его цикл развития, но и показаны типичные поврежде- ния основных кормовых растений, а также представлены важнейшие энтомофаги этого вредителя. Демонстрационные коллекции предназначены для всеобщего обозрения и мо- гут быть самыми различными — систематическими, фаунистическими, биологи- ческими, отражающими приспособления видов к окружающей среде, коллекциями повреждений и т.д. Внешнее оформление научно-исследовательской коллекции направлено в основном на приведение ее в соответствие с существующей классификацией организмов или отображение естественного хода событий, имеющих место в процессе жизнедеятельности организмов. При оформлении же демонстрационной коллекции, кроме того, ставится задача дать зрителю, часто неподготовленному в области биологии, яркую, хорошо воспринимающуюся картину разнообразия органического мира, хозяйственного значения отдельных видов. Количество объектов одного и того же вида на одной и той же стадии развития в демонстрационных коллекциях обычно ограничивается одним-двумя, реже, если нужно показать внутривидовую изменчивость, несколькими экземплярами. Наиболее обычный способ оформления демонстрационных коллекций — в энтомологических коробках. При этом объекты в коробке могут быть и законсер-
314 В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых вированными в жидкостях. И те, и другие обрабатываются способами, описанными в соответствующих разделах. Коробки для демонстрационных целей можно ис- пользовать как стандартные, так и изготовленные специально, исходя из размеров будущей коллекции. Если коробки будут настенными, то к ним перед монтированием коллекции прикрепляют специальные колечки. Способы изготовления энтомологи- ческих коробок и ящиков и приспособления для их подвешивания описаны выше. Сухих насекомых помещают в коробку на энтомологических булавках. Особи с толстым мясистым брюшком должны быть предварительно препарированы для удаления внутренностей. В демонстрационных коллекциях крылья расправляются не только у чешуекрылых, стрекоз и других подобных насекомых с большими крыльями, но и у таких, как жуки, перепончатокрылые и двукрылые, для того, чтобы дать полное представление о внешнем облике насекомого. Нередко особей одного и того же вида ставят как с расправленными крыльями, так и со сложен- ными в покое. Насекомым часто придают естественную позу. Для показа полового диморфизма устанавливают рядом самца и самку, возле которых помещают значки «с?» и «2» или пишут словами — «самец» и «самка». В демонстрационных коллекциях, помимо натуральных объектов, широко ис- пользуются черно-белые и цветные рисунки и фотоснимки взрослых насекомых, их яйцекладок, личинок и куколок, отдельных частей тела и органов в увеличен- ном виде, характерных местообитаний, повреждений и т.д. Все объекты в демонстрационной коллекции обязательно сопровождаются этикетками. Названия видов пишутся на русском и латинском языках. Каждая коллекция должна иметь общее название, этикетка с которым помещается внутри коробки вдоль ее верхнего края. В качестве примеров на рис. 220, 221, 222 изображены демонстрационные коллекции различного назначения. Следует отметить, что улучшению восприятия объектов в демонстрационной коллекции в значительной степени способствует хорошо подобранный фон, т.е. цвет бумаги, которой оклеивается коробка изнутри. Фон должен подчеркивать, оттенять очертания и окраску объектов, отдельных органов и т.д., но ни в коем случае не обращать на себя внимание. Поэтому слишком яркая или пестрая бумага не годится для оклейки коллекций. Нередко используют бумагу нежно-голубого или розового цвета. В подавляющем большинстве случаев вполне пригодна белая бумага. Мил- лиметровку использовать в демонстрационных коллекциях не следует. Аналогично коллекциям в коробках оформляются демонстрационные коллек- ции в виде витрин или стендов. При этом в большинстве случаев удается избежать нарушения композиционной целостности большой коллекции, не рассредоточивая материал по нескольким энтомологическим коробкам. Кроме того, имеются и большие возможности для включения в коллекцию крупных частей растений с повреждениями. Демонстрационные коллекции в консервирующих жидкостях, в качестве которых обычно используют спирт или формалин, чаще всего оформляют в
Глава 8. Постановка, оформление и хранение коллекций насекомых Ф 315 стеклянных цилиндрах. Последние можно заменить стеклянными банками или пузырьками с широким горлом, широкими пробирками (лучше с плоским дном) и др. Сосуд должен плотно закрываться пробкой или для него надо изготовить стеклянную пластинку в качестве крышки. Ниже приводятся (в основном по Павловичу, 1947; Козлову, Нинбургу, 1971; Голубу и др., 1980) наиболее простые способы изготовления влажных демонстра- ционных препаратов в сосудах. Объекты в сосуде укрепляются на стеклянной пластинке, длина которой долж- на в точности соответствовать высоте цилиндра или банки, а ширина — диаметру сосуда (с учетом возможной разницы в диаметре сосуда на разной высоте). Иногда объекты выглядят эффектнее на белом или черном фоне; для этого на стеклянную пластинку с помощью не растворяющегося в воде синтетического клея или жела- тины прикрепляется полоска бумаги соответствующего цвета. Мелкие объекты при монтировке в спирте можно приклеивать к стеклянной пластинке расправленной желатиной или синтетическим клеем. Перед наклеиванием объекта стекло тщательно отмывают от грязи и жира и насухо вытирают. Объект, извлеченный из спирта, где он хранился, подсушивают на фильтровальной бумаге, смазывают клеем или желатиной (или же аккуратно капают ими на стеклянную пластинку); после этого объект укладывают на стекло в нужном положении. Иногда в связи с тем, что объект обладает неровной поверх- ностью, его не удается приклеить к стеклу. В таком случае между экземпляром и стеклом кладут пропитанную желатином ватную прокладку, делая так, чтобы она была как можно менее заметной. Мелкие объекты в ряде случаев лучше при- клеивать не непосредственно к стеклу, а к маленькому бумажному прямоуголь- ничку, который в свою очередь приклеивается к стеклянной пластинке. Можно прикреплять объекты к стеклу (особенно если они не очень мелкие) с помощью нитки или тонкой рыболовной лески. До прикрепления объект надо расправить на стекле и предусмотреть, чтобы нитка, охватывающая его, не ухудшала внешний вид коллекции. Нитку надо натягивать достаточно туго, узел завязывать на ребре стеклянной пластинки. Чтобы избежать случайного перерезания нитки стеклом в местах соприкосновения ее с ребрами пластинки, следует накладывать маленькие кусочки бумаги. Когда препарат смонтирован, пластинку опускают в сосуд. Стеклянную пла- стинку целесообразно дополнительно укрепить в определенном положении, иначе она будет вращаться при сотрясениях. Для этого достаточно два небольших кусоч- ка корковой пробки плотно вставить между внутренней стенкой сосуда и поверх- ностями пластинки с обеих сторон вверху, у самого отверстия сосуда. После того как пластинка вставлена в сосуд с консервирующей жидкостью, приступают к его закупориванию. Если цилиндр или другой сосуд не имеет плотно закрывающейся пробки, его можно заклеить стеклом. Для этого вначале подшли- фовывают напильником верхний край сосуда (если неровный), а затем вырезают из стекла пластинку нужной формы и величины. Стеклянная крышка и верхний
316 В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых край сосуда должны быть абсолютно сухими и чистыми. Для заклеивания сосуда пользуются особым клеем, устойчивым к воде и химическим соединениям (так называемой «холодной сваркой»), двухкомпонентым эпоксидным клеем, клеями «суперцемент», «момент», БФ, «88» или другим аналогичным клеем или же специ- альной замазкой следующего состава (в частях): • пчелиный воск — 4; • парафин — 1; • технический вазелин — 1. При приготовлении замазки указанного рецепта все части смеси сплавляют вместе в чистой жестяной банке. Пользуются замазкой в горячем виде, нанося ее тонким ровным слоем на края сосуда, на которые затем накладывают стекло и при- жимают. После этого тяжелым предметом проводят несколько раз по стеклу для того, чтобы вышли все пузырьки воздуха, оставшиеся между стеклом и замазкой. Причем необходимо следить за тем, чтобы стекло не сдвинулось. Для заделывания сосуда с притертой стеклянной пробкой указанной растоплен- ной замазкой заливают место соединения пробки с горлом сосуда. Если сосуд с влажным препаратом закрывают корковой пробкой, ее следует проварить в замаз- ке и закупорить банку, пока замазка не застыла. Вместо замазки, состав которой приведен выше, корковые пробки можно пропитывать одним только парафином, воском или стеарином. При любом способе закупорки сосуда спирт и формалин приходится периодически доливать (обычно — раз в 5-7 лет). Иногда приходится совершенно заменять консервирующую жидкость, так как спирт и формалин со временем мутнеют и приобретают желтый оттенок. Этикетки к демонстрационным влажным препаратам ставят рядом с сосудом или наклеивают на него. Прикреплять этикетку внутри банки, рядом с объектом, значительно труднее, так как надо подбирать состав клея, краску или тушь, со- вершенно не растворяющиеся в консервирующей жидкости. Кроме того, при не- обходимости заменить этикетку приходится раскрывать сосуд. Небольшие сосуды с влажными препаратами (например, широкие пробирки) для демонстрационных целей можно укреплять на дощечке (проще всего фанер- ной) с колечком (рис. 223). Дощечку можно покрасить или покрыть лаком любого цвета. Укрепить пробирку на дощечке можно с помощью двух узких (3-5 мм) по- лосок из жести. Полоска должна быть такой длины, чтобы охватывала пробирку и прошла своими концами сквозь прорези в дощечке. За дощечкой концы разво- рачиваются и прижимаются. В музеях, в учебном процессе, для различного рода демонстрационных целей очень эффективным способом показа животных является биологическая группа (биогруппа), т.е. искусственное объемное воспроизведение отдельных моментов в жизнедеятельности организмов с помощью препарированных биологических объектов, веществ и предметов неорганического происхождения (почва, камни и т.д.) и художественных средств. Биогруппы исключительно полезны при показе вредоносной деятельности насекомых (например, питания вредной черепашки,
Глава 8. Постановка, оформление и хранение коллекций насекомых Ф 317 Рис. 223. Влажный препарат в пробирке, укрепленной на дощечке (по Павловичу, 1947). перелетной саранчи или другого вредителя на характер- ных кормовых растениях), процесса заражения паразитом своего хозяина или уничтожения вредителей хищником, насекомых-опылителей «за работой» и т.д. Биогруппа дает возможность продемонстрировать гнезда, норы и другие постройки животных (например, осиное гнездо, муравей- ник), отразить небольшой момент в функционировании всего биоценоза и многое другое. Биогруппы делают под стеклянным колпаком, в рамке между двумя стеклами, в застекленной коробке (можно в энтомологической, из которой извлечен наполнитель), в раз- личных колбах, широких стеклянных трубках, химических стаканах и других прозрачных предметах. При изготовлении биогрупп энтомологическими бу- лавками не пользуются. Весь смысл биогруппы — придать объектам естественную позу; сделать это с насекомыми, наколотыми на булавку, в полной мере не удается. Объекты лучше всего приклеивать каким-либо клеем — энтомологическим, фотоклеем, клеем БФ, ПВА, «момент», или другим синтетическим (белым или, лучше, про- зрачным). Крупные объекты можно прикреплять с помощью тонкой проволоки или рыболовной лески, стараясь делать это как можно незаметнее. Как было отмечено выше, при изготовлении биогрупп приходится воспроиз- водить элементы окружающей среды, начиная от почвы и растений, на которых непосредственно находятся основные объекты биогруппы, и кончая, задним пла- ном, включающим предметы биотического и абиотического происхождения. Часто приходится, например, изготовлять искусственную поверхность грунта. Делается это следующим образом. Берут почву, вымачивают ее в туши, сушат, а затем вы- сыпают на лист черной бумаги, смазанный обойным или столярным клеем. Через несколько часов лист переворачивают и удаляют излишек почвы. Вымачивание почвы в туши необходимо для того, чтобы при высыхании она не серела, а оста- валась черной. Таким же образом имитируют поверхность песка, только бумагу берут не черную, а серовато-желтую. Для сохранения естественной формы растений применяют объемную сушку в песке. Для восстановления естественной окраски листья после высушивания растений подкрашивают масляными красками. Хороший зеленый цвет дает, на- пример, смесь желтого крона и ультрамарина. При раскрашивании надо стараться придать листьям различные оттенки, как это и бывает в природе. Часто для боль- шей прочности листья закрепляют, обмакивая в расплавленный парафин. После
318 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых извлечения листа из парафина жидкости дают стечь, чтобы парафин покрывал лист тонким и ровным слоем. Вместо опускания в парафин можно опрыскивать цветки и листья 5% раствором парафина в скипидаре. Однако лучше всего делать листья искусственными, вырезая их из бумаги, с последующим покрытием пара- фином или лаком. При монтировании биогруппы под колпаком одну (заднюю), две или даже три стенки часто делают непрозрачными, создавая на них задний план или фон био- группы. Задний план не должен особенно привлекать к себе внимание, поэтому для его создания пользуются не масляными красками, а акварелью или гуашью. Можно также применять аппликации (наклеивание вырезок цветных рисунков и фотографий). Для оформления биогруппы (особенно небольших размеров) можно восполь- зоваться готовыми стеклянными колпаками и большими химическими стаканами, которыми накрывают уже смонтированную на подставке биогруппу. Иногда удоб- нее заключать биогруппу в тонкостенную стеклянную трубку достаточно большого диаметра. Дальнюю от зрителя часть поверхности трубки закрывают вставленной внутрь нее полоской бумаги, оформленной как задний план. Непосредственно на этой полоске или перед ней укрепляются объекты. Поскольку внутренняя поверх- ность трубки вогнутая, создается объемный эффект. Демонстрационные коллекции насекомых, наколотых на энтомологические булавки, для обозрения обычно укрепляют на стене. Для этого при подготовке де- монстрационной настенной коллекции на задней (обратной) стороне коробки или ящика укрепляют специальные колечки или ушки (одно или два). Колечки делают из мягкой проволоки (рис. 224, Л, Б). Из тесемки или просто куска материи наре- зают полоски (рис. 224, В). Для приклеивания кольца к коробке полоску материи смазывают клеем (ПВА, «момент», столярным), накладывают ее одной половиной на дно коробки с наружной стороны, прикладывают к полоске кольцо, которое Рис. 224. Кольца и ушки для укрепления коллекций на стене (по Павловичу, 1947). Обозначения см. в тексте.
Глава 8. Постановка, оформление и хранение коллекций насекомых 319 обжимают второй половиной, после чего наклеивают сверху кусочек бумаги или материи, такой же, какой оклеена задняя стенка коробки (рис. 224, Г). Другой способ закрепления кольца: в задней стенке коробки, еще до уклады- вания в нее наполнителя, прорезают ножом щель у края, который будет верхним, продергивают туда тесемку, охватывающую кольцо, и приклеивают концы тесемки внутри коробки (рис. 224, Д). Еще один способ прикрепления кольца, особенно подходящий для деревянных ящиков: из проволоки изгибается кольцо, как пока- зано на рис. 224, Е. В задней стенке энтомологического ящика делаются два от- верстия, туда вставляют концы проволоки, которые разгибаются в разные стороны и прижимаются к стенке ящика изнутри (рис. 224, Ж, 3). Ушки для навешивания ящиков можно вырезать также из жести, как показано на рис. 224, И. Они прибиваются к ящику маленькими гвоздиками. Подвешивать коробки с коллекциями на стене лучше всего на шурупах, кото- рые ввинчиваются в пластмассовые дюбели или деревянные пробки, предваритель- но вставленные в просверленные в стене отверстия. Можно их также укреплять на деревянных планках, прибитых к стене. На одной планке можно повесить не- сколько коллекций. Подвешивать коробки на гвоздях, вбитых непосредственно в стену, не рекомендуется, так как гвозди в стене обычно держатся плохо. 8.5. Условия хранения коллекций и предохранение их от вредителей Коллекции насекомых предназначены для длительного, многолетнего, хранения и изучения. Для их сохранения должен соблюдаться комплекс условий, который излагается ниже (см также: Голуб и др., 1980). Независимо от способа оформления коллекций они должны находиться в су- хом, регулярно проветриваемом помещении, в котором в течение всего года под- держивается приблизительно одинаковая температура (18-25 °C). Коллекции следует тщательно оберегать от пыли, прямого солнечного света и механических разрушений. Очень вредна для них сырость. В сыром помещении на коллекционном материале появляется плесень, и он постепенно разрушается. Излишняя сухость также вредна, но на практике при хранении коллекций больше внимания приходится уделять борьбе с сыростью. Для предотвращения порчи материала, хранящегося в консервирующей жид- кости, последняя должна полностью покрывать материал и заполнять емкость, в которой хранится материал. Сосуды с законсервированным материалом должны быть очень плотно закупорены и храниться в шкафах или месте, защищенном от прямых лучей солнечного света. По мере необходимости следует регулярно до- ливать консервирующую жидкость, так как при испарении спирта или формалина, которое неизбежно происходит, содержание воды соответственно увеличивается, и материал начинает загнивать.
320 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Основной проблемой при хранении коллекций является проникновение в них насекомых-вредителей. В короткий срок они способны полностью уничтожить уникальные коллекционные образцы. В связи с этим все сухие коллекции (на- колотые на энтомологические булавки экземпляры и сборы, хранящиеся на вате) подлежат постоянному и тщательному надзору. Вредителей коллекций существует довольно много. Особенно опасны жуки из семейства кожеедов (Dermestidae), представляющие собой злейших врагов музейных коллекций. Список кожеедов, вредящих в музеях, включает более двух десятков видов. Особенно коллекции страдают от 8 видов рода Anthrenus Schaeff., которых часто называют музейными жуками, некоторых видов Attagenus Latr. (так называемые, ковровые жуки) и Trogoderma Dej. (Жантиев, 1976). Определи- тельные таблицы и описания таксонов всех рангов Dermestidae фауны бывшего СССР содержатся в монографии Р.Д. Жантиева (1976). В ней приводятся также подробные сведения о развитии и экологии вредных видов и мерах борьбы с ни- ми. Кроме кожеедов, коллекции насекомых повреждают моли (Tineidae), жуки- чернотелки (Tenebrionidae), иногда тараканы и даже мыши. В связи с этим для борьбы с вредителями существуют меры предупредительного и истребительного характера. Предупредительные мероприятия. Коллекционные ящики, коробки и шкафы должны плотно закрываться. Для этого торцы дверец шкафов оклеивают узкими и тонкими полосками поролона. Чтобы вредители не могли попасть в коллекции через щели при длительном перерыве в работе, крышки коробок и дверцы шкафов рекомендуется заклеивать скотчем или липкой (так называемой «монтажной») лентой. Заклеивать таким образом коробки с ватными сборами насекомых следует обязательно. Плотное, по возможности герметичное, закрывание коробок и шкафов важно и для предохранения обслуживающего персонала от паров ядохимикатов, используемых при обработке коллекций. Одним из путей проникновения вредителей в хранилища коллекций является занос их с вновь поступающими коллекционными образцами. Поэтому прибыва- ющие энтомологические материалы должны предварительно пройти химическое обеззараживание (см. ниже). При хранении небольших государственных, например вузовских коллекций, и, особенно, частных коллекций вновь поступающий (например, собранный в текущем году) материал на ватных слоях можно помещать на несколько часов или, лучше, одни-трое суток в морозильную камеру при температуре -13-16 °C. Целесообразно, чтобы места хранения коллекций были изолированы от рабо- чих и жилых помещений. При периодических осмотрах коллекций из них следует изымать весь зараженный и подозрительный материал для обеззараживания и удаления остатков разрушенных насекомых, в которых могут храниться яйца на- секомых-вредителей (если только уже невозможно судить об их видовой принад- лежности!). При этом этикетки на булавках определенных до вида экземпляров желательно все равно сохранять.
Глава 8. Постановка, оформление и хранение коллекций насекомых Ф 321 В качестве профилактического мероприятия широко применяется отпугивание вредителей с помощью специальных веществ. На практике для отпугивания вре- дителей применяют чаще всего препараты, содержащие в качестве действующего вещества нафталин (например, «антимоль») или аналогичные химические соеди- нения (сам нафталин запрещен к производству и применению). Используют для отпугивания вредителей и техническую камфару. Однако необходимо помнить, что пары технической камфары более опасны для человека, чем пары нафталина. Если насекомые находятся на матрасиках, содержащие нафталин препараты или камфару насыпают на дно коробки. При хранении насекомых в коробках в правом нижнем углу прикрепляют булавками таблетку в целлофане с дырочками или па- кетик из тонкой (папиросной) бумаги, наполненный порошковидным препаратом. Пакетики с препаратом надо регулярно, не реже 1 раза в 2 года (лучше ежегодно) заменять новыми. Истребительные мероприятия применяются тогда, когда уже имеются при- знаки заражения коллекции — наличие живых вредителей и повреждение коллек- ционного материала. Практически всегда живые вредители обнаруживается как личинки кожеедов, ползающие по экземплярам насекомых, особенно на ватных слоях. После выхода жуков из куколок, они быстро спариваются, самки откла- дывают яйца и быстро уходят из ватных матрасиков или проникают в новые, где также откладывают яйца. Активное обеззараживание может проводиться в зависимости от масштаба заражения или в форме общей дезинсекции хранилища со всем его содержимым, или путем местной, выборочной дезинсекции отдельных очагов заражения — по- мещением зараженных материалов в энтомологических коробках или коробках с матрасиками в специальную камеру, или обработкой отдельных шкафов с содержи- мым на месте химическими препаратами. На практике чаще применяют частичную дезинсекцию в специальных дезинсекционных камерах. Небольшую дезинсекционную камеру желательно всегда иметь при работе с более или менее обширными коллекциями. Она представляет собой герметически закрывающуюся емкость (металлический или из иного материала ящик, шкаф и т.п.), в которую помещают обеззараживаемый материал и фумигант. В качестве фумигантов довольно часто применяют бромистый метил (метил- бромид) — 60 г/м3 или четыреххлористый углерод. В практике камерной дезин- секции в качестве фумигантов широко применяются такие летучие жидкости, как окись этилена (10%) в смеси с углекислотой (90%), так называемый препарат «карбоксид», и особенно — дихлорэтан (ДХЭ) (Бер, 1971). Последняя жидкость применяется либо в чистом виде, либо в смеси с четыреххлористым углеродом (около 30% от общего объема). Можно рекомендовать в качестве фумигантов фос- фиды магния и алюминия. Они включены в «Справочник пестицидов и агрохими- катов, разрешенных к применению на территории Российской Федерации» (2009) и широко используются в сельскохозяйственном производстве и перерабатывающей промышленности для борьбы с вредителями хлебных запасов.
322 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Срок обработки коллекций в камере зависит от температуры помещения, в котором производится дезинсекция, а именно: 24 часа при 20-25°, 48 часов — при 15-20° и 72 часа — при 12-15°. По окончании обработки камера освобождается от паров фумиганта с помо- щью вентилятора в течение 12 часов, после чего коллекции извлекаются из нее на стеллажи для окончательного выветривания остатков газа. Местная химическая дезинсекция проводится обычно путем опрыскивания шкафов и внутренней поверхности хранилищ инсектицидными растворами, су- спензиями (гексахлораном и др.) и различными аэрозолями. В борьбе с грызунами применяют различного рода механические ловушки и отравленные приманки, приготовленные на основе родентицидов (крысид, зоокумарин, ротиндан, и др.) и бакгероденцидом (возбудителем «мышиного тифа», безопасного для человека). В качестве истребительного мероприятия, при обнаружении вредителей част- ных коллекций, рекомендуем, как и в качестве профилактического мероприятия, помещать коллекции (насекомых на энтомологических булавках или на ватных матрасиках) на двое-трое суток (или больше, если имеется такая возможность) в морозильную камеру при температуре -13-16 °C. 8.6. Пересылка коллекционного энтомологического материала При работе с коллекционным материалом нередко возникает необходимость в его пересылке — на определение или проверку определений, для обмена и других целей. Пересылают материал, хранящийся на вате, в спирте, смонтированный на энтомологических булавках, а также препараты насекомых (как тотальные, так и деталей строения). Одним из наиболее простых способов пересылки материала, хранящегося на вате, — в спичечных коробках между двумя слоями ваты, на верхний из которых кладется этикетка. В каждый коробок помещают всего по нескольку экземпляров или даже по одному Спичечные коробки с уложенными в них насекомыми закле- иваются снаружи бумажной полоской в виде кольца, чтобы избежать случайного открывания коробка. Заклеенные коробки составляются в блоки, перевязываются и упаковываются как посылка или бандероль. Иногда пересылают ящики или коробки, заполненные ватными матрасиками с материалом. Однако такого способа пересылки по возможности следует избегать, так как в пути при многократных сотрясениях, ударах и перевертывании коробки материалы разных сборов могут перепутаться. Энтомологический материал, подлежащий монтированию на булавки, лучше всего пересылать в окончательно обработанном виде. Пересылаемый материал плотно устанавливается в подходящей энтомологической коробке (обычно не- больших размеров). При этом надо иметь в виду, что для наполнителя коробки при пересылке можно использовать только достаточно плотный материал — корковую
Глава 8. Постановка, оформление и хранение коллекций насекомых Ф 323 пробку, торф, твердый пенопласт и т.п. Такие же материалы, как поролон, картон, мягкий пенопласт и др., неприменимы. Уложенный наполнитель рекомендуется сверху выстилать тонким слоем ваты; если во время пересылки произойдет не- значительная поломка отдельных экземпляров (например, отпадут усики или ноги), то они останутся лежать рядом на вате. Каждый поставленный в коробку экземпляр надо обязательно обколоть по бокам энтомологическими булавками: между двумя соседними экземплярами втыкаются по две скрещенные булавки так, чтобы они препятствовали вращению насекомых и этикеток на своих булавках; можно ограничиться и одной булавкой между соседними экземплярами. Чешуекрылые при пересылке устанавливаются плотно друг к другу так, чтобы крылья соседних экземпляров налегали друг на друга (не соприкасаясь при этом) Для этого бабочек ставят слегка наклоненными на один бок. Бабочек с толстым брюшком, кроме того, рекомендуется наклонять и слегка назад, так, чтобы они ка- сались вершиной брюшка ваты, выстилающей дно коробки. Брюшко чешуекрылых следует обкалывать по бокам булавками, обернутыми ватой. Если у посылаемых экземпляров вычленены гениталии и приготовлены пре- параты, хранящиеся в стеклянных трубочках на отдельных булавках, то их ставят рядом с соответствующими экземплярами с правой стороны или сзади и сопрово- ждают этикеткой или тем же номером, что и экземпляр. Заполненная коробка плотно закрывается крышкой, которая на стыке с короб- кой заклеивается скотчем, липкой лентой или бумагой. Непосредственно перед закрыванием коробку сверху часто заклеивают листом целлофана, чтобы впослед- ствии, при открывании, случайно не повредить насекомых. Не следует пересылать материал в энтомологических коробках и ящиках со стеклянными крышками, так как они легко могут разбиться; если все же приходит- ся их использовать, то стекло крышки изнутри надо заклеить бумагой или марлей. Закрытая коробка с материалом помещается в середину посылочного ящика, который предварительно заполняется сухими обрезками мягкого пенопласта или по- ролона, ватой, бумажной лентой, древесными стружками, гофрированным картоном или другим подобным материалом, выполняющим функцию амортизатора. В один посылочный ящик можно уложить несколько небольших коробок с насекомыми, отделяя их друг от друга достаточно толстым слоем упаковочного материала. Энтомологический материал, хранящийся в консервирующей жидкости, гото- вится к пересылке следующим образом. Дно и стенки банки, в которой находятся пробирки с насекомыми, обкладываются ватой; сами пробирки сверху под проб- кой банки также закрываются слоем ваты, которая впитывает излишек консер- вирующей жидкости. Все это позволит сохранить пробирки в целости. Плотно закупоренные банки упаковывают в посылочные ящики так же, как и коробки с наколотыми насекомыми. Препараты на предметных стеклах при подготовке к пересылке составляют в блоки (до 10 стекол в каждом). При этом основное внимание должно быть на-
324 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых правлено на то, чтобы стекла не соприкасались друг с другом. Для этого обычно между стеклами, по бокам, кладутся укороченные спички (по ширине стекол) или узкие полоски из картона. Можно еще при этикетировании препаратов, пред- усмотрев возможность их пересылки, наклеивать этикетки на прямоугольники из картона, толщина которого превышает высоту препарата. Самое верхнее стекло должно быть чистое, без препарата. Составленный таким образом блок из пред- метных стекол обертывается бумагой, перевязывается нитками или перетягивается резиновым кольцом, а затем завертывается в толстый слой ваты и помещается в прочную коробку или посылочный ящик. Описанные выше методы пересылки энтомологического материала следует использовать и при его транспортировке курьером. Материал при этом будет до- ставлен без повреждений.
ЛИТЕРАТУРА А.с. 1194346 СССР, МКИ А 01 М 1/00. Устройство для отлова насекомых / Б.Н. Орлов, Н.В. Кор- нева, Н.Ф. Васильев. 4 с.: ил. А.с. 1528413 СССР, МКИ А 01 М 1/00. Сачок для энтомологического кошения / Н.Н. Посколь- ный, Н. Горбунов. 4 с.: ил. А.с. 1579487 СССР МКИ А 01 К 67/00. Складной садок для насекомых / М.Н. Цуриков (СССР). 4 с.: ил. А.с. 3807081 США, А 01 m 1/10. Insect trap. Ловушка для сбора насекомых / L.C. Chapiewsky (США). А.с. 843898 СССР, МКИ А 01 К 67/00. Садок для насекомых / А.Д. Логачев. 4 с.: ил. Андреев С.В., Мартенс Б.К., Молчанов В.А. 1976. Биофизические методы в защите растений от вредителей и болезней. Л.: Колос. 168 с. Баканов А.И. 1979. Новые модели дночерпателей и оценка агрегированности бентоса // Гидро- биологический журнал. Т.15. № 3. С.87-93. Барабанщиков Б.И., Стекольщиков М.Г., Сапаев Е.А. 1983. Рекомендации по охране и увеличению численности диких пчел — опылителей люцерны в колхозах и совхозах ТАССР. Казань: Изд-во Казан, ун-та. 20 с. Барышев И.А. 2006. Методики изучения дрифта гидробионтов в малых реках: обзор // Биология внутренних вод. № 3. С.91-96. Баскина В., Фридман Г. 1926. Статистическое исследование животного населения двух сообществ Камской поймы // Тр. Биол. нти. Ин-та и биолог, станции при Пермском’гос. ун-те. Пермь. Т.1. Вып.2-3. С. 183-295. Бер В.Г 1971. Насекомые — вредители ботанических коллекций и борьба с ними. Л.: Наука. 80 с. Берлов О.Э. 2003. Методика изготовления сухих постоянных препаратов вывернутых эндофал- лусов. Web-page. Зоологический институт РАН. СПб. http://www.zin.ru/Animalia/Coleoptera/ rus/endopha2. htm. Близняк Е.В. 1952. Водные исследования. М.: Речиздат. 652 с. Богданов-Катьков Н.Н. 1947. Руководство к практическим занятиям по общей энтомологии. М.-Л.: Сельхозгиз. 356 с. Борхениус Н.С. 1950. Сбор и изучение червецов и щитовок. М.-Л.: Изд.-во АН СССР. С.21-22. Брамсон К.Л. 1896. Вредные насекомые и меры борьбы с ними (практическая энтомология). 2-е изд. Т.2. Екатеринослав: Т-во Печатня С.Яковлева. 360 с. Брехов О.Г. 2006. Методические рекомендации по выполнению научно-исследовательских работ по энтомологии (для студентов отделений очного и заочного обучения). Волгоград: изд-во «Перемена». 28 с. Ведерников В.Е. 2003. Полевой эксгаустер — новое техническое решение // Евразиатский эн- томологический журнал. Т.2. Вып.З. С. 220. Вовейков Г.С. 1959. Разведение шмелей в целях опыления красного клевера. М.-Л.: Изд-во АН СССР. 72 с. Вшивкова Т.С. 2001. Megaloptera. Большекрылые, или Вислокрылки // С.Я. Цалолихин (ред.). Определитель пресноводных беспозвоночных России и сопредельных территорий. Т.5. СПб.: Наука. С.373-380. Гапонов С.П., Хицова Л.Н. 2005. Почвенная зоология: учебное пособие для студентов класси- ческих университетов России. Воронеж: Воронеж, гос. ун-т. 143 с. Герасимов А.М. 1952. Гусеницы. 4.1 // Фауна СССР. Насекомые чешуекрылые. Т.1. Вып.2. М.-Л.: Изд-во АН СССР. 338 с.
326 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Гиляров М.С. 1937. Сухая фиксация формы и окраски личинок почвенных вредителей // Защита растений. № 15. С.95-96. Гиляров М.С. 1975. Учет крупных почвенных беспозвоночных (мезофауны) // Методы почвен- но-зоологических исследований. М.: Изд-во АН СССР. С. 12-29, 95-96. Голуб В.Б., Колесова Д.А., Шуровенков Ю.Б., Эльчибаев А.А. 1980. Энтомологические и фи- топатологические коллекции, их составление и хранение. Воронеж: Изд-во Воронежского гос. ун-та. 228 с. Голуб В.Б., Цуриков М.Н., Канюкова Е.В. 1994. Предварительные результаты изучения мигра- ции полужесткокрылых (Heteroptera) в Усманском бору // Состояние и проблемы экосистем Усманского бора: Тр. биол. учеб.-науч. базы Воронеж, гос. ун-та «Веневитиново». Воронеж. Вып.4. С. 109-113. Горностаев ГН. 1970. Насекомые СССР: Определитель. М.: Мысль. 372 с. Городков К.Б. 1977. Рекомендации по составлению этикеток для наколотых насекомых // Систе- матика и эволюция двукрылых насекомых. Материалы I диптерологического симпозиума (6-8 апреля 1976 г., Ленинград). Л.: ЗИН АН СССР. С.119-121. Грамма В.Н., Заговора А.В. 1976. Методические рекомендации по увеличению численности диких пчел — опылителей люцерны. Харьков. 21 с. Долгов Г.И., Никитинский Я.Я. 1927. Гидробиологические методы исследования // Стандартные методы исследования питьевых и сточных вод. М.: Мосполиграф. С. 142-217. Дорохова Г.И., Карелин В.Д., Кирияк И.Г. и др. 1989. Полезная фауна плодового сада: справоч- ник. М.: Агропромиздат. 318 с. Душенков В.М., Макаров К.В. 2000. Летняя практика по зоологии беспозвоночных: учеб, по- собие для студ. высш. пед. учеб, заведений. М.: издательский центр «Академия». 256 с. Дядичко В.Г. 2004 (2005). Эколого-фаунистический обзор водных плотоядных жуков (Coleoptera: Hydradephaga) Одесской области // Известия Харьковского энтомологического общества. Т.12. Вып.1-2. С.45-60. Дядичко В.Г. 2009. Водные плотоядные жуки (Coleoptera, Hydradephaga) Северо-Западного При- черноморья. Одесса: «Астропринт». 204 с. Жадин В.И. 1960. Методы гидробиологического исследования. М.: Высшая школа. 192 с. Жантиев Р.Д. 1976. Жуки-кожееды (семейство Dermestidae) фауны СССР. М.: Изд-во Москов- ского ун-та. 182 с. Жгарева Н.Н. 1979. Новая модель зарослечерпателя // Биология внутренних вод. № 42. С.28-30. Жердев В.Н., Лынов А.В., Шевырева А.Е. 2010. Возможности использования светоловушки для сбора бентосных беспозвоночных // Актуальные вопросы современной энтомологии и эко- логии насекомых: материалы международной научной конференции, посвященной памяти А.И. Фомичева, Борисоглебск, 3—4 декабря 2009 г. Борисоглебск. С. 12-15. Жирков И.А. 2010. Жизнь на дне. Био-география и био-экология бентоса. М.: КМК. 453 с. Загуляев А.К. 1965. Моли и огневки — вредители зерна и продовольственных запасов. М.-Л.: Наука. 271 с. Зерова М.Д., Котенко А.Г., Толканиц В.И., Свиридов С.В., Фурсов В.Н., Ткачев В.М., Матвиев- ский А.С., Рубец Н.М. 1986. Рекомендации по выявлению, определению и использованию насекомых-энтомофагов главнейших вредителей яблоневого сада в Лесостепи Украины. Киев: Институт зоологии. 65 с. Зерова М.Д., Сузугина Л.Я. 1994. Хальциды-семееды Палеарктики. Киев: Паукова думка. 237 с. Иванов В.Д., Григоренко В.Н., Арефина Т.И. Trichoptera. Ручейники // С.Я. Цалолихин (ред.). Определитель пресноводных беспозвоночных России и сопредельных территорий. Т.5. СПб.: Наука. С.7-72. Инструкция по сбору, хранению и пересылке насекомых. 1979 / Л.М. Копанева, Г.И. Дорохова. Ленинград-Пушкин: ВИЗР, типография ВИР. 48 с.
Литература Ф 327 Кержнер И.М., Ячевский Т.Л. 1964. Отряд Hemiptera — полужесткокрылые, или клопы // Г.Я. Бей-Биенко (ред.). Определитель насекомых Европейской части СССР. Т.1. М.-Л.: Наука. С.655-845. Кириченко А.Н. 1957. Методы сбора настоящих полужесткокрылых и изучения местных фаун. М.-Л.: Изд-во АН СССР. 122 с. Климов В.И. 1979. Опыт мечения жуков-плавунцов рода Dytiscus (Coleoptera, Dytiscidae) // Вестник зоологии. № 3. С.59-60. Козлов М.А. 2001. Hymenoptera. Перепончатокрылые // Цалолихин С.Я. (ред.). Определитель пресноводных беспозвоночных России и сопредельных территорий. Т.5. СПб. С.381- 386. Козлов М.А., Нинбург Е.М. 1971. Ваша коллекция. М.: Просвещение. 160 с. Конаков Н.Н., Онисимова З.Г. 1936. Биоценометр для учета фауны насекомых травяного по- крова // Защита растений от вредителей. № 6. С. 125-127. Константинов А.С. 1979. Общая гидробиология. М.: Высшая школа. 480 с. Крыжановский О.Л., Емец В.М. 1972. К методике препаровки гениталий у жуков // Энтомол. обозр. Т.51. Вып.1. С. 197-199. Крылов А.В. 2006. Гидробиология малых рек. Введение: научно-популярное издание. Рыбинск: Изд-во ОАО «Рыбинский Дом печати». ПО с. Кулик А.В. 1986. Учет перезимовавших мигрирующих насекомых методом изоляции // Зоол. журн. Т.65. № 6. С.924-927. Курашов Е.А. 2007. Методы и подходы для количественного изучения пресноводного мейобенто- са // Актуальные вопросы изучения микро-, мейозообентоса и фауны зарослей пресноводных водоемов: Тематические лекции и материалы I Между нар. школы-конф., Россия, Борок, 2-7 октября. Н. Новгород: «Вектор» ТиС. С.5-35. Макаров К.В., Черняховская Т.А. 1990. Фенология развития и структура популяции Loricera pilicomis F. (Coleoptera, Carabidae) в условиях агроценоза // Структура и динамика популяций почвенных и наземных беспозвоночных животных. М. С.21-32. Мейер Н.Ф. 1937. Методика учета и выведения паразитических насекомых. Л.: ВИЗР, ВАСХНИЛ. 18 с. Мержеевская О.Л. 1965. Новый фиксатор для гусениц // Зоол. ж. Т.52. Вып. 2. С. 1234-1235. Миноранский В.А., Джумайло Н.Б. 1980. Новый прием сбора и учета относительной числен- ности водных жесткокрылых // Фауна, экология и охрана животных Северного Кавказа. Нальчик. С. 142-144. Мишустин Р.И. 2003. Возможность применения силиконов для изготовления сухих постоянных препаратов вывернутых эндофаллусов. Web-page. Insect-Hunter, http://insect-hunter.narod.ru/ sil-ef.htm. Монастырский А.Л., Горбатовский В.В. 1991. Массовое разведение насекомых для биологической защиты растений: справлчник. М.: Агропромиздат. 240 с. Нарчук Э.П. 1975. Удобный метод хранения препаратов в жидкой среде в коллекции // Энтомол. обозр. Т 54. Вып 3. С.676-677. Негробов В.В., Хмелев К.Ф. 1999. Консорционный анализ семейства кувшинковых Nymphaea- ceae Salisb. бассейна Среднего Дона. Воронеж: Изд-во ВГПИ. 183 с. Николаева Н.Е. 2001. Новая конструкция подводной светоловушки и некоторые возможности ее использования // Тез. докл. науч. конф, аспирантов и студентов. Тверь. С.57-58. Николаева Н.Е. 2004. Модификация подводной светоловушки для сбора и изучения гидробион- тов // Чтения памяти профессора В.В. Станчинского. Вып.4. Смоленск. С.443—446. Николаева Н.Е. 2005. Возможности использования светодиодов (LED) в качестве источника света в подводной светоловушке для изучения гидробионтов // Вестник Тверского гос. ун-та. Сер. «Биология и экология». Вып.1. С. 103-107.
328 В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Николаева Н.Е. 2007. Применение светодиодов (LED) для привлечения гидробионтов в подво- дные светоловушки // Современные направления теоретических и прикладных исследований: сборник научных трудов по материалам международной научно-практической конференции. Одесса, 15-25 марта 2007 г. Т.20. Биология. Сельское хозяйство. Одесса. С. 11-14. Николаева Н.Е. 2008. Новая конструкция подводной светоловушки и ее использование для сбора гидробионтов. // Зоол. журн. Т.87. № 9. С.1134-1136. Никольская М.Н., Герасимов А.М. 1937. Инструкция по сбору и хранению насекомых. Л.: ВСХНИЛ. 21 с. Никольская М.Н., Яснош В.А. 1966. Афелиниды Европейской части СССР и Кавказа (Chalci- doidea, Aphelinidae). М.-Л.: Наука, Ленингр. отд-ние. 295 с. Определитель насекомых Европейской части СССР. Под ред. Г.Я. Бей-Биенко. 1965. Т.2. Л.: Наука. 668 с. Павлович С.А. 1947. Составление коллекций по естествознанию: Пособие для учителей. Л.: Учпедгиз. 268 с. Палий В.Ф. 1970. Методика изучения фауны и фенологии насекомых. Воронеж: Центр.-Чернозем. книж. изд-во. 189 с. Панкратова В.Я. 1970. Личинки и куколки комаров подсемейства Orthocladiinae фауны СССР (Diptera, Chironomidae = Tendipedidae) Л.: Наука. 344 с. Паньков Н.Н., Шадрин Н.Ю., Панькова Н.В. 1998. Гидробиологический скребок как количествен- ный прибор биоценологических исследований донной фауны в горных и предгорных реках // Экология: проблемы и пути решения: тез. докл. VI межвуз. конф, студентов, аспирантов и молодых ученых. Пермь. С. 126-128. Патент 46147 Российская Федерация, МПК 7А 01 MI/06, G 01 N1/22. Устройство для улавливания мелких объектов из воздуха / Цуриков М.Н., Гульбина С.Н.; заявитель и патентообладатель Государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования Воронежский государственный университет. — № 2004131783; заявл. 3.11.2004. Плавильщиков Н.Н. 1953. Юным любителям природы. М.: Молодая гвардия. 256 с. Плавильщиков Н.Н., Кузнецов Н.В. 1952. Собирание и изготовление зоологических коллекций. М.: Госкультпросветиздат. 184 с. Плигинский В. 1910а. Упрощенный фотоэклектор. Русск. энтомол. обзор. 10(1); Русск. энтомол. обзор. Т. 10. № 1-2. С.123-124. Положенцев П.А. 1979. Краткая методика сбора, консервирования и воспитания лесных на- секомых (руководство для учебной практики студентов лесохозяйственного факультета по лесной энтомологии). Воронеж: типография изд-ва «Коммуна». 30 с. Потапов А.А. 1961. К методике определения численности слепней и дальности их полета // Мед. паразитол. и паразитарн. болезни. № 1. С.51-55. Пржиборо А.А. 1999. Бабочницы (Psychodidae), земноводные комары (Dixidae), хаобориды (Chaoboridae) // С.Я. Цалолихин (ред.). Определитель пресноводных беспозвоночных России и сопредельных территорий. Т.4. СПб.: Наука. С. 120-136. Приставко В.П. 1974. Привлекающие ловушки в защите растений от вредных насекомых. Об- зорная информация. М.: ВНИИТЭИСХ. 43 с. Приставко В.П. 1979. Принципы и методы экспериментальной экологии. Минск.: Наука и тех- ника. 136 с. Рубцов М.А. 1950. Сбор и выведение паразитов вредных насекомых. М.: Изд-во АН СССР. 58 с. Руководство по методам гидробиологического анализа поверхностных вод и донных отложений / Под ред. канд. биол. наук В.А. Абакумова. 1983. Л.: Гидрометеоиздат. 239 с. Рындевич С.К. 2004. Фауна и экология водных жесткокрылых Беларуси (Coleoptera: Haliplidae, Noteridae, Dytiscidae, Gyrinidae, Helophoridae, Georissidae, Hydrochidae, Spercheidae, Hydro- philidae, Hydraenidae, Limnichidae, Dryopidae, Elmidae). 4.1. Минск: УП «Технопринт». 272 с.
Литература Ф 329 Рындевич С.К., Цинкевич В.А. 2000. Сбор и определение водных и околоводных жесткокрылых. Барановичи: Барановичский гос. пед. ун-т. 146 с. Савинский П. И. 1953. Метод сохранения формы и жизненной окраски гусениц, личинок на- секомых, рыб и других объектов при высушивании // Зоол. журн. Т.32. Вып.6. С. 1285-1287. Савицкий Б.П., Гончаров М.А., Залеская Л.Ф., Силина А.Е. 1986. Ловушка-конус для изучения вылета развивающихся в воде насекомых (инструкция по устройству и применению). Изд. 2-е, испр. Гомель: типография БелИИЖТа. 12 с. Самков М.Н. 1986. Перспективы использования оконных ловушек в энтомологии // Экол. аспекты изуч. и охраны флоры и фауны СССР. М. С.28-29. Самков М.Н., Чернышев В.Б. 1983. Оконные ловушки и возможности их использования в энто- мологии // Зоол. журн. Т.62. Вып.10. С. 1571-1574. Сахаров А.Л., Струков В.В. 1927. К вопросу изучения ночной энтомофауны и в частности бабочек сем. Noctuidae // Опытная агрономия Юго-Востока. Т.6. Вып.2. С.249-262. Скугравы В., Новак К. 1961. Изучение энтомоценозов полевых культур // Энтомол. обозр. Т.15. Вып.4. С.807-814. Скуфьин К.В. 1951. Опыт применения чучелообразной ловушки для слепней // Зоол. журн. Т.ЗО. Вып.4. С.378-380. Соколов Н.Н. 1909. Руководство к собиранию и воспитанию насекомых. Энтомологические коллекции. СПб. 268 с. Справочник пестицидов и агрохимикатов, разрешенных к применению на территории Российской Федерации. 2009. М.: ООО Изд-во «Агрорус». 619 с. Старк Н.К. 1930. Об энтомофауне типов леса // Защита растений. №6. 36 с. Тимофеев А.Н. 1996. Использование модифицированного термоэклектора Берлезе-Тульгрена при изучении микроартропод // Состояние и проблемы экосистем Среднего Подонья: Тр. биол. учеб.-науч. центра Воронеж, гос. ун-та «Веневитиново». Вып.8. Воронеж. С.78-79. Тихомирова А.Л. 1975. Учет напочвенных беспозвоночных // Методы почвенно-зоологических исследований. М. С.73-85. Тряпицын В.А., Шапиро В.А., Щепетильникова В.А. 1982. Паразиты и хищники вредителей сельскохозяйственных культур. Л.: Колос. 256 с. Фасулати К.К. 1971. Полевое изучение наземных беспозвоночных. М.: Высшая школа. 424 с. Фурсов В.Н. 2003. Как собирать насекомых-энтомофагов (сбор, содержание и выведение пара- зитических перепончатокрылых). Киев: Логос. 66 с. Цуриков М.Н. 1998. Программа комплексных круглогодичных исследований беспозвоночных. М.: Экосистема. 21 с. Цуриков М.Н. 2002. Два устройства для временного обездвиживания беспозвоночных // Зоол. журн. Т.81. Вып.1. С. 118-119. Цуриков М.Н. 2006а. Три ловушки с приманками для сбора беспозвоночных // Зоол. журн. Т.85. №5. С.656-658. Цуриков М.Н. 20066. Простые ловушки для сбора беспозвоночных // Зоол. журн. Т.85. №6. С.760-765. Цуриков М.Н. 2006в. Два устройства для камеральной обработки сборов насекомых // Зоол. журн. Т.85. №7. С.893-895. Цуриков М.Н., Цуриков. С.Н. 2001. Природосберегающие методы исследования беспозвоночных животных в заповедниках России // Тр. Ассоциации особо охраняемых природных терри- торий Центрального Черноземья России. Вып. 4. Тула. 130 с. Чувахин В.С. 1957. Методы борьбы с вредителями и болезнями сельскохозяйственных куль- тур // Пособие по борьбе с вредителями и болезнями сельскохозяйственных культур. М.: Сельхозгиз. С.53-93. Шапошников Г.Х. 1952. Наставление к собиранию тлей. М.-Л.: Изд-во АН СССР. 21 с.
330 В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Шарков А.В. 1985. Энциртиды (Hymenoptera, Chalcidoidea, Encyrtidae) юга Дальнего Востока СССР: Автореф. дис. ... канд. биол. н. Л.: Зоологический ин-т АН СССР. 19 с. Шатровский А.Г. 1999. Предложения по оптимизации гидробиологической экипировки // Из- вестия Харьковского Энтомологического Общества. Т.7. Вып.2. С. 168-169. Шевченко В.В. 1956. Определитель слепней Казахстана. Алма-Ата: Изд-во. АН Каз. ССР. 328 с. Шевырев И. 1912. Паразиты и сверх паразиты из мира насекомых // Энтомологический вестник. Т.1. № 1. С.1-77. Шиленков В.Г. 1999. Жужелицы рода Carabus L. (Coleoptera, Carabidae) Южной Сибири. Иркутск: Изд-во Иркутского ун-та. 75 с. Щербаков Б.С. 1953. Насекомые как объект школьной работы. М.: Изд-во. 319 с. Экосистема малой реки в изменяющихся условиях среды / А.В. Крылов, А.А. Бобров (ред.). 2007. М.: Т-во научных изданий КМК. 372 с. Экспериментальная мастерская: буклет. 2005. Борок: Институт биологии внутренних вод РАН. 6 с. Якобсон Г.Г. 1921. Собирание и хранение насекомых и составление из них коллекций // Прак- тическая энтомология. СПб. Вып.9. 4.1. 107 с. Ярошенко В.А., Замотайлов А.С., Тхабисимова А.У., Шаповалов М.И. 2006. Полевая практика по зоологии беспозвоночных. Майкоп: Ред.-изд. отдел Адыгейского гос. ун-та. 90 с. A’Brook J. 1973. Observations on different methods of aphid trapping // Ann. Appl. Biol. Vbl.74. P.263-267. Aiken R.B., Roughley R.E. 1985. An effective trapping and marking method for aquatic beetles // Proc. Acad. Natur. Sci. Phil. Vol. 137. P.5-7. Andersson H. 1972. En snabb och billing metod att montera genetal-preparat i glycerin // Entomo- logen. Vol. 1. No 2. P.1-2. Anonymous. 2005. Live trapping in Denmark // Latissimus. 2005. No 20. P.31. Aguiar A.P., Sharkov A. 1997. Blue pan traps as a potential method for collecting Stephanidae (Hymenoptera) // J. Hymenoptera Res. Vbl.6(2). Р.422-Л23. Balfour-Browne F. 1928. ‘The Balfour-Browne’ water net // Entomol. Mon. Mag. Ser.3. Vol. 14(64). No 157-168. P.58-61. Balogh J. 1958. Lebensgemeinschaften der Landtiere. Budapest-Berlin. 560 p. Barber H. 1931. Traps for cave-inhabiting insects // J. Elisha Mitchell Sci Soc. Vbl.46. P.259-266. Barlow N.D. 1989. A simple trap for porina (Wiseana ssp.: Lepidoptera) (Lepidoptera, Hepialidae) // N. Z. Entomol. Vol.12. P.87-89. Barstow B.B., Edwards C.R. 1983. A new design of clam trap for sampling aboveground arthropods row crops // J. Kans Entomol. Soc. Vbl.56. No 2. P.229-231. Berglind S.A. 1993. Habitat and status of the spider wasp Anoplius caviventris (Hymenoptera, Pom- pilidae) in Sweden // Entomologisk Tidskrift. Vbl.l 14(3). P.101-105. Berlov O. 1992. Preparati permanent! a secco dell’endofallo nel genere Carabus L. (Coleoptera, Carabidae) // Boll. Soc. Entomol. Ital. Vol. 124. No 2. P. 141-143. Bemon G. 1980. A trap for monitoring Coleoptera and phoretic mites associated with dung // Coleopterists Bull. Vol.34. No 4. P.389-391. Brancucci M. 1975. Metode de marquage des Coleopteres aquatiques // Mitt. Schweiz, entomol. Ges. Vol.48. No 3-A P.455-459. Brigham R.M., Smishek M.E. 1991. A new adhesive for use on sticky traps // Bat Research News. Vol.32. P.1-2. Broadbent I. 1948. Equipment used in trapping and identifying alate aphids // Proc. Royal Ent. Soc. London. Ser. A. Gen. Entomol. Vol.23. P.57-58. Burditt A.K.J. 1982. Mcphall traps for survey and detection // Fla Entomol. 1982. Vol.65. No 3. P.376-378. Clark W.H., Blom P.E. 1979. Use of a hand sprayer as a collecting technique // Entomol. News. Vol.90(5). P.247-248.
Литература Ф 331 Clements R.O. 1980. A collapsible emergence trap for grassland insects // Entomol. Mon. Mag. Vol. 115. No 1384. P.219-224. Culver D.J., Barnes M.M. 1977. Contribution to the Use of the Synthetic Pheromone in Monito- ring Codling Moth Populations // Journal of Economic Entomology. Vol.70. No 4. P.489- 492. Cushman R.M. 1983. An inexpensive, floating, insect-emerging trap // Bull. Environ. Contam. and Toxicol. Vol.31. No5. P.547-550. Darling D.C., Packer L. 1988. Effectiveness of malaise traps in collecting Hymenoptera: the influence of trap design, mesh sire, and location // Can. Entomol. Vol. 120. No 8. P.787-796. DeMeyer M., DeBruyn L., Janssens L. 1985. A foldable type of emergence trap И Phegea. Vol. 13. No 1. P.29-33. Dijk G van. 2006. De brede geelgerande waterroofkeer Dytiscus latissimus na 38 jaar weer in Nederland opgedoken (Coleoptera: Dytiscidae) // Ned. faun. Meded. Vbl.24. P.1-6. Durkis T.J., Reeves R.M. 1982. Barriers increase efficiency of pitfall traps // Entomol. News. Vbl.99. No 1. P.8-12. Eskafi F.M. 1980. A flashlight trap // Can. Entomol. Vol. 112. No 2. P.228. Ettinger W.S. 1979. A collapsible insect emergence trap for use in shallow standing water // Entomol. News. Vol.90. No2. P.114-117. Fairchild W.L., O’Neill M.C.A., Rosenberg D.M. 1987. Quantitative evaluation of the behavioral extraction of aquatic invertebrates from samples of sphagnum moss // Journal of Noth American Benthological Society. Vbl.6(4). P.281-287. Farr D.V 1989. Pump-aspirator for collecting small insects // N. Z. Entomol. Vol. 12. P.84-85. Femandez-Ribio F. 1985. Un neuvo modelo de trampa de lux portatil automatica para caza de insec- tos // Bol. Estac cent. ecol. Vol. 14. No 28. P.91-102. Freude H., Harde K.W., Lohse G. A. 1965. Kafer Mitteleuropas. Bd 1. Einfuhrung in die Kaferkunde // Goecke u. Evers. — Krefeld. 215 s. Gapon D.A. 2000. Inflation of heteropteran aedeagi using microcapillaries (Heteroptera: Pentatomi- dae) // Zoosystematica Rossica. Vbl.9. No 1. P. 157-160. Girikumar A., Venkateswara P.R. 1984. A low cost floating cage to trap emerging mosquitoes under urban or rural conditions // Mosquito news. Vbl.44. No 3. P.416-417. Grase I.K. 1989. A modified trap technique for monitoring Reticulitermes subterranean termite populations (Isoptera: Rhinotermitidae) // Pan-Pacif. Entomol. Vbl.65. No 4. P.381-384. Gressitt J.L., Gressitt M.K. 1962. An improved Malaise trap // Pacif. Insects. Vbl.4. P.87-90. Harding W.C., Harstock J.G., Rohwer G.G. 1966. Blacklight trap standarts for general insects survey // Bull. Entomol. Soc. Amer. Vol. 12. No 1. P.31-32. Hawkins J.H. 1936. The bionomics and control of wireworms in Maine // Maine Agric. Exper. Stat. Bull. Vol.381.P. 1-146. Hilsenhoff W.L. 1987. Effectiveness of botte traps for collecting Dytiscidae (Coleoptera) // Coleopterists Bull. Vol.41. No 4. P.377-380. Holtkamp R.H., Thompson J.I. 1985. A lightweight, self-contained insect suction sampler // J. Austral. Entomol. Soc. Vol.25. No 4. P.301-302. Huizen T.P.H. van. 1980. Species of Carabidae (Coleoptera) in which the occurrence of dispersal by flight of individuals has been shown // Entomol. ber. Vol.40. No 1. P. 166-168. Hunderford H.B., Spangler P.J., Walker N.A. 1955. Subaquatic light traps for insects and other animal organisms // Trans. Kansas. Acad. Sci. Vbl.58. No 3. P.387-407. Johnson C.G., Southwood T.R.E., Entwistle H. 1955. A method for sampling arthropods and molluscs from herbage by suction // Nature. Vol. 176. No 4481. P.559. Kalcounis M.C., Csada R.D., Brigham R.M. 1992. Axle grease as an alternative adhesive for the use on sticky traps // Csnsd. Entomol. Vol. 124. P561-562.
332 В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых Kalnins М. 2006. Protected Aquatic Insects of Latvia — Graphoderus bilineatus (DeGeer, 1774) (Coleoptera: Dytiscidae) // Latvijas Entomologs. Vbl.43. P. 132-137. Kennard W.C., Spencer J.L. 1955. A mechanical insects collector with high manoeuvrability // J. Econ. Entomol. Vol.48. No 4. Р.478-Л79. Kirk W.D.J. 1984. Ecologically selective coloured traps // Ecological Entomology. Vbl.9. P.35-41. Kluge N.J. 2004. The Phylogenetic system of Ephemeroptera. Kluver Academic Publishers. 456 p. Koch M. 1984. Wir bestimmen Schmetterlinge. Leipzig, Radebeul: Neumann Verlag. 792 p. Koese B., Cuppen J. 2006. Sampling methods for Graphoderus bilineatus (Coleoptera: Dytiscidae) // Ned. faun. Meded. Vol.24. Р.41-Л7. Koponen S., Rinne V, Clayhills T. 1997. Arthropods on oak branches in SW Finland, collected by a new trap type // Entomol. Fenn. Vol.8. No 3. P. 177-183. Kriska G., Csabai Z., Boda P, Malik P., Horvath G. 2006. Why do red and dark-colored cars lure aquatic insects? The attraction of water insects to car paintwork explaned by reflection-polarization signals // Proceedings of the Royal Society B. Vbl.273. P. 1667-1671. Kuuscla K., Pulkkinen H. 1978. A simple trap for collecting newly emerged stoneflies (Plecoptera) // Oikos. Vol.31. No 3. P.323-325. Lheritier G. 1955. Un aspirateur a poire // Entomologiste. Vol. 11. Nol. P.23-24. Lindroth C.H. 1969. The ground-beetles (Carabidae, excl. Cicindelinae) of Canada and Alaska. Part 1 // Opuscula Entomologica, Suppiementum. P.945-1192. Lumaret I.P. 1979. Un piege attractif pour la capture des insectes Coprophages et Nhcrophages // Entomologiste. Vbl.35. No 2. P.63-66. Mahari S. 1973. A new design of trap for collecting the palm weevil, Rhynchophorus palmarum (L.) // Ceylon coconut Plact. Rev. Vbl.7. No 1. P.5-7. Malaise R. 1937. A new insect trap // Entomol. Tidskr. Vbl.58. P. 148-160. Martin J.E.H. 1977. The Insects and Arachnids of Canada. Part. 1. Collecting, preparing, and preserving insects, mites, and spiders. Agriculture Canada, Research Branch. 182 p. Menzies D.R., Hagley E.A.C. 1977. A mechanical trap for sampling populations of small, active insects // Can. Entomol. Vol. 109. No 10. P. 1405-1407. Mesch W. 1955. Vbm Wert und derAnlage einer Mehlwurmhecke // Dtsch. Geflugel-Ztg. Vbl.4. No 11. S.4. Meurgues G., Ledoux G. 1966. Interet de Г etude du sac interne devagine et en extension. Annales de la Societe entomologique de France, 2: 661-669. Moericke V. 1951. Eine farbefalle zur kontrolle des fluges von blattlausen, insbesondere der pfirsichblattaus, Myzodes persicae (Sultz.) // Nachrichtenblatt der deutschen pflanzebschutz dienst (Braunschweig.). Bd 3. S.23-24. Morris H. 1922. On a method of separating insects and other Arthropods from soil // Bull. Ent. Res. Vol. 13. P. 197-200. Nelson D.B., Chamberlain R.W 1955. A light trap and mechanical aspirator operating on dry cell batteries // Mosquito News. Vol. 15. No 1. P.28-32. New T.R. 1991. Malaise trap catches of Psocoptera from Magallanes, Southern Chile // Entomol. Mon. Mag. Vol. 126. No 1520. P.35-36. Novak K., Povolny D. 1969. Metody sberu a preparace hmyzu. Academia, Praha. 243 p. Novitzky S. 1956. Hunting, collecting and rearing of Microhymenoptera // Z. angew. Entomol. Vbl.38. No3. P.355-367. Pearce M.J. 1990. A new trap for collecting termites and assessing their foraging activity // Trop. Pest Manag. Vbl.36. No 3. P.310-311. Reeves R. M. 1980. Use of barriers with pitfail traps // Entomol. News. Vbl.91. No 1. P. 10-12. Richoux P. 1988. Inventaire des coleopteres des cours d‘eau: Comparaison der methodes de preleve- ment // Natur. cam. Vol.115. No 3. P.223-228.
Литература Ф 333 Ross М.Н. 1981. Trapping experiments with the German cockroach, Blattella germanica (L.) (Dictyoptera, Blattellidae), showing differential effects from the type of trap and the environmental resources // Рос. Entomol. Soc. Wash. Vol.83. No 1. P. 160-163. Schauff M. 2001. Collecting and preserving insects and mites: techniques and tools. Web-page, USDA, Agricultural Research Service, USA. 68 p. http://www.sel.barc.usda.gov/selhome/collpress/ colpress.htm Shubeck P.P. 1976. An alternative to pitfail traps in carrion beetle studies (Coleoptera) // Entomol. News. Vol.87. No 5. P.176-178. Southwood T.R.E. 1978. Ecological methods, with particular reference to the study of insect popula- tions. 2d edition. London: Chapman & Hall. 524 p. Stamey E.A., Raff K.E 1988. Collection method for Neu York Wecril, Ithycerus noveboracensis, adults (Coleoptera: Ithyceridae) // Entomol. News. Vol.99. No 3. P. 164-166. Stehr F. W. 1991. (ed.) Immature Insects. Vbl.2. Order Coleoptera. Kendall/Hunt Publishing company. 658 p. Sturani M. 1967. Ligula ed endofallo in alcune specie appartenenti ai generi Carabus Linnaeus, Calosoma Weber e Campalita Motschoulsky // Boll. Soc. entom. ital. Vbl.97. P.9-21. Summers C.G., Garrett R.E., Zalom F.G. 1984. New suction device for sampling arthropod popula- tions // J. Econ. Entomol. Vol.77. No 3. P.817-823. Takagi K. 1974. Monitoring of Hymenopterous parasite in tea field // Bulletin of National Research Institue of Tea, Shizuoka, Japan. No 10. P.91-131. Takagi K. 1981. Evaluation of parasitoids of latent pests with a sticky syction trap // Proceedings of International Society of Citriculture. Vbl.2. P.627-630. Taylor L.R. 1962. The absolute efficiency of insect suction traps //Ann. Appl. Biol. Vbl.5O. Р.405-Л21. Thalenhorst W. 1955. Ein handlicher Insekten-Zuchtbehalter // Z. Pflanzenkrankh. Vbl.62. No 10. P.625-626. Thorsteinson A.J., Bracken G.K., Hanec W. 1965. The orientation behaviour of horse flies and deer flies (Tabanidae, Diptera) // Entomol. exp. et appl. Vol.8. P. 189-192. Thuroczy C. 2001. Systematic Parasitoid Laboratory // Central Plant Protection and Soil Conservation Service, Koszeg, Hungary: Agroinform Publishing and Pront. Ltd. P.1-16. Townes H.K. 1962. Design for a Malaise trap // Proc. Entomol. Soc. Wash. Vbl.64. No 4. P.253-262. Townes H.K. 1972. A light weight Malaise trap // Ent. News. Vbl.83. P.239-267. Trojan P. 1958. The ecological niches of certain species of horse-flies (Diptera, Tabanidae) in the Kampinos Forest near Warsaw // Ecol. Polsca. Vbl.6. No 2. P.53-129. Tullgren A. 1917. En enkel apparat fur automatkst vittjande av sailgods // Entomol. tidskr. Vbl.38. P.97-100. Vidlinka L. 1989. Poupitie stromovoch fotoeklektorov a umeleho kmena na zistovanie migracie’ chrobakov po kmenoch stromov // Biolygia. Vol.44. No 10. P.941-952. Wainhouse D.A. 1980. Portable suction trap for sampling small insects // Bull. Entomol. Res. Vbl.70. No3. Р.491-Л94. Walker T.J. 1985. Permanent traps for monitoring bufferfly migration: tests in Florida, 1979-84 // J. Lepidoptera Soc. Vbl.39. No 4. P.313-320. Walker T.J., Lenczewski B. 1989. An inexpensive portable trap for monitoring butterfly migration // J. Lepidoptera Soc. Vbl.43. No 4. P.289-298. Weseloh R.M. 1986. Host and microhabit preferences of forest parasitic Hymenoptera: inferences from captures on colored sticky traps // Environmental Entomology. Vol. 15(1). P.64-70. Williams C.B. 1948. The Rothamsted light trap // Proc. Roy. Entom. Soc. London. Vbl.23. P.80-85. Wyniger R. 1953. Beitrage zur Oekologie, Biologie und Zucht einiger europeischer Tabanidae // Acta tropica. Vol. 10. No 4. S.310-347. Zolnerowich G., Heraty J.M., Wooley J.B. 1990. Separation of insect and plant material from screen- sweep samples // Entomol. News. Vol. 101. No 5. P.301-306.
СОДЕРЖАНИЕ Предисловие.............................................................3 Глава 1. Типы биологических коллекций...................................6 Глава 2. Сбор наземных насекомых........................................8 2.1. Необходимое оборудование для сбора наземных насекомых и методы работы с ним..........................................................8 2.1.1. Различные типы и конструкции сачков..........................8 2.1.2. Выборка насекомых из сачка. Различные конструкции эксгаустеров.25 2.1.3. Ловчие пробирки и другие приспособления для сбора насекомых....34 2.1.4. Замаривание насекомых. Морилки..............................35 2.2. Дополнительное полевое снаряжение энтомолога....................38 2.2.1. Лопатки, ножи, пила, топорик................................38 2.2.2. Пинцеты, лупа...............................................39 2.2.3. Приспособления для мягкого захвата и удержания беспозвоночных..40 2.2.4. Полевые сумки и контейнеры..................................41 2.2.5. Полевой дневник, карандаши, ручки, компас, карты, персональный навигатор..........................................................43 2.3. Специальное оборудование для хранения и первичной обработки материала при проведении экологических исследований............................44 2.3.1. Компактный блок емкостей для хранения беспозвоночных........45 2.3.2. Пробирки и банки для сохранения насекомых живыми............45 2.3.3. Контейнер для хранения живых насекомых......................47 2.3.4. Приспособления для проведения экспресс-анализа собранных материалов............................................................49 2.3.5. Сепаратор для сортировки наземных членистоногих по их размерам.51 2.3.6. Устройство для определения живых беспозвоночных................52 2.4. Методы сбора, ловушки и приспособления для сбора хортобионтов, тамнобионтов и летающих насекомых....................................54 2.4.1. Банки и пластиковые пакеты..................................54 2.4.2. Полотно.....................................................54 2.4.3. Волокуши....................................................55 2.4.4. Ловчие конусы...............................................55 2.4.5. Ловушки для сбора антофилов.................................56 2.4.6. Кошельковая ловушка для хортобионтов........................58 2.4.7. Ловушка для прямокрылых.....................................60 2.4.8. Биоценометры и приемы работы с ними.........................61 2.4.9. Ловушки Малеза..............................................62 2.4.10. Портативная ловушка палаточного типа.......................65 2.4.11. «Оконные» ловушки..........................................67 2.4.12. Портативная оконная ловушка................................68
Содержание 335 2.4.13. Сетчатая мухоловка.........................................70 2.4.14. Ловушка для мух и ос.......................................70 2.4.15. Комбинированные ловушки — барьерные, оконные и Малеза......71 2.4.16. Ловушка для сбора мигрирующих насекомых-хортобионтов и изучения их миграций.............................................72 2.4.17. Методика отлова мелких летающих насекомых..................73 2.4.18. Всасывающие ловушки........................................74 2.4.19. Насос-ловушка для скрытноживущих беспозвоночных............76 2.4.20. Устройство для улавливания мелких насекомых из воздуха.....78 2.5. Методы сбора дендробионтов......................................79 2.5.1. Сбор насекомых в кроне деревьев.............................79 2.5.2. «Стряхивающие» ловушки......................................83 2.5.3. Сбор насекомых на стволах деревьев и стволовые ловушки......84 2.5.4. Ловушки для сборов насекомых на горизонтальных ветвях.......90 2.5.5. Ловчие деревья, ветви, пояса, ловушки-накопители............92 2.5.6. Ловушка для паразитов и комменсалов птиц-дуплогнездников....94 2.6. Клейкие, пищевые и другие приманочные ловушки...................96 2.6.1. Клейкие ловушки.............................................96 2.6.2. Паточные ловушки............................................97 2.6.3. Ловушки с приманкой в емкости...............................99 2.6.4. Желтые ловушки (тарелки, чашки) Мерике..........•..........101 2.6.5. Приспособление для подкормки антофилов.....................104 2.6.6. Половые ловушки (секс-ловушки).............................105 2.6.7. Водные ловушки («ловушки смерти»)..........................107 2.7. Лов на свет и с помощью светоловушек...........................107 2.7.1. Обычные светоловушки.......................................109 2.7.2. Контейнер-накопитель для светоловушки......................111 2.7.3. Микросветоловушка..........................................113 2.7.4. Светоловушка для герпетобионтов............................115 2.7.5. Почвенная светоловушка.....................................116 2.7.6. Светоловушка с сепаратором.................................117 2.7.7. Комбинированные ловушки....................................117 2.8. Сбор герпетобионтов, почвообитающих насекомых, обитателей дупел, муравейников и экскрементов.........................................118 2.8.1. Ручной сбор................................................118 2.8.2. Энтомологическое сито......................................119 2.8.3. Почвенные сита.............................................120 2.8.4. Ловушка для сбора и изучения миграций насекомых-герпетобионтов («миграционная» ловушка)..........................................120 2.8.5. Четырехсекторная миграционная ловушка......................122 2.8.6. Ловушка для мелких беспозвоночных-герпетобионотов..........122 2.8.7. Почвенная ловушка с сепаратором............................123 2.8.8. Устройства для проведения экспресс-анализа состава и численности герпетобионтов....................................................12-
336 В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых 2.8.9. Прямоугольная рама для проведения экспресс-анализа состава и численности герпетобионтов........................................124 2.8.10. Устройство для проведения экспресс-анализа на круге........125 2.8.11. Ловчие ямы, канавки и простейшие почвенные ловушки........126 2.8.12. Почвенные ловушки с приманкой.............................129 2.8.13. Почвенная ловушка с приманкой и универсальным зажимом......130 2.8.14. Ловушка для копрофагов и некрофагов.......................131 2.9. Сбор почвообитающих насекомых..................................133 2.9.1. Сбор насекомых методом почвенных раскопок..................133 2.9.2. Ловушка для сбора и изучения миграций почвообитающих насекомых... 136 2.9.3. Бур для оперативной установки почвенных ловушек.............138 2.9.4. Бур для взятия почвенных проб...............................139 2.9.5. Бур и ловушка для взятия проб из нор и дупел животных......140 2.9.6. Ловушка для мелких беспозвоночных мирмекофилов.............142 2.10. Сбор беспозвоночных методом флотации и на экскременты.........143 2.11. Сбор насекомых с помощью эклекторов...........................145 2.11.1. Традиционные полевые фотоэклекгоры........................145 2.11.2. Фотоэклектор для хортобионтов.............................146 2.11.3. Портативный фотоэклектор для сбора хортобионтов...........148 2.11.4. Ловушка-сепаратор (фотоэклектор) Туроци...................150 2.11.5. Полевые термоэклекторы....................................152 2.11.6. Лабораторные фотоэклекгоры................................153 2.11.7. Термофотоэклекгоры (комбинированные эклекгоры)............154 2.12. Особенности сбора некоторых специфических групп наземных насекомых............................................................155 2.12.1. Тли.......................................................155 2.12.2. Кокциды, червецы, щитовки.................................157 2.12.3. Трипсы....................................................157 2.13. Сбор и воспитание гусениц чешуекрылых..........................159 2.13.1. Сбор гусениц..............................................159 2.13.2. Воспитание гусениц........................................160 2.14. Сбор и выведение паразитических перепончатокрылых и других насекомых...........................................................161 2.14.1. Сбор имаго паразитов......................................161 2.14.2. Выведение паразитов.......................................162 2.15. Компактные садки для насекомых................................168 2.15.1. Складной садок............................................168 2.15.2. Шаровидный раскладной садок...............................169 2.15.3. Универсальный садок.......................................170 2.16. Некоторые рекомендации по методике проведения сезонных сборов беспозвоночных......................................................172 2.16.1. Метод отлова беспозвоночных в период первых заморозков....172 2.16.2. Способы отлова беспозвоночных под снегом..................173 2.16.3. Метод отлова беспозвоночных в период таяния снега.........174
Содержание Ф 337 2.16.4. Метод весеннего учета вылетающих с зимовки насекомых с помощью капроновой сетки........................................175 2.16.5. Методика сбора энтомологического материала в период выкармливания птенцов вблизи гнезд.................................175 Глава 3. Сбор околоводных и амфибиотических насекомых.................177 3.1. Накопители околоводных насекомых................................177 3.2. Рама для отлова околоводных насекомых..........................178 3.3. Ловушки для отлова вылетающих амфибиотических насекомых (имагоуловители)....................................................178 3.3.1. Стационарные неразборные имагоуловители....................179 3.3.2. Складной имагоуловитель....................................182 3.3.3. Плавающая ловушка-садок....................................182 3.3.4. Самофиксирующая ловушка Боруцкого..........................183 3.3.5. Самофиксирующая ловушка Кашмэна............................183 3.3.6. Антометр...................................................184 3.4. Выведение амфибионтов в лабораторных условиях..................184 3.5. Выведение амфибионтов в природе................................186 3.6. Природосберегающие методы сбора амфибионтов....................188 3.6.1. Сбор паутин по берегам водоемов............................188 3.6.2. Сбор экзувиев стрекоз......................................188 Глава 4. Сбор насекомых-гидробионтов..................................189 4.1. Основные методы сбора гидробионтов.............................189 4.2. Методы активного лова гидробионтов.............................190 4.2.1. Сбор сачком. Конструкции гидробиологических сачков.........190 4.2.2. Метод сбора взмучиванием...................................192 4.2.3. Ловушка для личинок комаров-звонцов........................192 4.2.4. Методика сбора скребком....................................193 4.2.5. Драги и тралы..............................................194 4.2.6. Дночерпатели...............................................197 4.2.7. Бентометр..................................................205 4.2.8. Каменодоставатели..........................................206 4.2.9. Зарослечерпатель...........................................206 4.2.10. Грабли, вилки, кошки......................................207 4.2.11. Метод выплескивания.......................................208 4.2.12. Осмотр различных погруженных субстратов...................208 4.2.13. Сбор обитателей мхов и торфа..............................209 4.3. Методы активного привлечения насекомых-гидробионтов............209 4.3.1. Лов на свет над водой.....................................209 4.3.2. Привлекающие горизонтальные поверхности...................210 4.3.3. Подводные светоловушки....................................210 4.3.4. Методы сбора и изучения насекомых-гидробионтов с помощью бесприманочных и дрифтовых ловушек и искусственных укрытий........214 4.3.5. Ловушка из двух пластин....................................215
338 Ф В.Б. Голуб, М.Н. Цуриков, А.А. Прокин. Коллекции насекомых 4.3.6. Вороночные (бутылочные), «типа верши», ловушки...........215 4.3.7. Искусственные укрытия.....................................217 4.3.8. Искусственно помещенные в воду субстраты..................217 4.3.9. Дрифтовые довушки.........................................219 4.4. Природосберегающие методы (проведение наблюдений).............224 4.4.1. Наблюдения с маской и аквалангом..........................224 4.4.2. «Корейское окно»..........................................224 4.4.3. Мечение водных насекомых..................................225 Глава 5. Обработка материала для коллекций...........................226 5.1. Разборка материала............................................226 5.2. Укладывание насекомых на ватные слои (матрасики) и их хранение..229 5.3. Монтирование насекомых на энтомологические булавки............233 5.3.1. Размачивание материала....................................233 5.3.2. Накалывание на энтомологические булавки...................235 5.3.3. Наклеивание на картонные пластинки........................237 5.4. Особенности монтирования на энтомологические булавки различных насекомых..........................................................239 5.4.1. Стрекозы..................................................239 5.4.2. Прямокрылые...............................................239 5.4.3. Цикадовые и листоблошки...................................240 5.4.4. Полужесткокрылые, или клопы...............................240 5.4.5. Жесткокрылые, или жуки....................................240 5.4.6. Чешуекрылые, или бабочки..................................241 5.4.7. Перепончатокрылые.........................................241 5.4.8. Двукрылые.................................................242 5.5. Расправление насекомых........................................242 5.5.1. Необходимое оборудование для расправления.................242 5.5.2. Расправление чешуекрылых..................................244 5.5.3. Расправление других насекомых.............................248 5.6. Сохранение материала в консервирующих жидкостях...............249 5.6.1. Общие правила хранения материала в консервирующих жидкостях.249 5.6.2. Особенности консервации различных насекомых...............252 5.7. Сохранение формы тела гусениц чешуекрылых, личинок жуков, двукрылых и других насекомых с мягкими покровами...................256 5.7.1. Надувание препаратов......................................257 5.7.2. Методы фиксации формы и окраски личинок жуков.............259 5.7.3. Изготовление объемных силиконовых препаратов личинок насекомых ...260 Глава 6. Этикетирование коллекционного материала.....................263 6.1. Виды этикеток. Составление текста этикеток....................263 6.2. Накалывание этикеток..........................................269 Глава 7. Изготовление препаратов.....................................273 7.1. Оборудование для изготовления препаратов......................273
Содержание Ф 339 7.2. Постоянные препараты..............................................274 7.3. Временные препараты...............................................277 7.3.1. Изготовление временных препаратов..........................277 7.3.2. Хранение временных микропрепаратов.........................282 7.4. Особенности приготовления препаратов различных насекомых и клещей.283 7.4.1. Клещи, тли, листоблошки....................................283 7.4.2. Цикадовые, клопы...........................................283 7.4.3. Бахромчатокрылые, или трипсы...............................285 7.4.4. Жуки.......................................................285 7.4.5. Чешуекрылые................................................289 7.4.6. Перепончатокрылые..........................................291 7.4.7. Двукрылые..................................................292 Глава 8. Постановка, оформление и хранение коллекций насекомых........296 8.1. Энтомологические коробки и ящики...............................296 8.2. Изготовление энтомологических коробок и ящиков.................298 8.3. Расположение и оформление материала в научных коллекциях.......304 8.4. Справочные и демонстрационные коллекции........................309 8.5. Условия хранения коллекций и предохранение их от вредителей....319 8.6. Пересылка коллекционного энтомологического материала...........322 Литература............................................................325
Научно-справочное издание ГОЛУБ Виктор Борисович, ЦУРИКОВ Михаил Николаевич, ПРОКИН Александр Александрович КОЛЛЕКЦИИ НАСЕКОМЫХ: сбор, обработка и хранение материала. М.: Товарищество научных изданий КМК, 2012. — 339 с., ил. при участии ИП Михайлова К.Г. Главный редактор издательства: К.Г. Михайлов Вёрстка: Т.А. Горлина Для заявок: 123100, Москва, а/я 16, Издательство КМК электронный адрес mikhailov2000@gmail.com http://avtor-kmk.ru Подписано в печать 30.05.2012. Заказ № 801 Формат 70x100/16. Объём 21,5 п.л. Уч.-изд.л. 27,95. Бумага офсетн. Тираж 1000 экз. Отпечатано в ППП «Типография «Наука» 121099, Москва, Шубинский пер., 6