НАРКОМЗДРАВ РСФСР

МЕТОДЫ ИЗУЧЕНИЯ
КРОВОСОСУЩИХ
К О М А Р О В
( С U L I С I D А Е )

С О СТАВИЛ

Е.Н. ПАВЛОВСКИЙ
АКАДЕМИЯ НАУК

ССЩЗА СОВЕТСКИХ СОЦИАЛИСТИЧЕСКИХ РЕСПУБЛИК

НАРКОМЗДРАВ РСФСР
НАСТАВЛЕНИЯ ДЛЯ СОБИРАНИЯ ЗООЛОГИЧЕСКИХ КОЛЛЕКЦИЙ,
ИЗДАВАЕМЫЕ ЗООЛОГИЧЕСКИМ ИНСТИТУТОМ АКАДЕМИИ НАУК СССР

XIV

МЕТОДЫ
ИЗУЧЕНИЯ КРОВОСОСУЩИХ КОМАРОВ
(CULICIDAE) ‘

СОСТАВИЛ

Е. Н. ПАВЛОВСКИЙ

2-е расширенное и переработанное издание
Напечатано по распоряжению Академии Наук СССР
Июнь 1935 г.

Непременный секретарь академик В. П. Волгин

Редактор издания А. А. Шт а кельберг

Технический редактор Г. А. Стратановский. — Ученый корректор А. М. Налетов

Сдано в набор 28 января 1935 г. — Подписано к печати 21 июня 1935 г.

176 стр. -+- 3 табл.

Формат бум. 52X94 см. — И3/4 печ* л*—36750 тип. зн. — Тираж 2165

Ленгорлит № 17568. — АНИ № 527. — Заказ № 1168

Типография Академии Наук СССР. В. О., 9 линия, 12
ОГЛАВЛЕНИЕ

Сгр.

Предисловие	5

Введение.	7

I.	Сбор окрыленных комаров	8

А.	Инструменты, посуда и консервирующие жидкости (8).

В.	Ловля окрыленных комаров (10). 1. Способы ловли кома-
ров. 2. Места ловли комаров. 3. Материалы для определения
комаров,

II.	Яйца, личинки и куколки комаров	16

А. Инструменты, посуда и прочее снаряжение для водных
экскурсий (17). В. Сбор личинок и куколок комаров (19).
Таблица для определения личинок (26). С. Зимнее обследо-
вание водоемов (27). D. Куколки комаров (28). Е. Консерви-
рование личинок и куколок комаров (28). F. Яйца комаров (28).
Определение стадий (возраста) личинок анофелес (31).

III.	Выведение и содержание взрослых комаров .	35

А. Общие указания (35). В. Содержание взрослых кома-
ров (37).

IV.	Календарь жизни комаров	41

V.	Методы стандартного обследования водоемов.	50

Энтомологическая работа летнего периода (по обследова-
нию водоемов в Средней полосе СССР (52). Инструкция по
ловле и учету личинок анофелеса в водоемах (58). Инструкция
по методике обследования водоемов на заселенность личин-
ками малярийного комара и по учету результатов аэровер-
дификации в районах применения авиохимметода в сочетании
с наземными дезинсекционными работами по борьбе с ко-
маром (62).

VI.	Экологические наблюдения и опыты над комарами .	66

Определение дальности полета комаров (66). Питание ко-
маров (70). А. Питание личинок (70). В. Питание взрослых
комаров (72). Метод насильственного кормления комаров (73).
Экология взрослых самок анофелес применительно к местам
их пребывания (77). Экологические исследования над личин-
1*
Стр.
ками анофелес (84). Общая характеристика водоема. Оценка
анофелегенной роли водоема. Определение температурного
фактора развития водных фаз метаморфоз комаро?.

Предсказание продолжительности развития Anopheles
maculipennis при различных температурах (98).

VII.	Значение комаров для человека	100'

VIII.	Вскрытие комаров	104

Инструментарий для вскрытия (104). Вскрытие кома-
ров (105). Препаровка слюнных желез (108). Исследование
анофелес на зараженность их малярийными плазмодиями (ПО).
Вскрытие и гистологические исследования комаров при неко-
торых физиологических состояниях. Определение степени
развития яиц в яичниках самки (118). Методы изготовления
эмульсий из органов комаров для экспериментов (125).

IX.	Список паразитов и врагов комаров	128

А. Эндопаразиты (128). В. Эктопаразиты (133). С. Враги
комаров (134).

X.	Методика микроскопических работ	137

Приготовление тотальных микроскопических препаратов.
Тотальные препараты без обработки. Вываривание в едком
кали. Наклейка, окраска и окончательная обработка наклеен-
ных тотальных препаратов.

XI.	Исследование комаров на срезах. Фиксация комаров для срезов.
Заливка препаратов в парафин. Наклейка срезов. Окраска
срезов	142

XII.	Изготовление музейных препаратов наклейкой их на стекло .	149

ХШ. Энтомологическая коллекция комаров.	150

XIV.	Определение комаров	152

XV.	Определитель родов сем. Culicidae .	153

XVI.	Укупорка и пересылка комаров. .	154

Формы бланков для ведения энтомологической работы .	157

Важнейшая литература по комарам. Литература для определения кома-
ров. Прочая литература по комарам	170

Послесловие

176
ПРЕДИСЛОВИЕ

Предлагаемое пособие выходит фактически третьим изда-
нием,1 которое сильно расширено введением новых частей текста.
Заново написаны главы — календарь жизни комаров, методы
стандартного обследования водоемов, экологические наблюдения
над комарами, вскрытие и гистологические наблюдения над кома-
рами, вскрытие и гистологические исследования комаров при
некоторых физиологических состояниях, определение возраста
личинок анофелес и пр. Прежние части книги пересмотрены
и местами значительно дополнены. Заново подобраны иллю-
страции, из которых многие публикуются здесь впервые. В при^-
ложении даны образцы бланков, применяемых на различных
энтомологических этапах противомалярийной работы.

В конечном результате предлагаемая книга существенно
разнится от предыдущего издания; в связи с характером ее
содержания уместно дать ей новое название „Методы изучения
кровососущих комаров (сем. Culicidae)“. Автор надеется, что
третье издание его работы встретит тот же благоприятный
прием, что и первые два. Показателем значения работы такого
рода является финансирование издания этой книги Нарком-
здравом РСФСР. Специализация работ при развертывании
системы комплекса противомалярийных мероприятий требует
углубления иногда даже в большие детали. Несмотря на воз-
росший объем „методов изучения комаров", все такие сто-
роны работ не могли быть обеспечены изложением соответ-
ствующей методики. Поэтому автор с признательностью будет
ожидать указаний со стороны пользующихся этим пособием на
те или иные пробелы, которые желательно восполнить. Автор
был бы также благодарен за присылку с мест образцов инструк-
ций, бланков, программ обследований, данных об испытании
тех или иных методов, фотографий (особенно разных биотопов)
и других материалов, которые будут использованы при даль-
нейшей работе над этим пособием.

Зоологический институт	Зав. Отделом паразитологии

Академии Наук СССР	Н. Павловский

24 IV 1934 г.

1 Настоящее пособие впервые было опубликовано в виде статьи в „Вест-
нике микробилогии и эпидемиологии", 1925, 4, стр. 77—118, 18 рис.
ВВЕДЕНИЕ

Последние годы характеризуются расширением и углубле-
нием противомалярийной работы в СССР в связи с вступившей
в действие пятилеткой ликвидации малярии, как массового забо-
левания. В связи с этим к обследовательской и исследователь-
ской частям комплекса противомалярийных мероприятий предъ-
являются все большие и большие требования. Определилась
необходимость стандартизации основных методов обследования
водоемов в маляриогенном отношении; быстро ширящееся при-
менение авиохимметода требует для оценки своей эффектив-
ности точного энтомологического контроля; энтомологические
показатели занимают видное место среди критериев оценки
достижений противомалярийных работ по годам пятилетки и к ее
концу. Для практического применения мер борьбы с переносчи-
ками малярии требуются точные биологические обоснования,
разработанные применительно к экологическим и хозяйствен-
ным особенностям районов СССР. Вс^ал на очередь вопрос
о расах обыкновенного малярийного комара в СССР в связи
с эпидемиологией малярии и т. д. и т. д.

Сеть противомалярийных учреждений, начиная с тропических
институтов и особенно тропических станций, сильно растет
и еще будет расти. Точно так же увеличивается количество
лабораторий, причастных к малярийной работе. При большом
росте кадров (еще не обеспечивающим всю потребность в них)
увеличивается спрос на пособия по различным этапам противо-
малярийной работы,

В связи со значением малярии десять лет тому назад была
организована Постоянная Комиссия по изучению малярийных
комаров при Зоологическом музее Академии Наук СССР. За
истекшее десятилетие работы этой Комиссии повели к органи-
зации в структуре Зоологического института Академии Наук
О 7дела паразитологии и к изданию „Паразитологических сборни-
ков" (с 1930 г.), в которых публикуются многочисленные работы
по энтомологии малярии. Работы Комиссии, Отдела паразито-
логии и широко вошедших в практику исследования организо-
вываемых нами, начиная с 1928 г. комплексных паразитологи-
ческих экспедиций — накопили массу ценного материала, имею-
щего и методическое значение. Эти данные, равно как обильные
материалы тропических институтов и активных в исследователь-
ском отношении тропических и малярийных станций заслуживают
сводки для продвижения их в практику применения.

С этой целью был выработан специальный тип пособия —
в виде „методов изучения", практичность которого подтверди-
лась на деле.

Другим необходимым пособием является „Определитель
комаров". В 1927 г. таковой был составлен секретарем Комис-
сии А. А. Штакельбергом, ныне переработавшим его для серии
„Фауна СССР" (издание Академии Наук, Зоологический инсти-
тут) и сдавшим в печать.

При обработке настоящего издания „Методов" упор был сде-
лан на его расширение в целях придания ему необходимой для
данного этапа работ универсальности.

I

СБОР ОКРЫЛЕННЫХ КОМАРОВ

А. ИНСТРУМЕНТЫ, ПОСУДА И КОНСЕРВИРУЮЩИЕ ЖИДКОСТИ

1. Энтомологический воздушный сачок. Употребляется для
ловли насекомых налету. Обод сачка приготовляется из тонкой
неотожженной или латунной проволоки около 4 мм толщиной.
Диаметр кольца сачка берется см в 25. Концы проволочного
сачка загибаются под тупым углом — один конец на 8, дру-
гой на 12 см длиной. Вершины загнутых концов в свою
очередь загибаются под прямым углом по направлению друг
к другу, расплющиваются на наковальне и заостряются на-
пильником. Проволочный обруч обшивают двойной полосой
холста.

На конце легкой деревянной палки (длиною 1—I1/* м) про-
сверливают два отверстия соответственно загнутым остриям
обруча, которые и вгоняют в них ударами молотка. Прибив
обруб, лапки его обматывают крепкой бечевкой или еще лучше
отожженной проволокой (фиг. 1).	'
К полосе холста обруча пришивают мешок, изготовляемый
из кисеи, марли (мягкой), тюля или другой подходящей легкой
материи. Мешок шьется с параллельными краями и полукруглой
вершиной; длина его ]/а—3 4 5 6 7 8Д м*

2. Пробирки из-под пилюль с крылечками или пробками
разных размеров для помещения комаров.

Фиг. 1. Способ прикрепления
обруча сачка к палке, по С. А.
Павловичу.

Фиг. 2. Оптический раз-
рез самодельной морилки;
в пробирке, вставленной
в пробку, тампон ваты,
насыщаемый хлорофор-
мом или эфиром. По С. А.
Павловичу.

3. Пробирки химические с круглым дном или отрезки сте-
клянных трубок диаметром около 1 см, длиной 15 см для поимки
комаров.

4. Мягкая бумага для тампонов.

5. Материальные баночки 50.0—100.0 емкостью с широким
горлом и хорошо пригнанными пробками для хранения комаров
в консервирующих жидкостях.

6. 7О°/о спирт винный для консервирования комаров.

7. Формалин; берется в водном растворе (1 часть формалина
на 8 частей воды) для той же цели.

8. Белая плотная бумага и черный мягкий карандаш (не хи-
мический) для писания ярлыков.
9.	Гигроскопическая вата для укупорки материалов в фикси-
рующих жидкостях.

10.	Хлороформ или серный эфир для убивания комаров; им
пользуются в „ морилке". Морилку изготовляют из материаль-
ной, широкогорлой длинной банки или цилиндра диаметром
6—8 см. Хорошо пригоняют пробку, которую просверливают
в центре насквозь. В отверстие пропускают узкую пробирку
отверстием внутрь. В пробирку набивают гигроскопическую
вату, которую напитывают хлороформом (фиг. 2). Очень хорошо
пользоваться для умерщвления комаров смесью равных частей
хлороформа и уксусного эфира, так как последний предохраняет
объекты от черствения. На дно морилки кладут более или
менее толстый слой гигроскопической ваты, поверх которого
помещают „гофрированные" полоски фильтровальной бумаги,
с одной стороны предохраняющие от излишней влажности,
с другой — от соприкосновения комаров друг с другом.

11.	Экскурсионная сумка или ящик для удобной переноски
и хранения на экскурсии пробирок.

В. ЛОВЛЯ ОКРЫЛЕННЫХ КОМАРОВ

1.	Способы ловли комаров. В открытой природе кома-
ров сачком ловят налету или на цветах или на животных (напри-
мер, на лошадях). Захватив сачком комара, перекидывают сачок
через край обруча или перехватывают мешок сачка у обруча
рукой, чтобы комар не улетел. Другой рукой вводят в сачок
пробирку, которой и накрывают комара. Пробирку закрывают
пробкой или ватным или бумажным тампоном. Если в сачок
попало сразу много комаров, то сильными взмахами сачка заго-
няют их к вершине мешка и забирают в широкогорлую морилку,
которую сейчас же закрывают пробкой. Обездвиженных комаров
потом перекладывают в свободную подходящую по размерам
пробирку.

Самцов комаров часто можно поймать в природе кошением
по траве и кустах поблизости места их выплода. Для кошения
берется сачок с ободом из толстой железной проволоки (мм 6)
Мешок такого сачка делается из полотна или коленкора, палка
берется более короткая (около 0,75 м).

Лучшие результаты в отношении сохранности экземпляров
дает, однако, сбор комаров непосредственно в пробирки (при
ловле сачком часто стираются чешуйки или ломаются концы
лапок, вместе с зацепившимися за ткань сачка коготками). Ловля

в пробирки вполне возможна не только в жилье человека, но
и в открытой природе, напр. на цветах; в таких условиях^осо-
бенно удобно собирать комаров рано утром или поздно вечером,
так как при более низкой температуре комары мало подвижны.

Комаров лучше приносить домой жи-
выми в пробирках; последние полезно
перенумеровать, дабы иметь возможность
отмечать в записной книжке условия на-
хождения экземпляров.

Для ловли комаров особенно удобна
пробирка, изображенная на фиг. 3; длина
ее 10 см, ширина 2.5 см; дно вдается
внутрь конусом, вершина которого сре-
зана; отверстие срезанной вершины диа-
метром 5—6 мм. Верхнее отверстие про-
бирки затыкается пробиркой. Сидящего
комара накрывают дном пробирки, причем
комар через отверстие дна влетает
внутрь. Одной пробиркой можно поймать
несколько комаров. Таких пробирок
в продаже у нас нет. Можно попытаться
заказать их стеклодувам.

Необходимо точное этикетирование,
т. е. запись данных о месте, времени и
условиях поимки комаров; без подробных
этикеток материал не имеет научной цен-
ности.

Фиг. 3. Пробирка с во-
ронкообразным дном
для ловли (накрыва-
нием) комаров.

Оригинал.

Образцы записей („паспортные" сведения)

У опушки леса в 2 ч. дня 10 V
1925 г. При ярком солнце налету.

Борисоглебск, Тамбовской губ.

Иванов

Вечером в 6 час., во дворе дома
на человеке.

Изюм. 20 VI1925 г.

Петров

По приходе домой комаров умерщвляют в морилке, куда их
вытряхивают из пробирок; манипуляции перемещения в морилку
лучше производить перед закрытым окном, на которое соберется
большая часть случайно вылетевших комаров (ни в коем случае
этого нельзя делать пере д керосиновой лампой !). В морилке кома-
ров лучше держать минут 5—10 (во всяком случае не более
73 часа), после чего их накалывают на энтомологические булавки
или минуции (об этом см. ниже, стр. 150). Метод наколки только что
умерщвленных комаров дает безусловно наилучшие результаты.

Фиг. 4. Пробирка
с комарами, пере-
слоенными ватными
тампонами или там-
понами из мятой
мягкой бумаги.

Оригинал.

Фиг. 5. Банка с вре-
занной в пробку про-
биркой без дна для
ловли комаров на-
крыванием. Ориги-
нал.

В случае невозможности применить вышеописанные методы
коллектирования комаров, можно пользоваться еще следующими
способами, дающими, однако, значительно худшие результаты.

Комаров, сидящих по одиночке, осторожно накрывают длин-
ной сухой пробиркой. Когда комар влетит, то в пробирку вводят
небольшой тампон из хорошо смятой мягкой бумаги; тампон
продвигают ко дну пробирки так, чтобы он чуть коснулся комара.
Этой же пробиркой’накрывают другого комара, опять вводят
тампон и т. д., до заполнения пробирки (фиг. 4).
Не очень сильно теснить Комаровы не давать
им болтаться между тампонами; в общем на комара
оставлять приблизительно по х/2 см пространства.

Заполненную пробирку снабжают этикеткой (образец записи
см. выше). Комары в такой укупорке хранятся долго и могут
быть пересылаемы по почте.

Нужно отметить, что сбор комаров в пробирке является наи-
менее совершенным способом их сохранения, так как извлечь
тампоны из пробирки без поломки ножек комара зачастую со-
вершенно невозможно.

Фиг. 6. Раскладка комаров на вату в спичечные коробки.
По Langeron’y.

Хорошие результаты дает применение широкогорлой банкиг
через пробку которой пропущена пробирка с отрезанным дном
(фиг. 5). Отверстием пробирки накрывают сидящего комара^
если он не сразу пролетает через внутренний конец пробирки^
в нее дуют, чем и загоняют комара внутрь.

Лучше раскладывать комаров на вату. Берут пустую коробку
из-под папирос и кладут на дно ее плотный слой ваты. На
вату раскладывают убитых дымом и серным эфиром комаров по
одиночке, следя за тем, чтобы комары нигде не соприкасались
ножками друг с другом. Когда поверхность ваты будет уло-
жена комарами, последних закрывают тонким листом белой бу-
маги, вырезанным по размеру коробки. На бумаге сверху пред-
варительно пишут паспортные сведения (см. выше). Если в ко-
робку положены комары из разных сборов, то их разделяют
Друг от друга цветной ниткой и соответствующую черту прово-
дят на покровном листке бумаги. Коробку при укупорке для
пересылки перевязывают ниткой. Маленькие сборы комаров
можно делать и в пустые спичечные коробки, в которые кома-
ров раскладывают на вату, как показано на фиг. 6.
Наилучшие результаты дает сбор живых комаров с после-
дующей наколкой их на минуции.

2.	Места ловли комаров. При ловле комаров осматри-
вают темные углы комнат, сеней, кухонь, чердаков, сараев,
уборных (особенно дворовых провинциального типа), погребов,
подвалов, конюшен, свиных хлевов, курятников, коровников,
пустых зданий и т. д. Интересны сборы комаров из вагонов
или пароходов, так как таким путем нередко осуществляется
пассивный транспорт комаров.

Ловить комаров, севших пить кровь человека или животных.
Подробно отмечать часы дня, место ловли и хозяина комара,
если последний пил кровь.

Хорошие сборы можно делать на закрытых окнах, когда
перед заходом солнца комары начинают биться о стекла в стре-
млении вылететь наружу.

При розысках комаров в помещениях удобно пользоваться
театральным биноклем для осмотра высоких углов, потолков,
балок и др. мест, где могут сидеть комары.

Для ловли малярийных комаров пригодны и простые ловушки.
Делают четырехугольную коробку с выдвижной стеной; вну-
тренность окдеивают черной бумагой. Открытые коробки ставят
в темные места комнаты на ночь, а утром их закрывают. В ко-
робку пускают табачный дым и выбирают из нее оглушенных
комаров, которые залетели туда к утру.

Не скупиться при сборе материала и собирать его в обиль-
ном количестве, не делая выбора между „интересными" или
„обыкновенными" комарами.

Обращать особое внимание на комаров, сосущих кровь на
глазах собирателя; помещать их в пробирки отдельно с указа-
нием, на ком комары кормились.

При сборе комаров из домашних построек и служб оценивать
хотя бы приблизительно количественное распределение их по
зданиям, указывая точно характер последних (например: „Шимск,
Новгор. губ., свиной хлев; 12 ч. дня, в углу; очень много;
26 VII 1923. Е. Павловский". „Новгород, конюшня, на потолке,
10 ч. утра 1 VIII 1924; единичные экземпляры. Иванов").

Особенно интересны случаи лёта комаров в жилье человека
среди зимы. Обычно поблизости имеется место зимовки комаров.
Таковым могут быть — чердаки, подвалы, погреба, погребицы,
отдушины, сараи, стойла и т. д. При осмотре высоких помеще-
ний пользуются биноклем; в полутемных или темных помещениях
необходим искусственный свет (свечи, ацетиленовый фонарь
и т. д.). Комаров собирают в пробирки или в коробки из-под папи-
рос (в зависимости от количества) на слой ваты, прикрывая их
листком тонкой бумаги.

Часть материала заключать в консервирующую жидкость
(см. ниже). Собранный материал сопровождать подробной харак-
теристикой зимовки (тип помещения, характер стен, степень
их освещения, t°, сколь многочисленны комары, где сидят, в ка-
ком состоянии и т. д.); отмечать также близость замерзших
водоемов к месту данной зимовки.

В открытой природе комаров ловят налету в различных
пунктах — в лесу, на опушке, на поле, огороде, у берега реки,
болота и в других местах. Кроме того комаров можно добыть
и кошением по растительности.

3.	Материал для определения. Для последующего
определения наиболее пригодны сухие комары, ибо у них на
крыльях сохраняются чешуйки, а тело остается нормально окра-
шенным. Жилкование крыльев лучше всего можно изучать также
на сухих экземплярах.

При обильном материале часть его консервируют в 70°
спирте или в растворе формалина (см. выше). В таких случаях
обращают внимание на тщательную укупорку.

Часть собираемых самцов желательно консервировать в 7О°/о
спирту, чтобы из этого материала можно было бы сделать вполне
доброкачественные микроскопические препараты наружных
(гипопигий или tегmin а 1 iа) гениталий, имеющих исклю-
чительно важное значение при определении самцов комаров.

Комаров из одного и того же сбора (сбор в одинаковых
условиях места и времени) кладут в баночку с жидкостью
Когда комары осядут на дно, сверху кладут на них кружок из
белой бумаги; над ним помещают плотный тампон из гигроско-
пической ваты; все доверху заливают жидкостью, кладут эти-
кетку и закрывают пробкой. Проверить, что при трясении баноч-
кой тампон не болтается и остается совершенно неподвижным.

Карандаш в водном растворе формалина с этикетки легко
стирается, поэтому этикетку складывают вдвое, надписью
в н У т р ь, и засовывают между стенкой банки и тампоном.

Сборы комаров в районе жительства и работы собирателя
очень важно производить периодически. Лёт разных видов
комаров приурочивается к различным календарным датам; по-
следние не абсолютно постоянны, а зависят от метеорологи-
ческих условий данного года, которые также необходимо отме-
чать. Поэтому весьма ценны систематические сборы
комаров (не реже раза в неделю или в две недели) из наме-
ченных пунктов в течение ряда лет; при таковых работах не
поддаваться впечатлению, что попадаются „одинаковые", „одни
и те же" или „обыкновенные" комары. Важно брать то, что
в данный момент есть налицо, строго этикетируя сборы.

Особо отмечать время лёта комаров. Лёт некоторых
видов комаров приурочивается к ограниченному периоду (недели
две-три), в остальное же время их не найти.

Не менее существенное значение имеют часы сбора.
Одни виды деятельны днем, другие, наоборот, летают ночью,
а днем сидят спокойно. Поэтому осмотры пунктов сбора необхо-
димо производить в разные часы суток и при сборе отмечать,
в каком часу и в каком состоянии были взяты комары.

В результате планомерных наблюдений в течение ряда лет
можно составить календарь жизни комаров данной местности;
об этом будет сказано ниже в особой главе.

Все вышеизложенное является максимальной программой.
Чтобы не расхолаживать собирателя, не могущего выполнить
ее хотя бы с некоторым приближением, отметим, что и случай-
ные сборы комаров представляют известную научную ценность.
Необходимо только точное указание мест и условий сбора.
Хотя изучение фауны комаров в СССР значительно продви-
нулось вперед со времени предыдущего издания нашей книжки,
все же имеющиеся материалы в музеях далеко не достаточны;
поэтому всякое новое точное указание месторождения данного
вида, подкрепленное сбором комаров, несомненно войдет в кол-
лективную работу изучения фауны комаров.

II

ЯЙЦА, ЛИЧИНКИ И КУКОЛКИ КОМАРОВ.

Превращение комаров связано с водой; все фазы превра-
щения — яйцо, личинка и куколка — живут в воде. Поэтому мето-
дика сбора такого материала производится на водных экскур-
сиях, снаряжение которых в некотором отношении отличается
от применяемого при сухопутных сборах.
А. ИНСТРУМЕНТЫ, ПОСУДА И ПРОЧЕЕ СНАРЯЖЕНИЕ ДЛЯ
ВОДНЫХ ЭКСКУРСИЙ

1.	Водяной сачок. Отличается от сачка воздушного более
крепким ободом (проволока в 6 мм диаметром), которая прикре-
пляется на конце длинной палки (1.75 м и более), чтобы с берега
можно было достать подальше. Мешок сачка такого же покроя,
что и воздушного, но материал берется более прочный: ковро-
вая канва, тюль (шторы), мельничный газ, и т. п. Диаметр

обода сачка 26 см, длина
мешка сачка 35—40 см.

2.	Малый водяной
сачок для небольших и
мелких водоемов (ка-
навки, лужицы, водоемы
в сгнивших пнях и ду-
плах и т. п.). Обод сачка
делается диаметром в
15 см, длина мешка 22—

Фиг. 7. Ковшик с пробитым отверстиями
дном для ловли личинок и куколок комаров.
Оригинал.

25 см.

3.	Проволочная сетка для накрывания провизии от мух, по
Лепневой, может быть использована вместо сачка. Ее припаи-

вают к железному кольцу, укрепляемому на палке, как
обычно.

4.	Мелкие проволочные сита (ситечко для чая с узким обо-
дом) также пригодны для замены малого сачка; еще удобнее
употреблять ковшик, половина площади дна которого пробита
мелкими отверстиями (фиг. 7).

5.	Фотографическая эмалированная ванночка размером
13X18 см для разбора материала на месте; эмалированная
тарелка или селедочница также пригодны для этой цели.

6.	Материальные банки 200.0—250.0 г вместимостью или
толстые стеклянные цилиндрики диаметром 4—5 см, высотой
сантиметров 12. Через пробку прогнать отрезок стеклянной
трубочки, чтобы дать доступ воздуха внутрь. Эта посуда берется
для сбора живого материала из отдельных водоемов в целях
детальной разборки материала дома.

7.	Жестяное ведерко с широким дном, низкое, с сетчатой
крышкой и ручкой. Для переноски материала домой в живом
виде, оно может быть заменено —

Павловский	2
8.	Банкой для варенья, емкостью 1—I1 2 литра; шейку банки
обвязывают бечевкой, оставляя поперечную „ручку" для удоб-

Фиг. 8. Выкачиватель для воды
(при сборе личинок) из водое-
мов, скрытых под корнями де-
ревьев. По Martini.

ства переноски.

9.	Мелкие пробирки и баночки с пробками для отсадки
на месте особо интересных объектов, чтобы последние
не затерялись в общей массе.

10.	Пинцет длиною 12—13 см
с тонкими концами; необходим для
разбора материала и переноса жи-
вотных в пробирки; привязывают
его на длинном шнурке к пуговице
платья, чтобы не потерять. При
ловле личинок пинцетом необхо-
димо стараться захватывать их не
самыми концами пинцета (чтобы не
поранить или не помять их), а бо-
лее широкою его частью (отступя
от концов).

11.	Пипетка из стеклянной
трубки с резиновым баллончиком.
Применяется при разборе мате-
риала для вылавливания нежных
мелких личинок. Ею же вылавли-
вают животных из водоемов в па-
зухах листьев.

12.	Чайные или столовые
ложки — для вычерпывания личи-
нок и куколок комаров.

13.	Выкачиватель (фиг. 8) —
состоит из: а) стеклянного нако-
нечника (толстая трубка 1% см
диам., длиною 12—15 см); в) соеди-

нительной резиновой трубки 20	25 см длиною; с) сте-

клянного резервуара и d) резиновой трубки с баллоном на
конце. Этим прибором высасывают воду из скрытых водоемов
под корнями деревьев, куда не залезть никаким сачком. На-
бранную воду выдувают в ванночку.

14.	Термометр для измерения температуры в водоемах.

15.	Этикетки, карандаш и пр.

16.	Сумка для пробирок и банок.
В.	СБОР ЛИЧИНОК И КУКОЛОК КОМАРОВ

Личинки и куколки комаров могут быть в самых разнооб-
разных как естественных, так и искусственных водоемах. В виду
этого желательно при сборах осматривать возможно большее
число водоемов, а именно:

Фиг. 9. Типы водоемов. Заводь на Пяндже (Бауманабад, Таджикистан)
с личинками An. pulcherrimus. Фото Е. Н. Павловского.

берега рек, в местах заросших водяными растениями (фиг. 9);

заводи и затоны (фиг. 9, 47);

старицы, включая сюда и мелкие остаточные лужи при
спаде и усыхании воды;

озера, пруды и болота (фиг. 48);

канавы и канавки (арыки и другие оросительные каналы
(фиг. 53), осушительные канавы; клетки рисовых полей
(фиг. 49, 52);

копанки, ямы для дубления кожи или вымачивания льна
(фиг. 51);
выемки при различных работах (кирпичное производство—
фиг. 11), торфяные карьеры (фиг. 12), дорожное строительство
и др.; ручьи, ключи и пруды с соленой и иного состава водой;

чаны, бочки, лохани и т. п. вместилища с застаивающейся
водой (фиг. 13);

временные лужи, в частности весенние (фиг. 14); мочежины
(фиг. 16);

скопления воды в пазухах листьев зонтичных и иных растений;
скопления воды в дуплистых деревьях (фиг. 15);

невидимые снаружи водоемы, спрятанные под основанием
дерева между его корнями;

колодцы, шурфы и случайные щели в земле;

цистерны, водохранилища, специальные и случайные водо-
вместилища, создаваемые человеком и т. д. (фиг. 50)

Улов производят сачком, которым быстро проводят по по-
верхности водоема; затем круто поворачивают сачок и ведут им
в обратном направлении на некоторой глубине навстречу току
воды, возникшему от первоначального движения сачком; таким
способом захватывают личинок, успевших оторваться от поверх-
ности водоема.

Содержимое вываливают в ванночку с водой и осматривают
на месте; таким способом собирают тех личинок комаров, кото-
рые поднимаются на поверхность водоема для дыхания атмо-
сферным воздухом. Для этой цели можно пользоваться ванноч-
кой или тарелкой, которую краем опускают в непотревоженном
месте водоема, так, чтобы в нее через край переливалась вода
(Anopheles, Culicinae).

Тем же сачком проводят в глубине водоема между растени-
ями и извлекают личинок, держащихся в толще воды и не
нуждающихся в атмосферном воздухе для дыхания (Choaborus,
Ceratopogori).

Если водоем освещен неравномерно, то больше шансов найти
личинок Anopheles на солнечной стороне. Поэтому водоемы,
хорошо закрытые листвой деревьев, мало пригодны для личинок
малярийных комаров. С другой стороны, есть виды комаров,
личинки и куколки которых уходят в тень.

Полезно также загребать сачком или граблями комья водя-
ной ваты и разбирать их по частям в ванночке. Водяная вата
дает надежный приют личинкам Anopheles, которые вследствие
своей зеленой окраски незаметны между нитями ваты.
Фиг. 10. Заросший арык. Кара-кала, Туркмения. Фото Е. Н. Павловского.

иг. 11. ~ Карьеры (выемки при кирпичном производстве), заполненные
грунтовой водой. В них и в водяном баке личинки An. pulcherrimus. Чарджуй.
Фото П. А. Петрищевой.
Загребают сачком (или лучше проволочным ситом) ил со дна,
промывают его и в остатке обнаруживают придонные личинки
комаров, часто яркокрасного цвета (мотыли — Chironomidae)-

Фиг. 12. Открытый карьер на торфоразработках. Личин-
ки An, maculipennis, Фото Е. С. Калмыкова.

Водоем осматривают в разных местах и делают соответ-
ствующие записи. На этикетке отмечают характер водоема и
t° воды. Например:

Дер. Мшага, Новг. губ ; соленый ключ;
личинки и куколки комаров; 8 VII1923;

8° R.; 6 ч. вечера

Е. Павловский
Фиг. 13. Горько-соленый пруд в Николаевской степи. Район Минеральных
вод. Личинки Aedes caspius, Ae. dorsalis (очень много) и An. maculipennis
(мало). Фого А. А. Месс.

Фиг. 14. Временная лужа. Пятигорск. Фото А. А. Месс.
Предварительный разбор материала делается на месте;

личинок и куколок комаров выбирают пинцетом или пипеткой
и перекладывают в .цилиндрик с 70% спиртом или водным
раствором формалина. Тут же пишется этикетка.

Фиг. 15. Дупло ясеня по Нижне-Массандр-
ской дороге (Ялта) с личинками Аё. genicula-
tus, Аё, pulchritarsis. An. plumbeus и Orthopo-
domyia pulchripalpis. Фото А. И. Величкевич.

Материал приносится
домой в ведре или банке;
содержимое выливается
в таз, куда добавляют
воды. Когда все успо-
коится, то осматривают
поверхность воды. Здесь
вылавливают личинок,
поднявшихся для дыха-
ния; личинки Dixa вы-
ползают на бока таза и
выходят из воды. Труд-
нее заметны прозрач-
ные личинки Choaborus
(коретра) и Ceratopo-
gon.

Если в задачи соби-
рателя входит сбор
только комаров, то всех
личинок и куколок, взя-
тых из данного водоема,
кладут в отдельную ба-
ночку.

При систематиче-
ских сборах необходимы
периодические осмотры

водоемов

хотя

бы раз в две недели,

чтобы получить картину

смены одних форм комаров другими.

Таковые сборы должны сопровождаться краткими характе-
ристиками водоемов (проточная вода с зарослями; мутная лужа
на глинистом грунте; ямы с водой в навозохранилище; копанка
с грязной водой, где стирают белье; течение реки, куда сбра-
сываются химически загрязненные воды с фабрик; сточные
воды и т. д.).

Некоторые виды комаров могут быть пойманы то. ькб
в ограниченное время и в определенном месте; например,
личинки Anopheles plumbeus попадаются в водоемах под корнями
деревьев или в дуплах (пользоваться «выкачивателем»). Если
такой водоем обнаружен, то после каждого взятия воды в него
необходимо добавить воду из какого-либо источника, чтобы этот

Фиг. 16. Мочежина с личинками анофелес у ледника
Терекол. Высота 2120 м. Наивысшее местонахождение
личинок анофелес на Кавказе. Фото К. Попова.

водоем не пропал для дальнейших наблюдений, так как найти
другое ^подобное водовместилище дело не легкое (фиг. 15).

Кроме An. plumbeus в дуплах выплаживается Aedes (Qchle-
rotatus) pulchritarsis, Ae. (Finlaya) geniculatus; Culex sergenti
также может быть найден в аналогичных местах.

Если найдены пустые углубления в стволах
деревьев, то их полезно наполнить водой и
в ближайшие дни регулярно осматривать. Таким
путем можно привлечь разных комаров для
кладки яиц в эти искусственные водоемы и по-
лучить интересные виды комаров.

Своя фауна бывает в водоемах в пазухах листьев (An. bifur-
cates). Из личинок, особенно интересных биологически, отметим
личинок Mans onia, которые дышат воздухом, скопляющимся
в стеблях водяных растений, куда они и погружают острый ко-
нец дыхательного сифона.

Сбор личинок и куколок весьма важно связать с последую-
щим выведением из них взрослых комаров, потому что таким
путем материал может быть точно определен.

Для общей ориентировки в личинках комаров можно поль-
зоваться следующей таблицей.

Таблица для определения личинок (фиг. 17, 18)

Личинки, ведущие донный образ жизни. Живут в илистых трубках, склеен-
ных слюной из частичек ила. Другие строят себе жилье из кусочков растений.
Личинки часто яркокрасного цвета. .

.	. Мотыль (личинки комаров дергунов Chironomus).

Сходные по форме личинки светлокрасного цвета с более сильно разви-
тыми ложными ножками (на первом членике тела сейчас же за головой);
живут в ходах, устраиваемых в густых зарослях водяных растений. .

Личинки комаров-толкунчиков (Тапуpus).

Личинки, живущие в толще воды и не поднимающиеся на ее поверхность.

Тело личинок прозрачное, тонкое, веретеновидное; личинки движутся,
змееобразно изгибаясь. На заднем конце их тела — звездообразный пучок
волосков.	Личинки бородатого комарика (Ceratopogon).

Прозрачные длинные личинки с просвечивающими воздушными пузырь-
ками. Подолгу неподвижно держатся в толще воды .	. .

.	Личинки перистоусого комара (Choaborus).

Прозрачная короткая личинка с просвечивающими воздушными пузырями
и вертикально стоящим кверху, перед задним концом тела, дыхательным
сифоном. Грудь горбом выдается кверху. Личинка подолгу остается непо-
движно взвешенной в воде.	. Личинки комара Mochionyx,

Личинки, поднимающиеся для Дыхания к самой поверхности воды; во
время дыхания держатся всем телом параллельно поверхности воды.

Тело палочкообразное, вдвое не складывается, и личинка из воды обычно не
выползает. Грудь расширена .	. Личинки малярийного комара (Anopheles).

Тело равномерной ширины. Личинка сгибается петлей вдвое и часто
выползает из воды на растения или берег. Тело черное

. Личинки земноводного комара Dixa.

В позе дыхания личинки подвешиваются под углом или отвесно к поверх-
ности водоема. На предпоследнем членике тела торчит дыхательная трубка
(сифон). .	. Личинки собственно комаров (Culex, Aedes, Ochlerotatus и др.).-
Фиг. 17. Личинка Anopheles
сверху. Palp. — сяжки, FH —
розетки волосков брюшка,
stigma—дыхальце. W. Lang.

Фиг. 18. Личинка Culicinae: Aedes cine-
reus, antenna — сяжок, brush — щетка,
head — голова, thorax — грудь, abdo-
men— брюшко, pecten — гребенка ши-
пиков, siphon — дыхательный сифон,
stigma — дыхальце, anal gills — аналь-
ные жабры; I—IX — сегменты брюшка.
^W. Lang.

Важно также фотографировать водоемы, с указанием типич-
ных для них форм комаров (фиг. 9—16, 47—55). При фотогра-
фировании дупел ставят для масштаба какой-нибудь предмет:
палку, зонтик и т. п.

С.	ЗИМНЕЕ ОБСЛЕДОВАНИЕ ВОДОЕМОВ

Особый интерес представляет собирание личинок комаров
(в частности Anopheles) в замерзших водоемах. Прорубают лед
и лов производят сачком. Личинки также, и сами собираются
к проруби (стремление к кислороду), где их зачерпывают сачком,,
тарелкой и т. п.
Важно в научном отношении установить, какие виды кома-
ров зимуют в стадии личинки (из Anopheles это установлено
для лесного малярийного комара — An. bifurcatus и др. видов).
Необходимы точные записи места и условий сбора. Ценны
фотографии мест зимовок личинок комаров.

D.	КУКОЛКИ КОМАРОВ

Куколки комаров попадаются при ловле личинок. Куколки
комаров более или менее подвижны; по форме они похожи на
запятую; утолщенный передний конец их заключает в себе
голову и грудь будущего комара. Сверху торчат два дыха-
тельных сифона, похожих на короткие рожки. Брюшко загнуто
дугообразно и оканчивается широкими плавательными лопастями.

Куколки одних комаров (Culex, Anopheles и др.) подни-
маются к поверхности водоема для дыхания, у других (Choaborus)
держатся во взвешенном состоянии в толще воды.

Е.	КОНСЕРВИРОВАНИЕ ЛИЧИНОК И КУКОЛОК КОМАРОВ

Для сохранения личинок и куколок убивают горячей (но не
кипящей) водой и переносят в жидкость следующего состава
(Mac Gregor):

10 см3 неразведенного формалина;

10 см3 5% раствора буры в дестиллированной воде; доба-
вить воды до 100 см3 и прибавить 2 см3 глицерина.

Холодный спирт менее пригоден для фиксирования личинок.
Личинок убивают также горячим 70% спиртом, 55—60° С.

При убивании личинок и куколок отсасывают воду из чашеч-
ки, где они сидят, не до самого дна, а оставляют тонкий слой
воды, и нагретый спирт (или в крайности воду) быстро нали-
вают к самой стенке сосуда (а не прямо в средину). Благодаря
такому приему личинки умирают с раскрытым дыхательным
отверстием (способ Мончадского). Личинок и куколок, убитых
горячей водой, для хранения перекладывают в 70% спирт,
который при хорошем фиксировании отлично консервирует
материал. Фиксировать для гистологических и анатомических
целей жидкостью Carnoy (см. ниже).

F.	ЯЙЦА КОМАРОВ

В природе легче собирать яйца комаров, склеенные в кучку
в виде плота (Culex). Яйца других видов комаров проще полу-
чать выдерживая живых самок до кладки. Сохранять яйца
в формалине или в спирту, как обычно. Для микроскопических
препаратов лучше пользоваться заключением в глицерин-жела-

Фиг. 19. Яйца комаров Anopheles: 1) A. plumbeus Steph., 2) A, algeriensis Theo.,
3) A. bifurcatus L., 4) A maculipennis Mg., 5) A, elutus Edw., 6) A. hyrcanus
Pall., 7) A. pulcherrimus Theo, 8) A. stephensi Theo, 9) A. costalis Theo,
10) A. rhodesiensis Theo, 11) A. multicolor Camb., 12) A. turkhudi Liston,
13) A. hispaniola Theo. Из Edwards’a.

тину или заключением яиц в сухом виде под покровное стекло;
при заключении в канадский бальзам необходимо прокалывать
оболочку яйца тонкой и острой иглой (см. стр. 104).

Отметим, что некоторые комары могут класть яйца на края
водоемов или в грязь, и яйца их могут зимовать в бухом виде
(например, Aedes maculatus Mg-.).
Яйца и личинки комаров могут быть пересылаемы в живом
состоянии на мокрой гигроскопической вате (предпочтительнее
при более холодной погоде). Яйца некоторых комаров (напри-
мер, Stegomyid) способны значительное время оставаться
в сухом состоянии, что делает возможным пересылку их

Фиг. 20. Яйца различных рас Anopheles maculipennis:
а — messeae, b — maculipennis (typicus), c — atroparvus,
d — labranchiae, e — elutus (Missiroli, Hackett и Martini).

в письме между слоями ваты. Предварительное определение
яйц Anopheles может быть произведено по прилагаемым
фиг. 19—20.

Рассмотрение свежих кладок Anopheles является наиболее
надежным способм для распознавания рас Anopheles maculi-
pennis по окраске поверхности яйца и строению его плава-
тельных камер (фиг. 20). У типичной формы (maculipennis или
typicus) имеется пара темных поперечных полос на уровне
наружных концов плавательных камер (Ь). У messeae (а) темные
пятна разбросаны и на пространстве между поперечными поло-
сами. (В последнее время описана новая раса melanoon, хара-
ктеризующаяся одноцветно темной окраской яйца). Atropa-
rvus (с) и labranchiae (d) кладут пятнистые яйца без попе-
речных полос, причем яйца labranchiae отличаются более свет-
лой окраской и меньшим размером плавательных камер. Стоя-
щий особняком elutus (е) кладет одноцветно серые яйца с ру-
диментарными плавательными камерами или вовсе без них.

Полагают, что наиболее важными переносчиками малярии
являются южные подвиды elutus и labranchiae^ отчасти и afro-
parvus. Однако, известны места, где несомненным переносчиком
малярии является messeae.

Фиг. 21. Плавательные камеры яиц различных рас
Anopheles maculipennis. 1. A. maculipennis labran-
chiae, 2. A. maculipennis maculipennis, 3. A. maculi-
pennis messeae, 4. A. maculipennis atroparuus. По Mis-
siroli, Hackett и Martini.

ИЗ

Данные о расах Anopheles в СССР приводят—А. Муратова,
С. Покровский, Е. Аркина (их работа прислана в редакцию
„Паразитологического сборника" Зоологического института
Академии Наук СССР в конце декабря 1933 г. и печатается
в V выпуске), В. Беклемишев и О. Виноградская (1934).

ОПРЕДЕЛЕНИЕ СТАДИЙ (ВОЗРАСТА) ЛИЧИНОК АНОФЕЛЕС

Для биологических наблюдений, качественного учета личи-
нок и для контроля эффективности противоличиночных меро-
приятий в системе борьбы с малярией необходимо определять
стадии личиночной фазы анофелес. Личинки проходят четыре
стадии, причем в каждой стадии можно различать возраст их:
молодые или старые личинки такой-то стадии.

Стадии личинок анофелес можно определять по цитируе-
мому ниже способу Кагановой и Мончадского. Возрастные
изменения различных личиночных стадий анофелес предста-
влены на фиг. 22 (Ю. Митрофанова).

Наиболее удобной является следующая методика опреде-
ления стадии личинок по ширине головы. Проба с личинками
выливается в белую эмалированную тарелку, около которой
ставятся в ряд четыре небольших сосуда (солонки, часовые
стекла и т. п.). При помощи пипетки прежде всего отбираются
самые крупные личинки с наибольшей шириной головы и отса-
живаются в крайний из сосудов. Далее, самые мелкие личинки,
с наименьшей шириной головы отсаживаются в другой крайний
сосуд. Таким образом, устанавливается наибольшая и наимень-
шая ширина головы, что, в случае присутствия в пробе всех
4 личиночных стадий (что обычно и бывает на практике, вслед-
ствие растягивания генерации и захождения одной генерации
за другую), соответствует четвертой и первой стадиям. Остав-
шиеся личинки — их большинство и, притом, всех стадий —
внимательно просматриваются на предмет вылавливания ли-
чинок четвертой стадии более мелких, а для первой стадии
соответственно более крупных, имеющих ширину головы равную
таковой у прежде отсаженных личинок. Таким путем будут
выловлены из пробы все личинки первой и четвертой стадий.
Остальные личинки независимо от размеров их тела на глаз
разбиваются на две группы, одну с шириной головы большей,
чем у личинок первой стадии, другую с меньшей, чем у личинок
четвертой стадии, и соответственно размещаются в двух сред-
них сосудах. Ошибки, весьма обычные вначале, будут сразу же
бросаться в глаза, так как каждая отсаженная не в свой сосуд
личинка окажется в меньшинстве и будет резко выделяться по
ширине головы от остальных. Если какая-либо стадия в пробе
отсутствует, то в двух соседних сосудах могут оказаться
личинки с одинаковой шириной головы. Их сливают вместе.
Когда все личинки рассажены, проверяют правильность разде-
ления и подсчитывают соотношение между стадиями. При
очень небольшом навыке этот способ дает возможность абсо-
лютно безошибочно определять стадии личинок и отнимает
при этом минимальное количество времени.

Практически часто важно бывает знать не только каково
распределение личинок в данной популяции или генерации по
стадиям, но и установить, каково распределение по возрасту
в пределах данной стадии. Иными словами, требуется устано-
стадий An, maculipennis

Фиг. 22. Головы четырех

личиночных

в начале и в конце каждой стадии. По Ю. Митрофановой.

вить, давно ли личинки данной стадии слиняли, когда слиняют
в следующую стадию или когда закуклятся.

Как известно, длительность личиночной фазы в целом
и каждой стадии в частности в естественных условияк зависит
главным образом от средней температуры в данной местности

Павловский	3
в данное время. Для определения возраста личинок в пределах
данной стадии прежде всего необходимо заранее эмпирически
определить среднюю продолжительность каждой стадии в дан-
ной местности в данное время. При наличии этих данных кривая
изменения отношения ширины головы к ширине переднегруди
дает возможность с достаточной точностью определить возраст
личинки в пределах данной стадии.

Увеличение размеров признаков, аналогичных ширине пе-
реднегруди в продолжении каждой стадии, можно считать
происходящим равномерно, если исключить имеющее место не-
которое увеличение в первые часы после линьки, обусловлен-
ное расправлением хитиновой кутикулы. Твердые хитиновые
образования в большинстве своем, в том числе и оба изме-
рения ширины головы, если и изменяют свои размеры в тече-
ние данной стадии, то максимум этого изменения всегда падает
на первые несколько часов, непосредственно следующих за
линькой, когда эти образования еще не окончательно затвер-
дели. Иными словами, изменение отношения ширины головы
к ширине переднегруди за данную стадию можно считать
совершающимся равномерно и, таким образом, пропорционально
продолжительности данной стадии.

Отсюда вытекает правило для определения возраста личинок.
Если средняя продолжительность данной стадии в данное время,
в данном месте равняется „п“ дням, необходимо разделить
соответствующий данной стадии отрезок кривой изменения
отношения ширины головы к ширине переднегруди на „п“
равных частей. Отдельные деления будут последовательно
выражать величину среднего изменения нашего отношения по
дням. Далее, надо измерить ширину головы у основания
„воротничка" и ширину переднегруди у личинки, возраст кото-
рой надо узнать, и вычислить величину отношения этих при-
знаков. Соответствующая величине этого отношения точка на
нашем отрезке дает среднее время в сутках, которое протекло
с момента линьки в данную стадию до момента измерения. По
этой же точке можно узнать, через сколько времени личинка
должна слинять в следующую стадию или закуклиться. Возьмем
реальный пример. Длительность четвертой стадии в конце
августа и в сентябре для окрестностей Ленинграда, по нашим
наблюдениям, равна в среднем семнадцати дням. Пойманная
в это время личинка четвертой стадии, возраст которой необхо-
димо определить, имеет ширину головы у основания ворот-
ничка 0.58 мм, а ширину переднегруди 1.11 мм. Отношение их
в процентах равно 52.25%. Несложное построение или про-
стые арифметические расчеты покажут, что личинка слиняла
в четвертую стадию 11—12 дней тому назад, и что закукли-
вания следует ожидать, если не будет резких и длительных изме-
нений погоды, через 5 —6 дней, что и подтвердилось в действи-
тельности.

Так как в популяции личинок линьки и закукливание про-
исходят более или менее синхронично, подобное определение
возраста, повторенное на нескольких экземплярах, позволяет
^олее или менее точно (хотя бы с точностью до двух дней)
предсказать судьбу данной популяции и, соответственно, приме-
нить противуличиночные мероприятия не вслепую, а в наиболее
выгодный момент.

В заключение на табл. 1 приводим численные данные изме-
нения отношения ширины головы к ширине переднегруди,
выраженные в процентах, для личинок An. maculipennis по
стадиям (I—IV) и линькам (1—3).

Таблица 1

I 1 II 2 ш 3 IV

la	1Ь  103 0/0-64.40/0	Па	ПЬ  85.5о/о-54.40/о	Ша	ШЬ  72.60/о-49о/о	IVa	Vb  65.4о/о—46.2о/о

III

ВЫВЕДЕНИЕ И СОДЕРЖАНИЕ ВЗРОСЛЫХ КОМАРОВ

А. ОБЩИЕ УКАЗАНИЯ

При всяком удобном случае следует заняться выведением
комаров из личинок и куколок. Это важно в двух отноше-
ниях:

1)	таким путем получаются наиболее сохранные по внеш-
ности комары, в частности самцы, которых в природе удается
найти нередко с большими трудностями (для некоторых видов);
самцы обычно вылупляются ранее самок;
2)	путем выведения комаров, устанавливается принадлеж-
ность личинки к данному виду комара; отметим, что далеко не
для всех видов комаров известны личинки.

Кроме того для опытов с заражением Anopheles малярий-
ными плазмодиями необходимо иметь выведенных комаров,
наверное свободных
от естественного за-
ражения.

Подлежащий вы-
ведению материал
приносят с экскурсии
в живом виде и рас-
саживают по малень-
ким аквариумам; та-
ковыми может слу-

Фиг. 23. Прибор Mac Gregor'a для одиночного выве- жить самая разнооб-
дения комаров.	разная посуда: банки

Фиг. 24. Пробковое парафини-
рованное кольцо Mac Gregor’a
для выведения из яиц личи-
нок комаров.

из-под элементов,
банки для варенья, стаканы и т. п. На дно сосуда кла-
дется немного ила, наливается вода (лучше из соответству-
ющего водоема) и опускается веточка водяного растения или
немного ряски. В такой аквариум нельзя класть других водяных
обитателей, в особенности хищных (личинки жуков, стрекоз
и др.), так как они поедят личинок
комаров.

Когда личинки закуклились, ак-
вариум прикрывается колпаком
из металлической сетки или мар-
левой покрышкой, чтобы задер-
жать вылупляющихся комаров.
Последним дают совершенно ок-

репнуть, на что требуется 3—4 часа, после чего их консер-
вируют одним из вышеописанных способов.

При выведении комаров аквариумы нумеруют и под соот-
ветствующими цифрами ведут записи в дневнике, где отмечают
число и время линек личинок. Для удобства в аквариумы
кладут личинок одинаковых размеров; большие аквариумы
излишни, но очень маленькие сосуды непригодны для выве-
дения комаров, так как условия жизни в них ненормальны.
Для наибольшей точности в аквариум кладут одну личинку и
собирают сбрасываемые шкурки в 70% спирт; из них (как и из
кожицы куколки) приготовляют микроскопические препараты,
служащие дополнением к выведенному комару.

Для одиночного выведения комаров Mac Gregor (1924)
рекомендует приспособление, изображенное на фиг. 23.

При выведении личинок из яиц комаров полезно пробковое,
покрытое парафином кольцо (фиг. 24), внутрь которого кладут
яйца. Последние все время плавают в воде. В обычной же
банке яйца при усыхании воды остаются на стенках сосуда
и погибают (Mac Gregor).

В. СОДЕРЖАНИЕ ВЗРОСЛЫХ КОМАРОВ

Взрослых комаров, пойманных на воле, можно содержать
в садках, чтобы заставить их класть яйца. Последнее важно —
для получения яиц от данного вйда комара. Интересно отметить,
что форма яиц довольно отлична в пределах одного и того же
рода, например Anopheles.

Комары откладывают яйца или по одиночке или соединяя
их в группы.

Яйца кладутся изолированно на поверхность воды предста-
вителями рода Anopheles и некоторыми видами рода Aedes.

Другие виды Aedes кладут яйца в высохшие водоемы; яйца
зимуют и когда соответствующие впадины заполняются водой,
т. е. следующей весной, из них выходят молодые личинки.

Culex, Theobaldia и Taeniorhynchus склеивают откладывае-
мые яйца лодочкой или плотом, который плавает все время на
поверхности воды.

Dixa и QJioaborus откладывают яйца студенистым комком,
который опускается на дно.

В студенистую оболочку колбасовидной или округлой формы
заключены также яйца различных Chironomidae.

Садок для комаров можно сделать из двух банок для
варенья.

В одну (меньшую) банку на дно насыпают наискось горкой
прокаленный песок и наливают воды, так, чтобы она доходила
до поверхности песка. Банку сверху затягивают сеткой, на
которую кладут тампон из гигроскопической ваты, смоченной
сахарным раствором. Банку накрывают другим таким же
сосудом несколько большего размера, повернув дно его кверху.
Оба сосуда ставят на глубокую тарелку, в которую налита
вода. В таком влажном садке комары живут недурно. Для
правильного учета кладки в каждый садок помещают по одной
самке. Чтобы собрать всю кладку полностью вместо наливания
воды прямо на дно сосуда, воду помещают в маленькое часовое
стекло.

Иной формы садок делают из четыреугольного сосуда
(из-под аккумулятора) размером 40 X 26 X 30 см, в одном углу
его кладут плоский камень; на дно наливается вода так, чтобы
она не доходила до его поверхности. Сосуд закрывают крыш-
кой, четыре пятых которой затянуты газом или сеткой; остаю-
щаяся пятая часть откидывается кверху на манер дверцы.

Еще проще садок изготовляется из металлического сетчатого
цилиндра, верхнее отверстие которого затягивается марлевым
рукавом. Цилиндр ставят над стаканом с водой.

Аквариумы держать на свету, но не на солнце.

Кормят комаров в неволе сахарной водой, плодами и кровью.
Делают точный подсчет отложенных яиц; отмечают, в какие
сроки и какими порциями откладываются яйца. После окончания
кладки кормят самку кровью для выяснения возможного числа
кладок. Для кормления кровью отверстие цилиндра, где нахо-
дится комар, прикрывают рукой. Комара можно также перегнать
в пробирку, затянуть ее горлышко редкой марлей, и кормить
комара на кролике, свинке, лошади и т. д., приложив пробирку
отверстием к коже животного.

Кормление самок комаров в неволе кровью бывает затрудни-
тельно особенно с особями, выведенными в лаборатории. Пока
самка не оплодотворена — она не нуждается в крови и отказы-
вается сосать кровь человека, но при настойчивости можно и
неоплодотворенных самок напоить кровью. (О кормлении кома-
ров см. стр. 72—77).

Некоторые виды комаров удается содержать в больших спе-
циальных садках годами и выводить длинные ряды их поколе-
ний. Например, в Гамбургском Тропическом институте свыше
10 лет живут желто-лихорадочные комары — Aedes argenteus.
Наиболее трудным моментом в содержании комаров является
спаривание, которое происходит во время полета в воз-
духе.

Проф. Martini (1925) сконструировал большие садки, в кото-
рых ему удалось выводить новое поколение от выведенных из
личинок комаров (фиг. 25, 26).
Основой садка (фиг. 25) является деревянная рама (1) с на-

ружным размером 70 X 105 см; к ней снизу наглухо приделан
деревянный ящик (2) 45 X 70 см и высотою 16 см. В него вста-
вляется цинковый ящик для аквария. К боковым сторонам рамы

приделаны два прямоугольных треугольника (3) со стеклом и

с завязывающимся рукавом из тюля. Размеры их 45 см, 80 см

и 70 см. Переднюю
стенку вивария обра-
зует наклонная рама
(7) (105 X 80 см) со
стеклами; она прикре-
пляется к скатам бо-
ков вивария. Задняя
стенка садка деревян-
ная. Одна ее поло-
вина (6) снутри по-
крыта зеркалом для
большего освещения
поверхности воды.
Внизу второй поло-
вины сделана вы-
резка (4) 34 X 20 см.
Соответственно этой

Фиг. 25. Садок Martini для разведения анофелес.

вырезке снаружи задней стенки к последней плотно подвешен
на крючках или подвешен наглухо деревянный ящик в виде
параллелепипеда высотою 45 см, шириною 36 см и глубиною
17 см (5). Одна стенка вырезана и заделана рукавом из кисеи;
другая стенка — застеклена; остальные стенки — глухие. В ящик
(2) наливается вода и устраивается акварий; спальней для ко-
маров служит приставной ящик (5), куда комары проникают
через вырез 6; на дно этого ящика ставят чашечку Петри с ва-
той, смоченной раствором сахара. Садок ставят перед окном.

Основой садка другого типа (фиг. 26) является террарий
70 X 100 X 50 см; передняя и боковые стенки его застеклены;
правая половина задней стенки заделана проволочной сеткой,
левая же — кисейным рукавом. Дно террария покрыто оцинко-
ванным железом. Сюда сажают растения и ставят чашки с водой
и водяными растениями. К верхнему отверстию садка на крюч-
ках прикрепляется часть, вполне соответствующая садку пер-
вого типа, но без ящика, для аквария (1). Кроме того верхняя
стенка спальни заделана цинковым листом, на который ставят
пару плошек с ползучими растениями для затенения спальни
и предупреждения ее перегревания. Боковая стенка верхней на-
садки 2 также застеклена.

Внутрь нижней части вешаются термометр и гигрометр.

Весьма важно пользоваться термографом, дающим по-
стоянную запись изменений t°. Имея графики t° на весь период
жизни] комара, можно попытаться выяснить, является ли по-

фиг. 26. Садок Martini для разведения анофелес.

стоянной „сумма тепла", потребная для данного периода жизни
комара. Одни средние температуры в биологическом отноше-
нии не показательны; так, одна и та же средняя t° выводится
из максимальных и минимальных температур без учета парциаль-
ной длительности таковых.

Весьма важным и трудно удовлетворимым условием успеха
работы садка является поддержание влажности в степени, бла-
гоприятной для жизни комаров.

Наблюдения над жизнью комаров в больших садках важны
для выяснения влияния температуры и влажности на цикл раз-
вития этих насекомых; кроме того, сопоставление сроков мета-
морфоза комаров в садке с развитием их в естественных усло-
виях может помочь установлению годичного числа поколений
Anopheles для данной местности.
Для ^временного содержания взрослых комаров, необходи-
мых для опытов или вскрытий, пользуются клеткой (фиг. 27).
Дно ее — деревянная доска 50 X 25 см. В верхней поверхности
доски приделаны }гри прочные проволочные дуги высотою 30 см.
К этим fдугам и к бокам доски прочно прикреплена тюлевая

Фиг. 27. Клетка для содержания окрыленных кома-
ров. Модель Гамбургского Тропического института.

сетка, которая с крайних дуг свисает завязывающимися рука-
вами. Комаров вводят через последние и через рукава же вы-
лавливают пробиркой по мере надобности.

IV

КАЛЕНДАРЬ ЖИЗНИ КОМАРОВ

Правильная организация противомалярийных работ требует
знания календарных дат основных моментов биологии комаров
в разных точках производства таковых работ: когда начинается
вылет комаров с зимовок, когда происходит первая и последую-
щие кладки яиц, когда появляются личинки и куколки, сколько
поколений комаров бывает в сезоне, когда они уходят на зи-
мовку и т. д. Необходимо отметить, что соответствующие сроки
вариируют по различным годам для данного пункта наблюдений
и что в одном и том же году жизненный цикл комаров развер-
тывается с разной скоростью и в разные сроки, зависящие от
конкретной обстановки, в которой находятся наблюдаемые нами
комары. Например, в хорошо прогреваемых водоемах метамор-
фоз комаров протекает быстрее, чем в более холодных водовме-
стилищах. Вылет комаров с зимовок растягивается иногда на
месяц в зависимости от местоположения зимовки, ^е характера
и доступности более быстрому нагреванию солнечными лу-
чами.
Для ответа на поставленные выше вопросы необходимы
многолетние регулярные наблюдения над комарами с учетом
метеорологических и фенологических факторов. На осно-
вании этих данных и строится календарь жизни комаров,
дающий представление о сезонности различных видов ко-
маров.

В первую очередь такие сведения необходимы для ма-
лярийных комаров, являющихся объектом борьбистских ме-
роприятий, которые необходимо приурочивать к определен-
ным календарным датам, зависящим 1) от видовых биологи-
ческих особенностей комаров и 2) от экологических фак-
торов.

Очень важным моментом являются выяснение количества
генераций малярийных комаров в том или в другом пункте
наблюдений. A. maculipennis размножается непрерывно в тече-
ние всего теплого периода года, причем первая кладка яиц на-
чинается не в один срок, а растягивается в зависимости от
времени вылета комаров с зимовок (фиг. 28). Благодаря этому
первая генерация удлиняется на значительный календарный
срок и может заходить в календарные пределы второй генерации
особей, проделывающих наиболее ранние сроки метаморфоза.
Для установления подробных дат необходимы:

1)	массовые регулярные сборы окрыленных комаров в из-
бранных контрольных пунктах с подсчетом количества пойман-
ных комаров и установление процентного соотношения обнару-
женных видов к общему числу пойманных комаров. По
отношению к Anopheles учет комариного населения должен
производиться в помещениях, ближе всего лежащих к контроль-
ному (или к контрольным) водоемам, избранным для наблюде-
ния над личинками комаров;

2)	частый учет личиночного и куколочного населения водое-
мов с точным определением личиночных стадий; для этой цели
выбирают небольшой контрольный водоем, удаленный от дру-
гих водовместилищ, но лежащий близ жилья;

3)	собирание многочисленных данных и теоретический
расчет числа генераций на основании температурной кривой
развития (см. работу Киселевой).

Комбинирование данных по трем указанным разделам может
дать наиболее достоверные сведения о количестве поколений
анофелес в пункте наблюдений.
Если задача ставится шире и изучаются фауна и биология
других комаров, то для собирания календарных материалов
необходимо производить наблюдения во всех типовых водое-
мах данной местности и брать соответственно большее количе-
ство пунктов для регулярного сбора комаров. Если необходимо
получить количественные данные для целей более или менее

Фиг. 28. Неравномерность вылета анофелес с зимовок и влияние этого
фактора на ход генераций комаров. Оригинал.

точного учета комаров, то следует применять „стандартную“
методику сбора комаров и их личинок; лучше если такие сборы
будет производить один и тот же наблюдатель, что придаст и
большее единообразие добываемому материалу.

Сводка календарных материалов дается в виде графиков
различного типа, образцы которых и рассматриваются.

Табл. 2 дает пример календаря некоторых обычных видов
комаров по данным Martini (1923) для Германии. На каждый
месяц условными знаками (-ь imago, —личинка, о — яйцо) по-
казано наличие в природе тех или других фаз метаморфоза
комаров.

Следующая схема (фиг. 29), составленная П. А. Петри-
щевой, дает общую картину календаря жизни многих комаров
Календарь жизни комаров по Е. Martini.

Таблица 2

Mansonia
richardii

Вид комара

Anopheles
maculipennis

Anopheles
bifurcatus

Culex pipiens.

Aedes nemorosus

Aedes cantans

VI VII VIII IX X

XI

XII

-ь imago — личинка 0 яйцо.

для Туркмении. Обозначения фазы яйца не дается; в остальном
представлена наглядная сравнительная картина сезонности раз-
личных фаз метаморфоза комаров.

Обе рассмотренные таблицы дают общую картину календаря
жизни комаров для обширных территорий без учета его ва-
риантов.

На ряду с таким общим календарем необходимо выявление
более детальных дат для различных этапов жизни, например,
первого поколения анофелес. Примеры графиков этого рода
дает А. Гуцевич. График строится по системе абсцисс — коор-
динат, с отложением на первой календарных чисел, а на вто-
рой — точек фаз метаморфоза комаров. Последние отделены
друг от друга на расстояние, пропорциональное общему пе-
риоду длительности тех или других фаз. На такой график
наносят данные, касающиеся весьма отдаленных друг от друга
городов; в конце концов получается наглядная картина раз-
личия сроков вылета и хода первой генерации в различных
климатических условиях СССР. Такой график строится или
для определенного года или для средних данных, соответствую-
щих средней климатической норме пунктов наблюдений.
К/АЛЕНЛ/APbClJ I Cid 06 ТУРКМЕНИИ

---H^ukJUUv

JIAUtUHHU-

)

Название.	|	| |	III	IV	V	VI	VII	VII	IX	X	XI	XII
flhXtfdu&A.. rruicu^A^FvhA*								—	—					
							—					
rrme Vo-H. 4CuAu6							—					
^v^uhcoXua												
Кичса/шЛ												
a												
puXdu4XUYVu6												
1								. — .				
vS Цкр£Чр<£/1и6												
1 1 ^EwrvLcud						—						
						 	- -					
1ллА4Л.	ptplXTH  Ixo 4^2- rvSvS					n r~		—	... .				
I	1							—					
fnocW>Iu/5												
1Л « J 1 i Г Г 1 1 4.					— — 1	- — •	- — -	- —	— —	— —.		
pVt<SCLvVV5  hi 1 m P t i Г J i <									- — -	в	.	* — -	
Г11 UTlX' lAWt-o tu£ovi.CK												
Cu-Cex sp-								—				
\ Г Пг1 ( k	/* /> К 1 4 . L						—						
к) Ьс'ЛХ'Л	k. IzipiAtO  cL&'t/tA/Lu/jj						—						
Vuems						—						
						—						
г qfin-uivW'US						—						
T  TL P [ 1 P	D 4*	—					—	- —				—	l_ _ J
-> JUoteujxiCL iQn^Hto'Uuk л *	9						k- —	—	— __	_ _ _			
.Tutf? -'/Li i д С П. bCL 14 Пц*Лслъ1												

Фиг. 29. Оригинал П. А. Петрищевой.
На чало
окрыления

Появление
куколок

Появление
личинок

Откладка
яиц

Фиг. 30. Развитие первого и второго поколения An, maculipennis в разных водоемах одной местности.

Для пунктов наблюдений собираются более детальные мате-
риалы, в частности данные по влиянию вариантов климата на
амплитуду колебаний сроков развития, например первый генера-
ции анофелес в данной местности. График строится по тому же
типу, но с нанесением календарных дат по фазам метаморфоза
комаров в разные годы.

Однако, и такая картина является сводной и общей по от-
ношению даже к данным одного и того же года. Поэтому необ-
ходима еще большая детализация наблюдений с учетом раз-
Фиг. 32. Динамика лёта наиболее обыкновенных видов комаров в Кара-Кале.
По П. А. Петрищевой.
личных по экологическому характеру водоемов или пунктов
сбора окрыленных комаров.

График фиг. 30 дает пример наглядного изображения зави-
симости сроков размножения анофелес от экологических фак-
торов. Мы видим, что календарные сроки конца первой и начала
второй генерации в двух разных водоемах одного и того же

Фиг. 34. Ход заболевания тропической малярией, лёт An. superpictus и метео-
рологические факторы в Кара-Кале. ГТ. А. Петрищева.

места налегают друг на друга. Большую роль в этом отно-
шении играет неравномерность вылета анофелес с зимовок
(фиг. 28).

Понятно, что и годичная смена поколений анофелес в раз-
личных климатических условиях будет давать сложную картину
(фиг. 31а), иллюстрирующую на каждый месяц данные общего
календаря жизни комаров данной территории.

Другим примером конкретного выяснения биологии комаров
дает график (фиг. 31 б), на котором показаны различия в развитии
первого поколения трех видов комаров с указанием динамики
температурного фактора (средняя суточная температура воздуха).

Все приведенные выше графики носят качественный харак-
тер, ибо они дают лишь констатацию определенных фактов.

Между тем для анализа эпидемиологических данных бывает
необходимо определение интенсивности лёта различных видов
Павловский
анофелес или других комаров. Для обеспечения такой работы
производят однообразным способом улов комаров в избранных
контрольных пунктах с точным количественным подсчетом
собранных видов и определением процентного отношения особей
каждого, вида к общей массе собранных комаров. Построенные
по таким данным кривые дают наглядное представление о пре-
обладании в определенные месяцы тех или других видов кома-
ров (фиг. 32, 33). Наконец, строятся графики, отражающие ход
лёта доминирующего вида анофелес, движение заболеваемости
малярией в том же пункте и колебания метеорологических
факторов (влажность воздуха, максимальная, минимальная
и средняя температура воздуха и др. Пример такого сводного
графика см. на фиг. 34).

V

МЕТОДЫ СТАНДАРТНОГО ОБСЛЕДОВАНИЯ
ВОДОЕМОВ

Понимание биологии комаров невозможно без детального
экологического изучения водоемов, в которых выплаживается
тот или другой вид комара. В зависимости от своего характера
и величины водоем может заключать в себе несколько различ-
ных стаций, заселенных разными видами комаров; в зависи-
мости от характера и смены стаций распределение личинок
комаров в одном и том же водоеме в разное время может суще-
ственно изменяться.

Исследование всех этих моментов приобретает тем более
важное значение в противомалярийной работе, когда „водный
фактор" района работ должен быть изучен с максимальной
тщательностью. Должны быть взяты на учет все водоемы и опре-
делена зараженность личинками анофелес. Повторно должны
проводиться контрольные осмотры водоемов для суждения об
эффективности истребительных мероприятий по отношению
к личинкам и куколкам анофелес. Наконец, обследование вод-
ного фактора должно дать представление о динамике водоемов
в разные сезоны года (максимальное и минимальное протяжение
водного зеркала и анофелогенной зоны).

Ввиду наличия обширной сети противомалярийных учрежде-
ний (тропические институты, малярийные станции и др.) такие
обследования ведутся во многих частях Советского Союза.
Ценность этих обследований зависит от сравнимости их резуль-
татов, ибо выводы из данных по той или другой части обсле-
дований можно делать с наибольшей точностью лишь на мате-
риалах, добытых с применением более или менее однородной
методики. В практике энтомологической противомалярийной
работы выявилась потребность применения „стандартных мето-
дов" обследования водоемов, и таковая задача была выдвинута
в качестве программного вопроса на IV Противомалярийном
съезде. Подготовка к соответствующим докладам велась
в Ленинграде бригадой Малярийной комиссии при Зоологиче-
ском институте Академии Наук СССР в составе А. Гуцевича,
Е. Калмыкова, А. Мончадского, Л. Николаева и А. Штакель-
•берга при бригадире Е. Павловском (докладчик на съезде)
л в Московском Тропическом институте (докладчик Г. Кожев-
ников).

Материалы ленинградской бригады печатаются ниже, на
стр. 52—58.

Помещаемая далее инструкция по ловле и учету личинок
анофелес в водоемах составлена Комиссией по стандартизации
методики энтомологических наблюдений при Тропическом ин-
ституте согласно постановления IV Всесоюзного съезда по
•борьбе с малярией по материалам ленинградской бригады
{доклад Е. Павловского) и Тропического института в Москве
{доклад Г. Кожевникова).

Наконец, ввиду уже определившегося широкого применения
автометода в борьбе с личинками малярийных комаров и потреб-
ности точного энтомологического контроля эффективности этого
метода при использовании надежных ядов и испытании новых
токсических веществ, на стр. 62 приводится текст инструкции,
составленной Набоковым и опубликованной в журнале „Меди-
цинская паразитология".

Необходимо отметить что излагаемые ниже методы реко-
мендуются для испытания, чтобы в последующем при контро-
лировании их на практике можно было бы внести в них те или
иные коррективы. Само собой разумеется, что дать один „стан-
дарт" обследования на все разнообразие районов СССР невоз-
можно, поэтому ленинградская бригада фиксировала внимание
на условиях работы в средней полосе СССР. Потребные от-
клонения от этой схемы могут быть установлены на местах
в практике работы.
Для облегчения обследовательских работ необходимо со-
ставление карт местности с нанесением всех источников
и водоемов. В больших пунктах повторных работ желательно
издание литографским способом бланковых планов, как то
сделано, например, в Узбекистане (фиг. 35).

ЭНТОМОЛОГИЧЕСКАЯ РАБОТА ЛЕТНЕГО ПЕРИОДА (ПО
ОБСЛЕДОВАНИЮ ВОДОЕМОВ) В СРЕДНЕЙ ПОЛОСЕ СССР

Ранней весной, как только стает снег и водоемы освобо-
дятся от льда, составляется план местности, обслуживаемой
противомалярийной организацией по данным хозорганов или
земельных отделов. Если таких планов достать нельзя, можно
воспользоваться топографическими картами „трехверстки"
(имеются в продаже). Желательно, чтобы рабочий план энто-
молога был вычерчен в возможно большем масштабе. Наиболее
удобен масштаб 1:10 000, т. е. 100 м в 1 см (1км в 1 дм). Так
или иначе составленный основной план должен быть уточнен на-
несением на него условных обозначений различных биотопов и
стаций, характеризующих данную местность (фиг. 36, 37). Имея
основной план, нетрудно его детализировать хотя бы наиболее
простым способом глазомерной съемки.

С особенной тщательностью должны быть нанесены водоемы,
а также наиболее удобные пути к ним (тропинки) и, ^если воз-
можно, места обнаруженных зимовок комаров. Маленькие вре-
менные водоемы (лужи после тающего снега) на план не на-
носятся. Все более крупные водоемы, которые сохраняются
более долгое время и могут служить местами выплода анофелес
1-й генерации, должны наноситься на план, хотя бы они и от-
носились к типу временных (водоемы после половодья, зато-
пленные понижения местности, большие лужи в затененных
местах и пр.). Все нанесенные на план водоемы нумеруются.

Обследование водоемов на присутствие личинок комаров
An. maculipennis начинается весною с того момента, когда
средняя суточная температура воздуха за предшествующую
декаду достигает 0° (сведения о температуре можно получить
с ближайшей метеорологический станции). При прочих равных
условиях первые личинки An. maculipennis появляются в не-
глубоких открытых непосредственному освещению солнцем
водоемах, которые расположены в ближайшем соседстве
с местами бывших зимовок.
Фиг. 35.

Схематическая карта водоемов

ерков и окрестностей.

Павловский
Отметить время первого обнаружения личинок An. macuti-
nennis с указанием стадии развития.

Вслед за обнаружением первых личинок предпринимается
первое Весеннее полное обследование водоемов всего обслу-
живаемого района. Время начала полного обследования устана-
вливается с таким расчетом, чтобы результаты обследования
дали наиболее полную картину заселенности водоемов личин-
ками анофелес 1-й генерации.

Учитывая возраст впервые обнаруженных личинок, метеоро-
логические условия, влияющие на скорость развития, и самый
масштаб предстоящей работы по обследованию, можно выбрать
наиболее подходящее время для данной работы. Масштаб ее
зависит от размеров площади обслуживаемой территории,
средств передвижения, числа обследователей, количества, раз-=
меров, характера водоемов и т. д.

Обследование всего района должно быть проведено в крат-
чайший срок (до 10 дней). Если не представляется возможности
обследовать целиком весь обслуживаемый участок, то центром:
обследования избираются населенные пункты, которые обсле-
дуются в первую очередь. От этих центров обследование
ведется в различных направлениях на радиус 1—2—3 км. Длина
радиуса может меняться в зависимости от условий местности,,
благоприятствующих развитию комаров или наоборот.

При полном весеннем обследовании пробы берутся во всех
водоемах, которые учитываются подряд (без выбора). Впослед-
ствии на основе различных характеров водоемов, заселенных
личинками An. maculipennis, устанавливаются контрольные во-
доемы для дальнейших наблюдений за развитием.

Лов личинок производится или водным сачком или ско-
вородкой. Первым удобно пользоваться в больших глубоких и ли-
шённых высшей растительности водоемах. Во всех других слу-
чаях, особенно при обследовании небольших, мелких, сильно за-
росших водоемов, следует дать предпочтение легкой сковородке.

Экскурсионное снаряжение:

1.	Сачок водный (см. стр. 8).

2.	Сковородка алюминиевая (диам. 20 см).

3.	Пипетки или трубки с баллончиками (2).

4.	Банки под обвязку, на 200—300 куб. см 10—12 шт.

5.	Ящик деревянный для банок с привязной деревянной ручкой.

6.	Небольшие цилиндрики для отсадки редких экземпляров (5—6 штук).
Указанное в пунктах 3, 4, 5 и 6 снаряжение нужно в том
случае, если материал берется в лабораторию для исследова-
тельских или иных целей.

При взятии проб следует рассчитывать взмах, чтобы резуль-
таты обследования в различных условиях были сравнимы между
собой. Стандартное взятие пробы — обязательное условие при
ведении количественных сравнений. Ловкий, достаточно энер-

озеро

пруд

болото

лужа постоянная

лужа пересыхающая

родник

река

рукав

старица

бочаг

поемное озеро

/VW ручей

арык

Фиг. 37. Условные обозначения водоемов при полевых работах.

гичный, но осторожный взмах ловчим инструментом обусловли-
вает успех.

Следует учесть и возможную одинаковость условий при
всяких обследованиях. Осторожный подход к водоему, устра-
нение падающей тени должны соблюдаться при лове личинок,
чтобы не распугивать их. Дождь, сильный ветер и случайно
наступившее похолодание резко понижают количество пойман-
ных личинок, вследствие их погружения на дно. С другой сто-
роны, очень сильная инсоляция также искажает картину сравни-
мости проб, взятых неодновременно. Лучшим временем для
обследования водоемов можно условно считать промежуток
от 16 до 20 час. (или от 6 до 10 час.). Каждый водоем обсле-
дуется в различных местах, отличающихся друг от друга усло-
виями, определяемыми на-глаз (фракции). При работе сачком
берется одна проба из фракции, при работе сковородкой соот-
ветственно 5 проб из фракции.

Кроме качественного обследования водоемов на заселен-
ность личинками An. maculipennis, попутно проводится и грубый
количественный учет, который необходим для сравнения так наз.
„плотности" населения фракций, для сопоставления численности
личинок генерации, а также для оценки успешности проведен-
ных практических мероприятий. Учет производится по пяти-
балльной системе, что дает возможность не производить каждый
раз точного подсчета отдельной пробы. Только в начале работы
рекомендуется делать подсчет для „набивки глаза", впослед-
ствии оценка баллами делается на-глаз (незначительные ошибки
в ту или иную сторону будут взаимопогашаться).

Нижеследующая табличка служит критерием для оценки
баллами количества личинок, характеризующего примерную
„плотность" заселения личинками данной фракции.

	Количество личинок		Соотнош.	
Балл	на 1 пробу вз.	сковор.	множит.	Примечания
1	0.2- 1	1— 5	5	Мало
2	1.2- 5	6— 25	4	Умер, колич.
3	5.2— 20	26—100	3	Много
4	20.2— 60	101—300	2	Очень много
5	60.2—120 и более	301—600 и более	1	Масс, колич.

Если на 5 проб сковородкой или на 1 взмах сачка данная
фракция не дала ни одной личинки, результат считается условно
отрицательным и вместо балла оценивается нулем (0).

Если все фракции одного и того же водоема дали отрица-
тельный результат, водоем считается не заселенным. В против-
ном случае степень заселенности будет равна среднему ариф-
метическому из наблюденного количества, т. е. в простейшем
исчислении — сумме баллов, деленной на общее число обследо-
ванных фракций (считаются и нулевые).

Экскурсионные записи должны вестись с большей тщатель-
ностью. В них должен быть собран весь фактический материал,
характеризующий обследованный водоем и его фракции.

Практически удобно пользоваться для экскурсионных запи-
сей чековыми книжками (есть в продаже), лучше тройными. На
каждый участок заводится отдельная книжка, причем во избе-
жание недоразумений лучше разных цветов. В случае надобно-
сти взять пробу из водоема в лаборатории, часть чека с крайним
номерком может служить этикеткой без всякой надписи на ней.

Все сведения будут на корешке, а соответствующий номе-
рок в банке с материалом.
О заселении личинками An. maculipennis водоемов делаются
соответствующие отметки на плане. Впоследствии заводятся
особые карточки на каждый водоем с личинками An. maculi-
pennis , куда вносятся экскурсионные записи. По мере накопле-
ния записей они наиболее полно охарактеризуют данный водоем.

Вслед за обследованием идет уничтожение выплодов
анофелес. Наиболее выгодным моментом, в частности для
нефтевания, вердификации и др., считается массовое нахожде-
ние личинок 4-й стадии, т. е. или их численное преобладание
над более ранними стадиями при отсутствии куколок, или менее
значительное количество личинок, готовых к окуклению. Нефте-
вание (или иной способ уничтожения личинок) должно быть
проделано в возможно кратчайший срок (до трех дней) и при
задержке должно быть начато оттуда, где имеется большее ко-
личество личинок 4-й стадии.

Соответственно различному темпу развития личинок в раз-
ных водоемах иногда целесообразнее заливку делать в несколько
приемов, чтобы по возможности использовать наиболее выгод-
ный момент.

Через месяц после полного обследования водоемов делается
второе полное обследование. Цель его — ознакомление с усло-
виями обитания личинок в летних условиях, когда временные
водоемы уже высохли, а постоянные заметно усохли.

Принципы обследования, учет личинок и практические меро-
приятия остаются прежние. Результаты обследования вносятся
на карточки. Соответственно найденным переменам в распре-
делении водных поверхностей следует внести поправки в план
местности. Технически очень удобно для больших водоемов
вписать новую береговую линию, а мелкие и высохшие водоемы
отметить условными обозначениями. В таком виде план может
служить для руководства и на будущее время. При новых
наблюдениях его нужно детализировать и уточнять, отмечая
все перемены в окружающей обстановке.

Дальнейшие практические мероприятия по уничтожению ли-
чинок комаров предпринимаются в соответствии с данными
наблюдений над „контрольными водоемами".

Осенью всякая борьба с водными стадиями комаров и на-
блюдения за водоемами прекращается совершенно, как только
средняя температура воздуха за предшествовавшую декаду
упадет до -4-6° С, так как дальнейшее развитие личинок Ап.
maculipennis приостанавливается и при дальнейшем понижении
температуры они обречены на гибель (непродолжительные мо-
розы личинками переносятся сравнительно труднее).

ИНСТРУКЦИЯ

ПО ЛОВЛЕ И УЧЕТУ ЛИЧИНОК АНОФЕЛЕСА В ВОДОЕМАХ1

§ 1.	До наступления весны составляется план местности,
подлежащей наблюдению Малярийной станции, в соответствии
с ее силами.

Для плана можно использовать данные хозорганов, земотде-
лов или 3-верстные карты генерального штаба.

Желательно вычертить план в масштабе 100 м в 1 см и на
него наносить все поправки и добавления с натуры. На план
при обследовании наносятся схематично водоемы и снабжаются
условными обозначениями. Мелкие водоемы наносятся на план
только условным знаком.

За основу классификации водоемов принята предложенная
проф. Беклемишевым схема:

Все водоемы разделяются на две категории:

А. Водоемы, связанные с системой стока: реки, ручьи, озера
(со стоком), водоемы, связанные с ручьями, старицы, речные
заливы, бочаги, поемные водоемы, ильменя, пруды, болота, ка-
навы, арыки, родники и т. п.

Б. Водоемы, не связанные с системой стока: озера, пруды,,
болота, копанки, колодцы, лужи, канавы, родники и т. п.

При нанесении на карту водоема условным обозначением
ставится буква (А или Б), соответственно указанному подразде-
лению, и за ней условный знак.

(Условные знаки см. фиг. 37).

Таким образом, полное обозначение на плане, например,
родника, связанного с системой стока (образующего ручей,
впадающий в рукав), будет следующее:

Старица, хотя бы и совершенно отделившаяся от реки,
но не потерявшая с ней общего стока — А, колодец — Б и т. д.

§ 2.	С момента вылета анофелесов с зимовки один раз
в 3 дня производятся поиски личинок в ближайших к Маля-

1 Составлена Комиссией по стандартизации методики энтомологических
наблюдений при Тропическом институте согласно постановлению IV Все-
союзного съезда по борьбе с малярией.
рийной станции водоемах (в первую очередь в указанных
в прим. 3).

Вслед за обнаружением первых личинок анофелеса, пред-
принимается первое весеннее обследование водоемов.

Для станций с небольшим штатом обязательным является
на 1-й год обследование водоемов, расположенных во все сто-
роны от населенного пункта — места расположения Малярийной
станции в количестве не менее 25.

Более мощные станции избирают в районе своей деятель-
ности населенные пункты, особо пораженные малярией, около
которых и проводится обследование водоемов на заселенность
личинками.

При охвате обследованием нескольких пунктов количество
водоемов в каждом из них, включая и основной, снижается
до 15.

Примечание /. В местностях с слабо выраженным водным фактором
обследуются все водоемы подряд.

Примечание 2, Где возможно, станции, не ограничиваясь указанными
выше количествами водоемов, проводят во время обхода местности обследова-
ние всех водоемов подряд.

Примечание 3. При прочих равных условиях первые личинки анофелесов
появляются в неглубоких, открытых непосредственному освещению солнцем
водоемах в ближайшем соседстве с местами бывших зимовок.

Обследование всего намеченного района должно быть за-
кончено в течение не более 10 дней.

§ 3.	Лов личинок для определения заселенности ими водое-
мов (качественный лов) производится любым пригодным для
этой цели орудием: сачок, сковородка, ванночка и т. п.

Ддя количественного лова, имеющего целью определить
плотность заселения водоема личинками, вводится обязательная
для всех стандартная методика.

а)	Лов личинок производится эмалированной фотографиче-
ской ванночкой для пластинок, размером 10 X 15 см (с приспо-
соблением для насадки на палку).

Ванночка погружается широкой стороной под углом к поверх-
ностной пленке воды так, чтобы вода медленно ее наполняла.

б)	Непременные условия при взятии проб: осторожно бес-
шумно подходить к водоему и не допускать падения своей тени
на облавливаемый участок.
в)	Пробы берутся через каждые 10 шагов и на освещенной
солнцем, и на затененной сторонах водоема. Условия освеще-
ния отмечаются в журнале.

Примечание, На очень маленьких водоемах расстояние между пробами
уменьшается.

г)	В каждой пробе производится подсчет личинок анофеле-
сов с разбивкой их по возрастным группам.

Запись ведется в виде личиночной формулы (предложенной
.Узбекским тропическим институтом):

Л£ =---7-----------,

ач-оч-ач-гч-д

где м — означает общее количество сосчитанных в пробе личи-
нок и куколок, взятых вместе; цифры и К в числителе означают
личинок I, II, III и IV возрастов и куколок.

Буквы в знаменателе, расположенные под римскими цифрами,
последовательно означают количества сосчитанных в пробе
личинок 1-го, 2-го, 3-го и 4-го возрастов и куколок.

При отсутствии в данной пробе личинок какого-либо возра-
ста или куколок числитель сохраняет тот же вид, в знаменателе
же на соответствующем месте становится ноль.

Например, всего в пробе сосчитано: I возраста — 0; II — 8;
III — 9; IV —16 личинок и 4 куколки — формула:

о. 1 +	-IV-*-#

—0-+-8-ь 9 ч-16-ь 4

При сводке формулы для всего водоема складываются фор-
мулы отдельных проб, и сводная формула приобретает следую-
щий вид:

I-4-II + III —IV—*—#
МР — Лч-Дч-Вч-Г^’

где М общее количество личинок и куколок, сосчитанных во
всех пробах, р — количество проб, взятых для получения свод-
ной формулы и А, Б, В, Г и Д—суммы соответствующих цифр
отдельных проб. Например, всего в 25 пробах сосчитано 800 личи-
нок и куколок, в том числе куколок 183, личинок IV — 375,
III —215, II —24 и 1 — 3, т. е.:

800 I ч-П +III -+-IV -*-#

25 — 3-ь 24 н-215 ч-375-ь 183
средняя проба для данного водоема, получаемая путем деления
80:25 и последовательно всех чисел знаменателя на 25, т. е.
на количество взятых проб, будет следующая:

Ч9_	1ч-II и-III -4—IV -4-/С

0.12 -4- 0.96 -4- 8. 6 -4- 15.0 -и 7.32

§ 4. Экскурсионные записи должны вестись с особой тща-
тельностью. На этикетках (постоянных), как и в экскурсионном
журнале, должны^быть обязательно указаны:

1)	Название малярийной станции и местности, где взята
проба.

2)	Год, месяц, число и час взятия пробы.

3)	Краткое наименование (озеро, бочаг, копанка) и номер
водоема, соответствующий таковому на плане.

4)	Условия, влияющие на количество личинок: сильный
ветер, дождь, резкое похолодание, условия освещения.

5)	Фамилия производящего сбор материала.

Для экскурсионных записей удобно пользоваться чековыми
книжками (лучше тройными). На каждый участок заводится
особая книжка, лучше даже особого цвета.

В случае надобности взять из водоема пробу в лабораторию,,
часть чека с номером отрывается и кладется в банку с мате-
риалом. Подробная запись остается на корешке чековой книжки
за тем же номером.

По возвращении в лабораторию, если проба фиксируется,
этикетка с номером заменяется постоянной, которая пишется
Или обыкновенным (не химическим) карандашом, или чертежной
тушью, причем на этикетку переносятся все сведения с корешка
чековой книжки.

§	5. Ввиду того, что на местах не всегда возможно точно
определить вид анофелеса по личинкам, во всех сомнительных
случаях надлежит личинок фиксировать 70° спиртом или фор-
малином, разводя последний 16 объемами воды и направлять
для определения или в ближайший тропический институт или
в Москву, Погодинская 10, Тропическому институту, или в Ле-
нинград, Академия Наук, Зоологический институт, Отделу
паразитологии.

§	6. Систематические повторные обследования в течение
всего сезона не реже 1 раза в 10 дней производятся только на.
контрольных водоемах.
При выборе последних руководствуются следующими при-
знаками:

1)	Водоемы должны быть заселены личинками анофелесов.

2)	Должны быть расположены возможно ближе к населен-
ному пункту.

3)	Должны быть типичными для данной местности как по
своему типу (пруд, озеро, река, канава, арык), так и характеру
берегов, глубине, размерам и растительности.

Примечание. Если малярийная станция ведет систематические гидробио-
логические наблюдения, то избранные для этой цели водоемы обязательно
входят в состав контрольных (если количество их не превышает 5).

В этих водоемах лов личинок производится прежде всех
гидробиологических операций данного дня, чтобы не спуг-
нуть их.

§ 7. Повторное массовое обследование водоемов, если оно
не ведется в порядке повседневной работы, проводится не реже
1 раза в месяц с соблюдением условий, указанных в § 2-м
и 3-м.

ИНСТРУКЦИЯ

ПО МЕТОДИКЕ ОБСЛЕДОВАНИЯ ВОДОЕМОВ НА ЗАСЕЛЕННОСТЬ
ЛИЧИНКАМИ МАЛЯРИЙНОГО КОМАРА И ПО УЧЕТУ РЕЗУЛЬТА-
ТОВ АЭРО ВЕР ДИФИКАЦИИ В РАЙОНАХ ПРИМЕНЕНИЯ АВИОХИМ-
МЕТОДА В СОЧЕТАНИИ С НАЗЕМНЫМИ ДЕЗИНСЕКЦИОННЫМИ
РАБОТАМИ ПО БОРЬБЕ С КОМАРОМ*

1.	Перед началом каждой аэровердификации и наземных
опылений в борьбе с личинками анофелес должно быть произ-
ведено качественное обследование всех водоемов, расположен-
ных в 3-километровом радиусе вокруг подлежащих защите насе-
ленных пунктов, на заселенность их личинками анофелес.

2.	Качественное определение заселенности водоемов личин-
ками анофелес производится посредством лова личинок или
стандартной ванночкой (эмалированная ванночка 10 х 15 см

1 Взамен инструкции, опубликованной в т. 1, вып. 3—4, стр. 115, 1932
(и в сборнике „Авиация в борьбе с малярией", стр. 51, М., 1932). Инструкция
эта была составлена В. Н. Набоковыми и утверждена Тропическим институтом
НКЗдрава РСФСР в 1931 г. Согласно предложению Всесоюзного совещания
директоров тропических институтов в 1932 г. инструкция была пересмотрена
и дополнена комиссией в составе проф. В. Н. Беклемишева, проф. А. Р.
Пренделя и д-ра В. А. Набокова.
типа, Применяемого в фотографии), или стандартным сачком
(см. ниже), причем пробы берутся через каждые 10 шагов вдоль
берегов водоема, по возможности в пунктах, отличающихся по
характеру растительности и по условиям освещения.

В крупных водоемах берется по 10 проб на каждом участке
береговой линии, отличающемся тем или иным характером
берега, растительности, условий освещения.

В небольших по площади водоемах пробы берутся чаще, так,
чтобы общее число их было не менее 10 на водоем.

Результаты качественного обследования отмечаются в свод-
ной таблице.

Положительные результаты (нахождение в водоеме хотя бы
одной личинки) регистрируются римской цифрой, соответствую-
щей старшей из найденных фаз развития комара анофелес
(личинка первого возраста — I, куколка V и т. д.); отрицатель-
ные — знаком минуса ( —).

3.	В целях установления эффективности ларвицидного дей-
ствия опылений избираются контрольные водоемы различных
типов, характерных для данной местности (не менее 6 водое-
мов), где производится количественный учет обилия личинок
анофелес не раньше, чем за сутки до опыления и не позже, чем
через сутки после опыления. Функции контрольных водоемов
могут быть в случае надобности в течение сезона перенесены
с одного водоема на другой.

4.	Количественное определение плотности личинок анофелес
производится посредством лова личинок стандартным сачком
(диаметр 20 см, глубина 25 см, длина ручки сачка 1 м), который
погружается наполовину в воду, взмах длиною в 1 м от себя
перпендикулярно к берегу. Затем содержимое сачка споласки-
вается в кюветку или стеклянную чашку, после чего пипеткой
вылавливаются сначала личинки IV возраста, затем личинки
III возраста, затем личинки II возраста, далее I возраста
и, наконец, куколки (V).

Число проб сачком в каждом контрольном участке при
малой плотности (до 5 личинок на пробу) должно быть не
менее 20 взмахов; при более значительной плотности заселе-
ния (6—50 личинок на пробу) допускается взятие 10 проб; при
чрезмерной плотности заселения личинками число взмахов сач-
ком может быть сокращено до 5. Взятие проб для количествен-
ного учета личинок должно быть приурочено к участку водоема,
однородному по растительности, освещению и прочим условиям,
причем отдельные пробы должны быть распределены равно-
мерно по всему обследуемому району.

5.	Результаты лова личинок заносятся в дневник, в виде
дроби, где в числителе пишутся подряд числа пойманных личи-
нок каждого возраста в отдельности, а в знаменателе — число
взятых проб, что дает возможность одновременно вычислить
как общую плотность заселения водоема личинками, так и плот-
ность по возрастам:

48-+- 23-4-16-4-8-4-0 95	. -

25	20 "" ‘ ’

что означает — 48 личинок I возраста, 23 личинки II возраста,
16—III, 8—IV возраста, 0 — куколок, приходящихся на 20 проб.
Следовательно, общая плотность составляет 4.75.

6.	Определение фазы развития личинок в полевой обста-
новке производится легче всего по относительной ширине
головы (ср. Каганова и Мончадский „Паразитологический сбор-
ник", № 1, 1930, см. также стр. 32 этой книги).

7.	Показания к производству авиовердификации водоемов
устанавливаются руководителем работ на основании:

А — Нахожденйя в водоемах при обследовании личинок ано-
фелеса.

В	— Косвенных данных (при отсутствии личинок):

а)	выводов из результатов обследования окрыленных кома-
ров в районе, тяготеющем к данному водоему, и

б)	предшествующих находок личинок в водоеме, свидетель-
ствующих о пригодности водоема для их жизни.

8.	Очередность обработки отдельных водоемов опреде-
ляется временем появления в них личинок старших возрастов.

9.	Время производства вердификации водоемов должно
совпадать с преобладанием в водоеме личинок III возраста (ни
в коем случае не допускать окукливания).

В тех случаях, когда будет найдено необходимым производ-
ство опыления водоема, без нахождения на нем личинок анофелес,,
срок опыленияустанавливается по аналогии с другими водоемами.

10.	Повторные вердификации водоемов производятся в та
время, когда вновь появляющиеся в них личинки комаров дают
при обследовании преобладание III возраста.

Для установления этого момента необходимо в межверди-
фикационные периоды проводить систематически повторные
качественные обследования главных типов водоемов с обяза-
тельным учетом термометрии воды в них.

11.	Процент гибели личинок анофелес учитывается отдельно
для личинок I возраста и для личинок II—IV возрастов. Учет
и запись производятся следующим образом: из числа пойман-
ных личинок анофелес, приходящихся на одну пробу до верди-
фикации, вычитывается количество пойманных личинок, прихо-
дящихся на одну пробу после вердификации, разность множится
на 100 и произведение делится^на число личинок анофелес, при-
ходящихся на одну пробу до вердификации. Все получаемые
данные при обследовании водоемов систематически заносятся
на сводную таблицу по прилагаемой ниже форме. Независимо
от количественного учета личинок в контрольных водоемах
после выполненных вердификаций необходимо производство
качественной разведки (выборочным методом) на всей опылен-
ной территории.

12.	Параллельно с учетом заселенности и гибели личинок
при проработке водоемов производится учет окрыленных ано-
фелес в районе работ, для чего следует вылов комаров произ-
водить в заранее установленных пунктах через каждые 5 дней
вплоть до окончания малярийного сезона, причем эта работа
должна производиться по возможности в одни и те же часы для
каждого пункта.

Особое внимание следует обращать на вылов по возмож-
ности всех комаров в намеченных помещениях.

Что касается выбора контрольных пунктов, то последние
устанавливаются в количестве 10 для каждого района работ
и распределяются в зависимости от конфигурации местности
по возможности по всей защищенной территории с целью кон-
троля эффективности работ на всех ее участках.

13.	Результаты вылова окрыленных комаров заносятся
в дневнике следующим образом:

Место
вылов

Числа месяца

Вид комара
1	2	3	4	5	6	7	8

Примечание Для обозначения даты вердификации водоемов соответ-
ствующее число месяца обводится кружком.

Павловский	$
14.	Результаты учета личинок комаров в водоемах, равно
как и результаты вылова комаров по отдельным пунктам для
большей наглядности можно рекомендовать вести и графически,
как кривую.

15.	Крайне важно иметь рабочую географическую карту
(хотя бы кроки) обрабатываемой местности с нанесением на
нее всех крупных и мелких водоемов (по возможности с указа-
нием площадей), отношения водоемов к жилым строениям
и зеленым насаждениям. Открытые и заросшие места водоемов
должны отмечаться условным знаком.

16.	Все водоемы регистрируются либо под определенным
названием, либо под номером, причем наименование или номер
каждого водоема в дневнике и в таблице должны точно сов-
падать.

VI

ЭКОЛОГИЧЕСКИЕ НАБЛЮДЕНИЯ И ОПЫТЫ НАД
КОМАРАМИ

Экологические наблюдения и опыты над комарами могут
быть весьма разнообразны и неисчерпаемы. Поэтому в даль-
нейшем мы остановимся на некоторых экологических моментах
важного значения.

ОПРЕДЕЛЕНИЕ ДАЛЬНОСТИ ПОЛЕТА КОМАРОВ

Определение дальности полета различных видов анофелес
имеет весьма важное значение для установления границы зоны
противоличиночных и бонификационных работ. Как далеко
летят комары от места выплода, в каких направлениях идет
лёт, чем обусловливается направление лёта, где и в каком
количестве оседают комары во время лёта, каково влияние
ветра на лёт комаров — все эти и другие вопросы требуют
своего разрешения в конкретной обстановке местности с учетом
возможности пассивного транспорта комаров (гужевой транс-
порт, железная дорога, пароход и пр.).

Дальность передвижения комаров в маловодной местности
может быть определена по расстоянию водоема — места вы-
плода анофелес до жилья человека. Однако, более или менее
точные данные могут быть получены лишь при благоприятной
топографической обстановке (изолированность жилья, единич-
ные места выплода), что бывает не часто. Излишне напоминать
о необходимости весьма тщательного поиска всех возможных_

явных и скрытых — мест выплаживания комаров, начиная с са-
мого жилья.

Относительность значения этого метода и узкая возможность
его применения заставляют искать более точных способов опре-
деления конечной точки залета комаров.

Фиг. 38. График опыта определения дальности и направления лёта выпущен-
ных в точке 0 окрашенных An. maculipennis. Черными кружками показаны
места поимки окрашенных самок. Каждый кружок соответствует одной самке.
Прочие знаки (кружки и квадраты) указывают на места сбора комаров. Слева
вверху роза ветров на дни опыта. Голландия. По Swellengrebel’io.

Речь идет об окрашивании комаров, 'их выпуске в опреде-
ленном месте и последующих поисках окрашенных комаров
в районе производимого эксперимента.

Комаров выводят из куколок или ловят и опрыскивают из
пульверизатора в тонкосеточной камере 1% водным раствором
метиленовой синьки. Обсохших комаров выпускают в опреде-
ленном месте в количестве 800—1500 экземпляров и через
определенное время начинают массовый вылов комаров в районе
эксперимента, в стойлах и в жилье человека и в других
местах, отмечая час лова. Все точки наносятся на подробный
план, который необходим при такой работе. Отмечают напра-
вление и силу ветра, температуру, относительную влажность
и количество осадков. Пойманных в каждой точке комаров
опускают в спирт и по окрашиванию его в синеватый цвет
определяют поимку комара, выпущенного в известной для нас
точке. Способ этот дает весьма наглядные результаты, но он

Фиг. 39. График опыта выпуска окрашенных An. maculipennis, аналогичный
предыдущему (фиг. 38), но при иной розе ветров. Поймано всего два окрашен-
ных комара. По Swellengrebel’io.

требует кропотливой работы по вылову массы комаров в районе
эксперимента. Прилагаемые два чертежа (фиг. 38,39) иллюстри-
руют опыты, поставленные в Голландии Swellengrebel’eM: они
наглядно показывают зависимость , направления лёта комаров
от преобладающих в дни опыта ветров.

Выпуск окрашенных комаров можно использовать для опре-
деления их способности перелетать через реки и другие пре-
пятствия.

Можно испробовать сухую окраску комаров. Берут банку
с притертой пробкой и насыпают в нее сухой хорошо растер-
той краски (метиленовая синька); банку сильно трясут. Когда
краска уляжется, ее высыпают из банки, а в банку пускают
комаров на несколько часов. Комары пачкаются в остатке краски
на стенках и на дне банки. Затем комаров выпускают и ловят
как обычно. Для экономии спирта, пойманных комаров кладут
на фильтровальную бумагу и капают на них по капле спирта,
который окрашивает бумагу в синеватый цвет, если попался
окрашенный комар.

При оценке результатов опытов учитывают не только влия-
ние ветра, но и особенности топографического характера: рельеф
местности, ее характер, расположение жилья людей, помещений
для скота, пустых построек, деревьев, водоемов и др.

В заключение приведем данные о дальности максимального
перелета анофелес по разным авторам (табл. 3).

Таблица 3

Автор	Вид анофелес	Дальность максималь- ного перелета (км)
Le Prince	An, albimanus	
Orenstein (1916)	An, tarsimaculatus	1.9
(1917)	An. quadrimaculatus	1.7
Geiger, Purdy и Tarbett (1919)		1.6
Darling (1925)		2.8
Silla (1920) .	An. maculipennis	2.5
Missiroli (1927) .	n	3.0
van Breemen (1920)	An. ludlowi	3.5
Mangkoe Winoto (1923) .	An. aconitus	6.2
Swellengrebel .	An. maculipennis	0.4
		1.65  1.85  2.25  2.90  1.95  2.46  2.78

Для образца отметим количественные соотношения выпу-
щенных и пойманных комаров в опытах Swellengrebel.
Выпущено 1500 окрашенных комаров, всего выловлено
в срок от 22 IX по 30 IX 1336, из них окрашенных 17.

Выпущено 1330 окрашенных самок и 70 самцов; поймано
в срок от 30 VI по 7 VII 1ST1 самок и 444 самца, из них
21 окрашенная самка.

Выпущено 1927 окрашенных самок, поймано 8009 самок, из
них только две окрашенных.

ПИТАНИЕ КОМАРОВ

При изучении комаров бывает необходимость определения
пищи, использованной комарами или в личиночном или в поло-
возрелом состоянии. В обоих случаях манипулируют с содер-
жимым желудка.

А. Питание личинок. Используют для исследования
или живой материал или зафиксированный в формалине. Живых
личинок приносят в лабораторию в воде того водоема, где жила
личинка. Личинок собирают в водоемах разного типа и в разное
время года. При обильном материале можно ограничиться ис-
следованием по пяти личинок каждого вида, взятых из одного
и того же биотопа. После определения вида личинка вскры-
вается под бинокулярным микроскопом, в капле дестиллирован-
ной воды; желудочно-кишечный канал освобождается тонкими
иглами. На предметном стекле из желудка путем его разрыва
выпускают содержимое; удаляют более крупные остатки ткани,
накрывают покровным стеклом и микроскопируют при среднем
и сильном увеличениях.

В качестве содержимого желудка могут быть обнаружены:

1.	Нитчатые зеленые водоросли более или менее длинными
кусками или чаще обрывки их из 3—4 клеток.

2.	Одноклеточные зеленые водоросли.

3.	Диатомеи.

4.	Сине-зеленые водоросли.

5.	Зеленые (хлорофиллоносные) биченосцы.

6.	Различные простейшие в свободном или в инцистирован-
ном состоянии.

7.	Иногда коловратки или остатки их панцыря.

8.	Редко — мелкие ракообразные.

9.	Иногда — инцистированные личинки трематод (фиг. 41).

10.	Органический распад — детрит — различного вида.
11.	Пыльца растений, яйца червей, споры, чешуйки бабочек,
обломки хитина, кусочки клетчатки (фиг. 42) бактерии
и мн. др.

Фиг. 40—41. Содержимое желудка личинок An. plumbeus из дупла на Машуке
(Пятигорск). Видны остатки растительной клетчатки, куски хитина, инцистиро-
ванные простейшие и инцистированные трематоды. По Е. Павловскому
и А. Месс.

12.	Неорганический материал — дорожная пыль, парижская
зелень и др.

Исследования содержимого желудка личинок комаров делают
с целью выяснения их пищевого режима в связи с характером
планктона, мезопланктона и перифитона водоема, или с условиями
искусственного кормления личинок. Затем этот метод необхо-
дим при изучении действия кишечных ядов, например париж-
ской зелени и веществ, применяемых для ее разбавления.
Сводку литературы о питании личинок дает Senior-White (1930).
Из русских авторов отметим Себенцова (1926) и Благовещен-
ского и Гончарова (1928). Напомним, что личинки комаров могут
жить и в профильтрованной воде за счет коллоидно-дисперсных
веществ (В. Беклемишев) и бактерий.

В. Питание взрослых комаров. Особый интерес
представляет питание комаров кровью человека или животных
и возможное предпочтение, оказываемое анофелес тому или
другому источнику питания. Этот вопрос тесно связывается
с проблемой зоофилии анофелес, а также с вопросом о расах
малярийных комаров и о соотношении их распространения
с эпидемиологией малярии.

Источник питания окрыленных комаров может быть опре-
делен по установлении принадлежности всосанной ими крови.
Для этой цели вылавливают . комаров из жилья человека и из
помещений для скота с точным отмечением, откуда взят каждый
комар. Определение принадлежности крови из желудка этих
комаров укажет на фактический источник их питания. В других
случаях предлагают комарам на выбор сосать кровь человека
и каких-либо животных (например, кладут спать человека в ко-
нюшне и пускают сюда голодных комаров; утром их ловят
и определяют, чью кровь они пили).

Определение принадлежности крови производят методом
Уленгута (реакция преципитации). Приобретают в бактериологи-
ческих лабораториях или специально приготовляют специфиче-
ские сыворотки против крови человека, лошади, свиньи, коровы
или других животных. В качестве испытуемого вещества берется
вытяжка на минимальном количестве стерильного физиологи-
ческого раствора из отрезанного брюшка сухого комара. „При
наличии только-что насосавшихся комаров, кровь можно отса-
сывать из брюшка очень тонкой капиллярной пипеткой. Если
комар хотя бы немножко полежал и кровь успела в нем загу-
стеть— она выдавливается из оторванного брюшка вместе
с желудком в виде капли, к которой с одной стороны как бы
прикреплены яичники; в таком случае нужно только слегка
раздавить каплю в пробирке с физиологическим раствором,
отнюдь не растирая ее и не встряхивая сильно пробирки, так
как в этом случае получаются опалесцирующие вытяжки, не
пригодные для реакции" (Блажин). Кусочки брюшка сухого
комара ни в коем случае нельзя растирать, а экстрагируют их
целиком. Часа через 2—3 стояния при комнатной температуре
пробирку осторожно взбалтывают и на 12—18 часов уносят
в ледник для полного отстаивания. Реакция ставится отдельными
рядами (длинные штативы) для каждой специальной сыворотки.
Вытяжки, отсосанные прямо из пробирок, в коих изготовлялись,
разливаются в количестве 1.0 см3 в одну пробирку каждого
вертикального ряда. Затем все пробирки горизонтального ряда
Дополняются 0.1 см8 специальной сыворотки. Как контроль, для
каждого горизонтального ряда ставится пробирка в 1.0 см3
физиологического раствора плюс 0.1 см3 специальной сыворотки
и пробирка с 1.0 см8 гомологичной сыворотки в разведении
1:5000 плюс 0.1 специальной сыворотки.

Наблюдение производится через 5—10 минут, считая с мо-
мента окончания разлива, и заканчивается через 72 часа.

Наблюдение производится при падающем свете на фоне
косо поставленной черной глянцевой бумаги, что позволяет
заметить малейшие следы помутнения.

При оценке результата реакции сравниваются помутнения
в пробирках с одной и той же вытяжкой, т. е. одного и того же
вертикального ряда.

За положительный результат признается малейшее помут-
нение, так как оно вполне демонстративно по сравнению
с совершенно прозрачными отрицательными пробирками и кон-
тролем с физиологическим раствором. Второй контроль под-
тверждает активность специальной сыворотки.

Даже при 26-часовом переваривании крови в желудке ано-
фелес при 22° С реакция получается положительная.

МЕТОД НАСИЛЬСТВЕННОГО КОРМЛЕНИЯ КОМАРОВ

Немалые трудности может представить кормление выведен-
ных в лаборатории комаров на малярийном больном тогда,
когда это необходимо для экспериментатора. В ряде случаев
комары упорно отказываются пить кровь. Техника кормления
комаров в руках различных авторов сводилась к следующим
приемам.

1)	Комаров помещают в стакан или банку, отверстие затя-
гивают марлей или пологовой сеткой и прикладывают к бедру,
предплечью или к другой части тела человека. Более удовле-
творительные результаты получаются если приставленную
банку или стакан закрыть наглухо, так как комары сосут кровь
охотнее в темноте.

2)	Способ кормления аналогичен предыдущему, но вместо
стеклянного вместилища берется проволочная марлевая клетка.

3)	Больной лежит на кровати: обнаженное предплечье
вводится через марлевый рукав в сетчатую клетку с кома-
рами, которую наглухо закрывают одеялом или черной мате-
рией.

4)	В небольшую хорошо закрываемую комнату пускают
комаров и укладывают гаметоносителя спать, утром вылавли-
вают насосавшихся комаров (Schaudinn).

5)	Постель гаметоносителя закрывается комариным пологом,
под который пускают комаров и укладывают пациента; на утро
комаров вылавливают (Е. Martini).

Следует отметить, что зимующие самки An. maculipennis
по переводе их в теплое помещение охотно сосут кровь; в усло-
виях эксперимента они могут быть заражены на маляриках
зимой, и малярийный плазмодий может дойти в них до стадии
спорозоитов (П. Симанин).

Во всех этих опытах экспериментатор пассивен, и результат
работы зависит от охоты или неохоты комара пить кровь.
Интересные результаты дает „насильственный" способ кормле-
ния анофелес кровью, сулящий гораздо больший успех дела,
чем при всяких других приемах. Этот способ, предложенный
Н. Кадлецом, сводится к следующим приемам:

Комар иммобилизуется в специальном приспособлении,
своего рода маленьком „станке", которым служит простое пред-
метное стекло; к одному его краю приклеен (или пришпилен
канцелярской скрепкой (фиг. 43) квадратный кусок тонкой
(шелковой, папиросной) бумаги таким образом, чтобы свободный
конец ее выступал на палец из-под предметного стекла. Комар
из инсектария вылавливается сначала в обыкновенную (абсо-
лютно сухую) пробирку, затем переводится в возможно малень-
кий цилиндрик энергичным встряхиванием. Тремя пальцами
левой руки, указательным поверх предметного стекла, большим
и средним — снизу, сдвигаем бумагу под стеклом так, чтобы
она образовала карман, отверстием наружу. В отверстие вста-
вляем цилиндрик с комаром (правой рукой). Когда комар ока-
жется в кармане, бумага осторожно расправляется, и комар
оказывается фиксированным сверху стеклом, снизу бумагой.
Предметное стекло кладется (бумагой вниз) на 2 спички, поло-
женные на стол (фиг. 43). Расправляя снова бумагу, можно
усилить или ослабить степень прижатия комара, смотря по

Фиг. 42. Выпуск комара под бумажный лоскут „станка" из пред-
метного стекла.

43. Комар, уложенный в станок; хоботок
его опущен в капилляр с кровью. По
Кадлецу.

Фиг. 42—43. Насильственное кормление самки комара кровью.

надобности. Осторожно передвигая комара под стеклом тонкой
стеклянной палочкой, придаем ему надлежащее положение, при
котором хоботок направлен к правому краю предметного стекла,.
т. е. в сторону отверстия кармана. Если теперь погрузить хобо-
ток в капиллярную трубку, содержащую кровь или другую
питательную жидкость, то комар обычно скоро начинает ее^
насасывать. При касании трубочкой (мы работали с капилля-
рами для оспенного детрита) кончика хоботка комар приподни-
мает пальпы; при погружении хоботка в капилляр они остаются
вне его и ритмическими покачиваниями указывают на происходя-
щее нагнетание жидкости. Поднося предметное стекло с комаром
(не вынимая хоботка его из капилляра) к свету, можно легко заме-
тить начало поступления в кишечник и дальнейшее набухание по-
следнего, в особенности, если жидкость окрашена. Все эти
манипуляции при небольшом навыке проделываются быстро.
Преимущество такого способа „насильственного" кормления
перед иными, о которых говорилось выше, между прочим еще
в том, что комар совершенно не повреждается, так как к нему
применяется минимум насилия. Фиксированные в своих „стан-
ках" комары легко контролируются сверху через стекло. Число
одновременных кормлений не ограничено.

Таблица 4 показывает сравнительные числа удачных
кормежек кровью насильственным методом, с одной стороны,
и при обычном способе искусственного кормления на пред-
плечья, вставленном в клетку, покрытую темным платком,—
с другой.

Таблица 4

Свободные кормежки на человеке в тече- ние 1—2 час.			Насильственные кормежки дефи- брированной кровью человека из капилляра	
Время года	Число 22 An. maculi- pennis	Из них сосали кровь	Из числа отка- завшихся от руки кормились на- сильственно	Из них сосало кровь
Апрель	41	3(7.3%)	18	9(50%)
Май .	132	12.9%	33	24(72%)
Всего	173	15(8.60/0)	51	33(64.7%)

При необходимости кормить комаров культурами различных
микроорганизмов культуры смешивают с инактивированной
лошадиной сывороткой; жидкость наливают в какой-либо сосуд
до верху и завязывают его свежеснятой мышиной шкуркой.
Комаров в пробирке прикладывают к поверхности шкурки, ко-
торую они прокалывают при сосании жидкости (Noller). Можно
пользоваться для той же цели перепонкой крыла летучей мыши.
Насосавшихся комаров можно держать в небольших сте-
клянных банках, в которые до 1/8 высоты налита чистая вода
и опущены плавающие растения; банка завязывается марлей;
пользуются также установкой Mac Gregor’a (фиг. 48).

ЭКОЛОГИЯ ВЗРОСЛЫХ САМОК АНОФЕЛЕС ПРИМЕНИТЕЛЬНО
К МЕСТАМ ИХ ПРЕБЫВАНИЯ

Для характеризойания тех или других этапов жизни комаров
прежде всего пользуются температурными данными, которые,
как правило, берут из ближайшего метеорологического пункта
наблюдений. Однако, действительная температура биотопа
наблюдаемого нами комара во многих случаях не соответствует
температуре, отмечаемой приборами английской будки метеоро-
логической станции.

Поэтому в экологии выдвинута задача изучения микрокли-
мата биотопа, т. е. метеорологических факторов самой точки
местопребывания животного, например, температура у самой
почвы в гуще куста, температура в заросли камыша на разной
высоте и т. д.

Совершенно очевидна необходимость изучения микрокли-
мата биотопов комаров, особенно анофелес, которые избирают
в качестве мест пребывания и убежища различные строения,
т. е. стации хозяйственного порядка, сооружаемые и исполь»-
зуемые человеком.

Понятно, что условия температуры, влажности, освещения,
продувания ветром в спальне, коровнике, досчатой уборной,
пустующем сарае и т. д. будут неодинаковы. Между тем комары
избирают эти биотопы и проводят в них известное время или
в поисках источника питания, или же для переваривания уже
всосанной пищи, с чем комбинируется созревание яиц в яични-
ках. Об оседании комаров на зимовки в помещениях различ-
ного типа уже говорилось выше.

Точность экологического исследования должна быть дроби-
ной. Мало установить, что такой хозяйственный биотоп как
коровник имеет такую-то температуру. В зависимости от вели-
чины и конструкции коровника и времени его заполнения ско-
том, количества коров и телят и степени зоогигиеничности
содержания коровника —микроклиматические факторы в разных
местах одного и того же здания могут быть неодинаковы.
С этими моментами связывается то или другое рассеивание
комаров по стенам, потолку и углам помещения и пассивность
или активность их состояния.

Следовательно, мало определить температуру воздуха та-
кого помещения вообще, надо это сделать для различных
точек помещения в связи с его особенностями и в зависимости
от характера распространения комаров. Для некоторых целей
потом выводят средние из данных по всем точкам наблюдений.

При изучении микроклимата и других экологических фак-
торов следует неизменно помнить, что организм подвергается
воздействию комплекса факторов, причем вариации отдельных
факторов могут видоизменять суммарное действие всего ком-
плекса на наблюдаемый нами организм.

Вместе с тем изучение действия экологических факторов
в силу технических и иных причин часто производится изо-
лированно (напр. влияние одной температуры); в таких слу-
чаях необходима большая осторожность в выводах. Да и бо-
лее широко проведенные экологические работы дают выводы,
которые нельзя без обиняков переносить на местности с иным
климатом или с иным комариным населением (напр. Мартини
и Тейбнер показали, что различные расы An. maculipennis
не одинаково выносливы к сухому воздуху).

В литературе имеются довольно скудные данные по инстру-
ментальному изучению экологии комаров; между тем именно
это направление экологических исследований требует деталь-
ной разработки применительно к различным видам, в первую
очередь малярийных комаров в разных районах СССР.

Весьма существенное значение имеет изучение айофелес
в условиях дикой природы в сфере пребывания человека. В усло-
виях дикой природы места обитания анофелес разнообразны —
пещеры, гроты, норы, камыши, другие заросли и т. д. При
попадании человека в ранее необитаемое место и оседание,
здесь может наблюдаться конденсация анофелес вокруг нового
объекта питания; если среди поселенцев имеются гаметоноси-
тели, и экологическая обстановка благоприятствует воз-
можности развития малярийных плазмодиев, то среди ново-
прибывших может разразиться вспышка малярии, причины
которой без детального экологического анализа взаимоотно-
шений останутся неясными. Так именно может обстоять
дело с вспышками малярии в пустынных местах Туркмении
(П. Петрищева).
В свете этих данных становится очевидной необходимость
детальных исследований по экологии комаров с применением
точной инструментальной методики:

1) в лабораторной обстановке (экспериментальная экология)
и 2) в полевых условиях (ландшафтная экология).

Известная трудность таких работ заключается в необходи-
мости иметь специальную аппаратуру и уметь владеть ею,
например политермостаты для лаборатории, термографы, ги-
грографы, приборы для определения микроклимата нор и др.

Мы не имеем возможности рассмотреть здесь соответствую-
щую аппаратуру и отсылаем поэтому к литературным источ-
никам.

Но трудность получения в ближайшее время такой аппара-
туры для более или менее широкой практики работ не должна
останавливать наблюдателя и удерживать его от постановки
экологических работ. С точным градусником и психрометром
можно сделать немало важных наблюдений.

Пример постановки такого рода наблюдений разберем по
работе В. Беклемишева и Митрофановой (1933) над влиянием
температуры и относительной влажности воздуха на активность
и распределение на дневках An. maculipennis (Магнитогорск,
1931).

Наблюдения производились в нижнем этаже брошенной
каменной мельницы, вход широкий в восточнбй и южной стенах,
дверей нет. В северо-западном углу на высоте 40 см от пола
три отверстия для приводного колеса. Пол земляной. Комары
вылавливались в продолжение одного часа в пробирки; отме-
чалось их число, время наблюдения, температура воздуха
и относительная влажность у потолка и на 20 см над полом
(психометром Ассмана). В разных углах мельницы наблюдалась
различная влажность, неодинаковая температура и разное коли-
чество комаров.

Сопоставление данных ряда наблюдений показало, что:

1)	При средней относительной влажности1 внутри помеще-
ния меньшей 65%, число комаров в разных углах находилось
в прямой корреляции с относительной влажностью: комаров
было больше там, где влажность была выше.

1 Средняя для всех мест наблюдений внутри помещения в данный •

момент.
2)	Когда средняя относительная влажность выше 65%, ука-
занная корреляция ослабевает, а при средней влажности, пре-
вышающей 70%, ее влияние исчезает, и решающее значение
приобретают другие факторы — защищенность от ветра и сте-
пень освещения; комаров меньше там, где больше движения
воздуха; при ярком освещении их меньше в наиболее светлых
местах. При отсутствии сквозняков и яркого освещения и при
достаточной или равномерной относительной влажности комары
распределяются равномерно.

При влажности воздуха выше 60% комары обыкновенно
оседают ближе к потолку или на нижней поверхности стола,
мебели1 и т. д.; когда влажность воздуха помещения меньше
60% и она повышается ближе к полу, то и комары усаживаются
в большинстве случаев ближе к последнему.

Комары в помещении или сидят спокойно, или подвижны,

X Kgc/rtOT • Сидрт йеподВи&Ио

Фиг. 45. Активность самок An. maculipennis в зависимости от температуры
и относительной | влажности. Каратал, VIII 1932. Обозначения см. фиг. 44.
По В. Беклемишеву и Ю. Митрофановой.

или активность состояния комаров связана с определенными
сочетаниями температуры и влажности. Наглядное представле-
ние о границе активности комаров дает фиг. 44, из которой
видно, что температурно-гигрометрический порог активности
An. maculipennis в Магнитогорске, как правило, определяется
в 25—26° и относительной влажностью в 63 %. В Каратал-
ском рисосовхозе (пояс пустынь, Казакстан) зона максимальной
активности An. maculipennis сильно сдвинута в сторону мень-
ших влажностей (см. фиг. 45). Таким образом An. maculipennis

1 Иофф (1933) упоминает о случае, когда под кроватью одного помеще-
ния за 21 день было собрано 7821 анофелес.

Павловский	6
(без учета его рас), обитающие в разных климатических поясах,
адаптируют к различным экологическим условиям существова-
ния и представляют значительные физиологические различия.

В зависимости от сочетания температуры и влажности пове-
дение комаров ночью неодинаково. В сухие ночи (относитель-
ная влажность не больше 60%), большинство самок остается
пассивными и человека не трогают. Зато во влажные дни бывает
обратное, и комары нападают на человека и скот.

Другим существенным вопросом является раскрытие факто-
ров дневного распределения самок анофелес между различными
помещениями. Комары залетают в помещения к ночи и ночью.
Следовательно, дневные микроклиматические особенности поме-
щения не могут играть привлекающей или отталкивающей роли
ночью по отношению к комарам. Определяющими условиями
являются моменты, господствующие ночью, например, близость
от водоема, доступность помещений для влета, наличие и харак-
тер хозяев и др. Поэтому комары попадают и в помещения,
неблагоприятные в отношении их дневных микроклиматических
особенностей. Если условия вне помещения еще более худшие,
то комары остаются в нем, перераспределяясь по различным
его участкам. При обратной конъюнктуре комары покидают
такое помещение.

Различают: 1) помещение типа эвстатических биотопов,
которые характеризуются относительным постоянством условий
температуры и влажности (например, избы, землянки, дома);
2) астатические помещения характеризуются значительными
колебаниями указанных факторов (шалаши, палатки, примитив-
ные хлева, временное легкое жилье и др.). Помещения, вовсе
не обитаемые комарами (заброшенные помещения), могут в то же
время быть подходящими для их жизни по микроклиматическим
условиям; но отсутствие в них хозяев, привлекающих комаров,
или своеобразное топографическое расположение, связанное
с влиянием таких факторов, как господствующие ветры, делают
подобные помещения в конкретной обстановке момента необи-
таемыми.

Наряду с таким дробным изучением факторов распределения
особей данного вида комара по биотопам, необходимо иметь
представление о валовом распределении окрыленных комаров
по биотопам различного типа. Для иллюстрирования таких
соотношений необходимы большие сборы комаров в разные
Фиг. 46. Сюмы (вырытые пещеры для фуража) у гребня
горы в Нере (Кара-калинский район, Туркмения) — био-
топ взрослых An. superpictus. Фото Е. Н. Павловского.

сезоны по различным контрольным пунктам, производимые не
менее двух лет. Одни виды оказываются эвритопными (т. е.
бывают в биотопах разного типа), другие—стенотопными. Сводка
распределения комаров по типовым биотопам может даваться
но схеме Рейнгардта и Гуцевича (1931), приведенной на табл. 5.
Эти авторы работали в районе Днепропетровска. Само собой
разумеется, что в местах с иным географическим ландшафтом
категории биотопов будут соответственно иными. Излишне доба-
влять о необходимости фотографических снимков с характер-
ных биотопов взрослых комаров (фиг. 46).
- 84 —

Таблица 5

Распределение по типам биотопов imago комаров по Л. Рейнгардту
и А. Гуцевичу

	Виды комаров	Типы биотопов			
		1  Лес	2  Луг	3  Жилище	4 Помеще- ние для скота

1

2

3

4

5

6

7

8

9

10
И

12

13

14

15

16

17

18

19

An. maculipennis
„ hyrcanus .

Th. longeareolata

Th. richiardii

Аё. caspius

С.

dorsalis
pulchritarsis
maculates
semicantans
excracians
lutescens .
salinellus .
sticticus
communis
geniculatus
vexans
cinereus
modestus

pipiens

Встречается очень часто
обычно

очень редко

ЭКОЛОГИЧЕСКИЕ ИССЛЕДОВАНИЯ НАД ЛИЧИНКАМИ КОМАРОВ
Метаморфоз комаров сем. Culicidae протекает в воде раз-
личных водоемов, поэтому экологический анализ водного фак-
тора является важным моментом научно-исследовательской
работы, дающей ряд практических методов обследования водое-
мов в комплексе противомалярийных работ.
Фиг. 47. Затоны на Мургабе в Иологани с личинками
An, pulcherrimus, Фото Е. Н. Павловского.

Общая характер и с т и к а водоемов. Первым общим
вопросом является характеристика водоемов, служащих типич-
ными местами выплода различных видов комаров. Водоемы
характеризуются по физико-химическим свойствам воды, живот-
ному и растительному их населению, топографическому распо-
ложению (в частности относительно близости человеческого
жилья), длительности своего существования, характеру обра-
мления берегов, источникам снабжения водою, происхождению,
характеру использования человеком и др. Накопившиеся в ли-
тературе данные указывают на приуроченность определенных
видов комаров к определенным типам водоемов.
Для предварительного обследования водоемов можно поль-
зоваться терминологией, характеризующей общие особенности:
наблюдаемых нами вместилищ воды. Для средней и северной
полосы СССР можно выделить следующие типы водоемов:

1)	реки с медленным течением и богатой растительностью
(степные реки) и их заводи (фиг. 47);

Фиг. 48. Пруд под Железноводском с личинками An. maculipennis. фото
А. А. Месс.

2)	пруды (озера) с обильной погруженной растительностью;

3)	пруды со слабо развитой погруженной растительностью
(фиг. 48);

4)	болота и заболоченности (фиг. 49);

5)	дупловые и прикорневые водоемы (фиг. 15);

6)	водоемы в пазухах листьев;

7)	временные водоемы'—канавы, ямы, копанки, лужи (фиг. 51);,

8)	кадки, чаны, горшки, цистерны с водой, случайные вме-
стилища воды (фиг. 50);

Обследуя район на комариное население водоемов, данные
по определению обнаруживаемых комаров заносят в рубрики
таблицы, характеризующие обитаемые комарами водоемы. При-
мер такой сводки Л. Рейнгардта и А. Гуцевича даем на табл. 6»
ьэ

Встречается очень часто
обычно

Степные реки (очень
медленное течение, бо- *-*
гатая растительность)
Пруды с обильной по-
груженной раститель- к?
ностью

Пруды со слабо разви-
той погруженной рас- иэ
тительностыо

Канавы, ямы, лужи,
разные временные
водоемы

Кадки с водой	сп

s
д

S

д
о
3*
о
л

о
И

„Древесные" водоемы
(дупловые и прикор-
невые)

Распределение по типам биотопов личинок комаров, по Л. Рейнгардту
и А. Гуцевичу
характеризующей приуроченность разных видов комаров к раз-
ным Типам водоемов. Так как многие виды комаров могут
встречаться в водоемах разного типа, то при обследованиях
следует вести относительный учет частоты встречаемости кома-

Фиг. 49. Постоянная заболоченность от сбросов воды из
оросигельной системы. Фарабский район f(Cp. Азия).
Фото П. А. Петрищевой.

ров в разных водоемах. На табл. 6 этот момент учтен и наглядно
показан.

Указанные выше категории водоемов еще более разно-
образятся, если мы будем детально изучать ‘‘водный фактор
на юге СССР и в Средней ’Азии, где искусственное орошение
является неизбежной предпосылкой возможности жизни чело-
века.
Фиг. 50. Сад музея во Владивостоке. Водоем с личинками Aedes iogoi. Фото
П. Д. Резвого.

Фиг. 51. Копанки в пойме Аракса-Давалу, Армения. Фото Е. Н. Павловского.
Горные речки, оросительные каналы (арыки, фиг. 52), раз-
ного калибра, хаузы, гауданы и кярызы, рисовые поля (фиг. 53
и 54), сбросовые воды (фиг. 49), заболоченности от высоко
стоящих грунтовых вод, родники, колодцы, водоемы хозяй-
ственного значения, остаточные карьеры и выемки, заполняемые
водой, водоемы, остающиеся после паводков, силей или вслед-
ствие обеднения водою речек (фиг. 56)—все это, в зависимости
от своего характера и состояния, может быть местом выплажи-
вания малярийных комаров и играть важную роль в распростра-
нении малярии.

Для иллюстрации важности состояния различных звеньев
оросительной системы рассмотрим исчерпывающую схему
П. Петрищевой (фиг. 55), наглядно рисующую прямую и косвен-
ную роль Аму-Дарьи в орошении и в образовании мест выплода
комаров, зависящую как от естественных особенностей, так и от
конструктивного и эксплоатационного несовершенства ороси-
тельной системы. Эта схема является примерной и по ее образцу
можно анализировать аналогичные соотношения для любой вод-
ной артерии.

Аму-Дарья дает начало оросительным каналам, ветвящимся
в широкую ирригационную систему. При отсутствии головных
(водовыделительных) сооружений и при плохой эксплоатации
имеющейся сети — в ирригационную систему поступают в вод-
ные сезоны излишки воды, могущие обусловливать прорывы
дамб, что в свою очередь ведет к образованию заболоченностей
постоянного или временного типа.

В самой системе ирригационных каналов в зависимости от
топографических особенностей происходит фильтрация воды
через борта арыков, в холостой части каналов, заполнение
такой водой естественных и искусственных углублений почвы
(карьеры, выемки, копанки) или заболачивание низин.

Обычно отсутствует специальная сбросовая система для
отработанной воды. Вода сбрасывается в естественные низины
и углубления почвы, что ведет к аналогичным последствиям.

Паводки Аму-Дарьи вызывают стихийные затопления поймы,
переполнение водой арыков, прорывы заградительных дамб и бор-
тов арыков и в конечном итоге ведут к заболачиванию почвы.

При большой скорости течения и крайней податливости
лёссовых берегов русло реки перемещается; с этим связаны
затопление и размывы берегов. Огромное количество неорга-
Фиг. 52. Заболоченность от воды, просачивающейся через борт арыка. Турк-
мения/ Фото П. А. Петрищевой.

Фиг. 53. Рисовые поля по реке Кафирнигану на дороге в Ромит. Биотоп
личинок A. superpictus. Фото Е. Н. Павловского.
нических веществ, взвешенных в воде, ведет к заиливанию кана-
лов, к замедлению тока воды, появлению в каналах раститель-
ности со всеми дальнейшими последствиями относительно засе-
ления таких водовместилищ личинками комаров (фиг. 56).

Фиг. 54. Типичное место выплода A. superpictus по руслу
родниковой реки — между камнями; Бальджуан.

Фот. Н. И. Латышев.

Оценка анофелогенной роли водоема. На фоне
«общей оценки водоемов проводят более детальное изучение их
особенностей, обусловливающих (со своей стороны) анофело-
генность одних водовместилищ и непригодность для жизни
анофелес других.

Такая оценка производится по следующим линиям:

1)	топографическое расположение водоема, характер его
'берегов и степень затенения древесной растительностью;
Роль Аму-ддрьи И ИРРИГАЦИИ

В ОБРАЗ ОВД НИИ МЕСТ ВЫПЛОДА КОМАРОВ (п.Д.петрищевд)

Фиг. 55.

Павдовскя!
2)	физико-химический состав воды;

3)	биоценозы водоема — его растительное и* животное насе-
ление; заселенность водоема личинками и куколками ко-
маров;

4)	использование водоема человеком и влияние последнего
на качества воды.

Фиг. 56. Осушительная канава в зарослях (тугай), Куляб.
Фот. Н. И. Латышева.

В отношении физико-химических особенностей водоема по-
вторно определяют, кроме цвета и запаха:

1)	температуру поверхностного слоя воды, в котором дер-
жатся личинки анофелес или других комаров;

2)	реакцию среды (pH);

3)	количество растворенного в воде кислорода и окисляе-
мость в О2 на 1;

4)	свободную углекислоту;

5)	карбонаты (напр. метод полевой титрации Birge и Juday)^

6)	фосфаты;

7)	соленость воды;
8)	загрязнение водоема (торфяники, азотистые загрязнения
и др.);

9)	характеристику дна.

Следует помнить, что все данные о физико-химических
особенностях воды данного водоема должны быть оцениваемы
в связи с характером заселенности его растениями и с нали-
чием здесь личинок комаров. Взятые сами по себе отдельные
факторы внешней среды не являются надежными показателями
анофелогенности водоема или его противоположного значения.

Личинки анофелес могут жить не только в чистой воде (что
обычно подчеркивается), но и в загрязненной, однако лишь
в водоемах, ярко освещаемых солнцем с погруженными расте-
ниями (обеспеченность энергичного фотосинтеза). Однако
личинки анофелес бывают и в водоемах без всяких зеленых
растений, но при условии отсутствия мертвых органических
остатков и наличия минерального дна.

Активная реакция среды (pH) определяет возможность оби-
тания в данном водоеме фитопланктона определенного состава,
в том числе водорослей, являющихся излюбленной пищей личи-
нок анофелес (напр. Glosterium, Spirogyra и др.; pH 5.64 и выше).
Таким образом, pH способствует размножению водорослей
и следовательно и увеличению кормности водоема по отноше-
нию к личинкам анофелес; значение pH определяется его влия-
нием на трофический фактор и через его посредство на личинок
анофелес.

Аналогичное значение имеет и свободный кислород, ибо
личинки анофелес дышат за счет атмосферного воздуха. Недо-
статок свободного кислорода ведет к нехватке подходящей для
личинок пищи, т. е. опять-таки к моменту трофического харак-
тера.

Личинки анофелес могут жить в соленой воде с содержа-
нием соли 0.9 — 17s% и выше.

В свете отмеченных соотношений особо важное значение
приобретает изучение растительных сообществ водоема в связи
с пригодностью его различных стаций к обитанию в них личи-
нок комаров.

Что характер растительности водоема резко отражается на
возможности обитания в нем личинок анофелес и на их относи-
тельном обилии, было уже давно известно, но необходимы
более конкретные количественные показатели связи личинок
комаров с определенными растительными сообществами. При-
меры таких соотношений дадим по работе В. Беклемишева и
В. Половодовой (1933).

Водяные растения образуют:

1)	чистые или почти чистые заросли (одноярусное сооб-
щество);

2)	многоярусные сообщества, состоящие из: а) одного или
нескольких надводных ярусов (нейстический ярус) и б) погру-
женного яруса.

Ярусы могут быть представлены чистыми зарослями одного
вида; ярусы характеризуются по доминирующему виду; а все
сообщество характеризуется по виду растения, преобладающему
в господствующем ярусе.

Значение растительного сообщества водоема для жизни ли-
чинок анофелес будет тем большее, чем больше в сообществе
поверхность погруженных в воду ассимилирующих частей расте-
ний и чем больше в них сумма периметров соприкасающихся
с поверхностью воды частей растений.

Типичными представителями лимнических сообществ явля-
ются (фиг. 57) группы:

1) Элодеид — донные растения с крупными или мелкими
погруженными листьями и длинными стеблями, достигающими
поверхности воды (рдест Potamogeton pectinatus, роголистник
Ceratophyllum demersum, водяной лютик Ranunculus circinnatus
и др.); узколистные элодеиды (г) характеризуют более благо-
приятную среду обитания, чем элодеиды с менее рассеченными
листьями; в поймах Урала элодеиды преобладают в разгар лета,
осенью же большинство их отмирает; к этому времени густота
личиночного населения передвигается в другие водоемы и
в другие растительные сообщества.

2)Планктические лемниды (фиг. 57, а), не прикре-
пленные к какому-либо субстрату растения, плавающие свободно
в толще воды; листья мелко рассеченные; примером могут слу-
жить пузырчатка (Utricularia), плавающие нитчатки (Oedogonium),
ряска трехдольчатая (Lemna trisulcd) и др.; касаясь поверхности
воды своими листьями, они создают отличные биотопы для
личинок анофелес; вместе с элодеидами планктические лемниды
играют важную роль в анофелогенной продукции водоемов;
нитчатка, являясь отличным местом обитания для личинок ано-
фелес при чрезмерном развитии своем отмирает в выпираемых
над водою слоях; мертвая пленка спавшихся нитчаток непрони-
цаема для воздуха, и под ней личинки погибают; таким образом
есть известный предел полезного для анофелес обилия нитчатки
в водоеме; то же можно отметить и для трехдольчатой ряски»

3)	Нейстические лемниды (фиг. 57, б): свободно пла-
вающие растения с лежащими на поверхности воды листьями —
лягушатник {Hydrochares morsus гапае), обыкновенная ряска
(Lemna minor).

4)	Нимфеиды: листья на поверхности воды (д), самые же
растения в противоположность нейстическим лемнидам укоре-
няются на дне; крупнолистные нимфеиды (кувшинки — Nymhaea^
Nuphar), мелколистные нимфеиды — рдест плавающий (Potamo-
geton natans), заросли последних более удобны для жизни ли-
чинок анофелес, чем первых; при сплошном покрытии поверх-
ности водоема листьями кувшинок личинок анофелес не
бывает.

5)	Линеиды — укореняющиеся растения с торчащими над
водою стеблем и узкими, длинными листьями — злаки и осоки,
тростник и рогозы, поднимающиеся более чем на один метр
над водой и образующие густые затеняющие заросли, создают
обстановку, неблагоприятную для жизни личинок анофелес (е);
наконец.

6)	Земноводные — Amphibiotica — пестрая группа поли-
морфных растений (ж), видоизменяющихся в зависимости от сте-
пени затопления места их произрастания; в связи с этим значение
их, как факторов, благоприятствующих жизни личинок анофелес,
далеко не одинаково (стрелолист, ежеголовка и др.).

Нейстические и планктические лемниды при чрезмерном
разрастании делают соответствующие места вредными для
обитания личинок анофелес.

В водоемах за весь активный сезон происходит смена расти-
тельных сообществ, с чем связывается перемещение центра
обилия личинок из сообщества одного типа в сообщества дру-
гого типа.

Следовательно, необходимы повторные обследования водое-
мов в течение всего активного сезона для направления необхо-
димых оперативных мероприятий по борьбе с водными фазами
метаморфоза комаров.

Водоемы района или места противомалярийных работ должны
быть оценены в отношении маляриогенности, каковая опреде-
Схемы типичных представителей важнейших физиономических
групп водной растительности:

Фиг. 57.

ляется возможностью и степенью анофельной продукции водое-
мов и расположением относительно жилья человека или мест
его ночевок и работ.

Анофельная продукция определяется числом взрослых ано-
фелес, вылупляющихся в единицу времени на единицу поверх-
ности оцениваемого водоема.

Определения производят или прямым улавливанием анофе-
лес сачком, опускаемым в водоем, или теоретическим вычисле-
нием продукции на основании обилия куколок и длительности
их жизни. Обилие куколок определяется количественным уло-

Павловский	7
вом, производимым в различных стациях водоема в течение
активного сезона (см. Беклемишев и Половодова, 1933).

Анофельная продукция меняется в течение всего сезона,
и она к тому же различна в различных растительных сообще-
ствах одного и того же водоема, при условии достаточного
обилия яйцекладущих самок анофелес.

В результате изучения географического расположения водое-
мов, их анофелогенной роли, расстояния от жилья человека,
влияния на них человека и наличия резервуаров малярийного
вируса, можно подойти к характеристике маляриогенного ланд-
шафта местности с выделением опасных и безопасных в маля-
рийном отношении водоемов.

ПРЕДСКАЗАНИЕ ПРОДОЛЖИТЕЛЬНОСТИ РАЗВИТИЯ ANOPHELES
MACULIPENNIS ПРИ РАЗЛИЧНЫХ ТЕМПЕРАТУРАХ

Из факторов внешней среды температура оказывает наиболь-
шее влияние на продолжительность развития. В настоящее время
для ряда насекомых, в том числе и для An. maculipennis, точно
установлено соотношение между температурой и продолжитель-
ностью развития, что имеет большое практическое значение,
так как дает возможность предвидеть продолжительность раз-
вития комара при любой температуре. Таким образом, имея
метеорологические данные, можно ориентировочно заранее
рассчитать, сколько поколений комара может развиться за сезон,
какова должна быть частота обработки водоемов лярвицидами
и т. д. Разумеется теоретический расчет играет лишь вспомо-
гательную роль, как подсобный метод, и вовсе не исключает
необходимости непосредственных наблюдений и контроля путем
обследования водоемов.

Зависимость продолжительности развития от температуры ма-
тематически выражается следующей формулой: V ( Т— С)=const,
где V—продолжительность развития (напр. в днях), Т—соот-
ветствующая температура, а С—некоторая постоянная для
данного вида температура, которая является нижним темпера-
турным пределом развития („нижнекритическая температура"
или температурный минимум развития). Формула показывает,
что произведение из продолжительности развития на разность
между температурой опыта и температурным минимумом разви-
тия есть величина постоянная для данного вида („константа").
Эта формула может быть представлена графически в виде тем-
пературной кривой развития, для построения которой доста-

точно знать две ее точки, т. е. определить фактическую

продолжительность развития (Vlf И2) при двух различных тем-

пературах (Т19 Т2). Отсюда получаем температурный минимум

развития по формуле С= 7\ —

и вычисляем кон-

И1-И2

станту V (Т—C)=const (см. приведенную температурную

Фиг. 58. Температурная кривая развития личинок An. maculipennis.

кривую развития An. maculipennis, построенную Боденгейме-
ром по данным Мартини, (фиг. 58).

Для определения продолжительности развития (яйцо -+- ли-
чинка куколка) An. maculipennis при благоприятных внешних
условиях (достаточное питание и проч.) практически можно
пользоваться следующими приближенными данными: С = 10°,
константа, т. е. произведение V (Т—C) = 2,2Q (по Мартини,
Киселевой и др.). Пример вычисления: средняя температура
воздуха в июле по данным метеорологической станции = 25°
(температура воды в водоемах, где выплаживаются анофелес,
конечно, не равна температуре воздуха, но для первого прибли-
жения будем считать их равными). Подставляем в формулу
числа: V (25 —10) = 220, отсюда продолжительность развития
V= 14.7, округленно 15 дней. Следовательно, промежуток между
обработками водоемов должен быть около 11—12 дней при неф-
тевании и 9—10 дней при арсенизации.

Другой пример: требуется узнать, какова продолжительность
развития при средней температуре 14°. Согласно формуле,
V (14—10) = 220; И=55 дней, т. е. развитие при столь низкой
температуре затянется почти на два месяца.

Данная формула неприменима при высоких температурах,
близких к температурному максимуму развития данного вида
(для An. maculipennis, примерно при t > 30°). При повышении
температуры выше известного предела, продолжительность раз-
вития уже не сокращается, смертность увеличивается, может
наступить полная гибель личинок и куколок от перегревания.

Наконец, следует иметь в виду, что при средних темпера-
турах около 10° и даже ниже сильно замедленное развитие
все же возможно, благодаря повышению температуры воды
в дневные часы.

Имея метеорологические данные и зная температурную
кривую развития, можно ориентировочно рассчитать, сколько
поколений комара может развиться за сезон при данных темпе-
ратурных условиях.

А. Гуцевич (1931) показал, что зависимость быстроты личи-
ночного развития Аё. aegypti от температуры полностью под-
чиняется закономерности, которая выражается формулой Pears’a
и Blunck’a. Аналогичное заключение дано также Киселевой
(1928) относительно An. maculipennis и Аё. maculatus.

VII

ЗНАЧЕНИЕ КОМАРОВ ДЛЯ ЧЕЛОВЕКА

Значение комаров для человека определяется токсическими
свойствами их слюны, вызывающей различное по степени раз-
дражение кожных покровов (волдыри, уртикария, зуд, жжение
уколотой части и др.). Разные виды комаров обладают разной
токсичностью слюны; кроме того у людей наблюдаются вариа-
ции индивидуальной чувствительности к уколам комаров. На-
ряду с другими кровососами комары являются составной частью
„гнуса".
Интересно проследить различия в реакции одного и того же
человека на укол разными видами комаров и отмечать особые
случаи чувствительности людей на указанные раздражители.
Очень ценны фотографии с искусанных людей и муляжи пора-
женных частей тела.

Некоторые виды комаров служат переносчиками возбудите-
лей инфекционных и протозойных болезней.

Так, стегомия — Aedes argenteus (=Stegomyia calopus)
является переносчиком возбудителя желтой лихорадки; в связи
с легкостью завоза стегомии с пароходами из Америки в Европу
и в другие части света, известны случаи желтой лихорадки
в таких местах, где эта болезнь самостоятельно гнездиться
не может (например, в некоторых портовых городах Средизем-
ного моря).

Тот же вид Аё. argenteus является переносчиком лихорадки
денге (тропической болезни), давшей большую вспышку в 1928 г.
в Греции (около одного миллиона заболевших и 1200 человек
умерших).

Гораздо более широкое значение имеют комары рода ано-
фелес, распространяющие малярию; Culex pipiens является пере-
носчиком малярии птиц.

ANOPHELES и МАЛЯРИЯ

Кровососущие комары особенно интересны в том отношении,
что представители рода Anopheles являются переносчиками ма-
лярии человека (Plasmodium vivax, Pl. malariae, Pl. immaculatuni),
a Culex fatigans, C. hortensis, C. pipiens, некоторые Aedes
и Theobaldia longiareolata — переносят малярию птиц (Proteo-
soma avium).

Для выяснения точного эпидемиологического значения Ano-
pheles в данной местности необходимо выяснить — передает ли
он малярию в местных условиях или нет. Путь такой работы
следующий:

а)	выводят Anopheles из личинок или куколок, чтобы иметь
незараженных насекомых;

Ь)	кормят Anopheles на не леченном хиной больном малярией
(ср. П. Симанин), в крови которого имеются половые особи
малярийного плазмодия (макро- и микрогаметоциты; кровь боль-
ного проверять на состав паразитов на препаратах мазков);
интересно вычислить сколько гамет заключается в 1 мм3 пери-
ферической крови взятого больного для этого перед кормле-
нием комара подсчитывают в счетной камере количество лей-
коцитов в 1 мм3 крови и определяют, сколько лейкоцитов
приходится на одну гамету. Вещезерову удавалось заражать
An. maculipennis при 10 гаметах в 1 мм3 крови (по Darling’y
для заражения требуется minimum 12 гамет); в других опытах
ему не удавалось получить заражения даже при наличии 372 гамет
в 1 мм8 крови. Вообще число получаемых ооцист меньше ожи-
даемого теоретически на основании количества проглоченных
комаром гамет; Симанин (1930) с успехом заражал An. pulcher-
rimus плазмодиями тропической малярии при наличии 35 гамет
на 500 лейкоцитов; An. superpictus в аналогичных условиях
давал положительные результаты в большинстве поставленных
опытов.

с)	Комара, накормленного кровью малярика, содержат в по-
местительной проволочной или тюлевой клетке при определен-
ных температурных условиях, точно отмечая их во все время
опыта; это необходимо, потому что скорость созревания и раз-
множения малярийного плазмодия в Anopheles зависит прежде
всего от окружающей температуры; оптимальной t° для раз-
вития Plasmodium vivax (паразит трехдневной лихорадки)
является -4- 27° С. При колебаниях t° в пределах от 24 до 30° С
все оокинеты внедряются в стенку желудка Anopheles в тече-
ние первых двух суток после кормления зараженной кровью;
молодые ооцисты образуются на 2—3 день, на 5-й день в них
появляются споробласты, а на 8—10 день первые спорозоиты
проникают в слюнные железы комара, и укол такого Anopheles
становится заразительным для человека.

При t° в 25° С Anopheles начинает заражать человека дней
через 14 после сосания крови, при t°-i-20o С через 20 дней,
а при-+-17°---ь15° С спорогония в Anopheles затягивается

до 53 дней.

Развитие Pl. vivax и Pl. immaculatum, начавшееся при -4- 20° С,
может благополучно закончиться даже при падении t° до -4- 8° С.

Pl. malariae требует для своего развития более постоянные
температурные условия; optimum t° колеблется между-ь 19 —
-ь 20° С., так как развитие плазмодия прекращается при t°
-+-16.5° С (ниже) и при-4-30.0° С. (и выше).

Спорозоиты живут в слюне комара долго. Важно выяснить
точные максимальные сроки их жизни для Anopheles, учитывая
t° и, по возможности, влажность. В 1925 г. S. Р. James доказал,
что спорозоиты могут жить в слюне An. maculipennis, сохраняя
свою патогенность для человека, 80 дней. За этот период
комары сохранялись при t° от З1^0 С до 4.5° С и время от вре-
мени переносились в теплое помещение (до 14° С) для способ-
ствования их пищеварению.

За время содержания комара, насосавшегося крови малярика,
его необходимо кормить раз в 1—2 суток сахарной водой, кото-
рой смачивается ватный шарик, опускаемый в садок с комаром.

Фиг. 59. Приспособление Mac Gregor’a для содержания анофелес,
напитавшихся крови малярика; а — фитиль.

Важным моментом для содержания Anopheles в неволе
является влажность. Mac Gregor (1924) получал оптимальные
условия для жизни Anopheles (в тропиках) при нижеследующей
установке (фиг. 59). Голодных комаров сажают в стеклянные
плоскодонные цилиндры 100 X 33 мм (4 X 1*/4 дюйма) диаметром,
не более трех в каждый. Туда же кладут веточку дерева без
листьев. Отверстие завязывают кусочком москитной сетки. Кома-
ров кормят на человеке, прикладывая к его телу опрокинутый
цилиндр.

Цилиндрики с накормленными комарами ставят в ряд на
расстоянии дюйма друг от друга. По той же линии ставят на
подставке чашку с водой, в которую опускают конец лампового
фитиля 19 мм (3/4 дюйма) диаметром (а). Фитиль далее уклады-
вают на тюлевые покрышки цилиндриков, придерживая его
сверху камешками. Втягивая в себя воду, фитиль поддерживает
достаточную влажность воздуха в цилиндрах даже при высокой
сухости атмосферного воздуха. Для кормления комаров Mac Gre-
gor клал половинки виноградин на свободную поверхность
покрышки цилиндра.

Наиболее доказательным разрешением поставленного опыта
являлось бы заражение малярией взятым под наблюдение Апо-
pheles человека, никогда не болевшего малярией. Такие опыты
делались неоднократно; само собой разумеется, что они могут
производиться лишь с доброго согласия объекта опыта; иногда
экспериментаторы делали аналогичные опыты на самих себе.

Но и без такой героической решимости можно получить
важные результаты. Большое положительное значение имел бы
уже самый факт развития малярийного плазмодия в теле Ano-
pheles, в чем можно убедиться, владея специальной методикой
исследования, к рассмотрению которой и перейдем.

VIII

ВСКРЫТИЕ КОМАРОВ

А. ИНСТРУМЕНТАРИЙ ДЛЯ ВСКРЫТИЯ КОМАРОВ

1.	Препаровальные иглы. Для серьезной работы
лучше всего пользоваться обыкновенными швейными иглами

Фиг. 60. Острия
препаровальных
игол, увеличен-
ные; А — обыч-
ная швейная
игла, В — то же,
отточенная для
препаровки, С—
к о пьевидная
игла, D — лопа-
товидная игла
автора.

Оригинал.

различных номеров или прямыми хирургичес-
кими иглами.

Иглу завинчивают в иглодержатель
с винтовой шайбой. Для препаровальных игол
продаются специальные иглодержатели. Игло-
держатели для платиновой петли (бактериоло-
гические) не годятся; их надо укоротить вдвое.
Необходима минимум пара иглодержателей.

2.	Оселок из арканзасского камня или то-
чильный станок. Перед препаровкой иглы не-
обходимо отточить так, чтобы острие иглы имело
форму тонкого конуса. Для этой цели сглажи-
вают кривую поверхность у острия иглы (фиг. 60),
что достигается трением иглы о наждачную
бумагу, оселок или (что гораздо скорее и лучше)
о камень точильного станка. Заготовляют сразу
запас отточенных игол, которые и хранят. Пе-
ред работой иглы, как и прочие инструменты,
погружают для обезжиривания в 95% спирт
и вытирают чистой фильтровальной бумагой
или тряпочкой.

3. Шпатель гистологический узкий. Его можно заменить

узким скальпелем или лопатовидной иглой. Применяется (цля

переноса препарата из жидкости в жидкость.
4.	Пинцет с тонкими концами (глазной).

5.	Тонкие прямые ножницы (гистологические).

6.	Копьевидная препаровальная игла и лопа-
товидная препаровальная игла. Последняя пригото-
вляется из старой копьевидной иглы стачиванием ее вершины
до полукруглого очертания.

7.	Часовые стекла, большие предметные стекла с углу-
блением для культуры тканей, чашечки Петри малые, в коих
производится вскрытие.

8.	Физиологический раствор поваренной
соли. Заготовляют порошки соли по 1.5 г весом. Хранят их
в хорошо закрывающейся банке. Перед работой растворяют
один порошок в 200 см3 дестиллированной воды. Удобны также
таблетки прессованной поваренной соли.

9.	Препаровальная лупа с увеличением в 10 раз или
бинокулярный микроскоп со слабым и сильным объек-
тивами.

В. ВСКРЫТИЕ КОМАРОВ

1)	Комаров убивают табачным дымом, серным эфиром или
хлоформом и тотчас же используют для вскрытия. Поэтому
заранее убивают немного экземпляров (3—5) комаров. Перед
вскрытием определяют вид комара. Комара берут пинцетом за
основание крыла или ножек и на секунду — две опускают в 95%
спирт, после чего тотчас же погружают в физиологический
раствор, продержав комара под жидкостью до тех пор, пока не
утихнут диффузионные токи.

Благодаря этой процедуре покровы комара смачиваются
водой, и он тонет в физиологическом растворе. В противном
случае комар плавает на поверхности раствора, что затрудняет
последующую работу.

Вскрытие удобнее производить в часовом стекле, на предмет-
ном стекле с большим углублением или в чашечке Петри. Выбор
соответствующего вместилища сообразуют с величиной пред-
метного столика оптического прибора. Во всяком случае совер-
шенно необходимо, чтобы комар целиком был покрыт водой.
Поэтому рекомендуемое нередко вскрытие комара в капле
физиологического раствора на обыкновенном предметном стекле
мало практично, по крайней мере для более крупных органов
комара.
Вскрытие комара в капле физиологического раствора на
предметном стекле все же производят, если желают избежать
необходимости лишнего переноса препаруемого нежного органа
на другое предметное стекло.

2)	Отрезают (скальпелем или лопатовидной иглой) ноги
и крылья комара у их основания и удаляют отрезанное прочь.

3)	Отсекают скальпелем или ножницами голову комара.

Фиг. 61. Схема строения анофелес и направление раз-
резов при препаровке: а — желудок, b — мальпигиевы
сосуды, с — тонкая кишка, d — ректальный пузырь,
е — зобный мешок, f — слюнная железа, h — сердце.

4)	Двумя острыми препаровальными иглами надрывают хити-
новые покровы между вторым и третьим кольцами брюшка (счи-
тая сзади).

5)	Одну препаровальную иглу (левую) вкалывают сбоку
в грудь комара сейчас же под спинным горбом, другую иглу
вкалывают в задний конец брюшка. Упираясь ими в дно часо-
вого стекла, осторожными подергиваниями медленно отводят
одну иглу от другой. При этом с задним концом брюшка выта-
скивается наружу комплекс внутренних органов комара.
Кожица же груди и прилежащей к ней части брюшка снимается
в виде футляра. Этот способ препаровки называется методом
задней тракции.

Успех работы заключается в том, чтобы не оторвать задний
конец брюшка и вытянуть в целости все органы. Это удается
лишь на комарах с тощим желудком.
При препаровке кома-
ров, насытившихся кровью
(resp. с раздутым брюш-
ком), надрезают иглами хи-
тиновую кожицу не у вто-
рого сзади кольца брюшка,
а далее кпереди (3 — 4
кольцо) с тем расчетом,
чтобы толстый желудок и
яичники могли пройти че-
рез отверстие надрезан,-
ного сегмента.

6)	Когда органы вытя-
нуты, острыми иглами сни-
мают по частям хитиновые
покровы с заднего конца
брюшка и разрывают тра-
хейные стволики,1 связы-
вающие друг с другом раз-
личные части органов; при
этом освобождаются, идя
сзади (фиг. 61, 62):

а)	ректальный мешок
кишки с шестью ректаль-
ными железами в виде
овальных телец в нем
(d, и);

Ь)	тонкая кишка (с);

с)	пять мальпигиевых
сосудов в виде корич-
неватых трубочек (Ь, Мр)
впадающих на границе
желудка и тонкой, ки-
шки;

Фиг. 62. Строение анофелес, ое — пище-
вод, s.oe, in — зобные мешки, g.sl —слюн-
ные железы, Мр — мальпигиевые сосуды,
гс — ректальный пузырь. Nuttall и Shipley.

6) желудок (а); форма его зависит от степени заполнения
пищей (овальная, тонкотрубчатая);

е)	пищеводные пузыри (е) числом три, часто с пу-
зырьками газа внутри (фиг. 62, in, s. ое) лежат они пе-

1 В проходящем свете трахеи имеют вид черных нитей; при падающем
свете они серебристо-белые.
ред желудком и впадают в участок, называемый предже-
лудком;

f)	пищевод (фиг. 62 ое) обычно очень сокращается и почти
неразличим.

С задним концом брюшка остаются соединенными и поло-
вые органы —

у самки — а) два массивных овальных яичника, величина их
зависит от степени созревания яиц,

Ь)	два яйцевода,

с)	общий канал выводных путей,

d)	семеприемники (1—3 штуки) — в виде шарообразных телец,
лежащих у самого конца брюшка; в их выводной проток впадает
придаточная железа. Головка семеприемника имеет внутри тол-
стую хитиновую выстилку;

у самца — а)параудлиненыхсеменников с тонкими семевы-
носящими протоками и

Ь) придаточные железы различной формы.

При препаровке половых органов самцов желательно оста-
влять с ними в связи и наружный копулятивный аппарат, имею-
щий большое значение при определении комаров.

Кроме этих органов при препаровке обнаруживается брюш-
ная нервная цепочка и дольки жирового тела, степень развития
которого связана со временем года (зимовка).

С.	ПРЕПАРОВКА СЛЮННЫХ ЖЕЛЕЗ

Для выделения слюнных желез ножницами срезают спинной
горб груди (фиг. 61, I—I); перпендикулярно к этому разрезу
ведут второй разрез, проходящий между первой и второй парой
ножек (фиг. 61, II—II). Хоботок комара отсекают по линии
III—III. Тело комара удаляют, а слюнные железы ищут в участке
груди, прилежащем к голове. Одну иглу вкалывают в глаз
комару , второй придерживают хитиновые покровы груди. Раз-
водят осторожно одну иглу от другой; голова отрывается
в шейке; в связи с первой остаются: отрезок пищевода, часть
нервной цепочки и две слюнные железы.

Острием копиевидной иглы отрезают все части кроме желез.
В отпрепарованном виде каждая железа состоит из трех долек,
сидящих на общем тонком выводном протоке (фиг. 61, f,
фиг. 62 g. si). Оба протока открываются в основание гипофаринкса
(„языка" колющего ротового аппарата).
Фиг. 63. Вариации строения слюнных желез анофелес.
По П. Перфильеву.

Чтобы избежать переноса выпрепарованных слюнных желез
на шпателе на предметное стекло, препаровку их можно произ-
водить прямо на последнем в капле физиологического раствора.
По окончании препаровки удаляют со стекла все обрывки,
слюнные железы передвигают (в жидкости) на середину пред-
метного стекла и расправляют; далее см. отдел X, С, 2.

Следует отметить, что слюнные железы комаров нередко
вариируют по форме и по количеству долек. У различных маля-
— по —

рийных комаров бывают даже однодольчатые железы; у дру-
гих— железы иногда с двумя дольками или со вторичными
ветвлениями долей, благодаря чему железа принимает кресто-
образный или более сложный вид. Наблюдается также различие
формы данной пары слюнных желез (см. фиг. 63, Перфильев,
1930, 1933).

D.	ИССЛЕДОВАНИЕ ANOPHELES НА ЗАРАЖЕННОСТЬ ИХ
МАЛЯРИЙНЫМИ ПЛАЗМОДИЯМИ

Исследование Anopheles на зараженность их малярийными
плазмодиями является важным моментом для обоснования кома-
риной теории малярии. Это исследование входит в круг работ
ряда малярийных станций СССР.

Малярийный плазмодий проделывает в теле Anopheles цикл
полоёого размножения, начинающийся в полости желудка, про-
должающийся в стенке желудка и завершающийся в полости
тела Anopheles и в его слюнных железах.

В зависимости от этих этапов исследование производится
различными способами (см. так же — П. Сергиев, 1934).

В желудке Anopheles созревают половые особи плазмодия
и происходит копуляция. Образовавшаяся оокинета внедряется
в стенку желудка, проходит ее насквозь и на стороне, обра-
щенной в полость тела, дает спороцисту, в которой путем деле-
ния образуется множество спорозоитов. Под давлением содер-
жимого спороциста лопается, спорозиты попадают в гемолимфу
полости тела комара. С током ее они доходят до слюнных же-
лез, в которые активно и внедряются, причем проникают в самые
выводные протоки их (resp. в слюну).

ОПРЕДЕЛЕЛЕНИЕ ООЦИСТНОГО ИНДЕКСА

Наиболее легко произвести исследование желудка Ano-
pheles на зараженность плазмодиями малярии. Вскрытие произ-
водят, как описано выше (задней тракцией). Отпрепарованный
желудок кладут в каплю физиологического раствора на пред-
метное стекло и покрывают покровным стеклом, подложив под
его углы восковые ножки или кусочки бристольского картона.
Исследование производят сначала при слабом увеличении
микроскопа. Цисты малярийного плазмодия обычно бывают во
множестве (фиг. 64, А). Они имеют вид правильных шариков, сидя-
щих на наружной поверхности желудка. Они прозрачны, желто-
— Ill —

ватого цвета и часто содержат некоторое количество пигмента.
Их надо различать от цист двуусток (фиг. 64, В, 71), которые
обычно одиночны или встречаются в малом количестве. По-

следние не прозрачны и иногда сидят на ножке.

Оболочки цист двуусток могут быть пигментированы. На
окрашенных кармином и заключенных в бальзам препаратах

можно ясно видеть присоски
паразита (фиг. 71). На свеже
выпрепарованном желудке
можно на предметном стекле
прорвать острыми иглами
стенку цисты и выпустить
двуустку наружу. Если это
удалось сделать, то убирают
желудок, двуустку подвигают,
иглой к середине предмет-
ного стекла и фиксируют
в жидкости Carnoy с после-
дующей наклейкой фотокси-
лином и окраской (см. ниже,
стр. 140, 141).

На поверхности желудка

Фиг. 64. А—желудок анофелес со мно-
жеством цист малярийного плазмодия;
несколько упрощенный рисунок с ми-
крофотографии, В — желудок An. ma-
culipennis с цистами трематод. Ориги-
нал по препарату, из материала д-ра
Рыбинского (Киев).

встречаются иногда так назы-
ваемые Россовы тела —
стадия развития паразита —
Nose та, по другим взгля-
дам дегенерированный плаз-
модий.

В нашей литературе оригинальные данные о Россов ых
телах привел Вещезеров (1928), показавший вариации этих
образований от типичных „черных спор“ до круглых и овоидных
светло-или желто-коричневых тел (фиг. 65, 66). Их нельзя от-

нести к микроспоридиям, как то делается некоторыми авторами.
Об их природе Вещезеров ближе не высказывается, но пола-
гает, что все эти образования „характеризуют собою отдельные
фазы одного и того же процесса".

Однако, В. Mayne показал, что россовы тела бывают не
только у незараженных анофелес, но даже у выведенных в лабо-
ратории самцов и самок Anopheles и Culex и более того у ком-
натной мухи. Черные споры дают реакцию на хитин, и больший-
Фиг. 65. Россовы тела в оболочке ооцист естественно зараженного An. maculi-
pennis. Адлер. По препарату Вещезерова. Оригинал.

ство, если не все, „черные споры“ представляют собою местные
утолщения хитинового слоя трахей. Напомним, что Brag также

приписывал черным спорам хитиновую природу.

Россовы тела

можно сохранять в
глицерине, [или же
препарат проводят
обычным путем в ка-
надский бальзам. При
иммерзии в цистах
видны палочковидные
или зерновидные об-
разования черного или
коричневого цвета,
лежащие кучками или
клубком (фиг. 65, 66).

Процент заражен-
ности малярийных
комаров ооцистами
малярийного плазмо-
дия называется ооци-

стным индексом; он
обычно невелик. По-

I	этому для успеха дела

Фиг. 66. Россовы тела. Оригинал.	Необходимо ВСКрЫ-

вать очень большое
количество Anopheles (например, несколько сотен). Само собой
разумеется, что вскрытию подлежат только „дикие" экзем-
пляры, но не выведенные в лаборатории. Особенно важно со-
— из —

бирать для вскрытия комаров в комнатах больных (комары
часто днюют под кроватями), из-под пологов, в больницах
и вообще в жилье человека (спальни); для сравнения желательно
брать комаров также в хозяйственных постройках, но учиты-
вать их зараженность надо отдельно.

При детальных обследованиях анофелес на зараженность
малярийными паразитами возникает вопрос об определении
видовой принадлежности ооцист. Различия между ооцистами
различных видов малярийного плазмодия касаются их биологи-
ческих свойств и морфологических особенностей. По препара-
там можно судить более или менее определенно лишь о послед-
них. Ряд авторов (Stephens, Christophers, Bastianelli, Bignami,
Darling и др.) отмечают различия в характере зерен пигмента
и по их распределению в ооцистах. Из наших авторов этого
вопроса касался Вещезеров (1928). Он указывает следующие
различия между ооцистами паразитов трехдневной и тропиче-
ской малярии:

Pl. vivax

Пигмент нежный, мелкий, тем-
ный, с коричневым оттенком.

Пигмент рассеян по всей
ооцисте. Stephens и Christo-
phers говорят о скоплении жел-
того или золотистого пигмента
в виде цепочек.

Пигмент исчезает из ооцист
значительно раньше начала ди-
ференцирования протоплазмы.

PL immaculaium

Пигмент более грубый, круп-
ный, резко черный.

Пигмент собран в кучку, ле-
жащую более или менее цен-
трально.

Пигмент виден до самого на-
чала диференцирования про-
топлазмы в ооцистах.

Образование ооцист у паразитов тропики протекает медлен-
нее, чем у Pl. vivax.

Ооцисты Pl. vivax на 4-й день 12—16.5 микронов диаметра
на 9-й „	48	„

Ооцисты Pl. immaculatum
на 2-й — 5-й день —до 5 микронов
на 12-й	—до 30	(Darling).

Н. Вещезеров рекомендует всех пойманных комаров выдер-
живать в неволе несколько дней (не менее 5), чтобы за это
п	8

Павловский
время молодые ооцисты увеличились в размерах, что значи-
тельно облегчает их отыскивание. Срок вскрытия можно уста-
навливать также по времени исчезновения на глаз остатка крови
в желудке комара.

Обследование необходимо повторять в разные месяцы, так
как степень зараженности Anopheles плазмодиями может изме-
няться в зависимости от времени года (ср. выше сроки разви-
тия плазмодия в теле Anopheles).

Кроме того, важно исследовать в указанном отношении
и зимующих Anopheles (в местностях с мягкими зимами) для
выяснения вопроса о способности малярийного плазмодия зимо-
вать в теле Anopheles. Напомним, что зимующие анофелес
с успехом могут быть использованы для экспериментального
заражения их малярийными плазмодиями (П. Симанин).

По данным Л. Рейнгардта и Долбешкина (1924—1925)
в Днепропетровске при исследовании 6294 Anopheles*.

в июне было зараженных комаров — в 1924 г. 1.3	/о в 1925 г. в	мае	0.5%

в июле	2.1	„	„	августе	2.5	„

в октябре	0.7	„	сентябре	1

в ноябре .	0.4	„	„	октябре	0.4	„

М. Парцванидзе нашел в Мингрельской экспедиции только
одного зараженного Anopheles из 1000.

Под Харьковым обнаружено 2 зараженных Anopheles из
560 вскрытых комаров (Укр. Протозойный институт).

Высокие цифры зараженности Anopheles получил для окрест-
ностей Амстердама Swellengrebel (1922):

февраль и март
октябрь .

ноябрь

декабрь

W/o,
6%
5
6

По словесному сообщению Л. Рейнгардта процент выявле-
ния зараженных Anopheles увеличивается, если исследование
выпрепарованных желудков вести под масляной иммерзией.

В Адлере и в его окрестностях в июле — сентябре 1924 г.
Вещезеров определил значительный процент зараженности Ап.
rtiaculipennis малярийными паразитами: общий средний про-
цент =6.7 (при 194 обследованных комарах); для разных мест
наблюдений процент колебался от 3.8 до 11.3.
Близ Ростова на Д. Вещезеровым вскрыто 194 An. maculi-
pennis; наибольший процент зараженных комаров, взятых из
жилья, падал на август (11.3 %).

А. Лисова и В. Эскин (1932) произвели аналогичную работу
в Той-Тюбе Средне-Чирчикского района (Узбекистан) с точным
учетом помещений, откуда были взяты комары для вскрытия.
Результаты их исследований даны на табл. 7.

Таблица

Результаты исследования A. maculipennis из различных жилых помещений, по
Лисовой и Эскину

Наименование помещений	Вскрыто комаров	Из них обнару- жено заражен- ных	Процент за- раженности
Узбекские дома	138	0	0
Общежитие Хлопкома .	21	0	0
Троп, станц.	16	1	6.2
Районная больница	45	1	2.2
Общежитие дорожи, рабочих	290	28	9.6
Пологи населения	46	6	13.2
Итого .	556	36	6.4

ОПРЕДЕЛЕНИЕ СПОРОЗОИТНОГО ИНДЕКСА

При исследовании слюнных желез Anopheles на спорозоиты
извлекают эти органы по способу, описанному выше.

Слюнные железы в физиологическом растворе покрывают
покровном стеклом и исследуют под иммерзией, предварительно
ориентировав препарат при слабом увеличении. Спорозоиты
можно заметить благодаря их волнообразным движениям
в железах. Процент комаров с зараженными слюнными желе-
зами называется спорозоитным индексом.

В слюнных железах анофелес иногда бывают кристаллы,
могущие до некоторой степени симулировать спорозоиты. Чтобы
их растворить, рекомендуют препаровку производить в физио-
логическом растворе, к 10 см 3 которого прибавлена одна капля
уксусной кислоты.

В слюнных железах могут быть обнаружены и россовы тела
(S. Р. James и Вещезеров). Д-р Вещезеров утверждает, что ему
8*
приходилось в Адлере видеть нормальную ооцисту в слюнных
железах An. maculipennis.

Наиболее ясную картину можно видеть лишь на окрашен-
ных срезах через слюнные железы (методику см. ниже).

Для облегчения массовых вскрытий анофелес А. Муратова
рекомендует следующий способ. Усыпленный комар с осто-
рожно обрезанными (а не оборванными) ногами и крыльями
помещается на бок, на предметное стекло в каплю физиологи-
ческого раствора. Под лупой голова комара отсекается каким-
нибудь острым инструментом. Иглой, положенной плашмя не-
сколько кзади от места прикрепления передней пары ног, слегка
надавливают на грудь; сейчас же из перерезанной шейки выска-
кивает комок ткани, в котором и находятся слюнные железы.
Иногда они в виде пальцев перчатки торчат из комка. Железы
легко отделяются от ткани, передвигаются на чистый край
стекла, размазываются и место с размазанными железами очер-
чивается с обратной стороны стекла стеклянным карандашем.
Препарат фиксируется метиловым спиртом, окрашивается Гим-
зой и исследуется.

При регулярных обследованиях комаров можно вывести
кривые колебания индексов зараженности их малярийными
паразитами (фиг. 67). Действительное отражение истинных
соотношений можно получить лишь при использовании ко-
маров из определенных биотопов (напр., жилье человека),
но не при случайных и смешанных сборах исходного материала

ИССЛЕДОВАНИЕ СОДЕРЖИМОГО ЖЕЛУДКА АНОФЕЛЕС

При желании обследовать содержимое желудка Anopheles
на паразитов малярии, отпрепаровывают желудок, как уже
показано, и кладут его в маленькую каплю физиологического
раствора на чистое предметное стекло. Иглой разрывают его
стенку, выпускают в раствор содержимое желудка и удаляют
самый желудок прочь. Содержимое желудка перемешивают
иглой с физиологическим раствором и размывают его по
поверхности предметного стекла.

К капле прикасаются ребром другого предметного стекла,
держа его под углом в 45°. Жидкость расплывается под стек-
лом. Затем стекло двигают так, чтобы жидкость тянулась за
ним сзади до тех пор, пока она не распределится тонким
слоем. После этого мазок высушивают на воздухе, за щитив его
от пыли.

При дальнейшей обработке мазок фиксируют древесным
спиртом минут 20 (или смесью винного спирта пополам с серным
эфиром). Препарат снова высушивают и красят по Романов-
скому-Гимзе. Готовую краску разводят в дестиллированной
воде (1 каплю краски на 1 см3 воды). 1 Жидкость выливают на

Фиг. 67. Кривая спорозоитного и ооцистного индекса по
месяцамчв Тойтюбе. Лисова и Эскин.

мазок и красят 1/2—1 час. Чтобы избежать осадков, лучше
краску наливать в чашечку Петри; стекло кладут мазком книзу
на ^спички так, чтоб краска касалась препарата. При таком
положении стекла осадок падает на дно чашечки Петри и совер-
шенно не касается препарата. Смывают струей воды краску,
высушивают стоймя препарат и исследуют под микроскопом,
нанеся кедровое масло для иммерзии прямо на самый мазок.

1 Чтобы из краски не выпадал осадок, прибавляют к смеси чистого спирта
(несколько капель на 20 см3 смеси). Иногда при окраске не получается розо-
вых и красных тонов. В таких случаях к смеси прибавляют следы ледяной
уксусной кислоты.

При разведении основной раствор должен быть не холоднее ~ 17	,

так как при низкой температуре не все компоненты его будут действовать.
Для статистики и последующего определения индекса зара-
женности анофелес необходимо записывать результаты вскры-
тия каждого Anopheles по следующей схеме:

В аналогичном порядке производят обследование и Culici-
пае на зараженность их плазмодиями птичьей малярии. Попутно
обращаю! внимание на сбор и других паразитов комаров;
см. далее; стр. 128.

ВСКРЫТИЕ И ГИСТОЛОГИЧЕСКИЕ ИССЛЕДОВАНИЯ КОМАРОВ
ПРИ НЕКОТОРЫХ ФИЗИОЛОГИЧЕСКИХ СОСТОЯНИЯХ

Методикой вскрытия комаров приходится пользоваться для
определения некоторых физиологических состояний этих насе-
комых. Объектом наблюдения при вскрытии в первую очередь
являются определение степени развития жирового тела, фаза
развития яйцевых трубочек в яичниках и наличие в желудке
комара пищи (крови).

Самки всех генераций An. maculipennis бывают в двух
физиологических состояниях — в летний сезон — самки активны,
питаются и кладут яйца, зимою же они пассивны, не питаются,
не размножаются и находятся в оцепенелом состоянии, выдер-
живая понижение температуры даже до — 27° С. Пассивное —
зимнее состояние характеризуется как имагинальная диа-
пауза.

Между охарактеризованными двумя крайними физиологиче-
скими состояниями существуют переходные состояния. Как
происходит подготовка самки комара к зимовке, можно выяснить,
руководствуясь наблюдением режима питания и его прекраще-
ния, сроком и степенью развития жирового тела и состоянием
яичников.

Первый момент определяется вскрытием комара, освобожде-
нием желудка и разрыванием его стенки; оценивается степень
наполнения желудка всосанной пищей; если таковой является
кровь, то отмечаются также цвет, свежесть или переваренность
содержимого желудка.

Жировое тело состоит из долек или лопастей, лежащих
между кожными покровами и внутренними органами и между
извивами этих органов. Оно или очень мало заметно при пре-
паровке (слабое развитие жирового тела), или же дольки его
сильно утолщаются и занимают значительную часть объема
внутренней полости тела. Мерка для сравнения легко устана-
вливается на практике при вскрытий летних и зимующих
комаров.

Несколько сложнее определение фазы развития фолликулов
яйцевых трубочек в яичниках; это определение делают по
методу Christophers’a, который различает несколько фаз раз-
вития яичников (фиг. 68).

Яичник анофелес имеет более или менее веретеновидную
форму. Мешок яичника несет на своей поверХнос!и множество
яйцевых трубочек, которые очень коротки; в яйцевых трубочках
развиваются яйцевые фолликулы.

Фолликул состоит из наружного слоя клеток, одетого на
свободной поверхности тонкой бесструктурной мембраной;
внутренность фолликула заполнена несколькими клетками, из
которых одна, прилежащая к проксимальному полюсу фолли-
кула, являемся яйцевой клеткой, а остальные называются
питательными клетками, используемыми при созревании яйца.

Яйцевая трубочка состоит из трех фолликулов, развитых
неравномерно. Наиболее велик фолликул, в котором развивается
яйцо; второй фолликул является его незначительным по вели-
чине придатком; третий фолликул развивается сильнее после
откладки яйца из соответствующей яйцевой трубочки.

Развитие фолликулов. I фаза. — Самый маленький
фолликул состоит из группы мелких клеток общим диаметром
около 25 микронов. Клетки еще недиференцированы (фиг. 68,1).
Затем становятся отличными несколько центральных клето.< и
слой будущего покровного фолликулярного слоя кубических
клеток (2). Далее центральные клетки диференцируются на
яйцевую и питательные (2 о v, и с), причем в ядрах их наблю-
даются некоторые различия. В протоплазме яйца нет никаких
включений. Общая форма фолликула овальная.

II фаза. Фолликул достигает около 80 микронов величины.
В протоплазме яйца появляются первые желточные зернышки (3),
быстро увеличивающиеся в количестве; этим яйцевая клетка
сильно отличается от питательных. Количество желтка растет
(4, у). Он начинает закрывать ядро, но на свежем препарате оно
еще видно. Фолликул достигает 120 микронов.

III фаз а. Желтка образуется все больше и больше. Ядро им
вовсе закрыто. Яйцо последовательно занимает до 3/4 фолликула.
Питательные клетки видны у противоположного полюса (5).
Фолликул — около 250 микронов.

IV фаза. Яйцо заметно вытягивается в длину. Питатель-
ные клетки чуть заметны (6). Фолликулярные клетки начинают
вырабатывать оболочку яйца — хорион. Намечаются полоски
будущих плавательных камер (7—11).

V фаза. Яйцо сформировано вполне — хорион принимает
свойственную ему структуру (Christophers).

В зависимости от общего развития фолликулов яичники или
слабо заметны при вскрытии комара, или заполняют собою
большую часть полости брюшка.

Созревшее яйцо проходит из фолликула в полость яичника,
оболочка опорожнившегося яичника спадает, и второй фол-
ликул (уже начавший до того свое развитие) становится на
место первого.

Следует отметить еще важную особенность. По состоя-
нию фолликулов можно отличить первокладущую или еще
не клавшую яиц самку от самки, повторно откладывающей
яйца.

У самок, не клавших яиц или впервые их откладывающих,
в яичниках есть фолликулы первой фазы созревания. После
первой кладки фолликулы яичников сразу оказываются во второй
фазе развития, так как развитие второго фолликула начинается
еще во время созревания яйца в первом фолликуле.

Указанными признаками руководствуются при распознавании
состояния яичников самок анофелес.

При вскрытии комаров устанавливают корреляции между
состоянием фолликулов и развитием жирового тела и наличием
пищи в желудке.
я

трубки яичника с двумяИфолликумин 2 Оби.омни “ .аЯофеАес- L Наиболее ранняя; тадия
питательных клеток и яЙпеклД™ Ж ОбРа«°вание слоя фолликулярных клеток, диференциация
плазме яйпеклеЛи 4 Ж ’ Желтка нет. 3. Первое появление аерен желтка в прото-
5. Желток занимает* 2/*авимает половину фолликула; ядро яйцеклетки еще видно,
стадии 7 Men» Ф°Али|<Ула и совсем закрывает ядро. 6. Конец третьей и начало четвертой
9. Яичники кпмСпа Ф°РМИРОВКИ яйца. 8. Яйцо яеред началом образования воздушных камер.
11 Яичник о СУТОЧЫОГО возраста. Видны трахеи. 10. Яичник в начале второй стадии,
застоя созревающими яйцами. 12. Яичник комара, уже клавшего яйца. В полости яичника
застряли два зрелых яйца, f - фолликулярные клетки, ov - ядро яйца, ис - питательные клетки,

*	У — желток. По Christophers’y.
Летом для созревания яиц бывает достаточно даже одно-
кратного приема пищи самкой анофелес* Такое соотношение
скорости пищеварения и созревания яиц характеризуется, как
гонотрофическая гармония.

Осёнью и весной однократного питания не хватает для раз-
вития яичников: оно останавливается на третьей — четвертой
фазе созревания фолликула; для окончательного созревания
яйца необходим новый прием крови. Такое состояние самки
является переходным к зимовке, когда у насосавшихся самок
яичники остаются без развития; зимнее состояние самки, харак-
теризуется как гонотрофическая диссоциация (Swellengrebel).

Примеры трактовки материала, добываемого при вскрытии
самок анофелес,* заимствуем йз работы М. Щленовой (1933).
С августа по октябрь вскрывались самки An. rhaculipennis близ
станции Уш-Тобе (Турксиб). • По физиологическому состоянию
самок можно было разбить на четыре категории: I кате-
гория. Яичники на первой и второй фазах развития фол-
ликулов. Жировое тело не развито. Самки с яичнйками I фазы
развития еще не сосали крови; остальные, повидимому, явля-
лись особями, отложившими яйца и готовыми к новому при-
нятию пищи. К началу октября такие самки исчезли.

II	категория. Яичники развиты до 3—5 фазы. Геноактив-
ные самки; жировое тело не развито — самки в „летнем со-
стоянии".

III	категория. Яичники 3—5 фазы. Жировое тело раз-
вито. Геноактивные начинающие жиреть самки.

Интересно, что эти самки дают пример совместимости раз-
вития жирового тела и яичников, тогда как Roubaud и другие
авторы говорили о полном антагонизме упомянутых процессов
во второй половине августа и регулярно в сентябре.

IV	категория. Яичники 1—2 фазы развития; жировое тело
развито. Самки готовы к зимовке. Появились в сентябре.
У одной самки были остатки переваренной крови в желудке;
очевидно, у этой особи сосание крови повело прямо к ожирению
без всякого развития яйцевых фолликулов.

Ожирение самок, готовящихся к зимовке, наблюдается сле-
довательно не только у особей, не вступивших в половую
активность, но у самок, уже клавших яйца (пример Майера и
Бейера, нашедших в Германии жирную самку с задержавшимися
в яйцеводе зрелыми яйцами от предыдущей кладки).
Тот же вскрывочный материал при оценке характера кор-
реляции между развитием яичников и ожирения самки может
служить для констатирования гонотрофической гармонии или
гонотрофической диссоциации или переходного между ними
состояния у наблюдаемых нами самок анофелес.

Зимующие самки находятся в состоянии гонотрофической
диссоциации, т. е. с развитым жировым телом и не развитыми
яичниками, несмотря на принятие и переваривание крови. За счет
ассимилируемой пищи развивается жировое тело, но не яичники.

У самок, готовящихся к зимовке, происходит нарушение
гонотрофической гармонии, ибо переваренная кровь не обеспе-
чивает уже полного развития яичников, останавливающихся на
разных фазах развития; в желудке таких самок крови нет
(т. е. она переварена).

Далее можно определить календарную последовательность
нарастания ожирения и хода гонотрофической дйсроцйации —
другими словами, факт уменьшения кбли^ёс^а СЯМбй ^Летнего"
и „зимнего" состояния.	„ 3

Все эти наблюдения представляют Htrfcpfec ’ не только для
изучения состояний зимующих комаров/gor важны Для понима-
ния некоторых моментов эпидемиологии Малярии.

Если однократное сосание крови самкой анофелес вполне
обеспечивает ей созревание партии яиц и отйЛадку их (летняя
гонотрофическая гармония), то самка, один раз напившаяся
крови малярика, вылетает из помещения, не нападая на людей
для вторичного сосания крови. Следовательно, такие самки не
распространяют малярию в том помещении, где они сами по-
лучили малярийного плазмодия. Комар летит на водоем, кладет
яйца и лишь после кладки нападает на людей для сосания крови.
Трудно ожидать, чтобы при этом комар попал в то же самое
помещение, где он был раньше. Следовательно, мало вероятной
является возможность развития внутридомовых эпидемий маля-
рии, обусловливаемых наличием анофелес, связанных с опре-
деленными помещениями на известный период их жизни.

Однако, осенью при подготовке комаров к зимовке в связи
с нарушением гонотрофической гармонии и с переходом к гоно-
трофической диссоциации самки анофелес вынуждены более
долго оставаться в одном и том же помещении и повторно пить
кровь; при таком положении дела развитие осенних внутри-
домовых эпидемий малярии становится вполне возможным.
'Фиг. 69. Поперечные разрезы через брюшко Culex pipiens. 1 — в конце
октября, через несколько дней после вылупления; 2 — в апреле после
зимовки; 3 — в начале июля тотчас после сосания крови; 4 — девять дней
спустя после сосания крови; с — яичники, d — кишечник, е — жировое
тело. По Wesenberg Lund’y.

По линии изложенных наблюдений открываются много-
численные пути изучения как различных видов анофелес, так
п' рас An. maculipennis, не говоря уже о других родах комаров.

Более сложным методом определения соотношения в степени
развития жирового тела и яичников комаров является заливка
брюшка комаров в парафин и исследование гистологических
срезов. Сравнение картины развития тканей и состояния орга-
нов брюшка у комаров, взятых в разные сезоны дает весьма
наглядное представление об обратной корреляции между сте-
пенью развития жирового тела и яичников, например, у Culex
pipiens (фиг. 69).
Явления диапаузы у некоторых комаров приходятся на
стадию личинки (атермобиоз, по терминологии Рубо); так зимуют
An. pulcherrimus, An. superpictus, An. bifurcatus, An. plumbeus.
В связи с этим интересны наблюдения над степенью развития
жирового тела у личинок, „передачей" его вылупляющимся
комарам, соотношением между режимом питания и развитием,
жирового тела и др. (детали см. Ходукин, 1930).

МЕТОДЫ ИЗГОТОВЛЕНИЯ ЭМУЛЬСИЙ ИЗ ОРГАНОВ КОМАРОВ.
ДЛЯ ЭКСПЕРИМЕНТОВ

Для изучения физиологии пищеварения комаров, токсиче-
ских свойств их слюны, наличия в ней антикоагулинов и других
начал, и при других специальных работах над комарами необ-
ходимо оперировать с эмульсиями или с экстрактами из чисто
отпрепарированных органов комаров.

В одних случаях необходимо обеспечить целость выпреда-
рированйых органов для установления концентраций пригото-
вляемых эмульсий: например, 10 слюнных желез на 5 капель
физиологического раствора, 10 слюнных желез на 10 делений
физиологического раствора в смесителе для эритроцитов;
100 желудков на 10 см3 глицерина с водой пополам и т. д.
В таких случаях препаровка производится обычным путем, но
с обращением тщательного внимания на аккуратность выделения
органов и последовательного промывания их в свежих порциях
физиологического раствора поваренной соли. Такой материал
используется для изучения ферментов пищеварительной системы
комаров, агглютининов, гемолизинов и антикоагулинов кома-
ров, фармакологических свойств слюны комаров, и др.

В других случаях необходимо получение стерильного мате-
риала для изготовления экстрактов и эмульсий. Для этой
работы заготовляется: стерильный физиологический раствор
в колбочках и пробирках; стерильные чашки Петри, стерильные
часовые стекла, спирт и спиртовая лампочка.

Введенное мною в практику препаровки членистоногих опу-
скание насекомого на 1—2—3 секунды в 96% спирт с неме-
дленным переносом в физиологический раствор имеет целью
сделать покровы насекомого смачиваемыми водой; при такой
процедуре объект тонет, и на нем не остается воздуха, мешаю-
щего препаровке.
Опыт Бычкова и Борзенкова с препаровкой блох для опре-
деления их прижизненной зараженности чумными бактериями,
показал, что предложенная мною процедура осуществляет одно-
временно и довольно хорошую стерилизацию насекомых, обеспе-
чиваемую вероятно свертывающим действием спирта. Для сте-
рилизации поверхности более крупных насекомых (слейни,
мухи, их личинки) Бычковым предложено обжигание: вынутым
из спирта насекомым касаются края горелки; спирт вспыхивает
и насекомое тотчас погружается в физиологический раствор.
Применимость такого способа для столь нежных насекомых, как
комары, должна быть испробована на опыте.

Для многих работ совершенно достаточно и холодной стери-
лизации спиртом. Процедура вскрытия ведется как обычно, но
в стерильных часовых стеклах, в стерильном физиологическом
растворе и стерильными препаровальными инструментами. По-
следние держат в спирту и обжигают всякий раз на спиртовке.

.Отпрепарированные органы последовательно переносят
иглами в физиологический раствор на стерильные часовые
стекла для промывки и укладывают на сухое часовое стекло
в малом количестве физиологического раствора: органы не
допускают до высыхания, но они в то же время не должны
плавать в физиологическом растворе. На время препаровки
часовые стекла закрывают половинками чашек Петри.

Дробность препаровки определяется целями исследования.
Можно ограничиться препарованием слюнных желез комаров
целиком, или же разделить различно устроенные части долек
друг от друга и готовить эмульсии из них порознь. Из пище-
варительного тракта может оказаться необходимым выделение
пузырей преджелудка, собственно желудка, мальпигиевых сосу-
дов, тонкой кишки, ректального мешка и др. В этих случаях
каждый объект кладут в отдельное часовое стекло.

Когда накоплено необходимое количество органов, прове-
ряют под лупой чистоту препаровки* и правильность сортировки
органов и затем растирают органы оплавленной палочкой,
донышком химической пробирки и другими предметами, которые
были обожжены на пламени горелки. Растирание удается тогда,
когда физиологического раствора на часовых стеклах почти
вовсе нет; иначе органы перегоняются с места на место пести-
ком, но не раздавливаются им. Затем добавляют небольшое
точно отсчитанное количество физиологического раствора
и перемешивают его с растертыми (размазанными по стеклу)
органами до получения равномерной эмульсии. Снова доба-
вляют физиологический раствор до получения намеченной кон-
центрации, и все тщательно перемешивается.

Из таких деликатных органов, как слюнные железы комара,
приходится готовить, конечно, малые количества эмульсий.

Чтобы таковые не испарялись и концентрация их не изме-
нялась, готовые эмульсии хранят до времени использования
(не более суток) или на холоду, или во влажных камерах. На
дно чашки Петри кладется вровень с дном кружок фильтро-
вальной бумаги, который хорошо смачивается водой. На бумагу
кладут часовые стекла с эмульсией и чашку закрывают.

Необходимо обеспечить тщательность нумерации эмульсий.
Для этого соответствующее часовое стекло нагревают на
спиртовке и по выпуклой стороне горячего стекла, держа его
вогнутостью к себе, пишут восковым карандашом крупную
цифру или букву. Номер серии соответствующих эмульсий
ставится таким же способом на верхней крышке чашки Петри
и метится простым карандашом на этикетке, которую кладут на
фильтровальную бумагу дна влажной камеры.

Таким способом изготовляют эмульсии для изучения токси-
ческого действия слюнных желез на покровы человека
(Е. Павловский, А. Штейн и П. Перфильев), что осуществляется
впрыскиванием эмульсий в поверхностные слои corium кожи
и последующим изучением патологических изменений покровов.

В некоторых случаях нельзя обеспечить немедленное или
скорое (см. выше) использование изготовленных эмульсий.

Для некоторых работ возможно накопление сухого мате-
риала; в таком случае отпрепарировываемые органы уклады-
вают раздельно на часовое стекло (чтобы потом всегда можно
было отсчитать необходимое количество органов) и высушивают
на воздухе. Стекла сохраняют, в банках с притертыми пробками
или в эксикаторе. На каждом стекле делают отметку времени
препаровки органов и название органов.

Для изготовления эмульсий (точнее экстрактов) из сухих
органов их осторожно растирают пестиком в тончайший поро-
шок, прибавляют к нему капли физиологического раствора,
хорошо смешивают, добавляют раствора до предельного коли-
чества и оставляют во влажной камере стоять на сутки. Опыты
Е. Павловского, А. Штейна и П. Перфильева с экстрактами из
сухих слюнных желез Culex pipiens показали сравнимость полу-
чаемых результатов с действием на покровы человека эмульсий
из свежепрепарованных слюнных желез этого комара.

БАКТЕРИОЛОГИЧЕСКИЕ ПОСЕВЫ ИЗ КОМАРОВ

В некоторых случаях требуется произвести бактериологиче-
ские посевы: 1) с поверхности тела комара или 2) из его вну-
тренних органов.

1)	Комара ловят в стерильную бактериологическую пробирку
с ватной пробкой; в пробирку добавляют 1—2 см8 стерильного
физиологического раствора и минут 5—10 встряхивают. Из жид-
кости платиновой петлей делают посев на необходимую
среду.

2)	Комара опускают в 96% спирт, затем в физиологический
раствор описанным выше способом, стерильно отпрепаровывают
нужные органы и переносят их в стерильную пробирку с 1—2 см5
физиологического раствора, где на стенке растирают стериль-
ной палочкой; затем, наклоняя пробирку, смывают растертый
материал и минут пять смесь взбалтывают. Посев производится
как сказано выше.

Посевы делают не только из взрослых комаров, но и из их
личинок.

IX

СПИСОК ПАРАЗИТОВ И ВРАГОВ КОМАРОВ

А. ЭНДОПАРАЗИТЫ

Паразиты желудка комаров:

1)	Spirochaetae: в кишечнике комаров найдены

Treponema culicis Jaffe — личинки Culex, редко в мальпи-
гиевых сосудах imago.

Спирохеты взрослых Culex pipiens и личинок Anopheles, Ed.
и Et. Sergent. Алжир.

Borrelia culicis Jaffe в кишке и мальпигиевых сосудах личинки
Ап. maculipennis.

Спирохеты у Aedes (Stegomyia) argenteus Poir. Noc и Steve-
nsel, 1913.

2)	Flagellatae:

Leucocytozoon danilevskyi у Culex pipiens.

Trypanosoma noctuae в кишечнике C. pipiens.
Crithidia f asciculata (Leger)—у Anopheles (Leger, 1902, Joyeux).
Culex pipiens (Woodcock, 1914), Taeniorhynchus richardii.

Crithidia culicis у Taeniorhynchus richardii.

Herpetomonas у Aedes(Stegomyia) argenteus (Noc и Stevensel),
An. maculipennis.

Leptomonas algeriense (Ed. и Et. Sergent, 1906) у C. pipiens.

3)	Sporozoa:

а)	Грегарины.

Diplocystis— в личинках Culex (Leger и Duboscq, Корсика).

Lankesteria culicis Wenyon у Aedes (Stegomyia) argenteus
(Индия, Ю. Америка, Багдад — Stephenson и Wenyon), в маль-
пигиевых сосудах (из Sierra Leone, Wenyon).

Caulleriella anophelis Hesse, в средней кишке у 15°|0 иссле-
дованных (1904) личинок An. bifurcatus.

С. annulatae из личинок Theobaldia annulata (Bresslau).

С. pipientis из личинок С. pipiens (М. Buschkiel).

Ь)	Гемоспоридии (кровеспоровики).

Haemoproteus danilewskyi у С. pipiens, переносчике этого
кровепаразита птиц.

Halteridium noctuae у С. pipiens, An. maculipennis, Plasmo-
dium relictum Grassi и FeLtti у C. pipiens и воробьев (Passer).

Pl. ziemanni Laveran у C. pipiens и совы Athene noctua.

Proteosoma praecox Grassi и Feletti у C. pipiens, как у пере-
носчика паразитов птичьей малярии.

Plasmodium vivax— переносчик паразитов трехдневной маля-
рии: An* maculipennis, An. bifurcatus, An. plumbeus, An. super-
pictus, An. pulcherrimus, An. algeriensis, An. hyrcanus.

Plasmodium malariae — переносчики паразитов четырехднев-
ной малярии: An. maculipennis, An. algeriensis, An. hyrcanus,
An. superpictus.

Plasmodium falciparum (immaculatum) — Laverania malariae.
Переносчики паразитов тропической малярии: An. maculipennis,
An. bifurcatus, An. superpictus, An. pulcherrimus; An. hyrcanus
повидимому не является переносчиком плазмодиев тропической
малярии (П. Симанин).

4)	Cnidosporidla.

Microsporidia:

Telohania legeri Hesse в жировом теле личинок An. maculi-
pennis (Hesse, 1904), An. bifurcatus, C. pipiens.

Павловский	9
Telohania miilleri Pfeiffer — An. maculipennis.

Telohania в личинках A. nemorosus (Noller, Breslau) (фиг. 70).

Nosema у Culex, у Aedes, Ae. (Stegomyia) argenteus в полости
тела.

Stempellia в жировом теле личинок С. pipiens.

Glugea у Culex (Pfeifer).

Фиг. 70. Culex territans из Alabama, зараженный Telohania
leg eri.

5)	Vermes:

a)	Rotifer a — коловратки:

Philodina parasitica в пищеварительном канале личинок Culex
(Marchoux, 1898).

b)	Trematoda*.

Lecithodendrium ascidia v. Beneden — цисты у An. macu-
lipennis (Alessandrini) в полости тела, imago у летучих
мышей.

Sphaerostoma globiparum Rud. цисты у личинок A. maculi-
pennis (Ruge, Alessandrini); взрослые у рыб.

Cercaria в инцистированном виде у личинок, куколок, imago
Culex hortensis (Joyeux).

F. Fiilleborn (1922) наблюдал активное проникание этого
паразита в личинки Culex pipiens-, смертность личинок, подвер-
женных нападению С. annata, оказалась в три раза большая,
чем в контрольном аквариуме. Первым промежуточным хозяином
этого сосальщика являются моллюски Planorbis corneus и Lim-
паеа. Нападению церкарий подвергаются также личинки Апо-
pheles и. Aedes argenteus. Лягушки не могли быть заражены их
лнцистированными церкариями.

Agamodistomum anophelis van Thiel найден в инцистирован-
ном состоянии в полости тела An. maculipennis близ Лейдена..
По мнению van Thiel (1925) окончательной формой Ag. anophelis
и Cercaria anophelis (из моллюска Planorbis vortex) является
легочная трематода — Pneumonoeces variegatus лягушки (Rana

Фиг. 71. Цисты сосальщиков на поверхности желудка A. maculi-
pennis. Оригинал по препарату М. Покровской.

esculentd). У Planorbis vortex бывает спороциста Agam. ano-
phelis.

В наших пределах двуустки были найдены в различных
комарах в Киеве (Рыбинский; проф. Рейнгардтом в Екатерино-
славе и д-ром М. Покровской-Иофф в Заволжьи — см. фиг. 71).

с)	Nematoda*.

„Agamomermis" в личинках A. nemorosus (Stiles), Лейпциг;
у A. sollicitans (New Jersey); Aedes, Харьков (Шахов).

Этот паразит бывает во всех стадиях развития комара.
Вероятно сходная форма была отмечена как „филярия" Рейн-
гардтом в Екатеринославе у взрослого комара, выведенного
в лаборатории.

Вещезеров обнаружил настоящих филярий в мальпигиевых
сосудах Anopheles maculipennis в Адлере.
Filaria bancrofti—личинки в желудке, полости тела (между
грудными мышцами), в хоботке различных комаров в тропиках.
Возможный возбудитель слоновой болезни человека.

F, immitis— передается An, bifurcatus, An. maculipennis,.
An. hyrcanus, Culex pipiens, С. fatigans, Aedes punctatus. Паразит
собаки.

Dir о filaria repens — передается An, maculipennis, Aedes (Ste-
gomyia) argenteus; паразит собаки.

Перечисленные выше паразиты могут быть обнаружены: на.
мазках из содержимого пищеварительной трубки, в жировом
теле, между мышцами и др. В некоторых случаях необходимо
исследование на окрашенных срезах.

В виду неисследованности вопроса о филяриозах в СССР
и весьма вероятного участия комаров в их распространении,
коснемся вкратце цикла развития Filaria bancrofti в теле ко-
маров.

С кровью больного элефантиазом комар всасывает микро-
филярии. Последние пронизывают стенку желудка комара,,
оставляют свою кутикулярную оболочку и проходят в полость
тела комара, по которой и пробираются в грудь, где залегают
между пучками летательных мышц. Затем личинки филярии
перемещаются в хоботок комара. При уколе последним здоро-
вого человека личинка филярии проникает в тело человека, чем
и создаются условия заболевания элефантиазом.

В комаре можно захватить следующие стадии развития
филярии:

личинка филярии в грудных мышцах (на окрашенных срезах
через зараженного комара);

личинки филярии в хоботке комара (тотальные плоскостные
и окрашенные препараты или на поперечных срезах через
хоботок).

Об исследовании филярий и филяриозов, распространяемых
комарами, см. весьма важные работы F. Fiilleborn’a (Unter-
suchungen an menschlichen Filarien und deren Obertragung auf
Stechmiicken. Arch. Sch. Trop. Hyg. Beih., № 9, 1903; Uber Ver-
suche an Hundefilarien und deren Obertragung durch Miicken,.
ibidem, № 8, 1908.

(В переносе других филярий принимают участие слепни,
такова роль Chrysops silacea и Chr. dimidiata в распростране-
нии Loaloa в тропической Африке, по Коннал).
Паразитов (или комаров с паразитами) фиксируют или 7О°/о
•спиртом или в одной из фиксирующих жидкостей; см. дальше
отдел XI.

В. ЭКТОПАРАЗИТЫ

На комарах нередко паразитируют личинки водяных клещей:
Nesoea fuscata^ N. arrhenurus, Hydrodroma, Hydrachna, Eulais,

Фиг. 72. Aedes, подвергшийся нападению клещей.
Характерная реакция на сосание — в виде образова-
ния хитинизированных трубочек.

.Hydryphantes и других видов, а также личинки клещей красно-
телок— Тrombidiidae. Кроме того некоторые комары— Cerato-
fpogoninae— паразитируют на комарах, высасывая кровь из их
желудка.

Гидрахниды паразитируют на личинках, куколках и взрослых
комарах, напр. An. maculipennis, причем клещи переходят во
время линки с личинки на куколку или с куколки на имаго.
Клещи сосут гемолимфу комаров и вызывают своеобразную
реакцию в месте сосания (фиг. 72). В некоторых случаях они
тугом привести комаров к скорой гибели.
С. ВРАГИ КОМАРОВ

Растения

Utricularia — пузырьчатка — водяное растение, которое
своими ловчими пузырьками захватывает при подходящем слу-
чае и личинок Anopheles (Е. Марциновский).

Грибки и бактерии Entomophthora sphaerosperma пора-
жает взрослых комаров (Thaxter).

Empusa culicis тоже. Грибки — в пищеварительном канале и
в полости тела Aedes argenteus, причиняют гибель этим комарам
(Salimbeni и Simond в Бразилии).

Дрожжи — в полости тела An. maculipennis в Испании (Dye,
Laveran) повидимому патогенны для комаров.

Fusarium sp. в груди и брюшке Aedes, Saprolegnia у Aedes.
Бактерии: sp. Perrencito; бактерии, аналогичные Leptothrix
buccalis; патогенны для An. maculipennis. Италия.

Подвижная и неподвижная палочки, образующие „туфовые"
нарастания на щетинках личинок Aedes mariae (фиг. 73), куль-
тивируемых в соленой воде (6%); бактерии замедляют мета-
морфоз и вызывают слабую смертность; переживающие личинки
дают нормальный выплод (Алжир, Frensz, 1933).

Риккетсии Riccketsia sp. в желудке Culex pipiens.

Животные

Кишечнополостные. Hydra — пресноводное кишечно-
полостное, которое питается и личинками Anopheles (Щер-
баков).

Черви. Планарии — плоские черви, в пресноводных бас-
сейнах планарии поднимаются к поверхности воды и закры-
вают своим телом дыхательное отверстие личинок комаров,
после чего их пожирают.

Насекомые. Многие хищные насекомые являются врагами
как окрыленных комаров, так и личинок и куколок их.

Личинки водяных жуков — Ну drophilus, Acilius sulcatus,
Dytiscus играют видную роль в уничтожении личинок малярий-
ных комаров.

Водяные клопы — Nepa, Naucoris, Ranatra, Notonecta и
Corixa пожирают много личинок комаров.
Бегающие по поверхности воды клопы Hydrometra и Lim.no-
bates уничтожают комаров во время вылупления их из куколок
и нападают на самок, севших для откладки яиц.

Личинки стрекоз питаются личинками и куколками комаров,
а взрослые стрекозы могут пожирать много окрыленных кома-
ров, схватывая их налету.

Личинки комаров могут уничтожать друг друга. Отмечены
случаи каннибалйзма у различных видов анофелес. Личинки
одного вида анофелес могут пожирать личинок другого вида.

Фиг. 73. Личинка комара, обросшая группами бактерий. Алжир.

Личинки анофелес иногда уничтожают мелких личинок Culex.
Некоторые виды комаров имеют хищнические наклонности,
например, личинки Psorophora, Megarhinus. Исключительными
хищниками являются личинки коретры (Corethrd) и мохлоникса
(Mochlonyx)-, в их питании большое (если не исключительное)
значение имеют личинки и куколки комаров.

Личинки других длинноусых двукрылых также принимают
участие в уничтожении личинок комаров. Такую роль могут
играть личинки некоторых хирономид.

Некоторые виды взрослых мух ловят и пожирают насекомых
(в частности комаров) налету, например из Empididae— Ног-
mopeza obliterata, Tachydromia macula, из Scatophagidae— Cor-
dy Iura, Scatop haga.

Из перепончатокрылых комаров пожирают Crabro quadnma-
culatus и некоторые пчелы.

Несомненно, что круг естественных врагов комаров из насе-
комых значительно более велик. В этом отношении желательно
накопление точных наблюдений.

^Пауки. Пауки уничтожают массу комаров, попадающих
в паутину. При известной обстановке значение пауков в этом
отношении может быть значительным. Отмечена важная роль
Salticus, как домового паука (Бразилия) в уничтожении желто-
лихорадочного комара.

Позвоночные. Рыбы. В питании некоторых рыб личинки
и куколки комаров занимают видное место. Это обстоятельство
было использовано для применения быстро размножающихся
рыб в качестве естественных врагов комаров для уничтожения
их личинок и куколок.

Особенную известность в этом отношении приобрели гам-
бузии, именно две формы ее — Gambusia affinis affinis и G. affi-
nis holbrooki (США). Гамбузии завезены на юг Европы, где
акклиматизировалось несколько видов этого рода.

Успешные пробы разведения гамбузий, привезенных
в СССР Н. Рухадзе, сделаны на Кавказе (Сухум), в Средней
Азии (Туркмения и др.).

Из других рыб, имеющих значение в борьбе с малярией,
отметим Fundulus heteroclitus, Eupomotis gibbosus, Umbra pyg-
maea, Lepomis auritus и др.

На ряду с работами по акклиматизации гамбузий необхо-
димы наблюдения и опыты над личинкоядными свойствами рыб
нашей фауны. По данным П. Петрищевой в Туркмении личинок
комаров охотно пожирают мальки хромули {Varicorhinus hera-
tensis) и гольцы (Nemachilus malapterurus).

Амфибии. Triton cristatus и Tr. alpestris пожирают много
личинок и куколок комаров. Головастики лягушек, как расти-
тельноядные организмы, никакой роли в этом отношении не
играют. Взрослых комаров пожирают лягушки и жабы.

Птицы. Утки пожирают личинок и куколок комаров. Суще-
ственное значение в этом отношении в США играют птицы
родов Lobipes, Steganopus, Micropalama, Pisobia, Ereunetes,
Oxyechus, Aegialitis (Me Atee).

Млекопитающие. Летучие мыши питаются огромным ко-
личеством комаров. У Eptesicus fuscus при вскрытии в Филадель-
фии желудок был находим переполненным проглоченными кома-
рами. Однако практически и летучие мыши и комары могут ужи-
ваться в одном месте (например в Бахарденской пещере в Турк-
мении, Я. П. Власов); вопрос о реальном значении различных
видов летучих мышей в деле борьбы с комарами должен быть
разрешен точным наблюдением с учетом конкретных осо^'н-
ностей обстановки.
X

МЕТОДИКА МИКРОСКОПИЧЕСКИХ РАБОТ

ПРИГОТОВЛЕНИЕ ТОТАЛЬНЫХ МИКРОСКОПИЧЕСКИХ
ПРЕПАРАТОВ

А. Тотальные препараты без к а к о й-л ибо
обработки

Для сохранения комаров и различных стадий их развития
в целях последующего изучения таковых изготовляют постоян-
ные микроскопические препараты без какой-либо особой обра-
ботки по схеме — обезвоживание объекта и заключение его
в канадский бальзам.

1)	Объект (комар, личинка, куколка, сброшенная шкурка)
фиксируют 70% спиртом (если он уже был законсервирован
в водном раствора формалина, то его с час промывают водой
и потом переносят часа на 2—3 в 70% спирт).

Препарат прокалывают где-нибудь сбоку острой иглой,
чтобы дать возможность спирту проникнуть через отверстие
в хитине внутрь объекта.

2)	Препарат переносят последовательно в 85° и затем в 95°
спирт, выдерживая в каждом из них в зависимости от величины
объекта, часов по 6 (в 95° спирту можно оставить препарат на
ночь).

3)	Препарат переносят на сутки в абсолютный алкоголь для
обезвоживания.

Для заключения в канадский бальзам препарат необходимо
пропитать насквозь маслом; такое „просветление“ производится
гвоздичным или кедровым маслом.

4)	В узкую короткую пробирку с плоским дном наливают
гвоздичного или кедрового масла на 1 см, осторожно приливают
сверху абсолютного спирта так, чтобы обе жидкости не смеша-
лись друг с другом. В спирт опускают обезвоженные препараты,
которые задерживаются в зоне соприкосновения спирта с маслом.
Пробирку оставляют стоять в покое до тех пор, пока препараты
не опустятся на самое дно, что совершается медленно в связи
с диффузией в пограничной зоне. Пипеткой отсасывают спирт
(он годится для вторичного употребления) и перекладывают
препараты на несколько часов в чистое масло в часовое
стекло.
5)	По окончании описанных процедур контролируют прозрач-
ность препарата. Часовое стекло ставят на черную доску стола.
Препарат должен быть невидимым; если на нем видны белесо-
ватые пятна, значит обезвоживание было не полное и его необ-
ходимо вернуть обратно в абсолютный спирт.

6)	Если препарат прозрачный, то его на шпателе переносят
на середину предметного стекла и поливают несколькими кап-
лями ксилола из капельницы, чтобы смыть масло.

7)	Сообразуясь с толщиной препарата, вырезают две узкие по-
лоски белого картона или полоски из спичек или обламывают ку-
сочки вытянутой стеклянной трубочки и кладут их по бокам препа-
рата так, чтобы они пришлись к самым краям покровного стекла.

8)	Не давая препарату высохнуть, наносят на него палочкой
канадский бальзам и накрывают препарат начисто вытертым
покровным стеклом. Если бальзама взято мало, то прибавляют
каплю его к краю покровного стекла, под которое он втяги-
вается в силу капиллярности.

9)	Поправляют иглами положение сдвинувшихся опорных
полосок (,,ножек“) и оставляют препарат на долгое время сох-
нуть в горизонтальном положении, подбавляя канадский бальзам
по мере его усыхания с краев.

10)	Такие заключенные в толстый слой канадского бальзама
препараты целесообразнее хранить также в горизонтальном
положении, так как при долгом держании их на боку препарат
опускается к нижнему краю покровного стекла даже спустя
несколько месяцев после его изготовления.

11)	Вследствие толщины препарата его можно изучать только
при слабых увеличениях микроскопа.

12)	Если препарат был в канадском бальзаме совершенно
прозрачен, а через некоторое время он частично или полностью
почернел (при рассматривании в проходящем свете микроскопа),
значит он не был достаточно проколот перед обезвоживанием
(см. выше, § 1), из него испарился ксилол, а бальзам внутрь не
прошел. Ценные препараты можно попытаться исправить по
следующей схеме: I — растворить бальзам ксилолом и выдер-
жать препарат в чистом ксилоле; II — перенести (осторожно;
препарат очень хрупок) в 100% спирт для обезвоживания; III —
проколоть осторожно препарат иглой; после суточного пребы-
вания в 100% спирту повторяют последовательно §§ 4—9 на-
стоящей главы.
12-a) Если весь препарат потерял прозрачность, то его с успе-^
хом (и с некоторой выгодой) можно рассматривать под микро-
скопом при сильном падающем свете (у светлого окна, близ
сильной лампы и т. п.). В таком случае с особенной ясностью
видима поверхность препарата (волоски, чешуйки, бугорки и т. п.).

Стойкие, хотя и не так долго сохраняющиеся препараты
можно приготовить, заключая объект в глицерин-желатину.

Если объект хранится в формалине, то его хорошо промы-
вают в сменяемой воде (несколько часов); затем переносят
в смесь глицерина пополам с водой для пропитывания. Спирто-
вые препараты также предварительно переносят в воду. В гли-
церине препарат держат до полного пропитывания им (несколько
часов или сутки).

Препарат далее кладут на предметное стекло и отсасывают
лишнюю жидкость фильтровальной бумагой. На покровное стекло
берут кусочек глицерин-желатины и нагревают его на стекле,
чтобы желатина расплавилась. Полезно слегка нагреть (но не
высушить) и объект на предметном стекле. Затем покровное
стекло быстро переворачивают и висящей каплей желатины
опускают на объект так, чтобы масса растеклась между пред-
метным и покровным стеклами и покрыла собою объект. Для
прочности препарат с краев покровного стекла обводят желез-
ным лаком или жидким канадским бальзамом, чтобы предупре-
дить высыхание массы. Препарат хранится долго. Его выгода —
не такая большая прозрачность, как бальзамного, что иногда
бывает нужно.

Глицерин-желатину приготовляют: растворив в 100 см3 на
водяной бане или в горячей воде 10 г желатины в листах;
к раствору добавляют 25.0 см3 глицерина и 0.1 г тимола^
растворив последний в воде, или несколько капель карболовой
кислоты (против плесени). Все перемешивают и сливают в ба-
ночку с пробкой.

В.	Обработка объектов едким кали

В некоторых случаях желательно изготовить препарат из
одних только хитиновых частей, например, из головы комара
или гениталий самца.

1)	Отрезывают соответствующую часть тела комара и кла-
дут ее в химическую пробирку, куда налит раствор едкого
калия или натра (кусочек с горошину, растворяют в 5—6 куб.
воды).

2)	Препарат кипятят 3—5 минут на спиртовой лампочке,
пока не будут разрушены его мягкие части; в холодном растворе
едкого кали препарат приходится держать гораздо дольше, 16—
12 часов; этот способ может быть предпочитаем кипячению, так
как хитиновые части комаров относительно нежны.

3)	Препарат переносят в чистую воду (можно с прибавлением
уксусной кислоты) для удаления едкого калия.

4)	После основательной промывки препарат переносят после-
довательно в 70%, 95% и в абсолютный спирт, просветляют
кедровым маслом и заключают в канадский бальзам.

5)	При закрытии покровным стеклом под его углы подкла-
дывают ножки (воск, кусочки спички, бристольского картона),
чтобы давлением покровного стекла не изменить формы объекта.

С.	Наклейка тотальных препаратов на пред-
метное стекло

1)	Выпрепарованный орган (например, желудок, половой
аппарат и т. д.) на шпателе переносится в каплю физиологиче-
ского раствора на предметное стекло, где тщательно распра-
вляется иглами и приводится в желательное положение.

Напомним, что успех переноса выпрепарованного органа на
предметное стекло зависит от двух условий: 1) шпатель и иглы
должны быть чисты (не покрыты налетом и обезжирены проти-
ранием с 96% спиртом); 2) препарат должен переноситься из
жидкости в жидкость, т. е. на шпателе препарат должен лежать
в капле жидкости; капля (такой же) жидкости должна быть и на
предметном стекле. По соприкосновении этих двух капель друг
с другом препарат в жидкости передвигается иглой на пред-
метное стекло.

2)	Узкой полоской фильтровальной бумаги осторожно отса-
сывают физиологический раствор и приводят сдвинувшиеся
части органов в их прежнее положение иглой.

3)	Наносят на объект капля по капле из пипетки жидкость
Carnoy,1 следя за тем, чтобы не сдвинуть частей органов.

4)	Покачивают препарат из стороны в сторону, чтобы лучше
лрофиксировать ткани.

1 Рецепт см. ниже.
5)	Через 1—5 минут (в* зависимости от толщины препарата}
жидкость Carnoy сливают; взамен нее прибавляют 95°/0 спирта,
которым промывают препарат.

6)	Сливши спирт, на препарат наносят несколько капель
1/4—72% раствора фотоксилина, коллоксилина, целлоидина или
коллодия (все эти вещества растворяют в смеси равных частей
абсолютного спирта и серного эфира): препарат покачивают,
чтобы жидкость покрыла его сверху.

7)	Излишний раствор жидкости сливают, наклонив стекло;
препарат 7*—7г мин. держат на воздухе, чтобы коллодийная
пленка чуть, загустела (но не высохла).

8)	Препарат кладут в 85% спирт на 7г—1 час, затем пере-
мещают его в 70%, в коем он может храниться неограниченно
долгое время до окончательной обработки.

Если наклеивается препарат, уже бывший в спирту, то начи-
нают прямо с пункта 6.

D.	Окраска и окончательная обработка
наклеенных тотальных препаратов

1)	Из 70% спирта препарат, наклеенный на предметное
стекло, переносят в воду на 10—60 минут (в зависимости от
толщины и проницаемости для воды объекта).

2)	На 5—10—30 минут (установить опытом) препарат погру-
жают в квасцовый кармин 1 или в гемалаун.

3)	Препарат переносят последовательно в несколько порций
чистой воды и в последней оставляют его на 1—2 часа.

4)	На несколько часов стекло с препаратом погружают
в 75% и в 95% спирт.

5)	Обезвоживают препарат в 100% спирту 72—1—2 часа
(в зависимости от препарата). При долгом держании спирт ра-
створит коллодий и препарат сползет.

6)	Обтерев лишний спирт, стекло опускают в ксилол до про-
светления препарата.

7)	Препарат заключают в канадский бальзам над покровное
стекло с ножками (если нужно).

1 Квасцовый кармин приготовляют прибавлением к 100.0 см3 дестилл.,
воды 2.0 г калийных квасцов и 1.0 г кармина. Кипятить 15 минут. Остудить,
отфильтровать и положить в раствор несколько кусочков тимола или камфоры,
(против плесени).
XI

ИССЛЕДОВАНИЕ КОМАРОВ В СРЕЗАХ

А. ФИКСИРОВАНИЕ КОМАРОВ ДЛЯ СРЕЗОВ

Комаров приходится исследовать на сериях срезов как
в отношении их строения, так и для изучения цикла развития
в них различных паразитов (малярийный плазмодий, птичья
малярия, филярия и т. д.).

Работа начинается с фиксирования живого материала (imago,
личинки, куколки) в той или другой фиксирующей жидкости.
Если такая жидкость содержит в себе спирт, то насекомое прямо
погружают в нее и ждут, когда оно прекратит движение.

Так как хитиновый покров комара плохо проницаем для
фиксирующей жидкости, то необходимо открыть ей доступ
внутрь его тела, что достигается отрезанием ног или крыльев
у их основания, отрезанием головы или разрезанием комара
пополам и т. д. Эта манипуляция проделывается острыми тон-
кими ножницами, которые смыкают коротким и быстрым толчком.
Если края отрезанной части тесно подошли друг к другу, иглами
расправляют их, чтобы жидкость могла пройти внутрь. Полезно
также слегка надавливать на тело комара и снова отпускать,
чтобы вытеснить воздух из трахей и заместить отчасти его
отчасти поло тную жидкость фиксирующей жидкостью.

Как общее правило, необходимо следить, чтобы объем фик-
сирующей жидкости раз в 20—30 превышал объем препарата.
Фиксирование производится в низких широких баночках или
в специальных плоскодонных чашечках. Фиксирующая жидкость
годится для употребления только один раз.

Во время фиксирования необходимо время от времени осто-
рожно качать сосуд или помешивать его содержимое, чтобы
жидкость не изменилась сильно в своей концентрации на дне,
где лежат препараты. Еще лучше сменить раз или два фикси-
рующую жидкость на свежую.

Срок фиксирования зависит от величины объекта и состава
фиксирующей жидкости. Если последняя готовится на воде, то
комара сначала окунают в 95°/0 спирт на 1—2 секунды и тот-
час же переносят в фиксирующую жидкость, где и держат его
у дна посуды до прекращения диффузионных токов.
После окончания фиксирования препарат подвергают даль-
нейшей обработке, которая показана ниже, применительно
к сорту фиксирующей жидкости.

В.	НАИБОЛЕЕ УПОТРЕБИТЕЛЬНЫЕ СМЕСИ ДЛЯ ФИКСИРОВАНИЯ

а)	Простейшей фиксирующей жидкостью является 70% спирт,
ъ котором объект выдерживают несколько часов, после чего
перекладывают в свежую порцию спирта для хранения.

Ь)	Жидкость Duboscq’a приготовляется ex tempore смеши-
ванием трех основных растворов: 15 частей 1% раствора пикри-
новой кислоты в 90% спирту, 6 частей формола и 3 части ас.
aceticum glaciate. Полезно добавить еще 10% хлороформа.
(Е. Павловский). Фиксируют 7а—1—2—4 часа, после чего пре-
парат переносят в 85% спирт, который сменяют, после того
как оно заметно окрасится в желтый цвет. Такую смену спирта
приходится повторять. Если препараты не идут сразу в заливку,
то для хранения их перекладывают в 75% спирт.1

с)	Жидкость Carnoy: 60 частей абсолютного спирта, 30 ч.
хлороформа и 10 ч. ледяной уксусной кислоты. Фиксирут от
5 минут до 7г часа. После фиксирования препарат выдерживают
в 100 или 95% спирту, который сменяют несколько раз.

1	Для разведения спирта до любой крепости пользуются следующим спо-
собом.

В первой строке формулы обозначают в % исходную крепость, т. е. 95°.

Справа и наискось от н^е пишут количество % желательного разведения
спирта, например, 70

90

'So

Вычитают из 95—70 и по диагонали справа и снизу от последней цифры
пишут получившуюся разницу, т. е. 25

95

^О

Вода обозначается цифрой 0, которая помещается под цифрой 95 и на
уровне цифры 25

95

\о
d)	Насыщенный водный раствор сулемы; отвешивают по
8 г сулемы на 100 см3 воды и кипятят в колбе. Теплый раствор
фильтруют в склянку, где он окончательно остывает. При охла-
ждении из раствора выпадают кристаллы сулемы, над которыми
жидкость остается всегда насыщенной сулемой.

Для фиксирования необходимо прибавить ко взятой порции
сулемы 1—2 капли ледяной уксусной кислоты.

Сулема плохо проникает вглубь тканей и через хитин, по-
этому необходимо фиксировать разрезанное насекомое. Фикси-
ровать не более 4—6 часов. Эффект действия усиливается, если
предварительно подогреть раствор до 60—70°.

Когда фиксирование закончено, отсасывают сулему пипеткой
и на препарат наливают 50% спирт на % часа, после чего спирт
заменяют 60-градусным. К последнему прибавляют иодной тинк-
туры до цвета мадеры. Сулема объекта соединяется с иодом,.

Вычитают из 0—70 и условно повторяют последнюю цифру на продол-
жении диагонали, чем и заканчивается составление формулы:

спирт

вода

Формула читается по горизонтальным строчкам: берется 70.0 см3
95 % спирта, смешиваются с 25.0 см 8 воды, в результате получается 95.0 см *
70% спирта.

Приведем еще несколько примеров формулы:

спирт 80—50

вода 0—30

В общих выражениях формула излагается так. Всякий раз берется.столько*
кубиков спирта исходной крепости, скольких процентов желают получить раз-
ведение, и смешивается с водою в количестве (куб. см), равном разности
между % начальной крепости и % конечного разведения спирта. Количество*
куб. см получаемой смеси всегда равняется количеству % разводимого спирта.

Воду для разбавления последнего предпочтительнее брать дестиллирован-
ную. В условиях домашней работы, а также в путешествиях это не всегда воз-
можно делать. В таких случаях пользуются водой речной или дождевой, но не
колодезной. Жесткая вода для разведения спирта совершенно не пригодна,
так как из нее осаждаются спиртом известковые соли, мутящие раствор и
ложащиеся более или менее значительным слоем на дно сосуда и препарата
в нем.
вследствие чего спирт обесцвечивается. К нему снова приба-
вляют иод, и так далее до тех пор, пока спирт не перестанет
обесцвечиваться. После этого препарат переносят в 70% спирт.

В раствор сулемы нельзя опускать никаких металлических
инструментов, которые покрываются матовым налетом и пор-
тятся. В случае необходимости пользуются стеклянным или
роговым шпателем, или же металлическими инструментами,
покрытыми тонким слоем парафина.

С.	ЗАЛИВКА ПРЕПАРАТОВ В ПАРАФИН

Для заливки объектов в парафин их необходимо провести
через спирты возрастающей крепости, если фиксирование про-
изводилось водным раствором сулемы.

Схема работы при фиксировании смесями

Duboscq’a	Сагпоу  ।	Сулема с укс. кисл.  ।
После фиксирования вы- держивать в 85 % спирте; потом — в 90% 4—6 часов; в 95% 4—6 часов можно	После фиксирования вы- держивать в 100 % спирте или в 95 % для оттягивания кислоты из объекта	Спирт 50%—Vs часа 60% -+- tinct. jodi до обесцвечивания 700/о
и дольше		6 часов (можно и доль-
		ше)  80 % 6 часов  90 % 6 часов  95 % 6 часов

Далее препарат обезвоживают в 100% спирту, который дер-
жат в диализаторе над слоем обожженного до белого цвета
химически чи того медного купороса. Обезвоживание лучше
производить в течение 12—24 часов.

Обезвоженные препараты быстро переносят в смесь ксилола
с абсолютным спиртом на 3—4 часа, после чего их помещают
в чистый ксилол до того времени, пока они станут прозрачными
(2—3—4 часа). После этого препараты перекладывают в па-
рафин, растворенный в ксилоле, и ставят чашечку на термостат
(с внутренней t°—55—56° С) на несколько часов, закрыв ее
стеклом.

10
Павловский
Затем открытую чашечку помещают в термостат на 2/2—1 час,
после чего препараты переносят в чистый парафин (плавкости
55—56°), расплавленный в другой чашечке. Через 1/2—1 час
переносят материал в другую порцию чистого парафина, в ко-
тором оставляют его на такой же срок. Затем препарат пере-
кладывают для застуживания в третью порцию парафина, в ча-
совое стекло. Перенос производится всякий раз нагретым на
спиртовой лампочке пинцетом, чтобы избежать затвердения
парафина и приставания объекта к инструменту.

При застуживании парафина, чашечку или часовое стекло
вынимают из термостата и прижимают дном к ладони левой
руки. При этом вскоре застывает слой парафина у самого дна
посудины. Нагретой иглой раздвигают препараты друг от друга
так, чтобы между ними везде было расстояние не менее 4—5 мм,
придают объектам желательное положение (например, чтобы
они лежали параллельно поверхности дна) и опускают чашечку
плавать в ванночку с холодной водой.

Все эти процедуры должны быть проделаны быстро; когда
пленка парафина застынет с поверхности, чашечку, осторожно
потопляют; необходимо избегать очень холодной воды или не
передерживать в воде заливаемый материал, так как парафин
от холода может дать трещины, благодаря которым потребуется
перезаливка объектов.

Для снятия парафина из часового стекла, последнее быстро
прогревают на спиртовой лампочке, чтобы растаял прилежащий
к дну слой парафина, после чего пинцетом сдвигают парафи-
новую массу в ванночку с водой.

Наконец обрезывают лишний парафин так, чтобы вокруг
объекта осталась прямоугольная кайма в 2—3 мм шириною.

D.	НАКЛЕЙКА СРЕЗОВ

Парафиновый блок с препаратом наклеивают расплавленным
парафином на четырехугольную деревяшку,«которую зажимают
в клемму микротома. Срезы наклеивают на предметное стекло
куриным белком, смешанным пополам с глицерином. На чистое
предметное стекло наносят каплю смеси величиною с половину
булавочной головки и растирают ее равномерно пальцем по
стеклу. На натертое место из пипетки капают дестиллированной
водой (1 2 капли), которая должна растекаться ровным слоем.
На воду кладут в порядке парафиновые срезы; когда вся партия
их уложена, то стекло прогревают на спиртовой лампочке, осте-
регаясь расплавить парафин срезов. При нагревании срезы
расправляются и ложатся ровно на предметное стекло. Узкой
полоской фильтровальной бумаги отсасывают воду, иглой при-
водят срезы в прежний порядок и кладут стекло сохнуть в термо-
стат при 35—40° на ночь. Если отдельного термостата нет, то
стекло помещают на термостат для заливки, прикрыв препарат
от пыли перевернутым часовым стеклом; чтобы лучше приклеить
хитиновые части, бывает полезно часа через два положить стекло
со срезами внутрь горячего термостата на х/2 часа, после чего
стекло опять перекладывают на термостат, где и оставляют его
до утра.

Е.	ОКРАСКА СРЕЗОВ

Наклеенные срезы:

а)	опускают в ксилол для растворения парафина;

Ь)	переносят в 100% спирт, где срезы сразу белеют;

с)	в 95% после чего перекладывают стекло

в воду.

Далее препарат красят.

К краям ванночки или чашки воском прикрепляют две сте-
клянных палочки или трубочки на манер рельс железной дороги.
На рельсы поперек кладут стекла срезами вверх. На срезы
отфильтровывают или прямо наливают раствор краски.

Наиболее употребительные растворы красок:

Гематоксилин Бемера. Растворяют 1 г кристалли-
ческого гематоксилина в 10 см8 абсолютного алкоголя. Смеши-
вают 20 г калийных квасцов в 200 см3 дестиллированной воды
и кипятят до их растворения. Смешивают далее оба раствора,
фильтруют жидкость и оставляют в незакрытой склянке стоять
недели две на воздухе для „созревания" краски, снова филь-
труют и вдвое разбавляют дестиллированной водой.

Красят 3—5 минут (установить опытом), нафильтровав краску
на препарат. Препарат споласкивают в водопроводной воде и
оставляют в чистой порции воды до утра (чтобы срезы посинели).

Дополнительно окрашивают препарат водным раствором
эозина (1:1000), который также фильтруют перед употребле-
нием, одна и та же порция эозина и гематоксилина годны для
многократного употребления.
Сполоснув препарат в воде, переносят его в 95% спирт и
потом в 100%; затем просветляют в ксилоле и заключают в ка-
надский бальзам. Если в спирту эозин выходит из препарата,
то снова красят в нем дольше; полезно прибавить к раствору
эозина следы уксусной кислоты; можно несколько перекрасить
препарат в эозине и излишек краски оттянуть в воде.

Железный гематоксилин Гейденгайна, а) Основ-
ной раствор краски: 1.0 г кристаллического гематоксилина
растворить в 10.0 абсолютного алкоголя;

Ь)	10 см3 основного раствора вылить в 90.0 см3 дестиллиро-
ванной воды и оставить в открытой посуде созревать не-
дели три.

с)	Протравой является 1% раствор железоаммиачных квас-
цов — (Ferrid ammoniosulfuricum); для растворения годны толька
голубые (не выветрившиеся) кристаллы.

Способ окраски:

а)	Стекло со срезами из воды переносят в протраву на
4—6—12 часов.

Ь)	Быстро споласкивают дестиллированной водой.

с)	Стекло кладут в раствор краски на 12—24 часа (срезы
чернеют).

d)	Объект перекладывают в сосуд со сменяемой простой
водой на 72 часа.

е)	Стекло срезами кверху кладут в чашечку Петри с про-
травой (которую для облегчения контроля откраски можно раз-
вести вдвое водой). Наблюдают за откраской препарата под
микроскопом (об. 3, ок. 2—3); протоплазма должна приобрести
гравюрный оттенок; на ее фоне ядра вырисовываются ясно.

f)	На 1 час стекло кладут в проточную воду.

Далее — спирты и ксилол, как выше.

Если препарат очень открашен, его опять кладут в краску
и снова диференцируют в протраве..

Очень прочная и красивая окраска, выявляющая тонкие
детали строения ядра и протоплазмы.

Краска Романовского-Гимза. Готовый раствор дер-
жат в тепле (ч-16—17°). Перед употреблением растворяют
в пропорции; 1 каплю краски на 1 см3 дестиллированной
воды. Смесь наливают в цилиндрик, куда стоя опускают пре-
парат из дестиллированной воды, или в чашку Петри. Красят
12—24 часа.
Споласкивают стекло в дестиллированной воде и переносят
в цилиндр с 95% спиртом для диференцировки. Покачивают
втекло и когда краска будет вытянута из протоплазмы (устано-
вить опытом и быстрым контролем под микроскопом), срезы
переносят в 100% спирт для обезвоживания (%—х/8 минуты);
затем ксилол и бальзам.

Ядра голубые, протоплазма розовая. Если протоплазма не
принимает розовый окраски, то в раствор краски прибавляют
на кбнчике иглы ледяной уксусной кислоты. Краска в обыкно-
венном бальзаме со временем выцветает. Возможна перекраска
выцветших препаратов после растворения канадского бальзама
в ксилоле, и проведение препарата через 100%, 95% спирты
в воду.

XII

ИЗГОТОВЛЕНИЕ МУЗЕЙСКИХ ПРЕПАРАТОВ
НАКЛЕЙКОЙ ИХ НА СТЕКЛО

1.	Посуда: цилиндры для препаратов с отшлифованным
рантом и притертой пластинкой разных размеров, или цилиндры
с плоским дном без ножки и без ранта; закрываются обыкно-
венной пробкой; размер 4 X 10 см; стеклянные пластинки про-
зрачного или молочного стекла, вырезанные по внутренним раз-
мерам (диаметр и длина) цилиндра.

2.	Консервирующая жидкость: 70% спирт.

3.	Раствор для наклейки: раствор фотоксилина или
коллоксилина в смеси абсолютного спирта с серным эфиром
пополам. Густота раствора немного меньше, чем продажного
коллодия. Годен и немного разжиженный спиртом и эфиром
коллодий.

4.	Пипетка и 100% (или в крайности 95%) спирт. Пре-
параты для наклейки — яйца, личинки, куколки, imago комаров
и т. п. — из 70% спирта переносят на чистую и сухую стеклян-
ную пластинку цилиндра, положенную горизонтально.

Иглой раздвигают объекты и укладывают их в желательном
положении. Пипеткой капают на препараты 100% спирт, чтобы
их обмыть. Слив спирт, пипеткой наносят на объекты раствор
фотоксилина, чтобы он их покрыл и стек на стекло. На бри-
стольском картоне, вырезанном полосками, жидкой тушью пишут
подписи, окунув бумагу в раствор фотоксилина, укладывают ее
под соответствующим объектом и придерживают края пинцетом.

Когда слой фотоксилина начинает подсыхать (при давлении
концом пинцета на пленке фотоксилина остается след), стекло
медленно опускают в цилиндр с 70% спиртом. Между краями
стекла и стенкой цилиндра вдавливают кусочек пробки, чтобы
стекло не болталось.

Замазка цилиндра: а) 1 часть мелко нарезанного каучука
пара (сырого) обливают в бутылке французским скипидаром.
Когда каучук растворится, жидкость вливают в чашку с 2—3 ча-
стями (по весу) парафина; при помешивании нагревают все на
легком огне в какой-либо металлической посуде, держа под
рукою лист железа для покрытия сосуда, если смесь загорится»
Нагревание продолжают, пока смесь не перестанет пахнуть
скипидаром.

Разогретую замазку наносят негодным скальпелем на мато-
вый край крышки или на рант цилиндра. Химическими щипцами
берут стеклянную крышку и прогревают ее на спиртовой лам-
почке до расплавления замазки. Быстро перевернув крышку,
накладывают ее на край цилиндра и придавливают полотенцем.
Крышку придерживают до остывания стекла.

XIII

ЭНТОМОЛОГИЧЕСКАЯ КОЛЛЕКЦИЯ КОМАРОВ

Для определения взрослых комаров необходимы сухие на-
колотые экземпляры комаров.

Яйца рассматривают под микроскопом в свежем состоянии,
в консервирующей жидкости или на глицерин-желатиновых
препаратах.

Личинки и куколки рассматривают также в жидкости или на
бальзамных препаратах.

А. НАКОЛКА КОМАРОВ

В виду трудности получения энтомологических булавок
в условиях провинциальной работы, комаров можно наклеивать
на треугольные кусочки, вырезанные из визитных карточек
(фиг. 74 А). На вершину треугольника наносят капельку синде-
тикона, густого гуммиарабика, канадского бальзама или инога
клейкого вещества и прикасаются ею к нижней части груди
комара так, чтобы высота треугольника была перпендикулярна
длине комара. В основание треугольника вкалывают булавку
(можно в крайнем случае и простую), на которую помещают
и этикетку с паспортными данными (см. выше). В таком виде
комары помещаются в энтомологический ящик с торфяным
дном.

Часть комаров наклеивают боком груди к загнутому под
прямым углом вершинному углу
Чтобы коллекция комаров
не была погублена вредителями,
к углу ящика прикалывают за-
вернутый в бумагу аптечным
порошком нафталин.

При наличии энтомологиче-
ских булавок для наколки кома-
ров пользуются тонкими, покры-
тыми черным лаком стальными
булавками № 00. Булавку вка-
лывают отвесно в грудь комара
и продвигают ее так, чтобы
насекомое пришлось на границе
верхней и средней трети длины
булавки. Острие булавки должно
выйти между основаниями ног
комара. Можно накалывать ко-
мара и боком, вводя булавку в
средину боковой поверхности
груди. При такой наколке осо-

бенно удобно исследовать гениталии комара. При достаточном
материале желательна и та и другая наколка. На ту же булавку
накалывают и этикетку с паспортными сведениями. Она должна
помещаться под насекомым, но не соприкасаться с ним.

Если есть короткие тонкие булавки без головки (минуции),
то накалывают на них комара, самую же булавку накалывают
на прямоугольный кусочек сердцевины бузины или высушенной
мякоти подсолнечника; наиболее удобные размеры такого
кусочка — 3 X 6 X 11 мм; этот кусочек с другого конца накалы-
вают на энтомологическую булавку № 2 или № 3. В коллекции
необходимо всех насекомых накалывать на одинаковом уровне.

Способ наколки на минуции следует признать наилучшим
методом наколки комаров вообще.

треугольника ^фиг.

Фиг. 74. Способ наклейки комаров
на картонные угольники. Увеличено.
Оригинал.
При накалывании свежеубитых комаров ножки и крылья их
расправляют осторожно иглой.

Комаров, собранных в пробирки с тампонами или разложен-
ных на вату, накалывать гораздо труднее, чем свежих. Про-
бирки с материалом опускают в стакан, который ставят на
Тарелку с хорошо смоченным песком. Слой ваты с комарами
кладут прямо на слой песка. К песку прибавляют несколько
капель карболовой кислоты (против плесени). Все это покрывают
стеклянным колпаком. Через несколько часов водяные пары
несколько размягчат высохших комаров. Тампоны осторожно
извлекают сначала пинцетом, а потом — из глубины пробирки
проволочным крючком, стараясь не оторвать ножек комара.
С ваты же комаров осторожно снимают пинцетом. Освобо-
ждаемых насекомых накалывают или наклеивают по одному из
вышеуказанных способов.

XIV

ОПРЕДЕЛЕНИЕ КОМАРОВ

РАССМАТРИВАНИЕ НАКОЛОТЫХ КОМАРОВ

При определении комаров необходимо хорошо рассмотреть
внешний вид комара со всех сторон при падающем свете.

Фиг. 75. Пробковые пластинки для рас-
сматривания комаров под микроскопом, по
модели Martini.

Булавку с комаром вкалы-
вают в небольшую пла-
стинку торфа или в пробку
и пользуются лупой, уве-
личивающей в 12—16 раз.

Некоторые признаки на-
дежнее установить под ми-
кроскопом.

Чтобы облегчить пово-
роты комара в различные
стороны, проф. Мартини
пользуется двумя пробко-
выми пластинками (3x5 см),

соединенными друг с дру-
гом под прямым углом. Булавку накалывают на внутреннюю
поверхность любой стороны прямого угла (фиг. 75). В любом
положении пластинку кладут на столик микроскопа и ^рас-
сматривают комара при сильно падающем свете (у ярко осве-
щенного окна, у самой лампы и т. д.) при среднем увеличении
{об. 3; ок. 1—2).

Поворачивая пластинки на всевозможные стороны (фиг. 75,
плоскости AEFDy ЕАВ и др. мы осмотрим все стороны тела
комара, кроме нижней (считая по нормальному положению
'булавки с насекомыми).

XV

ОПРЕДЕЛИТЕЛЬ РОДОВ СЕМ. CUL1CIDAE

Составил А. А. Штакельберг

1	(22). Хоботок длинный, колющий, по длине примерно рав-
ный бедру передней пары ног или длиннее его.

2	(3). Щиток цельнокрайний; щупальцы $ длинные, равны
по длине хоботку .	. Anopheles.

3	(2). Щиток трехлопастный; щупальцы £ короткие, во много
раз короче хоботка.

4	(5). Анальная жилка упирается в задний край крыла при-
мерно на уровне основания общего ствола -ь R44_5..

. .	Uranotaenia.

5	(4). Анальная жилка упирается в задний край крыла на
более или менее значительном расстоянии за местом ответвле-
ния общего ствола R2+3 -+- R4+5 (ближе к вершине крыла).

6	(19). Присоски между коготками на лапках отсутствуют.

7	(12). Дыхальцевые щитинки имеются (фиг. 76, sp).

8	(9). Хоботок весьма длинный и тонкий, длиною равен телу
или даже превосходит его; стерноплевральные щетинки отсут-
ствуют	Tripteroides.

9	(8). Хоботок значительно короче тела; стерноплевральные
щетинки имеются.

10	(11). Хоботок длинный, изогнутый книзу; вилка R2+s
с очень короткими ножками и относительно длинным стебельком
кпереди от Си2 имеется утолщение мембраны крыла в виде
узкой треугольной полупрозрачной пластинки. Крупные формы
в большинстве случаев с пучками ярких волосков на конце
брюшка	Megarhinus.

11	(10). Хоботок прямой или слегка изогнутый; строение
вилки R2+8 и Си2 нормальное. Средней величины формы без
пучков ярких волосков	Theobaldia.

12	(7). Дыхальцевые щетинки отсутствуют.
13	(14). Две проэпимервые щетинки .	. Orthopodomyia»

14	(13). Проэпимерных щетинок не менее 5.

1ST (16). Задыхальцевые щетинки отсутствуют, коготки 2
простые, без зубцов .	Taeniorhynchus-

16	(15). Задыхальцевые щетинки имеются, коготки £ 3 боль-
шинстве случаев с зубцами.

17	(18). Хоботок крепкий, относительно толстый, в спокой-
ном состоянии загнут вверх .	•	. Armigeres»

18	(17). Хоботок тонкий, в спокойном состоянии прямой или
слегка изогнут книзу	. Aedes»

19	(6). Присоски между коготками на лапках имеются.

20	(21). Нижние мезэпимерные щетинки многочисленны .

....	. Lutzia»

21	(20). Нижние мезэпимерные щетинки в количестве 1, реже
отсутствуют, еще реже в числе 2—3 •	Culex»

22	(1). Хоботок короткий, во много раз короче переднего
бедра (сюда относятся роды семейства Culicidae, не имеющие
среди своих представителей кровососов: Choaborus [= Corethra}
и Mochionyx).

Для ознакомления с необходимыми, для определения терми-
нами даны рисунки 76 и 77.

XVI

УКУПОРКА И ПЕРЕСЫЛКА КОМАРОВ

А. Пробирки с комарами завертывают в газетную бумагу
и укладывают в ящик посылки, прослаивая комками смятой
бумаги, пакли, ваты, стружками и т. п. Следить, чтобы пробирки
не болтались в ящике, не соприкасались непосредственно друг
с другом и были отделены от стенки ящика толстой прослойкой
укупорочного материала.

Последнее особенно важно при использовании посылочных
ящиков, сделанных из переклейки. Последи я от удара печатью
на почте прогибается внутрь, причем может раздавить пробирки.

В. Пробирки или баночки со спиртовым (resp. формалинным)
материалом укладывают в ящик с теми же предосторожностями,
которые указаны в пункте А.

Если материалы сохраняются в мелких плоскодонных про-
бирках или в отрезках стеклянных трубочек, то в каждую тру-
бочку кладут соответствующий паспорт и затыкают ее плотно
тампоном гигроскопической ваты, наблюдая, чтобы под по
следним не осталось пузырьков воздуха. Все пробирки или
трубочки укладывают стоя в широкую материальную банку в

один ряд, наливают в
нее спирт или форма-
лин и между пробир-
ками вгоняют в не-
скольких местах ват-
ные тампоны, чтобы ни
одна пробирка не ос-
тавалась подвижной
при трясении банки.

Если можно, укла-
дывают и второй этаж
пробирок. Тампони-
рованием ватой пре-
дупреждают смеще-
ние пробирок и здесь.
Доливают до верху
консервирующую
жидкость. Далее все,
как в пункте В.

С. Наколотых ко-
маров пересылают в
коробках или в ящи-
ках с торфяным или
пробковым дном. Про-
веряют, хорошо ли

Фиг. 76. Бочек груди А — Theobald'a*, В — Aedes*
по Edwards’y. Из А. Штакельберга. Буквами обо-
значены щетинки: ри — переднеспинные, ps — пе-
реднегрудные, ре—проэпимерные, sp — дыхаль-
цевые, psp — задыхальцевые, ра — закрыловые,
шпе — верхние и 1те — нижние мезэпимерные,
stp — сгерноплевральные.

приклеены комары.
Булавки основатель-
но втыкают в дно
так, чтобы головки
их стояли на одном

уровне.

Ящик или коробка перевязывается ниткой или бечевкой и

укладывается в посылочный ящик; свободные пространства

в ящике плотно заполняются укупорочным материалом.

Все почтовые отправления и посылки весом до 16 кг при-
нимаются на почте бесплатно по адресу: „Ленинград, Академия
Наук, Зоологический институт, Отделу Паразитологии.
Фиг. 77. Строение взрослого комара рода Aedes
I — голова с придагками, II — грудной отдел, III —
брюшко — 1—8: 1-й и 8-й сегменты брюшка, верх-
ние полукольца которых носят названия тергитов,
нижние (т. е. видимые снизу) — стерни гов; 1—5 —
членики лапки; С — костальная или краевая жилка;
Sc — суб костальная, Rj_ 3, 1-я, 2-я, 3-я — радиаль-
ная жилка, R S слитная 4 и 5 радиальная жилка;
Mi и М2 — средние жилки, CujCug, 1-я и 2-я —
кубитальные жилки; Ар — анальная жилка. Из
А. Штакельберга.
Днепропетровская	Приложение-. Формы бланков

Окружная

Малярийная Станция КАРТОЧКА ОБСЛЕДОВАНИЯ ПОМЕЩЕНИЙ

№ Район-----------------------------------------------------

19 Населенный пункт ------------------------—--------

Адрес-----------------------------------------

1.	Характер помещения: жилое помещение, нежилая комната, коридор, сени,
чердак, подвал, сарай, погреб, отхожее место, коровник, конюшня, сви-
нарник, птичник---------------------------------------------------

2.	Объем ---------------------------------------------------------

3.	Расстояние помещения от уровня земли: выше, ниже, на сколько--

----------------этаж-----------

4.	Стены: деревянные, каменные, плетеные---------------------------

оштукатуренные, неоштукатуренные----------обои ----------------

5.	Потолок есть, нет, деревянный, соломенный, плетеный ----------—

6.	Помещение теплое, полутеплое, холодное-------отапливается, не ота-

пливается —

7.	Помещение сырое, сухое----------

8.	Помещение хорошо защищенное, плохо защищенное, совсем открытое

9.	Помещение светлое, полусветлое, темное---

10.	Население: (в жилом помещении) сколько человек---------ночуют,

не ночуют-----------

11.	Домашние животные, какие именно, сколько---------находятся в поме-
щении днем, ночью------------------------------------

12.	Окружающая местность: центр города, окраина города, село, луг, поле,
кустарник, лес ---------------------------------------------------•

13.	Ближайший водоем, расстояние от него ---------------------------

14.	Комары есть, нет: малярийные—единицы, десятки, сотни, тысячи
немалярийные—единицы, десятки, сотни, тысячи

Собрано:

№	Род, вид	Самцы	Cai с кровью	ИКИ  без крови	Всего %	Приме- чание
1  5'						

15. Расположение комаров: потолок, стены, углы, в паутине------------

группами, изолированно ----------------------------------------

16. Состояние комаров: активные, малоактивные, полуоцепенелые, оцепенелые

17.	Прочие насекомые---------------------------------- паутины много,

мало, нет---------------------

18.	Способы уничтожения комаров: дата--------метод------------- -

19.	Результат: комары уничтожены, осталось мало, осталось много, _
результата-----------------------------------------------—-	.

20.	Случаи малярийных заболеваний в данном дворе за последние два г
были, не было, сколько----------------на---------жителей ___________

21.	Примечания ---------------------------------------------
Днепропетровская

Окружная
Малярийная Станция

КАРТОЧКА ДЛЯ УЧЕТА СБОРОВ ОКРЫЛЕН-
НЫХ КОМАРОВ (вне помещений)

№------------Район-----------------------------------------

Ближайший населенный пункт ----------------------

_________19	г., час.--	J

1.	Общий характер местности----------------------------------------

2.	Точное местоположение участка, где производился сбор -----------

3.	Ближайший водоем— --------------------—---------------------------

4.	Ближайшее жилище и хлев ----—-----------------------------------.

5.	Окружающая растительность----------------------------------------

6.	Как и где именно производился сбор (сачком, пробиркой; на человеке,
в траве, на воздухе)------------—— ----------------------------------.

7.	Продолжительность сбора (число ударов сачка, обследованная площадь,
пройденное расстояние)-----------------------------------------------

8.	Температура-----------------------------------------------------

9.	Влажность ------------------------------------------------------

10.	Облачность и степень освещения ---------------------------------

11.	Ветер----------------------------------------------------------

12.	Состояние комаров----------------------------------------------

13.	Результат сбора:

№	Род и вид	Самцы	Самки	Всего %	Примечания
1  10					

14.	№ серии-----------

15.	№№ пробирок-----------

16.	Способ сохранения комаров-------------------------------------

17.	Заметки о прочих животных_____________________________________

18.	Примечания —---------------------------------------------------

Падпиоъ
Абхазский

Тропический институт

3313—200

КАРТОЧКА

ДЛЯ РЕГИСТРАЦИИ УБЕЖИЩ КОМАРОВ И СПОСОБА
-СОДЕРЖАНИЯ ЖИВОТНЫХ

Название сеЛейий

№ посемейного списка

№№ по порядку	Адрес	Характер помещения	Вид и колич. животных		Обнаружено комаров												Месяц и число	Примечание
					Anopheles									Итого выловлено  Anopheles	Culex	Другие виды		
			Стабулированных	Не стабулиро- ванных	An. maculi- pennis			An. bifur- fcatus			Всего Anopheles							
					Самцов	Самок		Самцов	Самок		Самцов	Самок						
						С кровью в желудке	Безкрови		С кровью в желудке	Безкрови		С кровью в желудке	Безкрови					
																		

1.	Время, вид и количество животных, выгоняемых на пастбище.

2.	Время возвращения.
Пятигорская Малярстанция У. К. М. В.

КАРТА ОБСЛЕДОВАНИЯ ЗИМОВОК КОМАРА №

1.	Где проводилось обследование: улица--------------дом №-----------

уезд селение--------------------------------------------------

2.	Что обследовалось: жилой дом, отдельная квартира, погреб, подвал, чердак,
сарай, скотный двор» конюшня, колодцы, склад дров, торфа, картофеля,,
смотровые колодцы, отверстия вентиляционных ходов, под мостом и т. п.

3.	Характеристика обследуемого помещения: этаж--объем----куб. метр.

а)	стены: деревянные, каменные, отштукатуренные, неотштукатурен-
ные, обои;

б)	помещение: светлое, темное, полутемное, сухое, сырое;

в)	вентиляция: естественная, искусственная, сквозняки;

г)	температура помещения во время обследования;

д)	отопление: есть, нет, местное, центральное, действует, нет;

ж)	склады: открытые, под навесом, условия доступа света, ветра;

з)	какое расстояние от уровня (ниже, выше) земли.

4.	Расстояние до ближайшего открытого водоема по воздушной линии и крат-
кая гидрографическая характеристика местности.

5.	Имеются ли домашние животные в помещении:

а)	да, нет, какие, сколько;

б)	в ближайшем соседстве: да, нет, какие.

6.	Обнаружены ли комары во время обследования: да, нет, приблизительное
количество: много, мало, единичные. Их состояние: подвижны, мало-
подвижны, оцепенелые.

7.	Точное обозначение места обнаружения комаров: название комнат, на стене,,
потолке, в углу, на дровах, в складах картофеля и др. продуктов, венти-
ляционных ходах и т. п.

8.	Сколько поймано при обследовании: анофелес кулекс.

9.	Как определялся вид комара.

10.	Где производилось лабораторное исследование комаров:

а) число просмотренных комаров	из них анофелес	зара-

женных.

11.	Наблюдались ли в предыдущем году заболевания малярией в этом доме
или владении, когда именно и сколько.

12.	Какие меры приняты к уничтожению комаров.

13.	Наблюдались ли комары после применения мер борьбы.

14.	Начало обследования: год--------------------месяц ---------число.
Днепропетровская
Окружная

Малярийная Станция

№-----------

--------------19 г.

КАРТОЧКА ОБСЛЕДОВАНИЯ ВОДОЕМА

Район----------------------------------—

Ближайший населенный пункт ----------_

1.	Название —------------------------------------------------------

2.	Местоположение--------------------------------------------------

3.	Общий характер водоема -----------------------------------------

4.	Площадь---------------------------------------------------------

5.	Глубина----------------— ———------------------------------------

6.	Течение ------------------------------------------------——---—

7.	Отношение к паводку----------------------------------------------

8.	Высыхание-----------——-------------------------------------------

9.	Замерзание -----------------------------------------------------

10.	Берега ———-----------------------------------------------------

11.	Дно ------------—---—-------------------------------------------

12.	Окружающая местность ------------------------------------------

13.	Расстояние от жилья--------------------------------------------

14.	Хозяйственное использование-------------------------------------—

15.	Особые свойства воды (окраска, запах, загрязнение)-------------

16.	Растительность: а) древесная-----------------------------------

б)	надводная---------------------:----------------

в)	с плавающими листьями -------------------------

г)	погруженная------------------------------------

д)	водоросли----------------------------------------

17.	Животное население: а) планктон --------------------------------

б)	лярвифаги —-------------------------------.

в)	рыбы ------------------------------------——

18.	Комары:

№	Род, вид	Яйца	Личинки	Куколки	
1					
2					

19.	Заключение о малярийном значении водоема---------------------

20.	Предположения относительно практических мероприятий (по борьбе
с комарами).

21.	Примечания --------------------------------------------------

Подпись

Павловский
Пятигорская Малярстанция У. К. М. В.

ПЛАН ОБСЛЕДОВАНИЯ ВОДОЕМА №------------------------------

Название водоема--------------------------------------------------

Адрес------------------------------------------------------------------

Общая характеристика местонахождения водоема----------------------------

Местность: сырая, сухая, высокая, низкая, ровная, холмистая-------------

Ближайшее расстояние от жилья и ближайшие водоприемники общедоступные

Какие вблизи учреждения; дома, школы, больницы, казармы ----------------

Ближайшие причины заболоченности местности (напор реки, грунтовые, вер-
ховые воды) ------------------------------------------------------

Описание водоема

Площадь в метрах------------Берега обрывистые, пологие, низкие,

высокие, глинистые, песчаные, каменистые, болотистые, голые, заросшие тра-
вой, болотистыми растениями, деревьями, покрытые отбросами -------------

Глубина наибольшая, наименьшая (у берегов)------------------------------

Дно — глинистое, песчаное, каменистое, илистое, t° в день обследования -г

Изменение характера водоема в связи с временами года (высыхание)-,—

Качество воды (прозрачность, запах, цвет)--------------------------------

Биологическая характеристика водоема -----------------------------------

--------------,--------------------------------------------------—

Фауна

а)	имеются ли яйца, личинки, куколки комара Anoph. и время появления
каждой формы

б)	имеются ли вредители комаров (жуки, плавунцы, рыбы, водяные
птицы)

Флора

а) чистая или заросшая поверхность------------чем-----------------

Гидробиологическая характеристика водоема (по мере возможности)---------

а)	Наблюдаются ли в окружности заболевания малярией -------------

б)	Пользуются ли водоемом для спуска нечистот или фабричных вод

Значение водоема для окружающего населения (питье, водопой, полоскание
белья, купание, лодки и др.)

Безусловно ли необходимо сохранение данного водоема

Результат технического осмотра водоема.

Мера к обезвреживанию водоема.

Подпись
Днепропетровская
Окружная
Малярийная Станция

№-----------

КАРТОЧКА ДЛЯ УЧЕТА РАБОТЫ
ПО УНИЧТОЖЕНИЮ ЛИЧИНОК КОМАРОВ

______________19

Район-------------------------------------------

Ближайший населенный пункт-------------------

1.	Водоем (№, название, местоположение)------------------------------

2.	Метод-------------------------------------——----------------

1

2	3	4	5	6

3.	Дата------------------------------------------------------------

4.	Площадь-------------------------------- ------------------------

5.	Полная или частичная обработка----------------------------------

6.	Количество лярвицида-----------------------------—--------------

7.	Расчет на один квадр. метр -------------------------------------

8.	Надводная растительность -----------—---------------------------

9.	Метеорологические условия --------------------------------------

10.	Предварительный контроль ----------------------------------------

11.	Последующий контроль ------------------------------------------

12.	Отметки о расходах----------------------------------------------

13.	Примечания------------------------------------------------------—

14.	Данные о количестве окрыленных комаров в окружающей местности.

15.	Общие выводы---------------------------------------------------
Уз. С. С. Р.

ВЕДОМОСТЬ

НАРКОМЗДРАВ
БУХАРСКИЙ
Тропический институт

По учету состояния водной поверхности, инфицированности, иефтевания и сангидроработ

В

месяц 193

за

		•-*  NJ	Район деятель- ности		Форма А  О работе бонификато
Пру. Рек Кан, Озе Боле Ям Луж Под] Басс Цис Коле Воде Бакс Шал Боче Кол. Воде Про			Характер водоемов		
Всего . гчено	  и м е ч а н г	й я 5 * а«з ь ис s н s §  и Т и ° а? й З в >	»  х о	8 S S я о с	Х1Я•  • Х> х>	-	»	о ф .  »	g	S	§	IB	8  5	и	х>	§	2	2  2	о	8 з .  •	W	.	SC-	• •	•	.н	•				
о  □		W	Количество водоемов	со о	р
>  10 g			Площадь водоемов	1 OJC ,OWOC	
£ 2 er «  s 2		сп	т/	Д	0D  Кол. сл е р 	'р * 8	грене	
S  £		04	Пло- 8 3 ф щадь Яс 8 Д	> вод Из	
м о н о м			Кол. „ 2 	 S s	□емо! них	
со  X		00	Пло- § g щадь ®		
р  >1  *о р		40	Аноф.	«  > << >	I g я i § £	
н я в		о	г*	S Й ®=  Сте-	л о з  в со  ГОМИЯ к д с	; а я  1 S  ’ о о h a La	из гя
к  *о $			1-»	Кули- § g | ЦИНИ	1	1 a S 1 о 0	
но*  1		ю	Количество водоемов	я е О	X
•О*		со	Площадь водоемов	безв] тью 1	и я
		1—»	Количество водоемов	эежеь зеле	(0 р
		U1	Площадь водоемов	5 з 8	5
		04	Нефть	Рас мате	S (
		1-»	Зелень	:ход риал.	
		00	Количество водоемов	Вновь лено бул	
		ЧХЭ	Площадь водоемов	S ч и 2 » в» W g о • о	
СП о SC S		О	Количество	Очи | но	
♦в* S X g			N5	Площадь	гще- вод.	
to		№ №	Количество	У ни» водо	чэ '1 t л
		W	Площадь	1Т0Ж. емов	
		1 24	Примечание		.1
Район №----- Бонификатор.

		Район деятельности			
		Обследовано дворов			
Итого.	2^ддооа>£	рз и  Вд|»232^»	® g  aaxas?gg§§§s: 2 п = я Е 3«о и s-o ?|В S?	Характер убежищ комаров			
		Количество обследован- ных помещений			
		Анофелес	Помещения с единичн. комарами		Из них обнаружено с коМарами
		Кулекс			
		Прочие			
		Анофелес	Со средним количеством комаров		
		Кулекс			
		Прочие			
		Анофелес	С большим -количеством комаров		
		Кулекс			
		Прочи			
		Количество поме- щений			Сделано дезинфекций
—		Количество	окурено	Из них	|	
		Кубат. в м			
—		Количество	опрыск		
		Кубат. в м			
		Количество поме- щений			Выловлено комаров
		Анофелес	Количество комаров		
		Кулекс			
		Прочие			
		Серы	Израсхо- довано материа- лов		
		Смеси для опрыскив.			
		Примечание			

е
о

р

W

СВЕДЕНИЯ
бонификатора-------------------------по борьбе с окрыленными комарами

(город, район, колхоз, совхоз и т. д.)
	Протяжение	Прочистка сети
О  Q\	Кубатура землян, работ	
р  3Q  И		,		Стоимость	
Р  Р  Ж	———————	За чей счет	
О  о  S  о		 		Протяжение	Устрэйство и про- рыв дренажи, сети
н к и р	Кубатура землян, работ	
о  >1  к  о 		Стоимость	
з &	За чей счет	
в  о	Протяжение	Засыпки
р	Кубатура землян, работ	
	Стоимость	
	За чей счет	
	Протяжение	Итого
	Кубатура землян, работ	
	Стоимость	
	За чей счет	
		
Общие сведения о сангидроработах		

(г пнэжгоХос/ц)
Примечание. Расположить в тетради на двух противоположных страницах.

	№№ по порядку		
	Адрес		
	№ дома или фамилия хозяина		
	Характер осмотренного помещения		
	Количество		Осмотрено помещений
	Приблиз. кубатура в метрах		
	Мало, средн, коли- чество или много		Обнаружено комаров
	Вид обнаруженных комаров		
	Количество помещений, в коих сделана девинсек.		
	Чем сделана дезинсекция		
	Расходовано материалов		
	В скольких поме- щениях выловлено		Произведено вылавлив.
	Анофелес	Количество выло- вленных комаров	
	Кулекс		
	Прочих		
	Число		
	Примечание		

- 69Т —

ДНЕВНИК БОНИФИКАТОРА ДЛЯ ЗИМНИХ РАБОТ
ВАЖНЕЙШАЯ ЛИТЕРАТУРА ПО КОМАРАМ

Литература для определения комаров

Edwards. A Revision of the Mosquitos of the Palaearctic Region. Bull. Ent.
Research, XII, 263—351, 1921.

Edwards. Culicidae. Genera Insectorum, Fasc., 1932.

Howard, L. O., D у a r, H. G. and К n a b, Fr. The Mosquitoes of North and
Central America and the West Indies. Vol. 1—IV. Washington, 1912—1917.,
К i r k p a[jt r i c k, T. W. The Mosquitoes of Egypt. Egypt Govt. Anti-Malaria
Commiss. Cairo. 1925. 224 pp.

Lang, W. A Handbook of British Mosquitoes. Brit. Mus. Nat. Hist. London, 1920.
Martini, E. Ueber Stechmiicken besonders deren europaische Arten. Beih. zum
Arch. f. Sch. und Tropenhyg. 1920.

Marti n i, E. Medizinische Entomologie. Fischer, Jena, 1923.

Martini, E. Ueber einige fur das System bedeutungsvolle Merkmale der
Stechmiicken. Zool. Jahrbiich., Abt. f. System., vol. 46, 1923.

Martini, E. Zur Culizidenfauna Siidostriisslands. Arch. Sch. Trop. Hyg.,
vol. 29, № 10, SS. 514—518, 1925.

Martini E, Culicidae. In: E. L i n d n e r. Die Fliegen der palaarktischen Region.
1929—1931.

S ё g u y. Les moustiques de la France. Ed. P. Lechevalier. Paris, 1923.

S e g u y. Les moustiques de 1’Afrique Mineure, de 1’Egypte et de la Syrie.
P. Lechevalier. Paris, 1924.

Штакельберг, А. А. Материалы для определителя кровососущих дву-
крылых СССР. Род Anopheles. Вести. Микробиол. и эпидемиол., т. IV,
№ 1, стр. 20, 1925.

Штакельберг, А. А. То же. II. Определитель родов кровососущих дву-
крылых. Вести, микробиол. и эпидемиол., № 1 за 1926 г.

Штакельберг. А. А. Сем. Culicidae. Фауна СССР. Насекомые двукрылые,
т. VI, вып. 2. (печатается).

Theobald. A Monograph of Culicinae or Mosquitoes. 5. Vols. London,
1901—1910.

Yamada, S. A Revision of the Adult Anopheline Mosquitoes of Japan: Syste-
matic Descriptions, their Habits and their Relations to Human Diseases,
together on Account of three new Species. Sci. Repts. Govt. Inst. Infect.
Dis. Ill, 1924, SS. 215—241. Tokyo, 1925.,

За текущей литературой по комарам можно следить по реферативному
журналу The Review of Applied Entomology (London); см. также: Zoological
Record. Part. Insecta: Section D. Hymenoptera and Diptera.
Рефераты по комарам (и в связи с малярией) помещаютя также в жур-
налах: Tropic. Diseases Bulletin (London), Centralbl. f. Bakter. und Parasitol.
Refer. (Jena) и Zoolog. Bericht (Jena).

Из русских журналов оригинальные работы по комарам помещаются в:
„Паразитологическом сборнике“ Зоологического института Акаоемии
Наук СССР.

„Медицинская паразитология и паразитарные болезни". Москва,
а также в трудах паразитологических экспедиций, издаваемых Академией
Наук СССР и в трудах тропических институтов.

Артемьев, А. И. Некоторые данные о выживаемости водного поколе-
ния малярийного комара. Мед. паразитол. и паразит, болезни, т. I,
№ 5—6, 1932.

Беклемишев, В. Н. Экология личинки Anopheles maculipennis и характер
распространения этого вида в Пермском Прикамьи. Изв. Биол. научн.
исслед. инет, при Пермск. универе., т. 3, вып. 9, 1925 г.

Беклемишев, В. Н. и Митрофанова, Ю. Г. К экологии личинкй
Anopheles maculipennis Meig.; проблема распределения. Там же, т. 4,
вып. 7, 1926.

Беклемишев, В. Н. О значении коллоидно-дисперсных веществ в пита-
нии личинок Anopheles, Паразитол. сборн. Зоолог, инет. Акад. Наук
СССР, вып. 1, 1930.

Беклемишев, В. Н. К методике количественного учета личинок в за-
росших растительностью водоемах.

Беклемишев В. Н. Об одной закономерности в экологии личинки Anopheles
maculipennis: оптимум высоты и густоты растительности. Медиц. Парази-
тология и паразит, болезни, 3,1934.

Беклемишев, В., Брюханова, А. и Шипицина Н. Пред-
посылки к эпидемиологии и профилактике малярии в Магнитогорске.
Магнитогорск, 1931.

Беклемишев, В. Н. и Митрофанова, Ю. К экологии взрослой
самки Anopheles maculipennis. Влияние микроклимата дневных
убежищ на распределение и активность комаров. Медицин, паразитол.
и паразитарн. болезни,т. И, № 6, 1933.

Беклемишев, В., иПоловодова, В. Растительные сообщества, как
фактор в биологии личинки. Медицин, паразитол. и паразитарн. болезни,
т. II, № 6, 1933.

Васильев, И. Белый малярийный комар. Тр. Бюро Энтомол., X,
№ 6, 1913.

Васильев, И. В. К биологии и экологии обыкновенного малярийного
комара. Профилакт. медиц., № 2, 1925.

В е л и ч к е в и ч, А. И. К экологии и распространению малярийных кома-
ров на южном берегу Крыма. Паразитол. сборн. Зоолог, инет. Акад.
Наук СССР, вып. II, 1931.

Гончаров, Г. Д. Питание "личинок в искусственных условиях. Русск.
Журн. троп, медиц., т. 6, № 8,1928.

Горицкая, В. В. К вопросу о зараженности малярийными плазмодиями
в естественных условиях. Докл. Акад. Наук СССР. А. 1928.
Григорьев, С. П. Схема исследования крови для обнаружения пара-
зитов малярии. Практ. заметки по малярии, I. Укр. Протозойн. инет.
Харьков, 1923, 1—8.

Г у ц е в и ч, А. В. О графическом изображении некоторых данных по
биологии комаров. Паразитол. сборн. Зоолог, инет. Акад. Наук СССР,
вып. III, 1932.

Г?У ц ев и ч, А. В. Размножение и развитие желтолихорадочного комара
в условиях эксперимента. Там же, вып. II, 1931 г.

Туцевич, А. В. Опыт составления календаря жизни малярийного комара
для разных районов СССР. Сборник работ, посвященный XXV-летней
научной деятельности профессора Е. Н. Павловского. За соц. здравоохр.
Узбекистана, год 11 (XI), №6—7, 1932.

Здродовский, П. Ф. Малярия на Мугани. Баку, 1926.

И о ф ф, И. Г. Материалы для составления подробной инструкции по
организации противомалярийных гидротехнических работ. Медицин,
паразитол. и паразитарн болезни, II, № 6, 1933.

Каганова, Б. А. иМончадский, А. С. К вопросу об определении
стадии и возраста у личинок комаров. Паразитол. сборн. Зоолог, муз.
Акад. Наук СССР, вып. I, 1930.

Казанцев, Б. Н. Фауна комаров Шахрудского бассейна. Паразитол.
сборн. Зоолог, инет. Акад. Наук СССР, вып. III, 1932.

Коровицкйй, Л. К. и Артеменко, В. Д.^Материалы по биологии Aedes
aegypti. Медицин, паразитол. и паразитарн. болезни, II, № 6, 1933.

Линдберг, Г. У. Насекомоядные рыбы и малярия. Природа, 1933, № 10.

Л и с о в а, А. М.' и Э с к и н, В. А. Зараженность малярийными плазмо-
диями в естественных условиях в рисовом районе Узбекистана.
Паразитол. сборн. Зоолог, инет. Акад. Наук СССР, вып. III, 1932.

Л я с с, Л. С. Малярийное значение переходного болота и его биологиче-
ские индикаторы. Троп, медиц. и ветерин., № 6—7, 1930.

Малярия. Сборник декретов, инструкций и распоряжений центра по
вопросам борьбы с малярией. Изд. 2. Москва, 1925 (есть библиографи-
ческий указатель).

Павловский, Е. Н. Насекомые и заразные болезни человека. Изд. Нар-
комз драва, 1928.

Павловский, Е. Н. Курс паразитологии человека с учением о пере-
носчиках инфекций и инвазий 1934.

Павловский Е. Н. (ред.) Практикум медицинской парозитологии.

Павловский, Е. Н. и М е с с, А. А. Биологические наблюдения над черно-
ногим малярийным комаром в районе ‘Кавказских минеральных вод.
Паразитол. сборн. Зоолог, муз. Акад. Наук СССР, вып. I, 1930.

Павловский, Е. Н. О распространении малярийных комаров в районе
Княжего двора (Шимск. Новгород, окр.) в связи с вопросом о зоофилии.
Паразитол. сборн. Зоолог, муз. Акад. Наук СССР, вып. II, 1931.

Перфильев, П. П. Некоторые данные по сравнительной анатомии
малярийных комаров. Паразитол. сборн. Зоол. муз. Акад. Наук СССР,
вып. I, 1930.

Перфильев, П. П. Некоторые данные по сравнительной анатомии
комаров. Сборник работ, посвященный XXV-летней научной деятель-
ности профессора Е. Н. Павловского. За соц. здравоохр. Узбекистана
год 11 (XI), № 6—7, 1932.

Петрищева, Ш. А. Эпидемиология малярии Каракалинского района..
Тр. Каракалинск. и кзылатрекской паразитол. экспедиц. 1931 г. и мат.
по фауне Туркмении. Тр. Сов. по изуч. произв. сил. Серия туркменская
вып. 6 1932 г., под ред. Е. Н. Павловского.

Петрищева, П. А. К фауне и биологии комаров Каракалинского района.
Там же,

Петрищева, П. А. К биологии Anopheles bifurcatus в Туркмении. Пара-
зитол. сборн. Зоол. инет. Акад. Наук, вып. 4.

Рахманова, П. И. Типы ландшафта Чапаевского и Приволжского
административных районов с маляриологической точки зрения. Медицин,
паразитол. и паразитарн. болезни, т. II, № 6, 1933.

Рейнгардт, Л. В. и Гуцевич, А. В. Заметки по экологии комаров.
Паразитол. сборн. Зоол. инет. Акад. Наук СССР, вып. 2, 1931.

Русск. Журн. троп, мед., т. VII, № 3, 1929, посвященный работам о денге.
Себенцов, Б. М. и А д о в а, А. Н. Жизненный и физико-химический
режим торфяного карьера и условия заселения его личинками. Русск.
Журн. троп, медиц., т. 6, № 2, 1928. Anopheles maculipennis.

Сергиев, П. Г. Усовершенствованная методика препаровки комаров. Ла-
борат. практика 1934, № 11.

С и м а н и н, П. И. К вопросу об экспериментальном заражении комаров
тропической малярией. Паразитол. сборн., вып. 1, 1930.

С и м а н и н, П. И. Искусственное заражени з зимующих Anopheles maculi-
pennis Mgn. Pl. praecox и Pl. vivax. Русск. Журн. троп, медиц., № 3,1927.

Скориков, А. С. Биологические наблюдения над малярийными комарами
в Гаграх, Черном, губ. Русск. Энтомол. обозр., 1906, № 3—4, 225—251.

Смородинцев, И. А. и Рави ч-Щ е р б а, М. И. Соотношение между
содержанием органических и минеральных веществ в торфовых водах
и нахождением в них личинок Anopheles. Русск. Журн. Троп, медиц.,
т. 5, № 3, 1927.

Справочник по борьбе с малярией, вып. IV. О собирании энтомологиче-
ских материалов и о препаровке комаров. Госизд. Москва, 1923.

Ходукин, Н. И. О механизме гетеродинамии у некоторых Anopheles. Мед..
Мысль Узбекистана, 1930.

Ш л е н о в а, М. Ф. Осенние изменения физиологического состояния самок
Anopheles maculipennis. в Каратале (Семиречье). Медицин. Паразитол.
и паразитарн. болезни, т. II, № 6, 1933.

Beklemischev, W. et Mitrophanova, J. Sur 1’ecologie larvaire de
VAnopheles maculipennis. Rivist. di Malariolog., VII, 1928.

Boissezon de. Contribution a I’etude de la biologie et de 1’histophysiologie de
Culex pipens L. Arch. Zool. exper., Bd. 70, 1930.

Bruce Mayne. The influence of relative humidity on the presence of parasites
in the insect carrier and the initial seasonal appearance of malaria in
a selected area in India. Ind. Journ. Med. Research., vol. XV, № 4, 1928.

Bruce Mayne. The nature of the ,,black-spores“ associated with the malaria
parasite in the mosquito and their relationship to the tracheal system.
Ind. Journ. Med. Resear., XVII, № 1, 1929.
Christophers, S. R., Sinton, J. A. and Covell G. How to do a Malaria
Survey. Calcutta, 1928. Health Bull. № 14, Malar. Bureau № 6.

С о v e 11, G. The present state of our knowledge regarding the transmission of
malaria by the different species of Anopheline mosquitoes. Record, of the
Malaria Survey of India, vol. II, № 1, 1931. (Литература).

Gill, C. A. The influence of humidity on the life history of mosquitoes and on
their power to transmit infection. Trans. R. Soc. Trop. Med. and Hyg.,
vol. 14, № 5, 1921.

Hecht, O. Ueber der Warmesinn der Stechmiicken bei der Eiablage. „Rivista
di Malariologia“, Anno IX, № 6, 1930.

Hecht, O. Experimentelle Beitrage zur Biologie der Stechmiicken, IV. Blutver-
dauung und Eireifung bei den Anopheles maculipennis-Rassen im Sommer.
Arch. f. Sch. und Tropenhyg., Bd. 37, № 5, 1933.

Hinman, H. The role of bacteria in the nutrition of mosquito larvae. The
growth-stinerelating factor. Americ. Journ. of Hygiene, vol. 18, № 1, 1933.

Hinman, H. A study of the food of mosquito larvae. Amer. Journ. of Hyg.,
vol. XII, № 1, 1930 (литература).

J a m e s, S. P. Some general results of a study of induced malaria in England.
Transact, of R. Soc. of Tropic. Medic, and Hygiene, vol. XXIV, 1931.

К a d 1 e t z, N. A. und К u s m i n a, L. A. Experimentelle Studien uber den
Saugprozess bei Anopheles mittels einer zwangsweisen Methode. Arch.
Sch. Tropenhyg., Bd. 33, 1929.

Martini, E., Missir oli, A. und Hackett, L. N. Versuche zum Rassen-
problem des Anopheles maculipennis. Arch. Sch. Tropenhyg., Bd. 35,
1931.

Martini, E. Ueber Anopheles-Zuehl mit einigen /dnopAeZes-Beobachtungen,
Cbl. Bakt. Parasitol. und Infectionskr. Origin., Bd. 94, № 7—8, 1925.

M i s s i г о 1 i, A., Hackett L. W. e M a r t i n i E. Le razze di Anopheles ma-
culipennis e loro importanza nella distribuzione della malaria in alcuno
regioni, d’Europa. Rivista di Malariologia. Anno XII, № 1, 1633.

Rudolfs, W. Observations on the relations between atmospheric Conditions
and the behavior of Mosquitoes. New Jers.;Agric. Exper. Stat. Bull., 388,
1923.

S e n i о r-W h i t e, R. Physical factors in mosquito ecology. Bull. Entomol.
Research. London, 1926, vol. 16, № 3.1

1 Эта работа важна для изучения экологии комаров. Она произ-
ведена на Цейлоне с применением новейшей методики. Реакция среды водо-
емов характеризовалась определением концентрации водородных ионов (pH).
Установлены пределы колебания pH для 47 видов комаров. Концентрация
растворов солей определялась по электропроводности данного образца воды
(X 10б) опять-таки применительно к отдельным видам комаров. Далее выясни-
лось количество растворенного кислорода в миллиграммах на 1 ведро воды.
Особое внимание обращено на фауну водорослей водоемов и на питание
личинок комаров. Концентрация водородных ионов определялась в разных
отделах кишечника личинок. Отдельная глава посвящена изучению причин
смертности личинок комаров (влияние Saprolegnia, серных бактерий и др.).
S e n i о r-W h i t e, R. Algae and the food of Anopheles larvae. Ind. Journ. Med
Res., XV, 4, 1928.

S e n io r-W h i t e. Physical Factors in mosquito ecology Там же, XVI, № 1
1928.

Speer, A. J. Compendium of the parasites of mosquitoes {Culicidae), Hygien.
Laborat., Bull. № 146. Washington, 1927.

Swellengrebel, N. H. On the influence of the wind in the spread of
Anopheles maculipennis. Amer. Journ. of Hygiene, vol. X, № 2, 1929.

S w e 11 e n g r e b el, N. H. La dissociation des fonctions sexuelles et nutritives
(dissociation gono-trophique) d’Anopheles maculipennis comme cause du
paludisme dans les Pays-Bas et ses rapports avec ,,1’infection domici-
liaire“. Annal. Inst. Pasteur. 1929, vol. XLIII.

Swellengrebel, de BucketSchoute. On Anophelisme without malaria
around Amsterdam. Proceed. Roy. Acad, of Scienc., Sect., 1927—1928,
vol. 30, № 1, vol. 31, № 4—5.

Van T h i e 1, P. La nourriture des larves de 1*Anopheles maculipennis en rapport
avec le probleme de 1’existence de la variete atroparvus. Bull. Soc.
Patholog. Exot., XXI, № 7, 1928.

4X5*

'Целый ряд водоемов обследовался периодически круглый год на NHg,
С X Ю6, О2 mg 0/0, pH; данные нанесены на кривые, где отмечено также коли-
чество осадков и время нахождения в данном водоеме тех или других видов
комаров и водорослей. В результате получается полная и весьма наглядная
экологическая характеристика водоема в связи с его комариным населением.
Список литературы из 56 №.
ПОСЛЕСЛОВИЕ

В порядке развития и продолжения работ Малярийной ко-
миссии при Зоологическом Институте Академии Наук СССР
был предпринят ряд изданий, которые найдут себе широкое
применение в противомалярийной работе. Так, кроме предла-
гаемого переиздания „методов изучения комаров", сдан в произ-
водство том Фауны комаров сем. Culicidae СССР А. А. Шта-
кельберга, являющийся расширенным и переработанным изда-
нием его уже давно разошедшегося определителя комаров.
Готовятся к печати обширный определитель личинок комаров
А. С. Мончадским и библиография дореволюционной и совет-
ской литературы (с аннотациями) по эпидемиологии и энтомо-
логии малярии (Н. С. Штакельберг, ред. Е. Н. Павловский). На-
конец заканчивается составление карты географического рас-
пространения малярийных комаров СССР (Л. Буракова, А. Гу-
цевич, ред. Е. Н. Павловский). Эта последняя работа должна
охватить все существующие материалы для придания ей наи-
большей полноты. Между тем, при нанесении на карту имею-
щихся данных обнаруживаются значительные по размерам
пустые места, которые отнюдь не свидетельствуют о действи-
тельном отсутствии анофелес. Дело в недостатке сведений из
таких мест (особенно С. часть СССР, Сибирь, Белоруссия и др.).

В связи с этим, опираясь на постановление последнего ма-
лярийного съезда в Москве, Отдел паразитологии Зоологиче-
ского Института Академии Наук СССР обращается ко всем
малярийным учреждениям и работникам с просьбой присылать
ему сборы комаров (анофелес) из разных мест с указанием
необходимых дат, а также копии рукописных данных о распро-
странении комаров в зоне деятельности соответствующего
учреждения и копии карт, если таковые составлены. Все эти
материалы будут использованы с точным указанием источника
их получения.