Исследование витаминных добавок и биологически активных добавок (БАД) на кроликах - Райкова Л.Н.

Author: Райкова Л.Н.

Tags: медицина биология биохимия фармакология ветеринария санитария

Year: 2023

Similar

Text

МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА РФ
Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего
образования «Московская государственная академия ветеринарной медицины и
биотехнологии – МВА имени К.И. Скрябина»
Факультет ветеринарной медицины

ВКР

Лист 1/132

На правах рукописи

ВЫПУСКНАЯ КВАЛИФИКАЦИОННАЯ
РАБОТА

«Исследование витаминных добавок и биологически активных добавок
(БАД) на кроликах»
Выполнила студентка 3 курса
Направление подготовки 36.04.01 (уровень магистратура)
«Ветеринарно-санитарная экспертиза»
Райкова Людмила Николаевна

Научный руководитель:
кандидат биологических наук,
доцент кафедры паразитологии и
ветеринарно-санитарной экспертизы
Рецензенты:
Профессор кафедры зоогигиены и
птицеводства им. А.К. Даниловой,
д.в.н.
Руководитель заместителя по науке
ВНИИ ГИС, д.в.н., профессор

МОСКВА 2023

Бачинская В.М.

Смоленский В.И.
Архипов И.А.

ВКР

Лист 2/132

ОГЛАВЛЕНИЕ
ВВЕДЕНИЕ……………………………………………………………………
1 ЛИТЕРАТУРНЫЙ ОБЗОР…………………………………………………
1.1 Биологические и физиологические особенности кроликов………
1.2 Основные виды кормов для кроликов. Потребность кроликов в
питательных веществах………………………………………………………
1.3 Гидролизаты белка и их роль в животноводстве………………….
1.4 Химический состав, пищевая и биологическая ценность мяса
кроликов……………………………………………………………………….
1.5 Характеристика кормовой добавки Нитамин и её применение в
ветеринарной практике……………………………………………………….
1.6 Влияние рационов с добавками марганца на показатели роста,
биохимию крови, метаболизм азота и развитие скелета кроликов………..
1.6.1 Анализ рациона, образцов кала и мочи…………………………..
1.6.1.1 Показатели роста………………………………………………...
2 МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ…………………………
2.1 Опытные животные и схемы опытов………………………………
2.2 Определение физиологических, весовых и гематологических
показателей кроликов………………………………………………………...
2.3 Предубойный осмотр кроликов…………………………………….
2.4 Методы ветеринарно-санитарной экспертизы мяса кроликов…...
2.5 Методы органолептической оценки и определение
морфологического состава мяса кроликов………………………………….
2.6 Определение аминокислотного состава мяса кроликов…………..
2.7 Методика гистологического исследования………………………..
3 ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТЬ………………………………………..
3.1 Описание эксперимента……………………………………………..
3.2 Влияние добавления питьевой лекарственной добавки
«НиТамин» на живую массу кроликов……………………………………...
3.3 Ветеринарно-санитарная экспертиза мяса кроликов……………...
3.4 Гистологическое исследование мышц, печени, сердца и почек
кроликов……………………………………………………………………….
3.5 Гематологические исследования крови кроликов………………...
3.6 Аминокислотный и химический состав мяса кроликов…………..
ЗАКЛЮЧЕНИЕ……………………………………………………………….
СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННЫХ ИСТОЧНИКОВ…………………………

3
6
6
14
30
36
43
45
50
50
66
66
67
69
70
71
72
72
75
75
81
84
93
102
106
111
113

ВКР

Лист 3/132

ВВЕДЕНИЕ
Актуальность дипломной работы. В настоящее время на территории
Российской Федерации активно развивается отрасль кролиководства, что
подтверждает увеличение производства мяса кроликов. В связи с данным
обстоятельством кролиководству уделяется пристальное внимание, так как
кролиководство является одним из основных источников получения мяса для
населения.
Увеличение производства мяса кроликов связано с растущим спросом на
данный вид мяса. Высокий спрос на мясо кроликов связан с тем, что мясо
кролика является диетическим, восстанавливает иммунитет, не содержит
холестерина, обладает высокими питательными свойствами, содержит большое
количество витаминов и минеральных веществ. На данный момент мясо
кроликов в основном производят частные фермерские хозяйства. По этой
причине рассматривается возможность открытия крупных предприятий с целью
удовлетворения высокого спроса населения на данный вид мяса. Создание и
поддержание оптимальных условий для быстрого роста и последующего
размножения кроликов является весьма сложной задачей. При этом, необходимо
осуществлять строгий контроль ни только за условиями содержания кроликов,
но и за качественным и безопасным питанием кроликов, которое является
наиболее важным фактором при производстве мяса кроликов.
С целью осуществления качественного кормления кроликов и, как
следствие, увеличения продуктивности кроликов необходимо подобрать
оптимальное количество корма и воды, которые послужат дальнейшей основой
для безопасного и быстрого набора веса животных. Для откорма кроликов чаще
всего используют комбикорм, содержащий в себе необходимые для роста и
развития витамины, минералы и полезные вещества. Следует учитывать, что

МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА РФ

ВКР

Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего
образования «Московская государственная академия ветеринарной медицины и
биотехнологии – МВА имени К.И. Скрябина»
Факультет ветеринарной медицины

Лист 4/132

использование комбикорма в повседневном рационе кроликов не может
существенно

увеличить

скорость

набора

живого

веса.

Учитывая

вышеизложенное было предложено использовать питательные добавки, которые
являются безопасными для организма животных и которые способны сократить
время набора веса кроликов и увеличить содержание витаминов и минералов в
мясе. В качестве наиболее эффективных видов питательных добавок используют
лекарственные

питьевые

добавки,

удовлетворяющие

необходимым

потребностям.
На данный момент среди доступной литературы не было обнаружено
сведений о влиянии лекарственной питьевой добавки «НиТамин» и о её влиянии
на организм кроликов, а также на качественные и ветеринарно-санитарные
показатели мяса кроликов.
В

данной

научно-исследовательской

работе

качестве

объекта

исследования выступает молодняк кроликов смеси пород Советской шиншиллы
и Новозеландской белой. В качестве предметов исследования выступают: живой
вес молодняка кроликов, мясо кроликов, внутренние органы и мышцы кроликов,
а также кровь кроликов.
Цель дипломной работы. Исследовать влияние лекарственной питьевой
добавки «НиТамин» на организм кроликов и изучить полученные результаты для
получения научно-обоснованной ветеринарно-санитарной оценки продуктов
убоя.
Задачи исследования. С целью получения объективных результатов
исследования были поставлены следующие задачи:
1. исследовать влияние лекарственной питьевой добавки «НиТамин» на
набор живой массы молодняка кроликов;
2. изучить органолептические показатели и морфологический состав мяса
кроликов;

ВКР

Лист 5/132

3. провести гистологическое исследование мышц, печени, сердца и почек
кроликов;
4. провести гематологические исследования крови кроликов;
5. определить аминокислотный и химический состав мяса кроликов.
Научная новизна. Установлено влияние лекарственной питьевой добавки
«НиТамин» на живую массу кроликов, на качество получаемого мяса, на
гематологические показатели, на внутренние органы и мышцы кроликов.
По

окончании

проведения

комплекса

органолептических,

морфологических, химических, микробиологических и гистоморфологических
результатов исследований была дана ветеринарно-санитарная оценка продуктов
убоя кроликов и безопасности использования лекарственной питьевой добавки
«НиТамин» в основном рационе молодняка кроликов.
Структура и объем дипломной работы. Дипломная работа состоит из
введения, литературного обзора, экспериментальной части, заключения, списка
использованных источников. Материалы дипломной работы изложены на 132
страницах компьютерного текста, содержит 25 таблиц и 35 рисунков. Список
использованных источников включает 191 источник, в том числе 79
инностранных.

ВКР

Лист 6/132

1 ЛИТЕРАТУРНЫЙ ОБЗОР
1.1 Биологические и физиологические особенности кроликов
Кроликов относят к отряду зайцеобразных (Lagomorpha Brandt), к
семейству зайцевых. Принадлежность кроликов к классу млекопитающих
(Mammalia) определяет характерные признаки и закономерности, присущие его
представителям. Следует отметить, что существуют видовые особенности,
выражающиеся в строении органов и систем организма [1].
Тело дикого кролика может достигать длинны 36 – 44 см, при этом длина
хвоста составляет 4 – 7 см. Масса тела дикого кролика составляет не более 3 кг.
Задние конечности длинные, стопы лап густо покрыты волосами. Когти
кроликов крепкие и длинные. Мягкий и густой волосяной покров имеет
буровато-серую окраску, более светлого оттенка на брюхе. Хвост белого цвета
снизу и буровато-черного сверху. Череп немассивный, с удлиненным лицевым
отделом. Надглазничные отростки узкие и длинные. Орбиты округлые, скуловые
дуги тонкие, гребни скуловых отростков верхнечелюстных костей развиты
слабо. Носовые кости длинные.
Дикие кролики предпочитают жить колониями, для обитания на
определенной территории кролики роют норы. Следует отметить, что дикие
кролики также могут обитать в группах, которые состоят из 2 – 3 кроликов.
Также стоит обратить внимание на то, что нора кроликов имеет сложное
строение. Норы кроликов состоят из гнездовой камеры и нескольких ходов к
другим камерам. В основном кролики питаются на прилегающих участках.
Кролики не отходят далеко от нор и ведут главным образом ночной образ жизни
[2].

ВКР

Лист 7/132

Следует обратить внимание на характерные признаки, присущие
кроликам: ранее половое созревание (в 4 – 5 месяцев), высокая плодовитость (7
– 8 крольчат за один окрол), малый период сукрольности (в среднем 30 суток),
совмещение лактации с беременностью. Половая охота крольчих начинается
сразу после окрола, в этом случае осуществляется совмещение новой
сукрольности с лактацией. Данная способность обеспечивает так называемые
уплотненные окролы, тем самым увеличивая число новорожденных крольчат.
Для повышения количества новорожденных крольчат необходимо создать
максимально благоприятные условия содержания, тщательный уход и
соблюдать полнорационное кормление крольчих, так как в организме крольчих
усиливается обменный процесс и резко увеличивает нагрузка. При правильном
соблюдении мер содержания и ухода, в год в среднем можно получить7 окролов
(от 55 до 65 крольчат) от одной крольчихи [3].
Беременность диких крольчих длится 28 – 32 дня. Крольчиха в год может
принести от 12 до 35 (иногда до 45) крольчат. Крольчата рождаются голыми,
слепыми и совершенно беспомощными. Примерный вес крольчат составляет
больше 30 г. За год крольчиха в среднем может вырасти 10 – 12 крольчат. Такой
низкий показатель связан с высоким уровнем гибели новорожденных крольчат
от болезней и хищников. После рождения крольчат, крольчиха живет в норе на
подстилке их травы и собственного пуха. Первое время крольчиха почти не
покидает гнездо. Крольчиха старается согреть крольчат и кормит их лежа
молоком [4].
Одну из важных ролей играет молоко крольчихи, так как в период
кормления молоком крольчата получают полезные вещества, от которых зависит
их дальнейшее развитие. Лактация длится около 40 дней, в общей сложности ха
данный период выделяется до 5 литров молока. У кроличьего молока богатый

ВКР

Лист 8/132

химический состав: белок – 13 %, жир – 14,5 %, зола – 2,6 %. В зависимости от
периода (сезонность, длительность лактации) состав молока может меняться [5].
Кролики являются самыми плодовитыми и скороспелыми животными.
Молоко крольчих по содержанию белков и жира превосходит молоко других
видов животных (белок на 100 мл молока: кролик – 13 %, коза – 4 %, корова –
3,5 %). Данный факт является одним из ключевых факторов скороспелости
кроликов [6].
Максимальный прирост живой массы кроликов наблюдается до 4 месяцев,
таким образом, прирост мясных пород кроликов составляет 30 – 40 гр. в сутки,
после 4 месяцев прирост живой массы замедляется. Данная особенность
наблюдается у кроликов Новозеландской породы [7].
У кроликов имеет интересная физиологическая особенность, при
неблагоприятных условиях зародыши крольчат растворяются в матке крольчихи,
далее питательные вещества, образующиеся в результате растворения,
насыщают организм крольчихи. При благоприятных условиях возрастает
интенсивность роста и размножения [8, 9].
Огромное значение в систематике млекопитающих имеет строение зубов.
Формула, выражающая зубное строение кроликов представлена в уравнении (1):
2

𝑙

𝑖 ;𝑐 ;𝑝 ;𝑚 ,

(1)

где i – резцы;
c – клыки;
p – ложнокоренные;
m – коренные;
В виде дроби представлено число соответствующих зубов на одной
стороне верхней (числитель) и нижней (знаменатель) челюстей.

ВКР

Лист 9/132

Строение зубов кроликов похоже на строение зубов грызунов из-за их
расположения в ротовой полости. Всего у кроликов 28 постоянных зубов. У
новорожденного

кролика

молочных

зубов.

Среди

отличительных

особенностей следует выделить наличие у кроликов двух пар резцов. Для
кроликов характерно большое пространство, отделяющее коренные зубы от
резцов. Резцы кроликов длинные, с их помощью они разгрызают корм, затем
перетирают его коренными зубами, корм обильно смачивается слюной и
попадает в глотку, далее в пищевод и желудок. У резцов кроликов есть свойство
самозатачиваться. Зубы кроликов полностью покрыты эмалью. Резцы кролика
обладают особенностью непрерывно расти в течение всей жизни животного [10].
Желудок кроликов однокамерный, его объем в среднем составляет 190 –
210 мл, выделяемый желудочный сок обладает высокой кислотностью и
переваривающей силой [11].
Длина кишечника кроликов составляет 0,3 – 0,5 м. За переваривание
белков, жиров и углеводов, содержащихся в кормах, отвечает тонкий отдел
кишечника. За процесс всасывания воды и питательных веществ отвечает
толстый отдел кишечника. В толстом отделе кишечника выделяются ферменты,
воздействие которых приводит к расщеплению, перевариванию, бродильным
процессам клетчатки и формирования кала [12].
Одной из особенностей кроликов является капрография – поедание
собственного, мягкого кала, который имеет насыщенный химический состав. В
нем содержатся витамины группы B, аминокислоты, азотистые вещества, влага
и микроорганизмы. В момент поедания кала, организм кроликов насыщается
витаминами и белками [13, 14].
Одной из самых важных биологических особенностей кроликов является
течение патологических процессов, таких как теплопродукция, деятельность
сердечно-сосудистой системы, газообмен и др. [6].

ВКР

Лист 10/132

Корм, в котором содержатся питательные вещества, при попадании в
организм расщепляется до жиров и углеводов, вследствие чего образуется
энергия. Большая часть вырабатываемой в организме энергии затрачивается на
синтез органических веществ и подержание его функциональности (клетки,
органы, терморегуляция). В условиях пониженной температуры у кроликов
затрачивается дополнительная энергия на согревание. При этом кроликам
необходимо потреблять корма с более питательными веществами [15, 16].
Проводить измерение температуры кроликов принято ректально. В
пределах физиологической нормы температура тела кроликов составляет: 35,8 –
39,5 °C. Разброс температуры тела кроликов часто зависит от температуры
воздуха окружающей среды. Чем ниже температура окружающей среды, тем
ниже температура тела кроликов. Температура тела кроликов при нормальных
условиях составляет 39 °C [7, 17].
Частота сокращений сердечной мышцы у кроликов находится в пределах
120 – 220 ударов в минуту. Частоту сокращений сердечной мышцы определяется
с помощью метода пальпации боковых стенок грудной клетки в области 4 – 6
ребра. Число дыхательных движений у кроликов при нормальных условиях
составляет 50 – 60 в минуту. Однако при воздействии различных стрессовых
факторов, которые могут быть вызваны в следствие повышения температуры
воздуха, число дыхательных движений может вырасти до 280. У кроликов в
сутки средний показатель выделения мочи составляет 200 – 420 мл. Необходимо
помнить, что продуктивность поголовья зависит от внешних условий его
содержания, прежде всего необходимо обращать внимание на загрязнении
окружающего воздуха и повышения содержания в нем сероводорода,
углекислоты и других газов [18].
Для содержания кроликов максимально комфортными климатическими
условиями является температура воздуха в пределах 15 – 22 °C. Следует

ВКР

Лист 11/132

обратить внимание на то, что физиологические особенности кроликов позволяют
им переносить температуру воздуха от -30 °C до 30 °C [19].
В

современном

кролиководстве

для

наиболее

продуктивного

кролиководства в крольчатниках создается оптимальный микроклимат, в
котором

учитываются

такие

показатели

как:

температура,

влажность,

направление, скорость движения и состав воздуха, продолжительность светового
дня, освещенность помещения и др. [1, 20].
При

создании

хороших

гигиенических

условий,

обеспечении

полноценного кормления и правильного использования племенного молодняка
возможно

сохранение

передача

потомству

высоких

племенных

продуктивных качеств и крепкого здоровья [21, 22]. Также необходимо
учитывать

тот

факт,

что

кролики

по

сравнению

другими

сельскохозяйственными животными более пугливы, особенно кролики боятся
внезапных

громких

звуков.

Пренебрежение

нормальными

условиями

содержания кроликов влечет повышение температуры тела, учащение пульса и
частоты дыхания, снижение активности желудочно-кишечного тракта, угасание
полового рефлекса [23].
Соблюдение

зоогигиенических

требований

учет

биологических

особенностей кроликов при их разведении и содержании является основной
профилактикой болезней и получения качественной продукции [24, 25].
В мире разводят около 70 пород и цветовых вариаций кроликов, которые
различаются по направлению продуктивности, а также по величине, строению,
длине волосяного покрова [26].
На данный момент одной из наиболее распространенных мясных пород
кроликов на территории России является Новозеландская белая (рисунки 1 - 2).
У кроликов данной породы красные глаза, густой, уравненный и эластичный

ВКР

Лист 12/132

волосяной покров чистого белого цвета с тонкой подпушью, без примеси волос
любого оттенка или кремового налета [27, 28].

Рисунок 1 – Фотография кролика Новозеландской породы

Рисунок 2 – Фотография кролика Новозеландской породы

ВКР

Лист 13/132

У кроликов Новозеландской породы крепкая конституция, тонкий костяк,
туловище короткое, сбитое, цилиндрической формы. Голова небольшая, с
короткими, тонкими, прямостоячими ушами; грудь глубокая и широкая; спина
прямая и короткая переходящая в широкую крестцово-поясничную область с
широким округлым крупом. На всех частях тела хорошо развита мускулатура, в
том числе на плечах и боках. Конечности прямые, крепкие, хорошо опущены с
развитыми мышцами [29].
Крольчихи плодовиты, молочны и имеют спокойный нрав, приносят и
выращивают до отъема от 7 до 12 крольчат. В породе сочетаются
обмускулитость и скороспелость с высокой энергией роста в раннем возрасте.
Живая масса новорожденных крольчат составляет 45 г., живая масса
трехмесячных крольчат может достигать 2,7 – 3 кг [8].
Убойный выход полновозрастных кроликов – 56 – 58 %, а выход мяса из
тушки – 77,5 %. Тушка плотная, сбитая, с отлично развитой мускулатурой.
Мышцы – без лишних жировых отложений [30].
Средние показатели полновозрастных кроликов по породе: живая масса
самцов – 4,5 кг (длина туловища 47,5 см), самок – 5 кг (длина туловища 49,5 см).
Часто кроликов данной породы выращивают для получения бройлеров.
Для этого крольчат содержат под самкой 60 суток, интенсивно кормят и проводят
убой на мясо при живой массе 1,8 – 2,2 кг [27, 31].
В результате длительной селекции по приспособленности к содержанию в
закрытых крольчатниках, форме и оброслости конечностей, а также благодаря
спокойному поведению кролики этой породы хорошо приспособлены к
содержанию в батарейных клетках на сетчатых полах и мало травмируют лапы
о сетку. Данная порода требовательна к условиям кормления [32].

ВКР

Лист 14/132

1.2 Основные виды кормов для кроликов. Потребность кроликов в питательных
веществах
В зависимости от типа корма, который потребляют кролики, зависят такие
важные факторы как нормальная деятельность организма, его рост и развитие,
устойчивость к заболеваниям.
В кормах кроликов содержатся необходимые им питательные вещества:
белки (протеин), углеводы, жиры, минеральные соли, витамины и вода. В кормах
питательные вещества содержатся в разных количествах. Отсутствие одного из
элементов питательных веществ может привести к задержке роста кролика, а
также замедлить его развитие. Следует обратить внимание на тот факт, что ни во
всех видах кормов кроликов содержаться необходимые кроликам питательные
вещества. Учитывая этот факт, для кроликов необходимо приготовить запас
различных кормов [33, 34].
С целью повышения продуктивности кроликов необходимо обеспечить
кроликов полноценным кормлением. При составлении рационов кроликов
необходимо учитывать физиологические особенности кроликов, потребность в
энергии и питательных веществах, а также витаминный и минеральный состав
кормов [35, 36].
К зеленым кормам относят разнообразные травы и свежие ветки деревьев.
Сочными

кормами

принято

считать

силос

хорошего

качества,

корнеклубнеплоды, капуста. К грубым кормам относят разнообразное сено и
сухие листья деревьев. Концентрированными кормами являются зерна бобовых
и злаковых культур, отруби, обезжиренные жмыхи, пшеничные зародыши,
желуди, отходы пищевой промышленности. К минеральным кормам относят
поваренную соль, мел и костную муку. Кормами животного происхождения

ВКР

Лист 15/132

являются мясная, мясокостная, рыбная, кровяная мука, молоко, обрат,
сыворотка, рыбий жир, коконы тутового шелкопряда [37].
В зависимости от физиологических групп различается потребность
кроликов в энергии и питательных веществах. Потребность кроликов в
питательных веществах также зависит от роста и развития молодняка,
лактационного периода и сроков сукрольности самок [38].
Существует два типа кормления кроликов: сухой и смешанный. При сухом
типе кормления в рационе кроликов преобладает сено и комбикорм в виде
россыпи и гранул. В данном типе кормления следует учитывать, что у кроликов
всегда должна быть вода.
При смешанном типе кормления рацион кроликов состоит, в основном, из
зеленых и сочных кормов, концентратов или кобикормов в виде россыпи или в
виде гранул [39].
При кормлении кроликов следует обращать внимание на переваривание и
усвоение корма, а также на содержание питательных веществ, которые зависят
от выбранного типа кормления кроликов.
При выборе корма, богатого питательными веществами, следует обратить
внимание на зеленую траву. Свежескошенная провяленная трава богата
питательными веществами и является любимой пищей кроликов. Зеленый корм
повышает оплодотворяемость, плодовитость и молочность крольчих, половую
активность самцов [40].
Также к типу зеленого корма относят сорные травы: полынь, дикая рябина,
крапива, и горькие, пахучие травы: мята, шалфей, тмин, укроп и другие.
Несмотря на то, что травы богаты питательными веществами не следует давать
кроликам траву, влажную от росы и дождя, и скошенную в болотистых местах,
так как такая трава может вызывать опасные желудочные заболевания.
К наиболее полезным и питательным травам относят:

ВКР

Лист 16/132

- одуванчик и люцерна (способствуют образованию молока у кормящих
крольчих);
- полынь, дикая рябина, чернобыльник и подорожник (предупреждают
желудочные заболевания);
- петрушка, перец и сельдерей (пробуждают аппетит, повышают половую
потенцию);
- мята, тмин, можжевельник, укроп (молокогонное средство), шалфей
(ароматические травы, улучшающие вкус кроличьего мяса) [41].
С приближением зимы кроликам можно давать в рацион сено и овощи.
Грубые корма способствуют пищеварению и должны составлять не менее 60 %
рациона.
Ветки березы, осины, тополя, ивы, вербы, бука, ясеня, клена также
являются полезными для улучшения пищеварения.
Для того, чтобы корма лучше усваивались в организме кроликов
необходимо добавлять в рацион питания сочные корма (корнеклубнеплоды и
бахчевые). Данный вид корма отлично усваивается организмом кроликов и
приводит к увеличению молочности крольчих, более быстрому росту и развитию
молодняка.
В качестве концентрированных кормов используют комбикорма в виде
россыпи или гранул, приготовленные исключительно для кроликов.
Для разнообразия рациона кроликов используют зерновые корма, такие
как ячмень, овес, пшеница, кукуруза, горох и бобовые [42].
По возможности вода должна быть у кроликов всегда, особенно при сухом
типе кормления. Потребность кроликов в воде зависит от их возраста, живой
массы, физиологического состояния, состава корма, а также от температуры
окружающей среды. При недостаточном потреблении кроликами воды

ВКР

Лист 17/132

происходит снижение продуктивности и повышение расходов кормов на
единицу прироста живой массы.
При всем многообразии кормов необходимо учитывать на сколько хорошо
корм переваривается и усваивается в организме кроликов. Для оценки
переваримости кормов используется коэффициент переваримости, который
выражается в процентном отношении переваренных питательных веществ к
общему количеству питательных веществ. На переваримость кормов влияют
структура рациона, режим кормления кроликов, технология приготовления
корма и возраст животного [43, 44].
Организм кроликов постоянно нуждается в энергии. Это связано с тем, что
для выполнения различных функций организма: поддержание температуры тела,
обменных процессов и т.д., необходимо большое количество энергии.
Питательные вещества, содержащиеся в кормах, являются источником энергии,
которая

необходима

для

жизнедеятельности

кроликов.

Расщепление

питательных веществ происходит под воздействием ферментов до более
простых соединений. Данный процесс сопровождается огромным выделением
энергии [37].
Основным фактором, который определяет продуктивность кроликов,
является обеспеченность организма кроликов энергией, которая, в свою очередь,
зависит от скорости обмена веществ, возраста животного, физиологического
состояния, а также от соблюдения микроклимата в помещениях и от погодных
условий [43].
Следует обратить внимание и на то, что с кишечными газами и мочой
расходуются питательные вещества и энергия рациона. Данные потери являются
несущественными и составляют около 4,6 %, а это значит, что количество
энергии, потребляемой организмом кроликов, составляет 95,4 %. В связи с

ВКР

Лист 18/132

расходом энергии необходимо учитывать данный расход при балансировании
рациона кроликов [45].
В зависимости от разных физиологических групп различается и
потребность в энергии. Взрослым кроликам в не случной период необходимо
энергии 0,3 – 0,37 МДж, а в случной период – 0,37 – 0,42 МДж. Молодняку от
45- до 90-дневного возраста необходимо 0,75-0,94 МДж, а с 90 до 165 дней – 0,55
– 0,73 МДж обменной энергии [46. 47].
Исследования показали, что организму кроликов необходимо потреблять
энергию для органического синтеза, которая обеспечивается углеводами,
жирами, а также белками [38, 48].
Зарубежные

ученые

доказали,

что

растущим

кроликам

пород

Новозеландская белая или Калифорнийская ежедневно необходимо усваивать от
220 до 240 ккал на 1 кг метаболического веса [49, 50].
Для лактирующих самок в среднем необходимо 300 – 360 ккал энергии на
1 кг метаболического веса, в связи с этим трудно установить строгое требование
к потреблению энергии. Также необходимо обратить внимание на то, что
концентрированное энергетическое питание должно содержать все необходимые
питательные вещества [37].
Регулировать потребление энергии возможно в умеренном климате, пока
переменные в содержании энергии связаны с присутствием хорошо усваиваемых
углеводов [51, 52].
Следует отметить, что при высоких температурах (от 28 °C до 32 °C)
регулировать потребление энергии невозможно и кролики могут легко
потреблять больше из-за более плотного питания, а также из-за отсутствия
дополнительного тепла от потребления липидов [53, 54, 55].
Организму кроликов необходимы жирные кислоты (линолевая кислота),
которая является источником незаменимых жиров. Такие жиры могут

ВКР

Лист 19/132

поставляться в организм кроликов благодаря потреблению традиционного
рациона питания. Следует отметить, что при включении большего количества
жира в рацион, повышается концентрация энергии, поскольку жиры
обеспечивают примерно в два раза столько же энергии, сколько углеводы для
того же веса [56, 57].
Одним из незаменимых компонентов в корме является протеин. Протеин
необходим организму животных как материал для обновления тканей. Также
протеин служит «строительным материалом» для клеток. У кроликов есть
потребность в переваримом протеине, необходимого для молодняка на
начальном откорме, для самцов в случной период и крольчих на разных стадиях
физиологического развития. Потребность в переваримом протеине в рационе
самцов в случной период должна быть 15 г, в период покоя – 11 г на 100 г
кормовых единиц [49, 58, 59].
Известно, что в корма для кроликов на 100 г кормовых единиц должно
содержаться 16-18 г белка [60, 3].
Молодняк кроликов больше всего нуждается в переваримом протеине,
который необходим для роста и развития организма. Период роста и развития
организма кроликов происходит в период от 3 до 4 месяцев. При недостатке
протеина в организме кроликов наблюдается снижение продуктивности,
скорости роста, при этом происходит увеличение расхода корма и состояние
здоровья кроликов ухудшается [61, 62].
При выращивании кроликов для мяса в промышленных масштабах в
кормах должно содержаться 15-18 г белка на 100 г корма или 18-22%. При
пересчете на обменную энергию количество белка на 100 г корма составляет 5-6
г [63, 64, 62].

ВКР

Лист 20/132

Учёные утверждают, что для кроликов мясных пород в корме должно
содержаться 12 % - 14 % клетчатки, а содержание протеина должно составлять
17 % [65].
У таких показателей как живая масса тела, переваримость белка,
эффективность убоя и экономичность рациона были самые высокие значения
при диетическом уровне сырого протеина равным 16 %. При этом средний
прирост, коэффициент конверсии корма достигали самых высоких значений,
когда уровень белка сырой пищи составлял 15,3 – 17,9 % [66].
При уровне сырого протеина равного 16,5 %, наблюдался прирост массы
тела и увеличение потребления корма.
При увеличении содержания белка на 2,1 г в рационе крольчих,
наблюдается увеличение коэффициента переваримости на 7,6 %. Следует
отметить, что при увеличении содержания белка на 5,5 г можно наблюдать
увеличение прироста живой массы и коэффициента переваримости до 10,4 %. На
откорме молодняка уровень сырого протеина в корме должен быть равен 15 % 16 %, для репродуктивных кроликов уровень протеина должен быть равен 17 18 %, а для лактирующих самок уровень протеина может увеличиваться до 21 %,
что способствует увеличению молочной продуктивности [67, 68].
При разработке продуктивных и экономически эффективных рационов для
домашних животных огромное значение играют азотное питание, требования к
содержанию белков и аминокислот в кормах. В последнее время был достигнут
ряд успехов в кормлении кроликов [69].
Ученые считают, что заменить истинные белки небелковым азотом
(мочевиной и аммониевыми солями) не является целесообразным в виду того,
что источники азота либо деградируют, либо слишком рано поглощаются
микроорганизмами в слепой кишке [70, 71, 72].

ВКР

Лист 21/132

Большую роль в составе рациона играют корма, обеспечивающие
протеиновое питание животных. Синтез белка в организме кроликов
невозможен, в следствие чего белок должен поступать только из кормов [73, 74].
Корм, содержащий 18 % протеина, можно использовать для откорма
молодняка без нанесения вреда организму, однако следует отметить, что
использовать данный сорт корма экономически не выгодно. При откорме
кроликов, относящихся к разным физиологическим группам, кормами,
предназначенными для откорма, может наблюдаться снижение продуктивности,
нарушение воспроизводительности и ожирение. Следует отметить, что при
понижении уровня протеина на 2-3 % в рационе лактирующих крольчих, у
крольчат может наблюдаться снижение живой массы на 100 г и более [73, 74, 75].
В организме кроликов при переваривании корма происходит расщепление
белков до аминокислот. Аминокислоты, поступающие в организм кроликов
посредством переваривания корма, являются «строительным материалом» для
всего организма. Кроликам в процессе роста необходим корм, содержащий около
десяти аминокислот [76, 77, 78].
Следует отметить, что наличие аминокислот в организме животных
является очень важным. Гемоглобин является основой для синтеза гистидина, а
с целью обновления белков в плазме крови необходимо наличие триптофана, а
лизин является основным элементом для синтеза тканевых белков. Для
образования мочи требуется аргинин, участвующий в образовании спермы и
инсулина.
Согласно научным исследованиям, метионин является важнейшим
элементом при жировом метаболизме. Метионин также участвует в образовании
волосяного покрова, однако в белковых кормах содержится недостаточное
количество метионина, в связи с этим в корм необходимо добавлять
синтетический метионин.

ВКР

Лист 22/132

Стоит отметить, что в кормах для кроликов следует обращать внимание на
содержание лизина, метионина, цистина и аргинина. Если в корме содержится 16
% протеина, тогда доля аминокислот метионина и цистина составляет 0,6 %. В
корме для молодняка, содержание лизина должно составлять 0,7 % - 1 %, а
аргинина 0,8 % - 0,9 %. При снижении, указанных выше показателей, происходит
снижение прироста живой массы молодняка. Также следует заметить, что такой
элемент как цистин можно заменить метионином [45].
Белковое питание характеризуется количеством перевариваемого белка на
1 кг сухого корма или на 100 г кормовых единиц, протеиновым и
энергопротеиновым отношение (соответствует 1:9 – 1:6), который находится в
пределах 140 – 170 г. На недостаточное количество протеина в кормах кроликов
может указывать более высокое значение энергопротеинового отношения, в то
время как более низкое значение энергопротеинового отношения указывает на
избыток протеина в рационе, что приводит к уменьшению продуктивности [79,
59, 65].
В группу биологически энергетических веществ входят сахар, крахмал,
органические

кислоты,

которые

являются

основным

«энергетическим

материалом» в составе кормов. К самым важным компонентам из группы
углеводов относят клетчатку, лигнин и целлюлоза. Также следует учесть, что
клетчатка

является

низко

перевариваемым

элементом.

Показатели

переваримости клетчатки составляют от 17 % до 25 %. В зеленых кормах
показатель переваримости колеблется от 40 % до 50 %. Регулирующим
элементом, который участвует в пищеварении, является клетчатка. Увеличение
содержания клетчатки в корме кроликов обуславливает повышение потребления
количества корма. Низкое содержание клетчатки в корме может вызвать
расстройство желудочно-кишечного тракта [80, 81, 82].

ВКР

Лист 23/132

Каждая физиологическая группа кроликов нуждается в оптимальном
уровне содержания клетчатки. Например, в кормах сукрольных крольчих
содержание клетчатки должно быть равно 15 % - 20 %. Такой уровень клетчатки
приемлем для кроликов в случной и не случной периоды. Лактирующим
крольчихам необходимо потреблять от 10 % до 16 % клетчатки, а растущему
молодняку необходимо потреблять от 12 % до 15 % клетчатки. Сухой тип
кормления

дает

возможность

скармливать

гранулированные

корма,

изготовленные по разным рецептам. но различающиеся по содержанию белка и
клетчатки [83].
При выращивании кроликов достаточно, чтобы в рационе кроликов
содержалось 13 % - 14 % сырой клетчатки. Для кроликов 20 – 40-дневного
возраста в корме должно содержаться 12-13 % крахмала, чтобы избежать
проблем с пищеварением, а для лактирующих крольчих рекомендуется более
низкое содержание клетчатки 10 % – 11 % [84].
Исследования указывают, что кролики переваривают корма намного хуже,
чем жвачные животные. Следует отметить, что для повышения уровня сырой
клетчатки и снижения энергетической питательности можно достичь путем
увеличения объема корма. Однако следует помнить, что небольшое содержание
клетчатки может привести к расстройству пищеварения. Нормальный показатель
содержания клетчатки в корме должно быть в пределах 10 – 20 % для растущего
молодняка и взрослых кроликов. В гранулированном корме содержание
клетчатки находится в пределах 13 – 17 %. Данное содержание клетчатки
является приемлимым для корма всех физиологических групп [85, 86].
По утверждениям ученых положительное влияние на работу кишечника и
рост кролика оказывает перевариваемая клетчатка. Перевариваемая клетчатка
имеет стимулирующее действие на развитие флоры слепой кишки у молодых
животных [58, 87].

ВКР

Лист 24/132

На основании научных исследований был сделан вывод, что от количества
и качества лигноцеллюлозы зависит здоровое пищеварение, особенно в период
отъема [79, 65].
Все растительные корма являются источниками углеводов. Следует
отметить, что крахмал находится в семенах, клубнях и плодах. Самое большое
количество крахмала содержится в кукурузе (70 %), а в картофеле содержится
около 20 % крахмала. Также следует обратить внимание на то, что источниками
сахара для животных являются сахарная свекла, морковь, арбуз и тыква. Много
клетчатки содержится в грубых кормах. Так, например, в соломе содержится
примерно 40 % клетчатки, а в сене 25 % - 35 %. В злаковых культурах содержание
клетчатки находится на низком уровне и составляет примерно 10 % [88, 89, 56].
Жиры, содержащие незаменимые жирные кислоты: арахидоновую,
линоленовую и линолевую, которые являются одним из важных источников
энергии. Так как жиры не могут самостоятельно синтезироваться в организме
кроликов, они должны поступать в организм через корма. Эти кислоты
участвуют в процессах жизнедеятельности животного и принимают участие в
переваривании пищи в кишечнике. Жирные кислоты способствуют всасыванию
пищи

жирорастворимых

витаминов,

также

обуславливают

функционирование кожи и волосяного покрова. В рационе кроликов должно
содержаться 2 – 3,5 г на 100 г кормовых единиц или 3 – 5 % сухого вещества, или
же в переводе на обменную энергию – 0,6 – 1 г [90].
Ученые считают, что необходимо контролировать содержание жира в
рационе растущего молодняка, так как молоко крольчих содержит высокий
процент жира 15 % - 18 % [91].
Ученые установили, что при содержании сырого жира менее 6 % в корме
растущего молодняка наблюдается отставание в развитии [74, 92].

ВКР

Лист 25/132

Учеными было установлено, что больше ненасыщенных жирных кислот
содержат растительные жиры, по сравнению с животными. Семена льна,
подсолнечника, сои, рапса, жмыхов являются кормами

растительного

происхождения, богатые жирами. Ученые отмечают, что больше всего жира
содержится в зерне, при этом меньше всего содержание жира в стеблях и листьях
растений. Для роста и развития кроликов в рационе должно содержаться много
энергии, в связи с этим кроликам необходимо давать корма с определенным
содержанием жира [93].
Также ученые отмечают, что кальций и фосфор играют важную роль в
организме кролика, а именно кальций и фосфор участвуют во всех
метаболических процессах. Кальций и фосфор в организм кроликов составляют
около 65 – 70 % от всех минеральных веществ. На формирование костяка у
животных и на усвоение минеральных веществ влияет наличие в организме
кальция и фосфора. В организме кроликов была определена взаимосвязь кальция
и фосфора. Соотношение кальция и фосфора, которое должно быть, как и в
костной ткани – 1,5 – 2:1 [94].
В зимний период очень важно обеспечить кроликов кальцием и фосфором.
Так, например, нарушение зародышевого развития у сукрольных самок связано
с недостатком кальция и фосфора. У самцов недостаток кальция и фосфора
отражается на качестве спермы, а у растущего молодняка проявляется в
замедлении роста. Потребность в минеральных веществах больше всего
испытывают лактирующие самки. Также стоит отметить, что в молоке крольчих
содержится в 2 раза больше минеральных веществ, чем в коровьем или козьем.
Подсосный период для крольчат особенно важен, так как они усваивают кальций
и фосфор из молока на 80 – 90 % [95, 96].

МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА РФ

ВКР

Лист 26/132

В метаболизме и процессе пищеварения огромную роль играет фосфор.
При недостатке такого минерального вещества, как фосфор, могут возникнуть
различные заболевания, такие как афосфороз, остеофиброз [22, 96].
Недостаток кальция, участвующего в процессе свертывания крови, может
являться

причиной

появления

ряда

тяжелых

заболеваний:

тимпанию,

остеомаляцию (размягчения костей) [97].
Содержащиеся в кормах натрий и хлор имеет огромное значение в
жизнедеятельности организма кроликов. Натрий и хлор участвуют в
метаболических процессах, поддерживают осмотическое давление в организме,
а также натрий и хлор являются составными элементами для клеток и тканей.
Недостаток в рационе кроликов поваренной соли может принести различные
последствия
последствиям

зависимости
недостатка

от

физиологических

поваренной

соли

групп.

Например,

можно

отнести

уменьшение молочности у лактирующих самок, что снижает эффективность
использования кормов. Поваренная соль также влияет на образование
волосяного покрова и формирование кондиции животных. Следует заметить, что
кролики способны употреблять корма с высоким содержанием соли [98].
Следует отметить, что в корме растущего молодняка кроликов должно
содержаться 0,5 г поваренной соли, а в корме половозрелых кроликов должно
содержаться от 1 до 1,5 г, у сукрольных кроликов в корме уровень поваренной
соли должен быть от 1,5 до 2 г. В организме кроликов также необходимо наличие
таких важных элементов как медь, железо, марганец, калий, сера, кобальт,
магний, йод и другие. Железо является одним из необходимых микроэлементов,
входящих в состав гемоглобина. Недостаток железа в организме может вызвать
анемию. В крапиве и рыбной муке содержится много железа, которое так
полезно для организма животных [12].

ВКР

Лист 27/132

Рядом ученых установлено, что низкое содержание железа в молоке
крольчих в конце подсосного периода может вызвать недостаток железа в крови
крольчат и, как следствие, анемию. У новорожденных крольчат «местом
хранения железа» является печень. С целью восстановления гемоглобина у
крольчат необходимо добавлять в рацион по 0,2 г меди и 2 мг железа каждый
день [99, 100].
В процессах тканевого дыхания и кровообращения участвует такой
важный микроэлемент как медь. Недостаток меди в организме кроликов может
вызвать такие негативные последствия как поражение кожи, задерживание роста
и

развитие

анемии.

Также

огромную

роль

функционировании

воспроизводительной способности кроликов играет марганец. При недостатке
марганца в организме молодняка кроликов может привести к деформированию
и замедлению роста костей. Источниками марганца являются зеленые листья
растений и пшеничные отруби. В синтезе витамина B12 важную роль играет
кобальт. Также кобальт участвует в процессах кроветворения и кобальт
оказывает влияние на пуховые качества у кроликов [101].
Данные различных исследований подтверждают, что в организме
обязательно должен присутствовать магний. Недостаток магния может привести
к повышению возбудимости, сопровождающейся нервными припадками и
снижением роста. Основным микроэлементом, который должен содержаться во
всех тканях, является калий, обеспечивающий рост животного и работу сердца.
Учеными доказано, что в гормоне щитовидной железы содержится йод. Для
нормального функционирования организма в корма следует добавлять
необходимые кроликам микроэлементы [12].
Витамины, входящие в состав ферментов, играют огромную роль в
процессе обмена веществ. Растущему молодняку, самкам во время лактации и в
период сукрольности очень необходимы витамины. Так, например, самцам

ВКР

Лист 28/132

необходимы витамины группы A, D, E и B12. Во время гиповитаминоза или
гипервитаминоза каждая группа витаминов оказывает негативное влияние на
организм и отражается в целом на продуктивности животных.
При недостатке в организме витамина A (ретинола) наблюдается снижение
жизнеспособности потомства и плодовитости самок. Также недостаток витамина
A оказывает влияние на ороговение эпителя слизистых оболочек дыхательных и
мочеполовых путей. В среднем в организм молодого кролика должно поступать
до 2 мг витамина A в день. При смешанном типе кормления у кроликов не
наблюдается недостатка витаминов, в особенности витамина группы B [45, 12].
При нагревании жирорастворимого витамина группы D (кальцифрол)
происходит его разрушение. Во время протекания гиповитаминоза витамина D у
молодняка появляется рахит, данный процесс связан с нарушением обмена
между кальцием и фосфором. Как следствие, взрослые кролики страдают от
остеомаляции. К группе жирорастворимых витаминов относится витамин
группы E (токоферол). Витамин группы E является термоустойчивым
витаминов, однако он разрушается при прогоркании жира. При протекании
гиповитаминоза

витамина

группы

происходит

нарушение

воспроизводительных функций у самок, что, в свою очередь, приводит к
рассасыванию эмбрионов, а у самцов процесс синтеза спермы происходит
гораздо медленнее. Гиповитаминоз витамина группы E у крольчат на ранней
стадии роста и развития может вызвать дистрофию мышц, которая, в свою
очередь, может вызвать паралич. Витамины группы E способствуют усвоению
витамина группы A [39, 22].
Витамин группы C (аскорбиновая кислота) может синтезироваться в
организме кроликов. Витамин группы C выполняет защитную функцию, а также
принимает участие в окислительных процессах, происходящих в организме.
Витамин группы K не может синтезироваться в организме, поэтому данный

ВКР

Лист 29/132

витамин поступает в организм кроликов только через корм. Недостаток
витамина группы K у самок могут происходить аборты. Витамины группы K
также синтезируются в организме кроликов. Необходимость в витаминах группы
K, в первую очередь, обусловлена тем, что витамин группы K участвует в
функционировании нервной системы, а также в процессах регулирования
белкового и углеводного обменов. С целью удовлетворения потребности
организма в витаминах группы K кроликам приходится поедать мягкий кал [40,
102, 38].
По способности переваривать питательные вещества кролики сильно
отличаются от других сельскохозяйственных животных. Так, например,
тормозящее воздействие на пищеварение кроликов может оказать добавление в
рацион кроликов кормов, богатых клетчаткой. Следует отметить, что у растущих
кроликов расход энергии более велик, чем у взрослых. Протеин, лизин,
метионин, цистин и аргинин оказывают сильное влияние на прирост живой
массы откармливаемого молодняка. В связи с этим при составлении рационов
необходимо балансировать рацион именно по содержанию протеина и
перечисленных выше аминокислот [38, 12].
При содержании в рационе растущего молодняка клетчатки менее 12 % на
1 кг прироста живой массы расходуется значительно меньше корма. Однако при
этом, стоит отметить, что повышается риск заболеваемости. Из-за расстройства
кишечника можно наблюдать гибель кроликов. Данное обстоятельство связано с
бродильными

процессами

при

переваривании

большого

количества

концентратов в рационе [103, 104].
Корма, содержащие малое количество клетчатки, и корма, которые
содержат высокий уровень протеина, приводят к тому, что в кишечнике
накапливаются продукты азотистого распада. При всасывании в кровь продуктов
полураспада повышается концентрация азотистых веществ, и как следствие у

ВКР

Лист 30/132

кроликов развивается понос и наблюдается падеж животных. Недостаток или
избыток минеральных веществ также негативно сказывается на организме. При
этом можно наблюдаться снижение продуктивности кроликов, ухудшение
усвояемости питательных веществ и уменьшение плодовитости самок [79, 65].
1.3 Гидролизаты белка и их роль в животноводстве
Важнейшую роль в жизни животных играет питание, так как при
потреблении кормов и другой пищи вместе с которой в организм животных, в
процессе пищеварения, поступают полезные и необходимые полезные вещества
для поддержания всех систем организма. Качественные и полноценные корма
содержат белки, углеводы, витаминно-минеральный комплекс и многое другое.
Потребляемые вещества усваиваются организмом в кишечнике путем
всасывания через слизистую оболочку [105, 106].
При поступлении в организм белка происходит его расщепление до
аминокислот,

помощью

которых

синтезируется

собственный

белок.

Поступающие из пищеварительного тракта аминокислоты разносятся по всему
организму через кровь. Белки проникают через мембрану клеток, затем
происходит их активация и далее они направляются в рибосомы, где с помощью
рибосомной

РНК

преобразования

(рибонуклеиновой

в специфические для

кислоты)

происходит

каждой клетки

процесс

белковые тела.

Специфический синтез индивидуального для организма и клетки белка
осуществляется, с помощью ядерной ДНК (дезоксирибонуклеиновой кислоты),
которая посредством информационной РНК осуществляет передачу точной
установки, через которую происходит процесс синтеза необходимого организму
белка [107, 108, 109].

ВКР

Лист 31/132

Очень часто белковое голодание в организме происходит в следствие
недостатка в организме необходимого количества белка [110]. Белок – это
основной

материал для

синтеза иммунных

тел, гормонов и

других

биологических субстанций. При недостатке белка происходит гипотрофия и
дистрофия [16].
Недостаток белка в организме наступает в следствии следующих причин:
беременность, лактация, роды, несбалансированное питание, повышенные
физические нагрузки, различные заболевания, в следствии которых может
наблюдаться

снижение

аппетита,

нарушение

деятельности

желудочно-

кишечного тракта и обмена веществ и т.д. [111, 112].
Основой белковых гидролизатов являются аминокислотный комплекс и
вспомогательные

пептиды.

Полноценные

по

аминокислотному

составу

природные белки являются материалом для синтеза гидролизатов. Белковые
гидролизаты подразделяются на три основные группы: гидролизаты из крови и
ее составных частей, из казеина и из растительных белков [113, 114].
Гидролиз белка осуществляется при помощи действия протеолитических
ферментов (пепсин, трипсин, папаин), кислот и щелочей. В зависимости от
условий гидролиз проходит до полного расщепления белка на аминокислоты или
часть белка сохраняется в виде различных пептидов.
Расщепление белков в организме до простейших пептидов и аминокислот
происходит под действием ферментов и пищеварительных соков. Вне организма
может происходить аналогичное расщепление белка, только к белковому
субстрату (кровь, плазма, сыворотка крови и др.) добавляются ткани
поджелудочной железы и слизистая оболочка кишечника, желудочный сок или
чистые ферменты – пепсин, трипсин, папаин. Затем полученную смесь в
закрытом сосуде помещают в термостат, где происходит дальнейший процесс
расщепления белков до пептидов и аминокислот. Данный способ расщепления

ВКР

Лист 32/132

белка называется ферментативным, а полученный в ходе этого процесса
раствора называется ферментативным гидролизатом.
Кислотный гидролиз – это гидролиз, который протекает при кипячении
белков в растворах кислот.
Щелочной

способ

получения

белковых

гидролизатов

не

имеет

практического значения, потому что в данном процессе часть естественных Lаминокислот преобразуется в D-аминокислоты и происходит полное разрушение
цистеин, цистин и аргинин [29].
Белковые гидролизаты приобрели широкую популярность в 50-70 годах.
Белковые гидролизаты использовались при оперативных вмешательствах наряду
с другими средствами терапии. До 80-90 годов в ветеринарии препараты
гидролизатов применялись для парантерального питания в случаях недостатка
белков с целью восстановления баланса азота [115].
Белковые гидролизаты применяют следующими методами: внутривенное
введение, внутримышечно, подкожно, введение пероральным, энтеральным или
ректальным путем с помощью зонда или клизмы [115].
На основе гидролизатов разработаны препараты иммуномодулирующего
действия.

Препараты

иммуномодулирующего

действия

оказывают

положительное влияние на иммунологическую реактивность организма.
Эксперименты,

проведенные

применением

гидролизатов,

показали

положительные результаты. В процессе вакцинации было установлено, что
происходит повышение резистентности и общего биологического статуса
животных [116].
В настоящее время применяется большое количество общеукрепляющих и
лечебных препаратов, разработанных на основе белковых гидролизатов. В
ветеринарии и животноводстве в организм животного данные препараты вводят
в основном пероральным методом. Следует отметить, что общеукрепляющие и

ВКР

Лист 33/132

лечебные препараты на основе белковых гидролизатов используются для трех
групп животных: для животных, у которых проходит период реабилитации после
перенесенных заболеваний и стрессов; для животных отстающих по
физиологическим параметрам; для животных в период больших физических
нагрузок.

Для

использования

гидролизатов

парентеральным

способом,

гидролизаты должны иметь глубокое расщепление белков до преобладания
аминокислот

коротких

пептидов,

которые

ассимилируются

без

дополнительной переработки [117].
В животноводстве и

ветеринарии пероральный прием белковых

гидролизатов показал высокую эффективность во время применения для трех
групп животных: для животных, у которых проходит процесс реабилитации
после перенесенных заболеваний и стрессов; для молодняка, у которых проходит
процесс роста и развития организма; для ослабленных животных, которым
необходимо укрепление организма и которые отстают в развитии по
физиологическим критериям; а также для животных, которые подвергались
тяжелым физическим нагрузкам. С целью усиления эффекта лечебных или
зоотехнических мероприятий в терапевтических целях используют гидролизаты,
в результате чего можно наблюдать нормализацию обмена веществ. При
применении

белковых

гидролизатов

можно

наблюдать

повышение

продуктивности сельскохозяйственных животных [118, 119].
Следует заметить, что гидролизаты ни только компенсируют азотную
недостаточность, но и стимулируют общие обменные процессы. Поскольку
белковый обмен тесно связан с обменом других веществ в организме, улучшение
белкового обмена при приеме гидролизатов способствует восстановлению
обмена веществ в целом, а также происходит усиление энергетического обмена.
За счет введения гидролизатов казеина, содержащих органически связанный

ВКР

Лист 34/132

фосфор, происходит процесс увеличения макроэргических фосфоросодержащих
соединений в мышечной ткани животных [120].
Следует отметить, что гидролизаты способствуют: регенерации тканей,
ускоряют заживление ран, грунляцию и эпителизацию при ожогах; улучшают
протромбинообразовательную функцию печени; стимулируют остеогенез при
переломах. При введении истощенным коровам гидролиза в сочетании с
глюкозой происходил процесс нормализации организма и состояние коров
стабилизировалось уже через две недели [121].
Исследования различных ученых показали, что белковые гидролизаты
положительно сказываются на организме животных. Так, например, у коров
наблюдается улучшение воспроизводительной активности; а у ослабленных
лисиц наступление охоты, повышение половой активности. Положительное
действие белковых гидролизатов было связано с улучшением обменных
процессов, ускорением созревания фолликулов и прогрессирующим развитием
эмбрионов [116].
Согласно исследованиям, было доказано, что белковый гидролизат
повышает лактацию у коров, и приводит к улучшению белкового состава молока.
Результатом исследования является положительно влияние гидролизина на
прирост живой массы поросят-сосунов.
Применение гидролизатов белка одновременно в совокупности с
витаминами,

макро-

микроэлементами,

антибиотиками

показало

синергетическое действие, что способствовало усилению терапевтического
эффекта. Гидрализаты белка можно применять вместе с витаминами,
микроэлементами, антибиотиками и сульфаниламидами. При применении
гидролизата вместе с препаратом железа (ферроглюкин-75) на новорожденных
телятах, можно было наблюдать синергетической действие.

При

исследовании

биологической

эффективности

ВКР

Лист 35/132

аминокислотно-

пептидного препарата «Авиамин» (гидролизный препарат), было установлено
положительное действие на такие показатели, как показатель роста и
резистентности

цыплят-бройлеров.

результате

исследования

было

установлено, что удалось добиться прироста живой массы цыплят на 14,7 %, а
увеличение яйценоскости кур-несушек на 5,6 %. В ходе исследования можно
было наблюдать увеличение сохранности цыплят первого месяца, т.е. в период,
когда их естественная резистентность находится на низком уровне на 0,5 % [119].
В процессе гидролиза белков цепочки белковых молекул расщепляются на
части, которые называются пептидами. Пептиды – это органические вещества,
состоящие из остатков одинаковых или различных аминокислот, соединенных
пептидной связью. Пептидные препараты обладают многосистемным действием.
Наприме, препараты Пептидамин и Витапептид использовались в качестве
кормовой добавки цыплятам, поросятам, телятам, молодняку норок, а также
домашним животным – кошкам и собакам. Согласно исследованиям, данные
препараты показали высокую эффективность при употреблении молодняком,
животными

с нарушением обмена веществ, отставшими

в развитии,

перенесшими различные заболевания. Также было проведено исследование на
птицефабриках и хозяйствах, в ходе которого было выяснено, что применение
препаратов привело к снижению падежа птиц в группах риска: до 2 % в группе
ослабленных бройлеров при 38 % падеже в контроле; в хозяйствах,
неблагоприятных по инфекционным заболеваниям – с 15 – 20 % (среди
основного поголовья) до 1 – 7 % - в опытной группе.
При применении препаратов, разработанных на основе пептидов, в
животноводстве можно наблюдать адаптогенное воздействие, которое помогает
организму

животного

адаптироваться

биологическим видам стресса.

физическим,

химическим

ВКР

Лист 36/132

Следует отметить, что при использовании препаратов у животных не
наблюдалось нежелательных побочных явлений. Также не наблюдалось
признаков токсичности при передозировках (в 3-5 – кратных количествах на
цыплятах и 10 кратных – на мышах) [122].
1.4 Химический состав, пищевая и биологическая ценность мяса кроликов
Мясо животных является основным источником белка для человека.
Огромное количество людей, проживающих на территории Российской
Федерации, в пищу потребляют диетическое мясо. Диетическое мясо
необходимо для самых разных групп людей: дети, женщины в период
беременности и кормления, людей пожилого возраста и люди, страдающие
заболеваниями печени, желудка, сердечно-сосудистой системы. Решением для
групп людей, упомянутых выше, является диетическое мясо кроликов [123].
Начальным процессом производства мяса кроликов является процесс убоя
кроликов, после чего идёт процесс снятия шкурки, далее тушки разделывают.
Для разделки тушки делают небольшой разрез брюшной стенки, далее в
полученное отверстие вводятся два пальца левой руки и под их контролем
происходит разделка брюшной стенки по белой линии. После чего выполняется
процесс перерезания лонного сращения и далее удаление мочевого пузыря, затем
происходит извлечение кишечника и желудка с предварительно удаленной
прямой кишкой, затем происходит удаление печени. После разрезания
диафрагмы, происходит процесс удаления легких, сердца, трахеи и пищевода.
Затем кролика отрезают голову на уровне первого позвонка, после чего отрезают
передние лапы по запястным суставам, далее отрезают одну заднюю лапу по
скакательному

суставу.

Согласно

правилам

ветеринарно-санитарной

экспертизы, на тушке остаются почки с почечным жиром и одна лапка в шкурке.

ВКР

Лист 37/132

С целью остывания и образования корочки на тушках после подсыхания,
разделанные тушки кроликов оставляют на 3 – 4 часа в подвешенном состоянии
при температуре окружающей среды 4 – 5 °C [6].
Соотношение мяса, жира, соединительной ткани и костей, в основном,
зависит от возраста животных, времени убоя, состояния упитанности, типа и
уровня кормления. Следует отметить, что в тушке кроликов процентное
содержание мякоти составляет 85 %, а процентное содержание костей и хрящей
около 15 % [124].
Мясо кроликов также называют белым мясом, это связано с тем, что мясо
кроликов имеет высокие вкусовые качества и почти не имеет привкуса. Мясо
кроликов высокого качества обладает следующими показателями: бело-розовый
цвет, нежная и плотная консистенция, тонковолокнистая структура мышц с
равномерно расположенными тонкими прослойками жировой ткани. Благодаря
незначительному содержанию соединительной ткани крольчатина очень сочная
и нежная. Следует заметить, что максимальные диетические свойства имеют
тушки кроликов-бройлеров, забитые до 60-суточного возраста. Также следует
отметить, что при более длительном содержании кроликов происходит процесс
увеличения общей массы кролика и, как следствие, убойный выход мяса, однако
из-за того, что со временем происходит процесс прорастания мышечной ткани
жиром также происходит снижение диетических свойств мяса [125, 126].
Мясо кроликов выгодно отличается от другого мяса благодаря своему
химическому составу, а именно высокой концентрацией полноценных белков и
экстрактивных веществ, меньшим содержанием жира, холестерина и пуриновых
соединений (таблица 1).

ВКР

Лист 38/132

Таблица 1 – Химический состав мяса различных животных, %
Мясо
Крольчатина
жирная
тощая
Говядина
жирная
тощая
Баранина
жирная
тощая
Свинина
жирная
тощая
Курица
жирная
тощая

В 100 г
Зола мяса содержится
килокалорий

Вода

Азотистые
вещества

Жир

59,85
69,72

20,2
20,4

18,85
7,99

1,1
1,39

258,1
160,0

56,2
75,5

18,0
20,5

25,5
2,8

0,8
1,2

310,9
110,1

52,3
76,0

17
17

29,8
5,8

0,9
1,2

246,8
123,6

47,5
72,5

14,5
20,1

37,3
6,3

0,7
1,1

406,3
141,0

70,6
76,22

18,49
19,72

9,34
1,42

0,91
1,37

167,7
99,3

Белок, содержащийся в мясе кроликов, усваивается гораздо лучше, по
сравнению с белками из мяса других животных. Усвояемость белка мяса
кроликов достигает 90 %. В мясе кролика концентрация холестерина в 2,3 – 2,6
раза меньше, чем в курятине и телятине. Данные показатели доказывают, что
такая концентрация холестерина препятствует появлению атеросклероза у
человека [123] (таблица 2).
Таблица 2 – Содержание холестерина в различных пищевых продуктах
Продукты
Крольчатина
Говядина
Телятина
Куриное мясо
Свиной шпик

Содержание холестерина, мг на 100 г
продукта
25
37-48
38-83
35-108
74-126

ВКР

Лист 39/132

В биологическом отношении жир мяса кроликов является более ценным и
легче усваивается, по сравнению с жирами мяса других животных. В мясе
кроликов концентрация жира меняется от 9 до 19 %, в зависимости от
упитанности

животного.

Жир

кроликов

обладает

следующими

характеристиками: белый цвет, твердая консистенция, температура плавления 42
°C, температура застывания 39 °C. Жир подразделяют на следующие группы:
внутримышечный, подкожный и внутренний.
Следует обратить внимание на то, что внутренний жир кроликов по
химическому составу содержит небольшое количество линолевой и линоленовой
кислот, и большое количество дефицит архидовой кислоты, что выгодно
отличает внутренний жир кроликов от подкожного. Во внутреннем жире
кроликов также содержится большой объем незаменимых полиненасыщенных
жирных кислот, ненасыщенных жирных кислот. Также следует отметить, что в
мясе кроликов отношение ненасыщенных жирных кислот к насыщенным самое
высокое (таблица 3). Также жир мяса кроликов оказывает положительное
влияние на вкусовые качества мяса и имеет высокую биологическую ценность.
Таблица 3 – Состав жирных кислот в животном жире
Жир
Кроличий
Свиной
Говяжий
Бараний

Отношение
ненасыщенных кислот к
насыщенным
2,03:1
1,20:1
0,89:1
0,79:1

Полиненасыщенные
жирные кислоты, %
35,5
9,1
4,2
4,2

Следует отметить, что кроме высокого показателя биологической
ценности, кроличий жир улучшает вкусовые качества мяса [127].
В мясе кроликов содержится огромное количество витаминов и
минеральных веществ. Мясо кроликов содержит в себе следующие элементы:

ВКР

Лист 40/132

кальций – 3,4 – 4,0 %, калий – 29,3 – 29,6 %, фосфорная кислота – 64,2 – 64,3 %,
хлор – 1,3 – 1,6 % [128].
Химический состав мяса кроликов напрямую связан с возрастом кролика.
Следует заметить, что с возрастом кролика в мясе происходит увеличение
содержания белка и жира, а также происходит повышение калорийности, и
снижение количества влаги (таблица 4).
Таблица 4 – Химический состав чистопородных кроликов разного возраста
Возраст,
сут

Влага, %

Белок, %

Жир, %

Зола, %

60-65
90
120
135
90-135
270-300

71,9-77,5
70,2-74,2
70,3-72,7
70,1-74,9
70,1-74,3
57,3-67,7

14,3-21,0
17,4-21,6
19,7-23,0
19,4-19,9
17,4-23,0
19,2-22,4

3,5-8,0
5,3-9,8
3,6-7,9
5,0-8,9
3,6-9,8
10,9-19,8

1,0-1,2
1,0-1,2
1,0-1,3
1,0-1,1
1,0-1,3
0,8-1,3

Количество
калорий в
100 г мяса
141,1-185,5
161,5-194,6
159,4-188,4
150,3-197,8
150,3-197,8
212,2-320,0

В мясе кроликов содержится огромное количество полноценных белков
(миозина и глобулина), а также в мясе кроликов оптимальное соотношение
аминокислот. В связи с вышесказанным, можно сделать вывод, что мясо
кроликов имеет высокую биологическую ценность. Белки мышечной ткани
имеют сложный состав. Можно заметить, что в мясе кроликов, забитых до 120 –
суточного возраста, можно наблюдать повышение количества полноценного
белка [129]. Следует отметить, что с возрастом кроликов можно наблюдать
снижение содержания в мясе кроликов аминокислот: аргинина, лейцина,
аланина, глицина, пролина. Также с возрастом кроликов в мясе происходит
увеличение содержания: гистидина, фенилаланина, норлейцина, тирозина и
аспарагиновой кислоты [8, 130, 131].
Качество мясо кроликов оценивают по следующим показателям:

ВКР

Лист 41/132

- тип телосложения – проводится визуальный осмотр и оценка экстерьера;
- развитие животного – проводится изучение показателей живой массы,
прирост в различные возрастные периоды. Проводятся промеры – длина
туловища, обхват за лопатками, ширина поясницы, крупа и индекс сбитости;
- убойная масса – определение массы парной тушки без шкурки, головы и
конечностей, без внутренних органов (с почками и жиром);
- выход убойной массы – проводят сравнение отношения убойной массы с
живой массой кролика при последнем взвешивании перед убоем (происходят
изменения в зависимости от возраста, живой массы и упитанности кролика от 46
до 59 %);
- мясность животных – определение отношения массы съедобных частей
тушки, включая субпродукты к массе тушки (таблица 5).
Таблица 5 – Выход съедобных частей и костей тушек кроликов различного
возраста (средние данные по литературным источникам)
Выход, %
Возраст, сут.
60
90
105
135
165
240

Мяса

Жира

82,1
84,5
82,5
84,5
79,8
81,4

1,8
7,9
3,9
2,5
7,7
6,8

Всего
съедобных
частей
83,9
86,4
86,4
87,0
87,5
88,2

Костей
16,1
13,6
13,6
13,0
12,5
11,8

Следует отметить, что одними из важных критериев оценки мясной
продуктивности кроликов являются убойная масса и убойный выход (таблица 6).
Указанные выше критерии прежде всего зависят от условий кормления,
содержания, возраста, живой массы, упитанности, породных особенностей и
сроков убоя животного [123, 3].

ВКР

Лист 42/132

Таблица 6 – Убойный выход у чистопородных кроликов разного возраста
(средние данные по литературным источникам)
Возраст, сут.

С ливером, %

60-65
90
120
135
270

45,4-55,2
53,2-61,5
55,0-61,8
52,8-61,8
57,9-61,2

Тушки
Без внутренних органов
(кроме почек), %
36,6-45,5
44,6-51,9
53,7-55,6
-

Следует отметить, что качество мяса кроликов возможно определять
благодаря таким показателям как степень развития отдельных частей (отрубов)
тушки и выходу мышечной ткани (таблица 7).
Отрубы

тушки

кроликов

подразделяют

на

следующие

части:

тазобедренная, шейно-грудная, пояснично-крестцовая, лопаточно-плечевая. В
следствии, увеличения мускулатуры, жира и уменьшения относительного
выхода костей, в тушке кролика возрастает выход съедобных частей, а также
происходит увеличение массы тушки [11, 132].
Таблица 7 – Удельный вес различных частей в тушках кроликов
Части тушек
Тазобедренная
Шейно-грудная
Поясничнокрестцовая
Лопаточноплечевая
Ливер

Без ливера, %
3 мес
4 мес
5 мес
37,2
35,7
36,7
25,1
26,7
25,1

С ливером, %
3 мес
4 мес
5 мес
32,7
32,0
32,7
22,1
23,9
22,4

23,3

24,0

23,8

20,5

21,5

21,2

14,4

13,5

14,4

12,6

12,1

12,8

12,1

10,5

10,9

В зависимости от таких критериев, как упитанность, качество обработки и
выхода мяса, тушки кроликов подразделяют на две категории:

ВКР

Лист 43/132

- первая категория – мышцы тушки развиты хорошо, отложения жира на
холке и в паховой области в виде толстых полос, почки до половины покрыты
жиром. Остистые отростки спинных позвонков не выступают. Выход мяса –
около 51,5 %;
- вторая категория – мышцы тушки развиты удовлетворительно,
отложения или следы жира на холке, в паховой области и около почек
незначительные. Слегка выступают остистые отростки спинных позвонков.
Выход мяса – около 47,8 %.
Следует отметить, что, если по результатам оценки тушек кроликов не
представляется возможным определить к какой категории относится данная
тушка, тогда тушки отправляются на промышленную переработку [133].
Для того чтобы получить тушки кроликов высокого качества, тушки
должны быть обескровлены, без побитостей и кровоподтеков, также тушки
необходимо тщательно вымыть [134, 3].
Мясная продуктивно кроликов может повысится при полноценном
кормлении, надлежащем уходе и при создании благоприятных условий
содержания кроликов. Учеными было доказано, что из молодняка, выращенного
на полнорационных гранулированных комбикормах с использованием кормовых
добавок, получаются тушки первой категории на 30 % больше по сравнению с
молодняком, выращенным без кормовых добавок и минеральных подкормок [24,
135].
1.5 Характеристика кормовой добавки Нитамин и её применение в
ветеринарной практике
Кормовая добавка Нитамин (Nitamin) является раствором, который
представляет собой прозрачную жидкость желтого цвета. В качестве

ВКР

Лист 44/132

действующих веществ на 1 мл лекарственного препарата используются: ретинол
пальмитат (витамин A) 50 000 МЕ, холекальциферол (витамин D3) 5 000 МЕ,
токоферол ацетат (витамин E) 50 мг, аскорбиновая кислота (витамин C) 100 мг,
а также кормовая добавка Нитамин содержит вспомогательные вещества:
полиэтиленгликоль-660-гидро-ксистеарат (солютол HS 15), 1,2-пропандиол,
спирт бензиловый, вода для инъекций – до 1 мл.
Нитамин

(производитель

регистрационного

ООО

удостоверения:

«НИТА-ФАРМ»,

Россия,

Номер

44-3-18.12-3022№ПВР-3-2.1/00708)

–

стерильный раствор для инъекций и орального применения.
Нитамин используется в ветеринарии для восполнения недостаточности
витаминов в организме животных.
Витамин A, содержащийся в кормовой добавки, выступает в качестве
регулятора строения, функций и регенерации эпителиальных тканей и тем самым
повышает сопротивляемость против инфекций. При введении повышенных доз,
Нитамин препятствует снижению веса и повышает обмен веществ животных.
Витамин D3 регулирует обмен кальция и фосфора, а также оказывает влияние на
всасывание кальция и фосфора в желудочно-кишечном тракте. Кроме того,
витамин D3 обладает противорахитным действием. Витамин E осуществляет
регуляцию окислительно-восстановительных процессов, а также Витамин E
влияет на углеводно-жировой обмен и усиливает действие витаминов А и D3.
Витамин C – является основным витамином, который необходим для
нормального роста и повышения защитных функций организма животного.
Кормовая добавка Нитамин по степени воздействия на организм
животного согласно ГОСТ 12.1.007-76 относится к малоопасным веществам (IV
класс опасности).
Нитамин применяется с целью профилактики и лечения гиповитаминозов,
нормализации обмена веществ у животных при стрессах. Нитамин способствует

ВКР

Лист 45/132

снижению дополнительных нагрузок: во время беременности (во второй
половине беременности) и в период лактации, в особенности при нарушениях
воспроизводительной функции. Также Нитамин используется при замене кормов
на откорме или же в качестве добавки для основного рациона, при задержке
роста и недостаточном весе, при инфекционных и инвазионных заболеваниях,
при

ветеринарных

дегельминтизации.

мероприятиях:
Нитамин

также

профилактических
применяется

прививках

после

оперативных

вмешательств или ранений.
Кормовую добавку Нитамин могут вводить животным орально в смеси с
водой для поения или кормом. Доза кормовой добавки Нитамин зависит от вида
животного и возраста (таблица 8).
Таблица 8 – Рекомендуемые дозы кормовой добавки Нитамин с учетом вида
животного и его возраста
Вид и возраст животного
Крупный рогатый скот, лошади
Телята, жеребята
Овцы, козы
Ягнята
Свиноматки
Свиньи на откорме
Поросята
Собаки, кошки
Кролики, пушные звери

Объем, мл на 10 кг живой массы
0,3-0,5
0,5-0,6
0,75-1,25
2,0-3,0
0,5-0,7
0,2-0,5
1,0-2,0
0,3-0,6
1,0-2,0

1.6 Влияние рационов с добавками марганца на показатели роста, биохимию
крови, метаболизм азота и развитие скелета кроликов
Марагнец (Mn) является основным элементом, который содержится в
питьевой воде и пищевых продуктах, а также марганец используется в качестве
добавки для пищевых продуктов, таких как смеси, парентеральное питание и

ВКР

Лист 46/132

другие [136]. Марганец был открыт известным шведским ученым К. Шееле в
1774 году. В 1931 году во время проведения экспериментов над крысами и
мышами ученые смогли доказать, что марганец является незаменимым
микроэлементом

для

животных.

Марганец

также

является

важным

микроэлементом, который присутствует во всех тканях животных. Данный
микроэлемент необходим для нормального метаболизма аминокислот, липидов,
белков и углеводов [137]. Учеными было доказано, что марганец связан с
липидным обменом [138]. Металлоферменты марганца включают в себя
аргиназу,

глутаминсинтетазу,

супероксиддисмутазу

марганца

фосфоенолпируватдекарбоксилазу
(Mn-SOD).

Марганец

участвует

и
в

функционировании многих систем органов и является необходимым для
нормального функционирования иммунной системы, а также для регулирования
уровня сахара в крови и клеточной энергии, размножения, пищеварения и роста
костей. Марганец также способствует улучшению защитных функций организма
против свободных радикалов. Кроме того, марганец и витамин K вместе
способствуют свертыванию крови и гемостазу [139].
В 1937 году ученые впервые обнаружили, что марганец может эффективно
предотвращать возникновение тендинопатии у цыплят, тем самым открыв, что
марганец является необходимым элементом для роста и развития костей [140].
Также следует отметить, что марганец может вызвать и негативные эффекты,
такие как деформация скелета, размягчения костей и повышенная резорбция
костей [141, 142]. В 1950 и 1969 годах ученые отметили, что среднесуточный вес
поросят значительно увеличился при добавлении 40-50 г/кг марганца к
основному рациону, содержащему 8-12 мг/кг марганца [143, 144]. Было
обнаружено, что избыток марганца приводит к интоксикации организма
животного. О случаях отравления марганцем сообщалось ещё в 1837 году. В 1837
году при отравлении марганцем ученые отмечали мышечную слабость, тремор,

ВКР

Лист 47/132

нарушения походки и параплегию [145]. Недостаточное потребление пищи, а
также дефицит марганца в организме могут привести к нарушению роста,
плохому формированию костей и дефектам костей, снижению плодовитости и
врожденным дефектам, аномальной толерантности к глюкозе, а также к
изменению липидного и углеводного обмена [146, 147].
Кроликов породы Рекс в основном разводят из-за их кожи и мяса. Кожа
кролика ценится за её тонкую бархатистую текстуру, цвет, блеск, мягкость, а
также за то, что она прекрасно сохраняет тепло. Кожа кроликов очень мягкая и
ценится за её красивые окрасы шерсти и эластичность. Мясо кролика нежное и
постное, с тонким вкусом. Кроме того, мясо кролика обладает отличной пищевой
ценностью и терапевтическими характеристиками [148-151]. Следует отметить,
что реакция кроликов на марганец более похожа на реакцию свиней [152].
Таким образом, в то время как марганец является важным питательным
веществом для животных, чрезмерное добавление марганца может нанести вред.
На данный момент, нет исследований относительно диетических потребностей
кроликов породы Рекс в марганце, поэтому изучение подходящей концентрации
марганца

рационе

кроликов

является

интересной

задачей.

Целью

исследования, описываемого в данном разделе, является изучение влияния
различных уровней добавок марганца на показатели роста, биохимию крови,
метаболизм азота и развитие скелета кроликов породы Рекс.
В описываемом опыте 200 здоровых кроликов (100 самцов и 100 самок),
возрастом в 90 дней со средней массой тела 1,9 кг, были разделены на 5 групп,
по 40 кроликов в каждой группе. Каждой группе кроликов давали один из 5
рационов с разным содержанием марганца. Подопытные кролики были
помещены в одиночные клетки и их кормили два раза в день, первый раз в 8:00,
а второй раз в 16:00. Перед выполнение эксперимента внешняя среда была
продезинфицирована,

течение

всего

эксперимента

поддерживалось

ВКР

Лист 48/132

естественное освещение. Клетки кроликов убирались один раз в неделю.
Подготовительный период составил 7 дней, в то время как длительность
эксперимента составила 29 дней. В течение всего экспериментального периода
были зафиксированы такие показатели как количество потребляемых продуктов
и увеличение массы тела кроликов. Все рационы удовлетворяли потребности в
питательных веществах, которые необходимы для растущих кроликов. Рационы
были составлены в соответствии с ранее определенными значениями,
необходимыми для выращивания кроликов [153, 154]. Состав и химический
анализ основного рациона и других рационов, используемых в эксперименте,
приведены в таблице 9 [153].
Таблица 9 – Состав и содержание питательных веществ в основных рационах
Состав

Содержание, %

Зерно
Соевая мука
Мука из
кукурузных
зародышей
Пшеничные
отруби
Порошок шелухи
Соевые бобы
Люцерна
Мука из ростков
солода
Мука полыни
апиацеи
Смесь

10,50
6,00

Показатели
уровней азота
DE, МДж/кг
DM

20,00

16,21

18,00

Ash

7,12

11,00
12,00
12,00

EE
CF
Ca

3,74
16,91
0,76

6,00

0,51

3,00

Lys

0,63

1,50

Met

0,24

Содержание, %
10,29
88,92

ВКР

Лист 49/132

Примечание: DE – dietary energy – диетическая энергия (расчётная
величина);
DM - dry matter – сухое вещество;
CP - crude protein – сырой протеин;
Ash – зольность;
EE - ether extract - эфирный экстракт;
CF - crude fibre - сырая клетчатка;
Во время проведения эксперимента взвешивалась масса суточного корма и
масса корма, который оставался после потребления. Еженедельно производилась
регистрация веса кроликов. За семь дней до окончания эксперимента,
произвольно отбирались 8 подопытных кроликов из каждой группы и затем их
переводили в одну стерилизованную метаболическую клетку.
Образцы фекалий, кормового рефлюкса и мочи были собраны в течение
4-х дней, после 3-х дневного периода предварительного тестирования. После
чего, к экскрементам добавляли 10 % серную кислоту в количестве 5 % от сырого
веса, далее образцы экскрементов хранили при -20 °C. В конце эксперимента все
фекалии одного животного смешивали, затем фекалии и корм высушивали до тех
пор, пока они не достигли постоянного веса, сушка производилась при
температуре 65 °C. Полученную смесь перемалывали через сито в 0,42 мм. Перед
сушкой и после сушки экскрементов проводилось их взвешивание. Моча была
законсервирована с 10 % серной кислотой и 4-я каплями толуола, после чего
проводилась регистрация объема мочи каждого животного. Смешанная моча
была отфильтрована с помощью фильтровальной бумаги, после чего были взяты
образцы по 10 мл, которые хранились при -20 °C. Далее, проводилось
взвешивание задних ног кролика. Массу костей взвешивали, отделяя мясо, и

ВКР

Лист 50/132

сразу же измеряли прочность голени на изгиб. Оставшаяся большеберцовая
кость была сохранена в жидком азоте для последующих экспериментов.
1.6.1 Анализ рациона, образцов кала и мочи
1.6.1.1 Показатели роста
Измерение веса проводилось в начале и в конце эксперимента, затем
определялось количество потребляемого корма за весь период эксперимента,
после чего был произведен расчет среднесуточного потребления корма (СПК,
ADFI), среднесуточной прибавки в весе (СПВ, ADG) и коэффициент массы
корма (КМК, F/G).
СПК (ADFI) = общее потребление корма на кролика при нормальном
кормлении/29
СПВ (ADG) = {конечный вес (КВ, FBW) – начальный вес (НВ, IBW)}/29
КМК (F/G) = СПК (ADFI)/СПВ(ADG)
Анализы сухого вещества (СВ, DM), азота (N), сырого жира (СЖ, EE),
пищевого кальция (Ca) и общего фосфора (P) воздушно-сухого рациона и
фекалий проводили в соответствии с AOAC [154]. Отбор анализов корма и
фекалий отбирались квадратурным методом и затем анализы подвергались
измельчению через специальную сетку с целью получения образцов.
Образцы пищи и фекалий (масса каждого образца равна 0,2 г)
переносились в тару для взвешивания с полуоткрытой колбой. После сушки в
сушильном шкафу при температуре (105±2) °C в течение часа, затем образец
подвергся сушке, которая проводилась в течение 30 минут, после чего
производилось взвешивание образцов. Снижение веса образца можно объяснить
отсутствием воды в образце, что позволяет определить СВ (DM).

ВКР

Лист 51/132

Образцы рациона и фекалий (масса образцов составила 0,5 г) переносились
в пробирку для расщепления, в которую добавляли катализатор (0,4 г CuSO4
5H2O и 6 г безводного сульфата калия) и концентрированную серную кислоту
(10 мл). Процесс разложения проводился в автоматической печи в течение 4 – 6
часов, пока жидкость не становилась прозрачной. Затем переваренные образцы
были помещены в автоматический прибор Кьельдаля для определения в них
содержания азота.
Индекс азотистого обмена
Усваиваемый азот (УА, DN) = впитываемый азот (ВА, IN) – фекальный
азот (ФА, FN)
Отложение азота (ОА, RN) = впитываемый азот (ВА, IN) - фекальный азот
(ФА, FN) – мочевой азот (МА, UN)
Примерная усвояемость азота (ПУА, DN/IN, %) = усваиваемый азот (УА,
DN)/ впитываемый азот (ВА, IN) x 100 %
Коэффициент использования азота (КИА, RN/IN, %) = отложение азота
(ОА, RN)/впитываемый азот (ВА, IN) x 100 %
Биологический титр азота (БТА, RN/DN, %) = отложение азота (ОА, RN) /
усваиваемый азот (УА, DN) x 100 %
Для определения содержания сырого жира в образце использовался метод
экстракции по Сокслету. Образцы массой 2 г взвешивали, после чего
заворачивали в фильтровальную бумагу, затем производили маркировку. Далее
сушка образцов проходила в печи при температуре 105 ± 2 °C в течение 6 часов,
затем

образцы

фильтровальной

снова
бумаги

взвешивали.
был

Высушенный

помещен

образец

экстрактор

(мешок)

Сокслета,

из

затем

производилось добавление этилового спирта и полученную смесь нагревали в
водяной бане при температуре 60-75 °C в течение 10 часов. Затем
фильтровальная бумага была удалена, а эфир испарялся в вентилируемом

ВКР

Лист 52/132

помещении при комнатной температуре. После сушки в сушильном шкафу при
температуре 105 ± 2 °C в течение 6 часов, образец извлекали и сушили в сушилке
в течение 30 минут перед взвешиванием. Содержание кальция в образце
определяли с помощью титрования перманганата калия. Содержание фосфора
определяли при помощи проявителя на основе молибдата аммония с помощью
калориметра с желтым молибденом. Образец массой 2 г был осторожно
карбонизирован на высокотемпературной (300 °C) индукционной плите в
течение 20 минут, а затем образец был помещен в муфельную печь при
температуре 550 ± 20 °C. Далее, в тигель с золой добавляли 10 мл раствора
соляной кислоты и несколько капель азотной кислоты; затем образец переносили
в мерную колбу объемом 100 мл и затем разбавляли при постоянном объеме.
Далее к 100 мл дистиллированной воды добавили образец объемом 10 мл, затем
к полученному раствору добавили несколько капель индикатора красного
метилового спирта и 2 капли раствора аммиака, чтобы получить оранжевый
раствор; затем к раствору добавляли несколько капель соляной кислоты для того,
чтобы раствор снова стал красным после осторожного кипячения раствора.
Раствор оксалата аммония объемом 10 мл постоянно перемешивали, в случае
если раствор становился оранжевым в него добавляли соляную кислоту, чтобы
цвет раствора становился красным. Осадок оксалата кальция образовывался в
течение ночи. Затем осадок отфильтровывали через фильтровальную бумагу и
несколько раз промывали раствором аммиака до исчезновения свободных
оксалат-ионов (добавляя несколько капель раствора серной кислоты к
нескольким каплям фильтрата), при этом раствор нагревался до 80 °C, при
нагревании в раствор добавляли каплю раствора перманганата калия, если
раствор окрашивался в красный цвет в течение 30 секунд и не обесцвечивался,
это означало отсутствие ионов оксалата). Затем осадок и фильтровальную
бумагу переносили в исходный химический стакан, в который добавляли 10 мл

ВКР

Лист 53/132

раствора серной кислоты и 50 мл дистиллированной воды. Полученный раствор
нагревали до 75 – 85 °C, а затем использовали стандартное жидкостное
титрование 0,05 мл/л перманганата калия, чтобы раствор имел розовый цвет. В
случае если цвет раствора оставался розовым в течение 30 секунд, это считалось
конечной точкой. Также проводилось одновременное определение холостого
раствора. Затем, были произведены вычисления содержания кальция (Ca),
используя 1 мл раствора для измерения кальция в мерной колбе объемом 50 мл,
и 10 мл хромогенного агента ванадиомолибдата аммония разбавляли
дистиллированной водой при постоянном объеме. В течение 10 минут можно
было наблюдать окрашивание раствора. Оптическую плотность раствора была
измерена с помощью спектрофотометра с длиной волны 420 нм. Одновременно
в мерную колбу на 50 мл добавляли 0, 1, 2, 4, 6, 8, 10, 12 и 15 мл стандартного
раствора фосфора, а затем измеряли оптическую плотность. Была построена
стандартная кривая фосфора (P) с помощью которой было рассчитано
содержание фосфора.
После 12 часов свободного доступа к воде, но не к пище, случайным
образом были выбраны восемь испытуемых кроликов породы Рекс. Характерные
признаки туши кроликов изучали в соответствии с методами, описанными в
[155].
В конце эксперимента восемь кроликов в каждой испытуемой группе были
случайным образом отобраны для испытаний на усвояемость. Количество
потребляемого корма и выделяемых фекалий регистрировались ежедневно, а
экспресс-анализ фекалий и корма брались как описано в [156].
После взвешивания, в день убоя здоровых кроликов породы Рекс (4 самца
и 4 самки) случайным образом выбрали для окончательного забора крови. После
анестезии эфиром у кроликов брали анализ крови (5 мл крови) путем пункции
сердца с использованием пробирок для сепарации сыворотки. Образцы крови

ВКР

Лист 54/132

центрифугировали при 3000 об/мин в течение 10 минут, затем образцы крови
помещали в пробирки по 1,5 мл; данные пробирки хранили при температуре -20
°C до анализа.
Концентрации сывороточных триглицеридов (TG), холестерина (CHO),
холестерина

липопротеинов

низкой

плотности

(LDL),

холестерина

липопротеинов высокой плотности (HDL), общего белка (TP) и альбумина (ALB)
анализировали автоматическим биохимическим анализатором.
Сывороточные IgA, IgI, IgM, концентрации супероксиддисмутазы (СОД,
SOD) и активность супероксиддисмутазы определяли с использованием
специализированных наборов.
После убоя кроликов задние ноги были взвешены, затем с задних ног была
удалена мышца, далее от задних ног оставались только кости. Вес голени
использовался для расчета отношения костей к мясу, и затем был определен
средний диаметр голени (D). Прочность кости голени была быстро измерена с
помощью универсальной испытательной машины (электронная универсальная
испытательная машина с микрокомпьютерным управлением). Фиксированное
расстояние для каждого измерения составляло 40 мм, а максимальная сила,
необходимая для перелома кости, регистрировалась в Ньютонах (Н) с
использованием

компьютерного

программного

обеспечения.

Наконец,

окончательная прочность костей рассчитывалась по следующей формуле:
прочность костей = (8*N*40)/π/D3.
Как было описано ранее экстракцию полной РНК и ПЦР-тест проводили в
реальном времени. Качество РНК оценивали с помощью электрофореза в
агарозном геле, количество РНК определяли на биофотометре. Данные ПЦР
анализировали с помощью метода 2-ΔΔCT. Уровни мРНК генов-мишеней
нормировали на β-актин (ΔCT) [157-167].

Данные

были

проанализированы

помощью

ВКР

Лист 55/132

однофакторного

дисперсионного анализа обобщенной линейной модели (ОЛМ, GLM) с
использованием пакета статистического программного обеспечения SAS [168],
после чего с помощью многодиапазонного теста Дункана проводились
сравнения различий между видами лечения, в результате можно было наблюдать
различия (P < 0,05). Данные представлены с среднем стандартным отклонением.
Экспериментальные рационы с добавлением марганца 0, 5, 10, 20, 40 мг/кг
привели к фактическим измеренным концентрациям марганца 10.13, 16.65,
22.29, 33.19, 53.98 мг/кг. Различия в концентрациях марганца, добавленного в
рацион, оказали значительное влияние на показатели роста (таблица 10). Добавка
марганца привела к значительным различиям в среднесуточном приросте (ССП,
ADG) (P < 0,05), соотношение массы корма для кроликов (F/G) также
подверглось значительному влиянию. Кроме того, наблюдалась тенденция к
разнице в массе тела на конечной стадии (FBW) (0,05 < P < 0,1), однако не было
замечено значительных различий в показателях среднего потребления (P > 0,05).
Таблица 10 – Влияние уровней добавок Mn в рацион на показатели роста
кроликов породы Рекс (n=40)

IBW, г
FBW, г
ССП
(ADG)
СПК
(ADFI)
F/G

Значение
P

Уровни пищевого Mn, мг/кг

Показатели
0
1913,84±3
0,25
2524,87±3
1,03
21,07±0,6
3
167,52±0,
53
8,17±0,26

5
2520,78±36
,68

10
1956,25±36
,33
2607,03±34
,98

20
1956,55±42
,02
2652,59±39
,49

40
1912,67±40
,49
2606,33±41
,77

22,65±0,6

22,44±0,74

24±0,86

23,92±0,74

0,0274

167,95±0,4
9
7,54±0,19

166,75±0,6
2
8,01±0,4

168,33±0,4
1
7,27±0,26

167,46±0,5
9
7,19±0,21

0,3603

1864±37,82

0,3765
0,0516

0,0427

ВКР

Лист 56/132

Различные уровни марганца в рационе оказывали значительное влияние на
биохимию сыворотки кроликов породы Рекс (таблица 11). Уровни общего
холестерина (ОХ, TCHO), липопротеинов высокой плотности (ЛВП, HDL),
липопротеинов низкой плотности (ЛНП, LDL), общего белка (ОБ, TP) и азота
мочевины (АМ, BUN) в сыворотке не имели прямой связи с концентрациями Mn
(P > 0,05), хотя между триглицеридами сыворотки (ТГ, TG) и содержанием
марганца была прямая связь; триглицериды сыворотки (ТГ, TG) значительно
снизились с увеличением количества добавленного Mn (P < 0,05). На уровень
супероксиддисмутазы марганца в сыворотке крови (Mn-SOD) существенно
влияли концентрации Mn в рационе; при повышении содержания Mn уровень
Mn-SOD в сыворотке крови сначала снижался, а затем повышался; добавление 5
мг/кг Mn привело к самому низкому уровню (P < 0,05). Mn-SOD в печени не
подвергался существенному влиянию уровня Mn (P > 0,05).
Таблица 11 – Влияние пищевых добавок Mn на биохимию крови растущих
кроликов породы Рекс (n=40)
Показате
ли
ОХ
(TCHO),
г/л
ЛВП
(HDL),
ммоль/л
ЛНП
(LDL),
ммоль/л
ТГ (TG),
ммоль/л
ОБ (TP),
г/л
ALB, г/л

Значение
P

Уровни пищевого Mn, мг/кг
0

1,08±0,13

1,24±0,14

1,51±0,09

1,32±0,17

1,34±0,13

0,2647

0,66±0,07

0,65±0,06

0,82±0,06

0,69±0,06

0,74±0,06

0,2675

0,12±0,02

0,18±0,03

0,26±0,04

0,19±0,04

0,21±0,04

0,0801

0,78±0,02a

0,70±0,01b

0,67±0,03b

0,57±0,02c

0,53±0,02

<0.0001

66,83±1,64

65.33±1,13

67,54±1,93

67,78±1,35

0,7435

39,33±0,6

38,93±0,64

39,33±0,98

40,26±0,63

0,29

65,93±1,2
8
38,2±0,2

ВКР

Лист 57/132

Продолжение таблицы 11
АМ
(BUN),
ммоль/л
Mn-SOD,
нг/мл
Mn-SOD
печень,
ед/мл

7,43±0,49

6,81±0,46

7,53±0,32

7,9±0,45

7,99±0,31

0,3202

1116,07±34,
12a

420,43±26,1 585,05±27,6 684,35±24
2b
2c
,08d

916,54±29,
28e

< 0.0001

162,97±2,07

162,98±0,94 163,91±2,36

159,68±2,
13

158,01±2,3
5

0,2064

Различные концентрации Mn в рационе оказывали значительное влияние
на метаболизм азота у кроликов породы Рекс (таблица 12). Добавление Mn не
оказало существенного влияния на потребление азота (ПА, IN), фекального азота
(ФА, FN), перевариваемого азота (ПеА, DN) и кажущуюся усвояемость азота
(КУА, NAD) (P > 0,05). Различные уровни Mn в рационе оказывали значительное
влияние на азот мочи (АМ, UN), отложение азота (ОА, RN), утилизацию азота
(УА, NUR) и биологический титр азота (БТА, NBV) у кроликов породы Рекс (P
< 0,05). При добавлении Mn в количестве 20 мг/кг азот мочи достигал
минимального значения, хотя осаждение азота, коэффициент использования
азота и биологический титр азота был максимальными.
Таблица 12 – Влияние уровней добавок Mn в рацион на метаболизм азота у
растущих кроликов породы Рекс (n = 8)
Показатели
ПА (IN)
ФА (FN)
АМ (UN)
ПеА (DN)
ОА (RN)
КУА
(NAD), %
УА (NUR),
%
БТА
(NBV), %

0
5,36 ± 0,07
1,46 ± 0,08
1,94 ± 0,16
4,09 ± 0,09
2,15 ± 0,12

Уровни пищевого Mn, мг/кг
5
10
20
5,37 ± 0,04
5,45 ± 0,04
5,34 ± 0,02
1,41 ± 0,05
1,38 ± 0,06
1,28 ± 0,06
1,82 ± 0,13
1,91 ± 0,12
1,31 ± 0,05
4,11 ± 0,03
4,15 ± 0,06
3,96 ± 0,1
2,29 ± 0,12
2,24 ± 0,15
2,65 ± 0,1

40
5,46 ± 0,06
1,27 ± 0,05
1,58 ± 0,12
4,06 ± 0,08
2,48 ± 0,12

Значение
P
0,3243
0,1342
0,0034
0,4819
0,0462

76,29 ± 1,23

76,48 ± 0,68

76,12 ± 1,16

74,05 ± 1,66

74,34 ± 1,02

0,4464

40,18 ± 2,45

42,62 ± 2,26

41,15 ± 2,78

49,56 ± 1,7

49,05 ± 1,88

0,0402

52,76 ± 3,32

55,78 ± 3,03

53,87 ± 3,19

66,86 ± 1,38

66,11 ± 2,67

0,006

ВКР

Лист 58/132

Влияние концентрации Mn на усвояемость питательных веществ (%)
показано в таблице 13. Результаты не показали существенных различий (P > 0,05)
в коэффициенте переваривания (КП, DC) сухого вещества, СЖ (EE), ADF, NDF,
и СП (CP) между контрольной группой и другими группами.
Таблица 13 – Влияние пищевых добавок с Mn на коэффициент переваривания
(КП) (%) питательных веществ корма (n = 8)
КП, %
DM
СП (CP)
СЖ (EE)
NDF
ADF

0
57,18 ± 2,35
76,29 ± 1,23
85,31 ± 1
31,92 ± 1,38
16,7 ± 2,38

Уровни пищевого Mn, мг/кг
5
10
20
51,83 ± 1,2 55,66 ± 2,24 56,67 ± 2,17
76,48 ± 0,68 76,12 ± 1,56 76,05 ± 1,67
83,85 ± 0,81 85,21 ± 0,86 85,55 ± 0,71
31,61 ± 1,73 29,05 ± 2,18 28,78 ± 3,27
18,05 ± 1,58 17,08 ± 2,36 19,92 ± 4,02

40
55,4 ± 1,6
74,34 ± 1,02
85,64 ± 0,8
33,98 ± 1,67
22,06 ± 1,54

Значение
P
0,3517
0,4464
0,5678
0,4242
0,4221

Влияние Mn на показатели тушки кроликов по отношению к живой массе
кроликов породы Рекс показано в таблице 14. Различные концентрации Mn в
рационе оказывали значительно влияние на общий жир и тимус (P < 0,05). При
добавлении Mn в количестве 20 мг/кг общий жир достигал минимального
значения. Результаты не показали существенных различий (P > 0,05) между
показателями тушек контрольной группы и другими группами.
Таблица 14 – Влияние уровней добавок Mn на характеристики туши растущих
кроликов породы Рекс (n=8)
Показатели
Живая масса,
г
Полный
проход, г
Полупроход,
г

0
2538,75 ±
22,2
1259,38 ±
15,13
1360,63 ±
14,95

Уровни пищевого Mn, мг/кг
5
10
20
2498,75 ±
2558,75 ±
2558,75 ±
27,64
25,89
22,22
1228,13 ±
1256,88 ±
1253,75 ±
8,18
13,92
22,28
1327,5 ±
1355,63 ±
1341,88 ±
10,98
14,34
22,18

40
2512,5 ±
18,9
1228,13 ±
28,09
1323,75 ±
26,71

Значение
P
0,4003
0,5975
0,5544

ВКР

Лист 59/132

Продолжение таблицы 14
Скорость
полного
49,61 ± 0,41 49,18 ± 0,52 49,15 ± 0,66 49,88 ± 0,69 48,85 ± 0,87
прохода, %
Скорость
полупрохода, 53,6 ± 0,4 53,16 ± 0,65 53,01 ± 0,7 53,39 ± 0,66 52,66 ± 0,81
%
Селезенка, % 0,03 ± 0,001 0,04 ± 0,002 0,04 ± 0,003 0,03 ± 0,003 0,04 ± 0,006
Печень, %
2,6 ± 0,09
2,53 ± 0,11 2,38 ± 0,13 2,38 ± 0,11
2,4 ± 0,11
Тимус, %
0,14 ± 0,01 0,16 ± 0,01 0,17 ± 0,01 0,15 ± 0,01 0,18 ± 0,01
Всего жиров,
1,12 ± 0,12 0,93 ± 0,09 0,69 ± 0,03 0,64 ± 0,08 0,76 ± 0,07
%

0,8144

0,8794
0,1555
0,2912
0,0416
0,0014

Влияние уровней добавок Mn в рацион на развитие скелета растущих
кроликов породы Рекс показано в таблице 15. Добавление Mn не оказало
существенного влияния на соотношение костей к мясу (P > 0,05). Различные
уровни Mn в рационе оказывали значительное влияние на прочность костей (P <
0,05); прочность костей была самой высокой при добавлении Mn в количестве 20
мг/кг.
Влияние уровней добавок Mn в рацион на экспрессию генов в скелетной
ткани растущих кроликов породы Рекс показано на рисунке 3. Также добавление
различных уровней Mn не оказало большого влияния на коэффициент
экспрессии гена активатора рецептора лиганда каппа-β ядерного фактора
(RANKL) (P > 0,05). Различные уровни Mn в рационе оказывали значительное
влияние на экспрессию гена остеопротегерин (ОПГ, OPG) (P < 0,05). Экспрессия
гена ОПГ была самой высокой при добавлении Mn в количестве 40 мг/кг.

ВКР

Лист 60/132

Рисунок 3 – Влияние уровней пищевых добавок Mn на экспрессию генов в
скелетной ткани растущих кроликов Рекс
Было проведено несколько ограниченных исследований марганца,
который добавлялся в рацион кроликов. Пища, содержащая в своем составе
марганец, влияет на скорость роста грызунов и может улучшить показатели
роста пятнистых оленей [169, 170]. Были сообщения об увеличении отношения
корма к приросту живой массы (КМК, F/G) и среднесуточного прироста (СПВ,
ADG), на которые значительно повлиял уровень марганца в растущей норке. В
одном исследовании указывалось, что группа ученых обнаружила, что
добавление марганца в пищу для кроликов породы Рекс оказало значительное
влияние на отношения КМК (F/G) и СПВ (ADG) [169, 171]. В описываемом выше
исследовании были получены аналогичные результаты, которые подтвердили,
что при добавлении марганца в пищу значительно различались отношения КМК
(F/G) и СПВ (ADG) во всех исследуемых группах животных (таблица 10).
Возможно, что более высокое значение отношения СПВ (ADG) вызвано низким
значением отношения КМК (F/G), что является следствием лечения кроликов в

ВКР

Лист 61/132

течение всего периода эксперимента, а также причиной данного обстоятельства
является диета, включающая соответствующее количество марганца, которое
может привести к увеличению показателей роста кроликов. Следует отметить,
что обработка

корма кроликов не повлияла на потребление корма,

среднесуточный прирост и эффективность кормления бройлеров [172]. В
описываемом в данном разделе эксперименте содержание марганца в рационе
кроликов не повлияло на значение СПК (ADFI), однако содержание марганца
оказало влияние на значения КМК (F/G) и СПВ (ADG). Было обнаружено, что
содержание марганца в рационе овец снижает среднесуточное потребление
корма, хотя также были сообщения об отсутствии различий в уровнях
потребления или привесе для овец, получивших 0,0003 % марганца [173, 174].
Результаты исследования показали, что содержание марганца в рационе не
повлияло на значение СПК (ADFI) кроликов, однако содержание марганца
оказало влияние на значение СПВ (ADG). Также были сообщения о таком же
результате; эксперимент показал, что значение СПК (ADFI) не оказывает
влияние на период от осеменения до окота, хотя прибавка в весе была больше в
группе кроликов, у которых в корме содержался марганец, чем в группе в
который корм имел низкое содержание марганца.
В данном эксперименте среди кроликов породы Рекс лучшие показатели
роста были у группы D. Соответственно, добавление марганца в рацион может
улучшить показатели роста кроликов породы Рекс. Добавление марганца в
рацион кроликов способствует улучшению показателей роста кроликов породы
Рекс. Также было подтверждено, что добавление марганца влияет на
усвояемость питательных веществ и метаболизм азота, тем самым влияя на
усвоение питательных веществ, удержание и среднесуточный прирост кроликов
породы Рекс. Марганец является важным питательным веществом для

ВКР

Лист 62/132

правильного формирования костей и метаболизма липидов, аминокислот и
углеводов [175].
Марганец не оказывал влияние на СПК у кроликов породы Рекс в
эксперименте, но показатель СПВ (ADG) значительно отличался во всех
группах. Этот результат может быть связан с разной усвояемостью и усвоением
питательных веществ. Результаты эксперимента показали, что переваримость
сухого вещества и переваримость белка были самыми высокими у животных,
получивших рацион, содержащий 50 мг/кг Mn [176]. Результаты эксперимента
также не показали существенных различий в коэффициентах переваривания
(DCs) сухого вещества, EE, ADF, NDF и CP между контрольной группой и
другими группами (таблица 13). Исследования также показали, что рационы,
содержащие различные уровни марганца, не влияли на усвояемость питательных
веществ у молочных коров. Следует отметить, что улучшение показателей роста
кроликов породы Рекс после добавления марганца не связано с усвояемостью
питательных веществ у кроликов породы Рекс. Для дальнейшего изучения
влияния марганца в рационе на показатели роста кроликов породы Рекс были
проведены эксперименты по метаболизму азота, с целью изучения влияния
различных уровней марганца в рационе на метаболизм азота и найти идеальный
уровень марганца в рационе в период роста кроликов породы Рекс.
Ученые объяснили, что содержание азота в кале у всех групп кроликов
было одинаковым, но разные уровни марганца оказывали значительное влияние
на задержку азота в моче [169]. Также было доказано, что добавление марганца
способствует белковому метаболизму у ляонинских кашемировых коз [177].
Согласно исследованиям, оптимальные уровни марганца в рационе могут
снизить содержание азота в моче (RN) у кроликов и увеличить отложение азота
(RN), использование азота (NUR) и биологическую активность азота (NBV) у
кроликов породы Рекс (таблица 12). Оптимальные уровни диетического

ВКР

Лист 63/132

марганца могут снизить содержание азота в моче кролика породы Рекс, чтобы
улучшить пищеварение и скорость усвоения азота.
Снижение содержания азота в моче и увеличение отложения азота (RN),
использования азота (NUR) и биологической активности азота (NBV)
увеличивают показатель СПВ (ADG) и улучшают продуктивность кроликов
породы Рекс. Таким образом, оптимальные уровни марганца в рационе
увеличивают содержание белка в организме и улучшают продуктивность
кроликов породы Рекс за счет увеличения отложения азота.
Марганец – это микроэлемент, необходимый для живых существ. Было
подтверждено, что дефицит марганца приводит к повышению уровня
триглицеридов в сыворотке, а также было обнаружено, что марганец с пищей
может влиять на содержание и активность Mn-SOD, который является важным
компонентом [178, 179]. Как показано в таблице 11, уровни триглицеридов в
сыворотке постепенно снижались по мере увеличения количество марганца,
добавляемого в рацион. Mn-SOD сначала уменьшался, а затем увеличивался с
увеличением содержания марганца в рационе. Увеличение содержания марганца
в рационе первоначально препятствовало синтезу Mn-SOD в крови. По мере того
как содержание марганца в рационе продолжало увеличиваться, содержание MnSOD в крови увеличивалось, что свидетельствовало о восстановлении синтеза
Mn-SOD. Данные результаты показывают, что содержание марганца в рационе
может снизить содержание триглицеридов и Mn-SOD в сыворотке крови. В
предыдущих экспериментах сообщалось, что марганец участвует в метаболизме
липидов; у бородавочников, например, добавление марганца к корму уменьшает
толщину шпика [138, 180]. Из таблицы 14 видно, что марганец оказывает
влияние на процентное содержание жира у кроликов, хотя не влияет на другие
аспекты убойной продуктивности, за исключением тимусного индекса, который
был выше в группах, получивших марганец. Было показано, что марганец не

ВКР

Лист 64/132

приводит к изменению характеристик тушу у растущих и откормочных бычков.
Также были сообщения о том, что добавление марганца не влияет на
характеристики туши свиней [181, 182]. Триглицериды тесно связаны с жировым
обменом. Также было обнаружено, что марганец в рационе снижает содержание
триглицеридов в сыворотке, влияя на жировой обмен у кроликов породы Рекс. В
ходе этого эксперимента было обнаружено, что добавление марганца в рацион
может улучшить продуктивность и отложение азота у кролика, уменьшить
выбросы азота в окружающую среду и оказать значительное влияние на
триглицериды сыворотки и Mn-SOD. Предыдущие исследования подтвердили,
что марганец оказывает влияние на развитие костей [140 - 142]. Описываемые
выше эксперименты подтвердили, что содержание марганца в рационе не
оказывало существенного влияния на соотношение костей и мышц у кроликов,
но оказывало значительное влияние на прочность большой берцовой кости
кроликов, причем наилучший эффект наблюдался при добавлении марганца с
концентрацией 20 мг/кг. При секвенировании библиотеки кДНК тонкой кишки
плода крысы нашли белок, который при экспрессии значительно ингибировал
образование остеокластов и вызывал увеличение плотности костей; данный
белок называется белок OPG [183]. Также были проведены эксперименты в ходе
которых

использовали

антитела

OPG

или

RANKL

для

лечения

постменопаузального остеопороза, предотвращения воспалительной деструкции
кости, предотвращения расшатывания протеза и облегчения боли после
метастазирования опухоли [184]. Соответствующие уровни паратиреоидного
гормона в сыворотке оказывают терапевтическое воздействие на остеопороз, но
при значительном повышении устойчивых уровней паратиреоидного гормона
синтез OPG/RANKL остеобластами может подавляться, что приводит к
остеопорозу [185]. Данные эксперименты подтвердили, что уровни марганца в
рационе не оказывали существенного влияния на экспрессию гена RANKL,

ВКР

Лист 65/132

однако оказывали значительное влияние на экспрессию гена OPG. По мере
увеличения количества марганца уровень экспрессии становится все более
повышенным.

Увеличение

содержания

марганца

снижает

активность

остеокластов, что приводит к большему образованию костей, чем к их
резорбции, что в конечном итоге приводит к укреплению костей.
В связи с полученными ранее экспериментальными данными можно
сделать вывод, что оптимальное количество марганца в рационе кроликов
составляет 20 мг/кг.

ВКР

Лист 66/132

2 МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
2.1 Опытные животные и схемы опытов
Экспериментальная часть работы состояла из лабораторного и научнохозяйственного опытов, проведенных в период с 2021 по 2022 годы на кафедре
паразитологии и ветеринарно-санитарной экспертизы ФГБОУ ВО МГАВМиБ –
МВА имени К.И. Скрябина, в ветеринарной лаборатории ООО «НЕОВЕТ», в
ФГБУ «ВНИИЗЖ».
В научных исследованиях с целью изучения биологического действия
лекарственной питьевой добавки использовалась лекарственная питьевая
добавка «НиТамин».
Первая экспериментальная часть научно-исследовательской работы была
проведена в виварии кафедры паразитологии и ветеринарно-санитарной
экспертизы МГАВМиБ - МВА имени К.И. Скрябина с января по февраль 2022
года, с целью изучения влияния лекарственной питьевой добавки «НиТамин» на
изменения живого веса молодняка кроликов. Схема проводимого научноисследовательского эксперимента представлена в таблице 15.
Таблица 15 – Схема научно-исследовательского эксперимента
Группа

Количество
кроликов,
гол.

Эксперимент

Контроль

Рацион
Основной рацион + «НиТмин» в течение 4-х
дней, затем перерыв 2 недели; после перерыва
в течение 4-х дней основной рацион +
«НиТмин».
1 мл / 1 литр воды
Основной рацион без использования препарата
на весь период проведения исследования

ВКР

Лист 67/132

Биологическое действие лекарственной питьевой добавки «НиТамин»
изучали на 8 головах кроликов смеси пород Советской шиншиллы и
Новозеландской белой в лабораторных условиях. Экспериментальные и
контрольные кролики отбирались в возрасте 60 суток, сразу после отлучки от
матери животные были взвешены и разделены на экспериментальную и
контрольную группы, учитывая возраст, живую массу и пол кроликов.
Лекарственная питьевая добавка «НиТамин» добавлялась в воду для поения
кроликов.
Основными задачами данного научно-исследовательского эксперимента
являлись:
1) изучение влияния лекарственной питьевой добавки «НиТамин» на
изменения живого веса молодняка кроликов;
2) исследование влияния лекарственной питьевой добавки «НиТамин» на
внутренние органы молодняка кроликов;
3) исследование влияния лекарственной питьевой добавки «НиТамин» на
основные биохимические показатели крови кроликов.
Выполнение указанных выше задач было достигнуто исходя из данных
клинического осмотра, гематологических исследований, предубойного и
послеубойного осмотра тушек кроликов. Качество получаемого мяса было
определено на основании комплексов органолептических, химических и
гистоморфологических исследований.
2.2 Определение физиологических, весовых и гематологических показателей
кроликов
Клинический осмотр. За кроликами экспериментальной и контрольной
группы велось регулярное наблюдение. Обращалось внимание на активность

ВКР

Лист 68/132

поведения, количество корма, которое потребляли кролики, качество и вид
шерстного покрова, цвет слизистых оболочек, наличие и характер выделений из
носа, вид естественных оправлений. Регулярно измерялась температура тела,
частота пульса и дыхания.
С целью определения частоты пульса кроликов подсчитывалось число
ударов сердца в одну минуту в районе боковых стенок грудной клетки.
Определение частоты дыхательных движений происходит за счет подсчета
подъема и опускания грудной клетки кроликов за одну минуту.
Контрольное

взвешивание

кроликов

проводилось

перед

началом

проведения эксперимента. Результаты взвешивания кроликов на момент начала
эксперимента отражены в таблице 16.
Таблица 16 – Результаты контрольного взвешивания испытуемых кроликов
перед началом эксперимента
№ испытуемых
кроликов
1
2
3
4
5
6
7
8

Дата

m, кг

24.01.2022
24.01.2022
24.01.2022
24.01.2022
24.01.2022
24.01.2022
24.01.2022
24.01.2022

2,005
1,715
2,285
1,730
2,130
2,095
2,390
2,185

Далее, взвешивание кроликов проводилось на 9-й, 14-й, 28-й и 35-й дни
проведения эксперимента.
Отбор образцов и исследование крови. Забор крови у кроликов проводился
из краевой вены уха. Потирая ухо ладонями рук, слегка ударяя его кончиками
пальцев, вызывалась гиперемия. С помощью одноразового лезвия был удален

ВКР

Лист 69/132

пушок с уха, затем ухо протиралось 70 % спиртом. Сосуды набухали и четко
обозначались на поверхности ушной раковины. Ухо было покрыто тонким слоем
жидкого парафина (во избежание быстрого свертывания крови), затем иглой был
сделан прокол вены.
Кровь отбиралась в специализированные пластиковые пробирки для
клинического и биохимического анализа. Во избежание гемолиза, кровь была
набрана по стенке пробирки.
Исследования крови проводились в ветеринарной лаборатории ООО
«НЕОВЕТ».
Гематологические исследования проводились на специализированном
ветеринарном анализаторе HTI, позволяющем исследовать кровь от различных
видов животных.
Биохимические

исследования

крови

кроликов

проводились

на

профессиональных высокоточных автоматических анализаторах Furumo CA-180
и B-200, производство Япония. В лаборатории используются биохимические
реагенты премиум класса DIASYS, производство Германия.
2.3 Предубойный осмотр кроликов
На момент проведения убоя кролики были в возрасте 95 суток, такой
возраст является оптимальным для проведения убоя. Перед убоем кролики были
подвержены клиническому осмотру, взвешиванию, обращалось внимание на их
поведение, состояние волосяного покрова, видимых слизистых оболочек,
упитанности, на наличие выделений из естественных отверстий, подкожных
опухолей, некрозов на коже, судорог и параличей. При необходимости у
некоторых кроликов была измерена температура. Все кролики были подвержены
предубойной выдержке.

ВКР

Лист 70/132

Здоровые кролики имеют блестящий, гладкий волосяной покров,
выпуклые глаза. Они отличаются быстрыми и активными движениями и
удовлетворительной упитанностью. Температура тела колеблется от 36,5 до
39,5 C
̊ в зависимости от температуры окружающей среды.
Следует отметить, что у больных кроликов наблюдается исхудание,
взъерошенность волосяного покрова и облысение, гнойное и некротическое
поражение кожи, наличие бородавчатых образований в области носа и век,
чешуйчатых наложений на ушах и лапах, а также гиперемии, анемичности или
желтушности слизистых оболочек, конъюнктива, ринита, стоматита, истечений
из естественных отверстий и других патологических изменений.
С помощью клинического осмотра было установлено, что перед убоем все
кролики были клинически здоровы.
2.4 Методы ветеринарно-санитарной экспертизы мяса кроликов
В качестве материала для исследования использовались продукты убоя
кроликов, выращивавшиеся с применением лекарственной питьевой добавки
«НиТамин», а также тушки кроликов контрольной группы. Экспериментальные
исследования были проведены на кафедре паразитологии и ветеринарносанитарной экспертизы ФГБОУ ВО МГАВМиБ – МВА имени К.И. Скрябина, в
ветеринарной лаборатории ООО «НЕОВЕТ», в ФГБУ «ВНИИЗЖ».
Послеубойный ветеринарно-санитарный осмотр тушек кроликов был
проведен по общепринятой методике, согласно «Правила ветеринарного осмотра
убойных

животных

ветеринарно-санитарной

экспертизы

мяса

мясопродуктов» (Утв. Минсельхозом СССР 27.12.1983 г., с дополнениями и
изменениями от 1988 г.). В процессе проведения ветеринарно-санитарного
осмотра также осматривались головы, внутренние органы и лимфатические

ВКР

Лист 71/132

узлы. Особое внимание в процессе осмотра внутренних органов уделялось:
лёгкому, сердцу, печени, почкам и селезёнке. Перед проведением комплексных
лабораторных исследований тушки были помещены в холодильную камеру с
температурой от 0 до +4 ̊C на 48 часов для созревания мяса кроликов.
2.5 Методы органолептической оценки и определение морфологического
состава мяса кроликов
Характеристику тушкам кроликов (упитанность, запах, цвет мышечной
ткани и подкожного жира, состояние тушки, состояние костной системы) давали
согласно ГОСТ 27747-2016 «Мясо кроликов (Тушки кроликов, кроликовбройлеров и их части)».
Был определен сорт (1 или 2) тушек кроликов по: развитию мышц,
состоянию бедренной части, выступу остистых отростков спинных позвонков,
отложению жира на холке, в паховой полости и на почках. Определялась степень
обескровливания тушек, наличие побитостей и кровоподтеков.
Органолептические исследования (цвет, запах, консистенция варёного
мяса, а также пробу варкой с оценкой бульона) были определены согласно ГОСТ
20235.0-74 «Мясо кроликов. Методы отбора образцов. Органолептические
методы оценки качества».
Внешний вид и цвет поверхности тушки (наличие корочки подсыхания),
покровной и внутренней жировой ткани (цвет), состояние мышц на разрезе,
консистенцию мышц определяли путем визуального осмотра.
С целью изучения прозрачности и аромата бульона было вырезано по 25 г
мышц из области бедра, лопатки, спины и из места зареза, затем тщательно все
измельчено в ступке. 20 г полученного фарша помещалось в коническую колбу

ВКР

Лист 72/132

(100 см3) и заливалось дистиллированной водой (60 см3). Колба была закрыта
часовым стеклом и помещена на водяную баню на 10 минут.
Запах определялся в процессе нагревания до 80 – 85 ̊C. Из приоткрытой
колбы появлялись пары, определение происходило путем ощущения их аромата.
С целью определения прозрачности бульона, 20 см3 бульона переливалось в
мерный цилиндр (25 см3) и проводился визуальный осмотр.
После

проведения

оценки

органолептических

показателей,

была

произведена обвалка тушек кроликов с отделением и дальнейшим взвешиванием
мышечной, жировой и костной тканей.
2.6 Определение аминокислотного состава мяса кроликов
Исследования по изучению содержания аминокислот в мясе кроликов
проводились согласно нормативному документу М 04-38-2009 (Методика
измерений массовой доли аминокислот методом капиллярного электрофореза с
использованием системы капиллярного электрофореза «Капель»). Метод
основан на разложении проб кислотным или щелочным гидролизом с переводом
аминокислот в свободные формы, на дальнейшем их разделении и
количественном определении методом капиллярного электрофореза.
2.7 Методика гистологического исследования
Гистологические исследования

были

проведены

для

определения

характеристики микроструктурных показателей мышечной ткани, печени и
почек опытных и контрольных кроликов, идентификации компонентов,
анализируемых

образцов

соответствии

их

микроструктурными

ВКР

Лист 73/132

особенностями, а также установления этих компонентов на гистологических
препаратах.
В качестве образцов для гистологического исследования выступали
кусочки мышечной ткани (бедренной части), печени и почек кроликов,
отобранные сразу после убоя. Мышечная ткань была вырезана как из глубоких
слоев пробы, так и с захватом её поверхности. Отобранные образцы были
помещены для фиксации в раствор формалина с массовой долей формальдегида
10 %, взятый в десятикратном объеме к объему фиксируемых образцов, на 48
часов. Из полученных образцов были вырезаны кусочки размером 15х15х4 мм.
Зафиксированные образцы были промыты холодной проточной водой в
течение нескольких часов, после чего было проведено уплотнение парафином и
обезвоживание спиртами возрастающей концентрации (70̊, 80̊, 96̊, 100̊) по 24 часа
в каждом. Для удаления этанола образцы выдерживались в ксилоле. Затем
образцы помещались в парафин для заливки и выдерживались в термостате при
температуре 52 - 56 ̊C. Закрепленный образец был помещен в микротом и с
помощью микротомного ножа были сделаны срезы заданной толщины от 10 до
30 мкм.
Перед окрашиванием образцы освобождались от парафина, для этого
использовались: ксилол, спирт с понижением концентрации (100̊, 96̊, 80̊, 70̊),
воду по 2,5 минуты. Окрашивание срезов проводились двумя методами: окраска
гематоксилином и эозином, которая позволяет выявить почти все клетки и
многие неклеточные структуры (результаты окраски: ядра клеток - темно-синие,
цитоплазма -–окрашивается в красные тона различной интенсивности и оттенка),
и окраска по методу ван Гизона, позволяющая выявить неклеточные структуры
соединительной

ткани

(результаты

окраски:

коллагеновые

волокна

окрашиваются в ярко-красный цвет, элементы других тканей -–в желтый цвет).

ВКР

Лист 74/132

После окрашивания срез был заключен в канадский бальзам под покровное
стекло.

ВКР

Лист 75/132

3 ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТЬ
3.1 Описание эксперимента
Целью данной научно-исследовательской работы является изучение
влияния лекарственной питьевой добавки «НиТамин» на рост, развитие и
изменения во внутренних органах кроликов и на основные биохимические
показатели крови кроликов.
В данной научно-исследовательской работе в качестве испытуемых
животных выступал молодняк кроликов смеси пород Советской шиншиллы и
Новозеландской белой в количестве 8 особей: 4 самцов и 4 самок. Возраст
испытуемых кроликов составил два месяца. Испытуемые кролики показаны на
рисунках 4 – 9, а на рисунках 10 и 11 представлены кролики, относящиеся к
контрольной группе.

Рисунок 4 – Испытуемый кролик № 1

Рисунок 5 – Испытуемый кролик № 2

Рисунок 6 – Испытуемый кролик № 3

Рисунок 7 – Испытуемый кролик № 4

ВКР

Лист 76/132

Рисунок 8 – Испытуемый кролик № 5

Рисунок 9 – Испытуемый кролик № 6

Рисунок 10 – Кролик № 7, контрольная группа

ВКР

Лист 77/132

ВКР

Лист 78/132

Рисунок 11 – Кролик № 8, контрольная группа
Испытуемые кролики были разделены по половому признаку в целях
предотвращения их дальнейшего размножения. Научно-исследовательский
эксперимент проводился в специальном стерильном лабораторном помещении
на кафедре паразитологии и ветеринарно-санитарной экспертизы ФГБОУ ВО
МГАВМиБ – МВА имени К.И. Скрябина. Молодняк кроликов содержался в
специально оборудованных типовых клетках, оснащенных поилками и
кормушками (рисунок 12).
Следует отметить, что перед добавлением лекарственной питьевой
добавки «НиТамин» в воду, проводилось контрольное взвешивание каждого
кролика. Дневной рацион испытуемых кроликов состоял из комбикорма и воды,
средний показатель потребления кроликами комбикорма в день составил
примерно 700 г, средний показатель потребления воды в день составил 200 мл.

ВКР

Лист 79/132

Рисунок 12 – Специальные клетки для содержания молодняка кроликов
Перед проведением научно-исследовательского эксперимента с помощью
процедуры клинического осмотра было установлено, что в эксперименте
принимали участие только здоровые кролики.
Научно-исследовательский эксперимент длился в течение 37 календарных
дней. Взвешивание кроликов проводилось непосредственно перед началом
эксперимента, на 9-й, 14-й, 28-й и 35-й дни проведения эксперимента.
Добавление лекарственной питьевой добавки «НиТамин» в основной рацион
молодняка кроликов происходило в течение первых 5-ти дней исследования. На
14-ый день проведения эксперимента производилось повторное взвешивание
молодняка кроликов. Затем лекарственная питьевая добавка «НиТамин»
добавлялась в основной рацион в период с 18-го по 22-ой день проведения
эксперимента. Следующая процедура взвешивания проводилась на 28-й день

ВКР

Лист 80/132

проведения эксперимента. Заключительное взвешивание проводилось на 35-й
день эксперимента.
Анализ крови по основным биохимическим показателям испытуемых
кроликов проводился на 14-й, 35-й и 37-й день проведения эксперимента.
Описанный выше научно-исследовательский эксперимент схематично
изображен на рисунке 13.

Рисунок 13 – Схематичный вид проводимого научно-исследовательского
эксперимента
Перед убоем испытуемых кроликов был проведен предубойный осмотр
кроликов. После убоя испытуемых кроликов проводилось гистологическое
исследование внутренних органов: сердце, печень, почки, а также послеубойная
ветеринарно-санитарная экспертиза туш кроликов. Также было проведено
исследование безопасности мяса кроликов и изучение химического состава.

ВКР

Лист 81/132

3.2 Влияние добавления питьевой лекарственной добавки «НиТамин» на живую
массу кроликов
Дата начала эксперимента - 24.01.2022 года, результаты измерений живой
массы кроликов за различные периоды представлены в таблице 17.
Таблица 17 – Результаты измерений живой массы кроликов за различные
периоды
№
п/п

Дни измерения живой
массы

№ испытуемых кроликов

m, кг

1
2
3
4
5
6
7
8
1
2
3
4
5
6
7
8
1
2
3
4
5
6
7
8

2,01
1,72
2,29
1,73
2,13
2,10
2,39
2,19
2,65
2,41
3,13
2,34
2,95
2,86
2,98
2,96
3,02
2,65
3,54
2,62
3,42
3,29
3,44
3,27

ВКР

Лист 82/132

Продолжение таблицы 17

1
2
3
4
5
6
7
8
1
2
3
4
5
6
7
8

3,19
2,77
3,70
2,76
3,57
3,47
3,66
3,42
3,35
2,86
3,99
2,93
3,88
3,67
3,93
3,73

Исходя из полученных результатов измерений живой массы кроликов
можно отметить, что живая масса всех испытуемых кроликов в течение всего
периода проведения эксперимента значительно увеличилась. У всех испытуемых
кроликов наблюдалось увеличение живой массы от 50,6 % до 60,5 %, при этом
за данный период испытуемым кроликам № 7 и 8 питьевая лекарственная
добавка «НиТамин» не добавлялась и увеличение живой массы испытуемого
кролика № 7 составило 43,9 %, а прирост живой массы испытуемого кролика №
8 составил 49,6 %.
На основании полученных экспериментальных данных был построен
временной график зависимости живой массы кроликов от количества дней
эксперимента (рисунок 14).
Исходя из результатов данного эксперимента было установлено, что живая
масса всех испытуемых кроликов после добавления питьевой лекарственной
добавки «НиТамин» значительно возросла. В результате проведенного научнохозяйственного опыта на территории Московской государственной академии

ВКР

Лист 83/132

ветеринарной медицины и биотехнологии имени им. К.И. Скрябина,
установлено, что в течение всего экспериментального периода все кролики
нормально росли и развивались. Следует отметить, что пищевая возбудимость
кроликов была в пределах физиологической нормы. Температура тела кроликов,
частота пульса и число дыхательных движений находилось в пределах
физиологической нормы.

Рисунок 14 – График зависимости живой массы испытуемых кроликов от
количества дней эксперимента
Согласно проведенным ранее исследованиям установлено, что вес
кроликов породы Советской шиншиллы в возрасте 3 месяцев составляет
примерно 2,6 – 2,8 кг, в возрасте 4-х месяцев вес примерно равен 3,5 – 3,7 кг. По
окончании данного научно-исследовательского эксперимента, возраст кроликов
составил 3 месяца, при этом живая масса испытуемых кроликов составила 2,86 –
3,99 кг. Иными словами, добавление питьевой лекарственной добавки
«НиТамин» в основной рацион молодняка кроликов существенно ускоряет набор

ВКР

Лист 84/132

веса без нанесения вреда здоровью животным. Следует обратить внимание, что
увеличение живой массы кроликов, относящихся к контрольной группе, связано
с интенсивностью откорма.
Данные, полученные в результате проведение научно-исследовательского
эксперимента, свидетельствуют о том, что основные физиологические
показатели как опытных, так и контрольных животных были в пределах нормы,
а применение питьевой лекарственной добавки «НиТамин» не оказывает
отрицательного воздействия на клинические показатели кроликов.
3.3 Ветеринарно-санитарная экспертиза мяса кроликов
В результате предубойного осмотра животных было определено: общее
состояние – в пределах нормы; контуры тела – не изменены; шерстный покров –
гладкий, блестящий; слизистые оболочки – бледно-розового цвета; истечений из
естественных отверстий не наблюдалось.
Все испытуемые кролики перед убоем были ограничены в потреблении
пищи за 5 часов до убоя с целью освобождения желудочно-кишечного тракта,
также следует отметить, что за 3 часа до убоя кролики были ограничены в
потреблении воды.
Послеубойная

ветеринарно-санитарная

экспертиза

туш

органов

кроликов была проведена в соответствии с требованиями действующих «Правил
ветеринарного

осмотра

убойных

животных

ветеринарно-санитарной

экспертизы мяса и мясопродуктов» [186].
Основные этапы проведения послеубойного ветеринарно-санитарного
осмотра тушек и внутренних органов опытных и контрольных кроликов
представлены на рисунках 15 – 25.

ВКР

Лист 85/132

Рисунок 15 – Основной этап проведения послеубойного ветеринарносанитарного осмотра тушек и внутренних органов кроликов

Рисунок 16 – Основной этап проведения послеубойного ветеринарносанитарного осмотра тушек и внутренних органов кроликов

ВКР

Лист 86/132

Рисунок 17 – Основной этап проведения послеубойного ветеринарносанитарного осмотра тушек и внутренних органов кроликов

Рисунок 18 – Основной этап проведения послеубойного ветеринарносанитарного осмотра тушек и внутренних органов кроликов

ВКР

Лист 87/132

Рисунок 19 – Основной этап проведения послеубойного ветеринарносанитарного осмотра тушек и внутренних органов кроликов

Рисунок 20 – Основной этап проведения послеубойного ветеринарносанитарного осмотра тушек и внутренних органов кроликов

ВКР

Лист 88/132

Рисунок 21 – Основной этап проведения послеубойного ветеринарносанитарного осмотра тушек и внутренних органов кроликов

Рисунок 22 – Основной этап проведения послеубойного ветеринарносанитарного осмотра тушек и внутренних органов кроликов

ВКР

Лист 89/132

Рисунок 23 – Основной этап проведения послеубойного ветеринарносанитарного осмотра тушек и внутренних органов кроликов

Рисунок 24 – Основной этап проведения послеубойного ветеринарносанитарного осмотра тушек и внутренних органов кроликов

ВКР

Лист 90/132

Рисунок 25 – Основной этап проведения послеубойного ветеринарносанитарного осмотра тушек и внутренних органов кроликов
При проведении послеубойного ветеринарно-санитарного осмотра тушек
и внутренних органов опытных и контрольных кроликов каких-либо видимых
патологоанатомических изменений не обнаружено, степень обескровливания
хорошая, тушки имеют характерный светло-розовый цвет, подкожная и
внутренняя жировая ткань желтовато-белого оттенка (рисунок 26).

ВКР

Лист 91/132

Рисунок 26 – Послеубойная экспертиза тушек кроликов
Во время проведения послеубойной экспертизы тушек кроликов
измерялась живая масса тушек кроликов без внутренних органов. Результаты
взвешивания тушек кроликов представлены в таблице 18.
Таблица 18 – Результаты взвешивания тушек кроликов
№ испытуемых кроликов

m, кг

1,625

1,296

1,370

1,281

1,925

1,609

1,880

1,602

ВКР

Лист 92/132

После проведения послеубойного ветеринарно-санитарного осмотра была
проведена оценка продуктов убоя кроликов. Результат проведения оценки
продуктов убоя кроликов, а также характеристика тушек кроликов представлена
в таблице 19.
Таблица 19 – Характеристика тушек кроликов
Наименование показателя

Упитанность
(состояние мышечной ткани
и наличие жировых
отложений)

Запах
Цвет мышечной ткани
Цвет подкожного и
внутреннего жира
Состояние тушки
Состояние костной системы

Опыт (1-6)
Контроль (7-8)
Мышцы развиты хорошо.
Мышцы развиты хорошо.
Бедра выполнены хорошо,
Бедра выполнены хорошо,
округлены. Остистые
округлены. Остистые
отростки спинных
отростки спинных
позвонков не выступают.
позвонков слегка
Отложения жира на холке и выступают. Отложения жира
в паховой полости в виде
на холке и в паховой
утолщенных полос. Почки
полости в виде утолщенных
покрыты жиром до
полос. Почки покрыты
половины и более.
жиром до половины и более.
Тушки хорошо
Тушки хорошо
обескровлены. Побитости и обескровлены. Побитости и
кровоподтеки отсутствуют.
кровоподтеки отсутствуют.
Свойственный свежему мясу кроликов
Бледно-розовый до розового
Белый
Срывы полос жира на спине, не превышают 1/3 длины
тушки
Костная система не имеет переломов и деформаций

В результате проведения оценки продуктов убоя кроликов и исходя из
данных представленных в таблице 19, можно сделать следующий вывод: тушки
кроликов опытных и контрольной групп по упитанности и качеству обработки
соответствуют тушкам кроликов первого сорта согласно ГОСТ 27747-2016
«Мясо кроликов (Тушки кроликов, кроликов-бройлеров и их части)».
Было установлено, что на поверхности тушек кроликов опытной и
контрольной группы после созревания образуется корочка подсыхания бледнорозового цвета. Также наблюдалось образование серозной оболочки грудной и

ВКР

Лист 93/132

брюшной полостей, которая сохраняется определённое время влажной и
блестящей (таблица 20).
Таблица 20 - Органолептические показатели тушек кроликов
Наименование
показателей
Внешний вид
поверхности тушки
Внешний вид серозной
оболочки грудной и
брюшной полости
Мышцы на разрезе
Консистенция
Прозрачность и аромат
бульона

Группы кроликов
Опыт (1-6)
Контроль (7-8)
Имеет корочку подсыхания бледно-розового цвета
Влажная, блестящая
Слегка влажные (не оставляют влажного пятна на
фильтровальной бумаге, бледно-розового цвета с
красноватым оттенком)
Мышцы плотные, упругие, при надавливании
пальцем образующаяся ямка быстро
выравнивается; жир плотный
Прозрачный, ароматный

Из приведённых в таблице 20 данных можно сделать следующий вывод:
все органолептические показатели мяса кроликов, получавших питьевую
лекарственную добавку «НиТамин», и мяса контрольных животных не имеют
различий и характеризуют его как доброкачественное мясо кроликов,
отвечающее требованиям ГОСТ 20235.0-74 «Мясо кроликов. Методы отбора
образцов. Органолептические методы оценки качества».
3.4 Гистологическое исследование мышц, печени, сердца и почек кроликов
После проведения процедуры послеубойного ветеринарно-санитарного
осмотра тушек испытуемых кроликов был проведен осмотр внутренних органов

ВКР

Лист 94/132

кроликов с помощью органолептического метода исследования. Внутренние
органы кроликов представлены на рисунке 27.

Рисунок 27 – Внутренние органы кроликов
По внешним признакам внутренние органы кроликов имеют стандартную
форму без ярко выраженных отклонений и характерный запах. Внутренние
органы имеют цвет характерный для внутренних органов здоровых кроликов.
Следует отметить, что при использовании органолептического метода
исследования никаких отклонений не было выявлено.
Далее, проводилось гистологическое исследование мышечной ткани
кроликов.

Исследования

микроскопом.

мышечной

Полученные

ткани

изображения

представлены на рисунках 28 и 29.

кроликов
мышечной

проводилось
ткани

под

кроликов

ВКР

Лист 95/132

Рисунок 28 - Двуглавая мышца бедра кролика (Контроль). Гематоксилин и
эозин, окуляр х10, объектив х 40

Рисунок 29 - Двуглавая мышца бедра кролика (Опыт). Гематоксилин и эозин,
окуляр х10, объектив х 40
В результате проведения гистологического исследования мышечной ткани
кроликов

было

сформированы,

выявлено,
также

было

что

волокна

обнаружено,

мышечной
что

ткани

сохранена

компактно
поперечная

исчерченность, эндомизий компактный. Следует заметить, что строение
мышечной ткани у испытуемых кроликов была идентична.
В основе строения мышечной ткани лежат хорошо сформированные и
относительно компактно расположенные мышечные пучки, состоящие в свою
очередь из мышечных волокон, имеющих вытянутую форму, ровный контур и
преимущественно хорошо различимые границы. Окрашены мышечные волокна
равномерно в интенсивно розовый цвет. Ядра мышечных волокон имеют

ВКР

Лист 96/132

вытянутую или овальную форму, окрашены интенсивно, с четко выявляющимся
хроматином. Вокруг сарколеммы (клеточная мембрана) отдельных мышечных
волокон встречаются миосателлиты (одноядерная взрослая стволовая клетка
мышечной ткани), которые обычно наблюдаются при росте мышечных волокон.
Между пучками мышечных волокон в образцах опытной и контрольной
групп отслеживаются умеренно выраженные прослойки соединительной ткани,
которые состоят из небольшого количества фиброцитов, коллагеновых волокон
и сосудов. Диаметр сосудов не увеличен, в их просвете встречаются редко
расположенные эритроциты, а эндотелий имеет плоскую форму.
Гистологическими исследованиями структуры мышечной ткани опытной
и контрольной групп кроликов не отмечено нарушений строения мышечных
волокон.
Также было проведено гистологическое исследование печени кроликов.
Изображения печени кроликов в процессе проведения гистологического
исследования представлены на рисунках 30 и 31.

Рисунок 30 - Морфология печени кролика (Контроль). Гематоксилин и эозин,
окуляр х10, объектив х40

ВКР

Лист 97/132

Рисунок 31 - Морфология печени кролика (Опыт). Гематоксилин и эозин,
окуляр х10, объектив х40
В результате гистологического исследования печени кроликов было
обнаружено, что состояние гепатоцитов у всех испытуемых кроликов
одинаковое. Также следует заметить, что границы клеток печени кроликов четко
просматриваются.
Гистологические исследования печени кроликов опытной и контрольной
групп (рисунок 30 - 31) показали, что строма органа представлена тонкими
прослойками междольковой и портальной соединительной ткани с проходящими
в них сосудами и нервными волокнами. Дольчатость органа выражена. Балочное
строение сохранено, печеночные балки вытянутой в радиальном направлении
формы, в образцах опытной группы на больших участках среза они расположены
близко друг к другу, в образцах контрольной группы располагаются на
умеренном расстоянии друг от друга.
Гепатоциты печени кроликов опытной группы имеют округлую форму,
крупный размер, менее выраженные границы между клетками и неравномерно
окрашенную цитоплазму с выраженной зернистостью. У животных контрольной
группы гепатоциты имеют многогранную форму, средний размер, четкие
границы и относительно равномерно окрашенную цитоплазму со слабо

выраженной

зернистостью.

Ядра

гепатоцитов

четко

ВКР

Лист 98/132

просматриваются,

располагаются преимущественно в центре клеток, окрашены базофильно,
хроматин в них образует крупноглыбчатые диффузные скопления по всей
площади ядра. В гепатоцитах печени опытных кроликов ядра крупнее, чем у
кроликов из контрольной группы.
Диаметр центральных и портальных вен не увеличен, просвет их обычно
пуст. Эндотелий сосудов имеет плоскую форму. Синусоидные капилляры
хорошо визуализируются в печени контрольных кроликов и слабо видны в
печени опытных, просвет их узкий, кровенаполнение слабое как в центральных
участках, так и на периферии долек.
Затем было проведено гистологическое исследование сердца кроликов.
Морфологическая картина мышцы сердца контрольного кролика представлена
на рисунке 32, а морфологическая картина мышцы сердца испытуемого кролика
представлена на рисунке 33.

Рисунок 32 - Морфология мышцы сердца кролика (контроль). Гематоксилин и
эозин, ок. ×10 об. ×40

ВКР

Лист 99/132

Рисунок 33 - Морфология мышцы сердца кролика (опыт). Гематоксилин и
эозин, ок. ×10 об. ×40
В результате гистологического исследования мышцы сердца кроликов
было выявлено, что морфологическая картина миокарда у животных
контрольной и опытной групп не различается.
Кардиомиоциты располагаются пучками, приблизительно одинаковой
толщины, вытянутой прямоугольной формы при продольном сечении и
округлые при поперечном сечении, с чёткими контурами. Большинство
кардиомиоцитов как правого, так и левого желудочков сердца имеют средний
размер, относительно равномерно окрашенную оксифильную цитоплазму,
имеющую чётко выраженную продольную и поперечную исчерченность и
овально-вытянутые

нормохромные

ядра,

занимающие

клетке

преимущественно центральное положение. Признаки дистрофических и
некротических процессов в кардиомиоцитах не визуализируются. Крупные и
мелкие коронарные артерии и вены в состоянии умеренного полнокровия.
Эндотелий сосудов плоской формы, без признаков повреждения. Просвет
капилляров обычно пуст.
Структура миокарда не нарушена. Общее морфологическое состояние
отражает отсутствие в тканях патологических процессов.
Далее было проведено гистологическое исследование почек кроликов.
Морфологическая картина почки кролика контрольной группы представлена на

ВКР

Лист 100/132

рисунке 34, а морфологическая картина почки кролика опытной группы
представлена на рисунке 35.

Рисунок 34 - Морфология почек кролика (контроль). Гематоксилин и эозин,
окуляр х10, объектив х40

Рисунок 35 - Морфология почек кролика (опыт). Гематоксилин и эозин, окуляр
х10, объектив х40
В результате гистологического исследования почек кроликов было
обнаружено, что морфология почек кроликов опытной и контрольной групп не
нарушена.
Гистологические исследования почек кроликов опытной и контрольной
групп показали, что с поверхности орган покрыт относительно толстой, хорошо

ВКР

Лист 101/132

развитой соединительнотканной капсулой. Строма органа слабо развита и
хорошо выявляется только вокруг крупных кровеносных сосудов.
Почечные тельца нефронов округлой или овальной формы, среднего
размера. Они состоят из хорошо различимых сосудистых клубочков, капилляры
которых находятся в практически спавшемся состоянии, просветы их пусты и
содержат лишь небольшое количество эритроцитов. Эндотелиальные клетки
образуют стенки сосудов среднего размера, во всех образцах они имеют темные
овальные гиперхромные базофильные ядра. Капсула Боумена-Шумлянского в
почках животных опытной группы представляет собой узкую, иногда
практически неразличимую щель в форме полумесяца. В почках животных
контрольной группы капсула в большинстве почечных телец умеренно
расширена. Наружный слой капсулы представлен плоскими эпителиальными
клетками.
Нефроциты канальцев имеют призматическую форму, границы между
клетками хорошо выражены, цитоплазма - оксифильная, окрашена относительно
равномерно, с незначительной зернистостью. Ядра нефроцитов крупные, чётко
просматриваются, имеют округлую или овальную форму и располагаются
преимущественно в центре клеток. Просвет канальцев хорошо различим на
большинстве участков гистологических срезов, однако местами в просветах
встречаются слегка зернистые массы аморфного вещества.
Вокруг почечных канальцев располагаются перитубулярные капилляры,
стенка перитубулярных капилляров образована эндотелиоцитами уплощённой
формы, имеющими темные плоские ядра, без признаков повреждения.
Кровенаполнение сосудов умеренное.
В результате проведения гистологического исследования мышц, печени,
сердца и почек кроликов можно сделать следующий вывод: микроструктура
тканей мышц и внутренних органов (печени, почек и миокарда) кроликов при

ВКР

Лист 102/132

применении питьевой лекарственной добавки «НиТамин» находились в
пределах физиологической нормы. Общее морфофункциональное состояние
мышечной ткани и внутренних органов кроликов, получавших питьевую
лекарственную добавку «НиТамин» и животных контрольной группы отражает
их благополучие.
3.5 Гематологические исследования крови кроликов
Кровь – это основная составляющая внутренней среды организма, которая
отвечает

за

множество

функций:

транспортная,

дыхательная,

терморегуляторная, защитная, регуляторная и др. Физиологическое состояние
животных не может быть оценено в полном объеме без проведения
гематологических исследований [187, 188]. В связи с данным обстоятельством
были изучены основные показатели морфологических и биохимических
показателей крови.
При изучении общего анализа крови (ОАК) особое внимание уделялось
показателям гемоглобина, эритроцитов и лейкоцитов. Следует отметить, что при
взятии крови на анализ, кровь была взята из ушных вен. При этом образцы крови
молодняка кроликов были взяты на 14-й, 35-й и 37-й дни эксперимента.
Результаты средних значений показателей ОАК опытных и контрольных групп
кроликов за весь период исследований представлены в таблице 21.

ВКР

Лист 103/132

Таблица 21 – Результаты средних значений показателей общего анализа крови
(ОАК) молодняка кроликов
День
проведения
анализа
14
35
37

Показатели крови / ед. измерения
Эритроциты
Группа кроликов
Гемоглобин
Лейкоциты
(RBC) /
(Hb) / г/л
(WBC) / 109/л
12
10 /л
Экспериментальная
5,38
105,75
6,97
Контрольная
5,35
109,5
8,99
Экспериментальная
7,12
136
9,19
Контрольная
7,29
146
10,43
Экспериментальная
5,42
109,33
9,01
Контрольная
5,34
108
8,08

Исходя из данных, представленных в таблице 21, на 35-й день
исследования можно наблюдать увеличение содержания эритроцитов в крови у
кроликов экспериментальной группы на 24,43 %. Далее, на 37-й день
исследования происходит снижение содержания эритроцитов на 23,87 %.
Содержание эритроцитов на 35-й день исследования у кроликов, относящихся к
контрольной группе, увеличилось на 26,61 %. После чего содержание
эритроцитов, также, как и в случае с содержанием эритроцитов в крови кроликов,
относящихся к экспериментальной группе, у кроликов контрольной группы
снизилось на 26,74 %.
На 35-й день научно-исследовательского эксперимента наблюдалось
увеличение

уровня

гемоглобина

крови

кроликов,

относящихся

экспериментальной группе, на 22,24 %. На 37-й день эксперимента, уровень
гемоглобина в крови кроликов экспериментальной группы снизился на 19,61 %.
При этом уровень гемоглобина в крови кроликов контрольной группы на 35-й
день исследования вырос на 25 %. Далее, уровень гемоглобина в крови кроликов
контрольной группы снизился на 26,02 %.
Уровень содержания лейкоцитов в крови кроликов экспериментальной
группы на 35-й день проведения эксперимента увеличился на 24,15 %. На 37-й

ВКР

Лист 104/132

день исследования, содержание лейкоцитов в крови кроликов, относящихся к
экспериментальной группе, снизилось на 1,95 %. В крови кроликов контрольной
группы содержание лейкоцитов выросло на 13,8 %. При этом на 37-й день
исследования содержание лейкоцитов в крови кроликов контрольной группы
уменьшилось на 22,53 %.
Увеличение содержания эритроцитов, лейкоцитов, а также уровня
гемоглобина в крови кроликов свидетельствует о высоком уровне обмена
веществ в организме кроликов, а также о приросте живой массы кроликов.
Далее, был проведен анализ биохимических показателей сыворотки крови
кроликов (общий белок, АСТ, АЛТ, Альбумин, Глобулин). Биохимический
анализ

крови

относится

лабораторным

методам

исследования,

характеризующий функциональное состояние органов и систем организма
животного.
Аспартатаминотрансфераза (АСТ) и аланинаминотрансфераза (АЛТ),
содержащиеся внутри клеток организма, принимают активное участие в обмене
аминокислот. Ферменты АЛТ и АСТ главным образом содержатся в клетках
печени, почек, мышц и попадают в кровь из-за их повреждения или разрушения
[189].
Альбумины и глобулины относятся к белкам, которые содержатся во всех
тканях. В сыворотке крови содержится наибольшее количество именно этих
белков. Данные белки выполняют важнейшую транспортную роль и отвечают за
перенос гормонов, холестерола, билирубина, лекарственных веществ и тд.
Анализ

биохимических

показателей

сыворотки

крови

кроликов

проводился на 14-й и 35-й дни исследования. Средние значения биохимических
показателей сыворотки крови кроликов представлен в таблице 22.

ВКР

Лист 105/132

Таблица 22 - Средние значения биохимических показателей сыворотки крови
кроликов
Дни
проведения
анализа
14
35

Показатели крови / ед. измерения
Общий
Группа кроликов
АСТ, АЛТ, Альбум- Глобулбелок,
ед./л ед./л ин, г/л
ин, г/л
г/л
Экспериментальная
56,5
49,5 46,25
37,75
18,75
Контрольная
58
48
46
40
18
Экспериментальная
57
66,33 79,67
39
18
Контрольная
54
46
58
39
15

Результаты анализа биохимических показателей сыворотки крови
кроликов, представленных в таблице 22, показали, что уровень общего белка в
крови кроликов экспериментальных групп увеличилось на 0,87 %. Однако,
содержание общего белка в крови кроликов, относящихся к контрольной группе,
уменьшилось на 6,89 %.
Показатель

уровня

АСТ

у кроликов

экспериментальной

группы

увеличился на 25,37 %, а показатель АСТ в крови кроликов контрольной группы
уменьшился на 4,16 %.
Значение показателя АЛТ в крови кроликов экспериментальной группы
значительно увеличилось, на 41,94 %. В то время как значение показателя АЛТ
в крови кроликов контрольной группы увеличилось на 20,68 %.
Установлено,

что

содержание

альбумина

крови

кроликов

экспериментальной группы увеличилось на 3,2 %, а содержание альбумина в
крови кроликов контрольной группы уменьшилось на 2,5 %.
Обращая внимание на показатель глобулина в крови кроликов
экспериментальной группы можно наблюдать снижение уровня глобулина на 4
%. Показатель глобулина в крови кроликов контрольной группы уменьшился на
16,67 %.

МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА РФ

ВКР

Лист 106/132

Все изученные биохимические показатели крови кроликов опытных и
контрольной групп находились в пределах физиологической нормы. Однако,
следует отметить, что показатель АСТ у всех групп кроликов находится
значительно выше нормы. Также следует обратить внимание на показатель
Глобулина, который находится ниже нормы у всех групп кроликов.
Исходя из средних значений биохимических показателей сыворотки крови
кроликов за весь период проведения эксперимента можно увидеть, что
показатель АСТ имеет незначительное превышение нормы, в то время как
показатель Глобулина находится ниже нормы. У экспериментальной группы
кроликов можно наблюдать незначительный рост показателя общего белка.
Также можно наблюдать существенный рост показателя АСТ (25,4 %). Данную
тенденцию можно заметить для показателя АЛТ, однако у показателя АЛТ для
экспериментальной группы кроликов можно наблюдать более значительный
рост на 42 %. Показатель Альбумина у опытной и контрольной групп кроликов
не показал существенных изменений. Следует отметить, что показатель
Глобулина у опытной и контрольной групп имеет практически одинаковое
значение и при этом значение показателя Глобулина находится незначительно
ниже физиологической нормы.
3.6 Аминокислотный и химический состав мяса кроликов
Пищевая ценность мяса кроликов определяется в значительной степени от
химического состава. В химический состав мяса входят: белковые вещества –
полноценные белки; жиры – повышают пищевую ценность и калорийность мяса;
вода – снижает пищевую ценность и способствует быстрой порче мяса; углеводы
– гликоген, который играет огромную роль в процессе созревания мяса;
витамины;

экстрактивные

минеральные

вещества.

Соотношение

ВКР

Лист 107/132

вышеуказанных веществ в мясе изменяется в зависимости от породы, пола,
возраста, качества питания, упитанности и многих других факторов влияющих
на животных. По содержанию белка, жира, влаги и других веществ определяются
качественные показатели мяса [190].
Исследование химического состава и содержания аминокислот в мясе
кроликов проводилось для одного кролика из опытной группы и для кролика из
контрольной группы. Данные исследования проводились в ФГБУ «ВНИИЗЖ», в
период с 13.07.2022 – 01.08.2022 г.
Результаты исследований химического состава тушек кроликов опытной и
контрольной групп представлены в таблице 23.
Таблица 23 – Химический состав тушек кроликов
Показатели
Витамин В1
Витамин В6
Витамин Е
Массовая доля белка
Массовая доля жира
Массовая доля золы, не
растворимой в соляной
кислоте с массовой
долей 10 %
Железо
Селен

Единица
измерения

Группы животных

мг/100 г
мг/100 г
мг/100 г
%
%

Контрольная
0,1
0,12
0,03
18 ± 3
7,3 ± 1,1

Опытная
0,1
0,15
0,04
20 ± 3
5,5 ± 0,8

0,19

0,16

мг/кг
мг/кг

5
0,298

69
0,207

Результаты исследования химического состава мяса кроликов показали,
что у мяса кролика из опытной группы и у мяса кролика контрольной группы
содержание витамина В1 имеет одинаковое значение. При этом можно
наблюдать небольшое увеличение содержания витамина В6 в мясе кролика
контрольной группы до 0,15 мг/100 г. Также следует отметить, что содержание

ВКР

Лист 108/132

витамина Е в мясе кроликов из опытной и контрольной групп имеют небольшое
расхождение. В мясе кролика из опытной группы можно наблюдать снижение
содержания массовой доли белка до 18 %, в то время как массовая доля жира в
мясе кролика из опытной группы увеличилось до 7,3 %. Показатель массовой
доли золы, не растворимой в соляной кислоте с массовой долей 10 %, имеет
самое большое значение в мясе кролика опытной группы и достигает 0,19 %.
Однако стоит отметить, что очень высокое содержание железа можно наблюдать
в мясе кролика из контрольной группы, которое составляет 69 мг/кг. Самый
высокий показатель содержания селена можно наблюдать в мясе кролика из
опытной группы, содержание селена в мясе кролика из опытной группы
составило 0,298 мг/кг.
Питательность белков мяса и их биологическая ценность зависит от
количественного соотношения содержащихся в них аминокислот.
Синтез белков, нуклеиновых кислот, ферментов, гормонов и других
биологически активных веществ в организме происходит под действием
аминокислот, которые играют важнейшую роль в азотистом обмене [191].
Результаты исследований содержания аминокислот в мясе кроликов
представлены в таблицах 24 и 25.
В мясе кролика из опытной группы и в мясе кролика из контрольной
группы было установлено наличие полного набора как незаменимых
аминокислот: валин, гистидин, лизин, лейцин, триптофан, метионин, треонин,
фенилаланин (таблица 24), так и заменимых аминокислот: аланин, аргинин,
глицин, аспарагин, глутамин, пролин, серин, тирозин, цистин (таблица 25).

МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА РФ

ВКР

Лист 109/132

Таблица 24 – Содержание незаменимых аминокислот в мясе кроликов
Показатели
Валин
Гистидин
Лизин
Массовая
доля лейцина
и изолейцина
(суммарно)
Массовая
доля
триптофана
Метионин
Треонин
Фенилаланин
Сумма

Единица
измерения

Группы животных

%
%
%

Контрольная
0,8 ± 0,3
0,5 ± 0,2
1,5 ± 0,5

Опытная
0,8 ± 0,3
0,5 ± 0,2
1,6 ± 0,5

2,0 ± 0,5

2,1 ± 0,5

0,21 ± 0,06

%
%
%
%

0,5 ± 0,2
0,8 ± 0,3
0,9 ± 0,3
7,21

0,5 ± 0,2
0,8 ± 0,3
0,9 ± 0,3
7,2

Результаты исследования содержания незаменимых аминокислот в мясе
кроликов, представленные в таблице 24, показали практически равные значения
для мяса кроликов опытной и контрольной групп. Однако следует отметить, что
содержание массовой доли триптофана для мяса кролика из контрольной группы
не удалось определить.
Таблица 25 – Содержание заменимых аминокислот в мясе кроликов
Показатели

Единица
измерения

Аланин
Аргинин
Глицин

%
%
%

Группы животных
Контрольная
1,2 ± 0,3
1,2 ± 0,5
0,9 ± 0,3

Опытная
1,1 ± 0,3
1,1 ± 0,4
0,8 ± 0,3

Продолжение таблицы 25
Массовая
доля
аспарагина и
%
аспарагиновой
кислоты
(суммарно)
Массовая
доля
глутамина и
%
глутаминовой
кислоты
(суммарно)
Пролин
%
Серин
%
Тирозин
%
Цистин
%
Сумма
%

ВКР

Лист 110/132

2,0 ± 0,8

3,1 ± 1,3

3,1 ± 1,2

0,7 ± 0,2
0,7 ± 0,2
0,6 ± 0,2
0,3 ± 0,1
10,7

0,7 ± 0,2
0,7 ± 0,2
0,7 ± 0,2
0,3 ± 0,1
10,5

Результаты исследования содержания заменимых аминокислот в мясе
кроликов, представленные в таблице 25, также показали практически
одинаковые значения.

ВКР

Лист 111/132

ЗАКЛЮЧЕНИЕ
Исходя из проведенных научных исследований и полученных результатов
сформулированы следующие выводы:
1. Добавление лекарственной питьевой добавки «НиТамин» в основной
рацион молодняка кроликов, возрастом в 3 месяца, стимулирует изменения в
организме кроликов, которые способствуют двукратному увеличению скорости
набора живой массы молодняка кроликов без нанесения вреда здоровью
животных.
2. Тушки кроликов опытных и контрольной групп по упитанности и
качеству обработки соответствуют тушкам кроликов первого сорта.
3. Все органолептические показатели мяса кроликов, получавших
питьевую лекарственную добавку «НиТамин», и мяса контрольных животных не
имеют различий и характеризуют его как доброкачественное мясо кроликов.
4. Основные показатели крови кроликов: эритроциты, лейкоциты и
гемоглобин, свидетельствуют об повышении уровня обмена веществ, что в свою
очередь связано с увеличением живой массы кроликов.
5. Добавление лекарственной питьевой добавки «НиТамин» в основной
рацион

молодняка

кроликов

привело

незначительному

увеличению

содержания витамина B6, витамина E, массовой доли белка и железа.
6. Данные полученные в результате проведения химического анализа мяса
кроликов

свидетельствуют

потребляемых

белковых и

об

улучшении

химических

усвоения

переваривания,

компонентов, содержащихся

лекарственной питьевой добавке «НиТамин», что, в свою очередь, привело к
повышению пищевой ценности мяса кроликов.
7. После окончания проведения органолептического метода исследования
можно сделать вывод о том, что внутренние органы кроликов опытной группы

ВКР

Лист 112/132

имеют характерный цвет и запах, присущий внутренним органам здорового
кролика. Данное обстоятельство доказывает, что лекарственная питьевая
добавка «НиТамин» не оказывает влияние на внешний вид внутренних органов
кроликов.
8. Исходя из результатов проведения гистологического исследования
мышечной ткани двуглавой мышцы бедра кроликов можно сделать вывод о том,
что в строении мышечных волокон не было отмечено никаких нарушений.
9. Полученные в ходе проведения гистологического исследования
результаты позволяют сделать выводы о том, что в печени контрольных
кроликов синусоидные капилляры чётко видны, однако у испытуемых кроликов
синусоидные капилляры плохо видны, просвет узкий, кровенаполнение слабое
как в центральных участках, так и на периферии долек.
10. Результаты проведения гистологического исследования сердца
кроликов позволяют сделать вывод о том, что структура миокарда не нарушена,
общее морфологическое состояние мышц сердца кроликов доказывает
отсутствие в тканях патологических процессов.
11. По окончании проведения гистологического исследования почек
кроликов можно сделать выводы о том, что вокруг почечных канальцев
располагаются

перитубулярные

капилляры

стенка

которых

образована

эндотелиоцитами уплощённой формы, которые имеют тёмные плоские ядра без
признаков повреждения, при этом кровенаполнение сосудов умеренное.

ВКР

Лист 113/132

СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННЫХ ИСТОЧНИКОВ
1. Плотников В.Г. Разведение, кормление и содержание кроликов / В.Г.
Плотников, Н.М. Фирсова. – М.: Агропромиздат, 1989. – 223 с.
2. Плотников В.Г. Истоки и составляющие технологической культуры в
кролиководстве / В.Г. Плотников // Кролиководство и звероводство. – 2005. – №
4. – С. 20.
3. Уткин Л.Г. Кролиководство / Л.Г. Уткин. – М.: Агропромиздат, 1987. 208 с.
4. Маркин М.М. Перспективы развития промышленного кролиководства и
его технологические риски / М.М. Маркин // Управление рисками в АПК. - 2015.
– № 2. - С. 18-27.
5. Бекетов С.В. Будущее отрасли за промышленным кролиководством /
С.В. Бекетов // Кролиководство и звероводство. - 2014. - № 5. - С. 8-11.
6. Ерин А.Т. Приусадебное кролиководство и нутриеводство / А.Т. Ерин,
В.Г. Плотников, Е.И. Рыминская. – Минск: Ураждай, 1990. – 382 с.
7. Помытко В.Н.Учебная книга кроликовода / В.Н. Помытко, В.Н.
Александров. – М.: Агропромиздат, 1985. - 256 с.
8. Сысоев В.С. Кролиководство / В.С. Сысоев, В.Н. Александров // М.:
Агропромиздат. - 1985. – 271 с.
9. Rosell J.M. Causes of mortality in breeding rabbits / J.M.Rosell, L.F.de la
Fuente // Preventive Veterinary Medicine. - 2016. – Vol. 127. – P. 56-63.
10. Лактионов К.С. Физиология питания кроликов и пути повышения
степени использования кормов / К.С. Лактионов. – Орёл: Орловский ГАУ, 2007.
– 164 с.
11. Сысоев В.С. Приусадебное кролиководство / В.С. Сысоев.- М.:
Росагропромиздат, 1990. – 190 с.

ВКР

Лист 114/132

12. Калугин Ю.А. Кормление кроликов / Ю.А. Калугин. - М.:
Агропромиздат. - 1985. - 112 с.
13. Калугин Ю.А. Биологические особенности кроликов / Ю.А. Калугин. –
М.: ФГБОУ ВПО МГАВМБ, 2012. - 36 с.
14. Калугин Ю.А. Пищеварение у кроликов / Ю.А. Калугин //
Кролиководство и звероводство. – 2009. - № 4. – С. 31-30.
15. Ковальский В.В. Изменчивость обмена веществ у животных,
вызываемая естественными химическими факторами среды / В.В. Ковальский //
Вестник с.-х. науки. - 1971. - № 1. - С. 64-73.
16. Основы питания и кормления сельскохозяйственных животных / В.Г.
Рябчиков // - Краснодар: КубГАУ, 2012 – 328 с.
17. Fernández-Carmona J. Effect of diet composition on the production of rabbit
breeding does housed in a traditional building and at 30°C / J. Fernández-Carmona,
C.Cervera, C.Sabater // Animal Feed Science and Technology. - 1995. – Vol. 52. – P.
289-297.
18. Практикум по физиологии сельскохозяйственных животных / И.П.
Битюков, В.Ф. Лысов, Н.А. Сафонов // – М.: Агропромиздат, 1990. – 256 с.
19. Белов А.А. Технология содержания кроликов на мелкотоварных
фермах / А.А. Белов, А.В. Трифанов // Инновации в сельском хозяйстве. – 2014.
- № 5. – С. 108-112.
20. Вагин Е.А. Кролики, нутрии и птица в приусадебных и крестьянских
хозяйствах / Е.А. Вагин, Р.П. Цветкова. – М.: Ириус, 1991 – 191 с.
21. Емельянов А.Ю. Кролиководство в Китае / А.Ю. Емельянов //
Кролиководство и звероводство. - 2014. – № 3. - С. 29-32.
22. Куликов Н.Е. Потребность молодняка в минеральных веществах / Н.Е.
Куликов, Е.Н. Морозова, B.C. Александрова // Кролиководство и звероводство. 1985. - № 1. - С. 14.

ВКР

Лист 115/132

23. Nowland M.H. Biology and Diseases of Rabbits / M.H. Nowland, D.W.
Brammer, A. Garsia // Laboratory Animal Medicine (Third Edition). - 2015. – P. 411461.
24. Балакирев Н.А. Кролиководство / Н.А. Балакирев, Е.А. Тинаева. – М.:
КолосС, 2007. - 232 с.
25. Matics Zs. Effect of housing conditions on production, carcass and meat
quality traits of growing rabbits / Zs. Matics, Zs. Szendrő, M. Odermattb // Meat
Science. – 2014. – Vol. 96. – P. 41-46.
26. Лактионов К.С. Кролиководство в России и за рубежом. Современное
состояние и перспективы развития / К.С. Лактионов, О.В. Тимохин // Вестник
Орловского государственного аграрного университета. - 2009. – № 2. - С. 26-27.
27. Вачугов В.И. Работаем с мясными породами / В.И. Вачугов //
Кролиководство и звероводство. – 1980. – № 5 – С. 9.
28. Ульихина Л.И. Справочник кроликовода от А до Я / Л.И. Ульяхина. –
М.: Аквариум-Принт, 2009. – 256 c.
29. Телишевская Л.Я. Белковые гидролизаты. Получение, состав,
применение / Л.Я. Телишевская. - М.: Аграрная наука, 2000. - 295 с.
30. Agustin B. Genetics of growth, carcass and meat quality in rabbits / B.
Agustin, N. István, H. Pilar // Meat Science. – 2018. – Vol. 145. – P. 178-185.
31. Dalle Zotte A. Rabbit farming for meat purposes / A. Dalle Zotte // Animal
Frontiers. – 2014. - Vol. 4. - P. 62-67.
32. Александров С.Н. Кролики: разведение, выращивание, кормление /
С.Н. Александров, Т.И. Косова. - М.: АСТ, Сталкер, 2004. – 119 с.
33. Житникова Ю. Кролики: породы, разведение, содержание, уход [Текст]
/ Ю. Житникова. – Ростов н/Д: Феникс, 2004. – 256 с.

ВКР

Лист 116/132

34. Калашников А.П. Нормы и рационы кормления сельскохозяйственных
животных: Справочное пособие [Текст] / А.П. Калашников, Н.И. Клейменов,
В.Н. Баканов [и др.] – М.: Агропромиздат, 1985. – 352 с.
35. Квартникова Е.Г. Актуальные проблемы кормления клеточных
пушных зверей и пути их решения [Текст] / Е.Г. Квартникова // Достижение
науки и техники АПК. – 2012. – №4. –С. 35-38.
36. Ковалев Ю.Н. Кролиководство: учебное пособие для обучения
учащихся в образовательных учреждениях [Текст] / Ю.Н.Ковалев. – М.:
ACADEMIA, 2004. – 188 с.
37. Александров В.Н. Уровень энергетического питания молодняка
кроликов [Текст] / В.Н. Александров, В.С. Александрова, К.Н. Морозова, Т.Л.
Чичкова // Кролиководство и звероводство. – 2004. – №3. – С. 9-11.
38. Богданов Г.А. Кормление сельскохозяйственных животных: учебное
пособие [Текст] / Г.А. Богданов. – 2-е изд., перераб. и доп. – М.: Агропромиздат,
1990. – 624 с.
39. Бодур И.Д., Кролиководство [Текст] / И.Д. Бодур, И.Е. Кривчанский. Ташкент: Мехнат, 1980. – 158 с.
40. Балакирев Н.А. Корма и кормление кроликов [Текст]: монография /
Н.А. Балакирев, Р.М. Нигматуллин, М.А. Сушенцова. – М.: Издательский дом
«Научная библиотека», 2015. – 268 с.
41. Балакирев Н.А. Нормы кормления и нормативы затрат кормов для
пушных зверей и кроликов [Текст]: Справочное пособие / Н.А. Балакирев, В.Ф
Кладовщиков. – М., 2007. – 185 с.
42. Косова Т.И. Кролики: разведение, выращивание, кормление [Текст]
/Т.И. Косова, С.Н. Александров. – АСТ, Сталкер. – 2011. – 160 с.
43. Александрова В.С. Нормы и рационы кормления кроликов и нутрий
[Текст] / В.С. Александрова // Сборник научных трудов РАСХН, ГНУ НИИ

ВКР

Лист 117/132

пушного звероводства кролиководства им. В.А. Афанасьева, Московская
область. – 2001. – С. 4-29.
44. Дармограй Л.М. Конверсия корма и производительные показатели
молодняка кроликов при различном количестве дрожжей [Текст] / Л.М.
Дармограй, М.С. Шевченко, И.С. Лучин // Научный вестник Львовского
национального университета вет. медицины. – 2014. – Т 16. – № 3 (60). – Ч. 3. –
С. 93-100.
45. Балакирев Н.А. Кормление клеточных пушных зверей и кроликов
[Текст] / Н.А. Балакирев, Д.Н. Передельник, И.Ф. Драганов. – 2-е изд. доп. и
перераб.- М.: «Лань», 2014. – 272 с.
46. Лисицын Н.Н. Кролиководство: учебное пособие [Текст] / Н.Н.
Лисицын, И.С. Серяков. – Белорус. гос. с.-х. акад. – Горки, 2002. – 155 с.
47. Ahmed M. K., Bargue A. R., Nawaz H. and Siddiqui R. H. (1994). Effect of
varying energy and protein levels of the haematology of Japanese quail. Pakistan Vet.
Journal. 14(4): p.200-202.
48. Amici A., Canganella F., Bevilacqua L. 1998. Effects of high ambient
temperature in rabbits: metabolica changes, caecal fermentation and bacterial flora.
World Rabbit Science, 6 (3-4), p.319-324.
49. De Blas C., Wiseman J., eds. Nutrition of the rabbit. 2nd ed. CAB
International, Wallingford. 2010, 325 р.
50. Tazzoli M., Trocino A., Birolo G. et al. Optimizing feed efficiency and
nitrogen excretion in growing rabbits by increasing dietary energy with high-starch,
highsoluble fibre, low-insoluble fibre supply at low protein levels // Livestock Science.
2015. Vol. 172. p. 59-68.
51. Хохрин С.Н. Корма и кормление животных: учебное пособие [Текст] /
С.Н. Хохрин. – СПб.: Изд-во «Лань», 2002. – 512 с.

ВКР

Лист 118/132

52. Хохрин С.Н. Кормление животных с основами кормопроизводства
[Текст]: учебник / С.Н. Хохрин, К.А. Рожков, И.В. Лунегова. – СПб: проспект
науки, 2016. – 687 с.
53. Матюнова Е.В. В год кролика – о кролике [Текст] / Е.В. Матюнова, К.Н.
Ларичева // Успехи современного естествознания. – 2011. – №8. – С.217.
54. Щасливый Р.А. Продуктивность молодняка кроликов при различных
источников жира в комбикорме [Текст] / Р.А. Щасливый, М.И. Голубев //
Научный вестник Львовского национального университета ветеринарной
медицины и биотехнологии. – 2014. – Т. 16. – №3. – С. 233-239.
55. Li F., Jiang W., Wang J. Effects of crude protein level on production
performance of Rex Rabbit // Chinese J. Rabbit Farming, 2002. – p.3-24.
56. Нетрадиционные корма и биологически активные вещества в рационах
пушных зверей и кроликов / Под ред. Н. А. Балакирева, М. М. Мухамедянова;
Рос. акад. с.х. наук. Всерос. науч.-исслед. ин-т охотничьего хозяйства и
звероводства (ВНИИОЗ) им. проф. Б. М. Житкова, Науч.-исслед. ин-т пушного
звероводства и кролиководства (НИИПЗК) им. В. А. Афанасьева. – Киров, 2000.
– 66 с.
57. Ульянов А.Г. Условия кормления кроликов в ООО «Воронежский
кролик» [Текст] / А.Г. Ульянов // Сборник материалов научно-практической
конференции. – 2009. – С. 21-22.
58. Lebas F., 2000. Granulométrie des aliments composes et fonctionnement
digestif du lapin. Inra Prod. Anim. , 13, p.109-116.
59. Lebas F. Estimation of digestible energy content and protein digestibility of
raw materials by the rabbit, with a system of equations. Proceedings 11th World Rabbit
Congress - June 15-18, 2016 - Qingdao - China, p.293-296 + Presentation.

МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА РФ

ВКР

Лист 119/132

60. Андреев С.Ю. Современные проблемы и перспективы развития
кролиководства на Кубани [Текст] /С.Ю. Андреев // IX Всероссийский сборник
статей по материалам конференции КубГАУ. – Краснодар. – 2015. – С. 977-979.
61. Fawcett J. A., Scott J. E.; J. Clin. Path., 1960, 13, p. 156-159.
62. Fossati P., etal., Clin. Chem., 1980, vol.26/2, р.227-229.)
63. Семенов Б.А. Животноводство: учебное пособие [Текст] / Б.А.
Семенов,

О.Д.

Кононов,

Архангельский

государственный

технический

университет. – Архангельск: Изд-во АГТУ, 2003. – 48 с.
64. Тинаев Н.И. Особенности рациона кроликов при смешанном типе
кормления [Текст] / Н.И. Тинаев // Кролиководство и звероводство. – 2005. – №3.
– С. 26-27.
65. Lebas F. Quelques pistes pour améliorer la productivity et la rentabilité d'un
élevage commercial de lapin’s. François LEBAS Directeur de Recherches honoraire
INRA Association "Cuniculture" - France http://cuniculture.info VISEU – 19 oct.
2017, – p.1-38.
66. Рулева Т.А. Правильное кормление кроликов [Текст] / Т.А. Рулева,
Н.Ю. Сарбатова // Молодой ученый. – 2016. – №3(107). – С. 430-432.
67. Калугин Ю.А. Влияние уровня клетчатки в рационе ремонтных
крольчих на активность ферментов в сыворотке крови [Текст] / Ю.А. Калугин //
Сборник трудов. – Москва. – 2009. – С. 67-69.
68.

Михайлов

И.Н.

Имеющий

уши

да

здравствует.

Методика

акселерационного кролиководства. – СПб, Август. – 2003. – 245 с.
69. Nse Abasi, N.Etim, Enyenihi Glory, E., Akpabio Uduak, Offiong Edem, E.
A. Effects of nutrition on haematology of rabbits: a review // European Scientific
Journal. 2014, 10(3): p.413-424.

ВКР

Лист 120/132

70. Калугин Ю.А. Влияние разных рационов на переваримость
питательных веществ и обмен азота у крольчих [Текст] / Ю.А. Калугин //
Сборник научных трудов ВНИИГВиК. – 1978. – Т. 17. – С. 24-27.
71. Подольников В.Е. Кормление домашних животных [Текст] : учебное
пособие / В.Е. Подольников. – Брянск, 2014. – С. 72.
72. Помытко В.Н. Пушное звероводство и кролиководство [Текст] / В.Н.
Помытко, Г.М. Дивеева, Л.Г. Уткин, В.К. Юдин. – М.: Агропромиздат, 1988. –
184 с.
73. Нигматуллин Р.М. Происхождение и генетическая классификация
пород кроликов [Текст] / Р.М. Нигматуллин // Информационный вестник
ВОГиС. – Новосибирск, 2007. – Т. 11. – № 1. – С. 221-227.
74. Обухов Г.В. Особенности кормления различных физиологических
групп [Текст] /Г.В. Обухов, Т.В. Сарапулова // Вестник биотехнологии. – 2016. №3. – С. 6.
73. Коцюбенко А.А. Влияние организованных факторов на откормочные
качества кроликов [Текст] / А.А. Коцюбенко // Вестник Красноярского
государственного аграрного университета. – 2013. – №5. – С. 162-167.
74. Печенкин Е.В. Мясная продуктивность кроликов разных пород [Текст]
/ Е.В. Печенкин, А.А. Сагиров, О.В. Горелик // Известия Оренбургского ГАУ. –
2014. – С. 127-129.
75. Разведение с основами частной зоотехнии [Текст]: Учебник для вузов /
Под общ. ред. проф. Н.М. Костомахина. – СПб.: Издательство «Лань», 2006. –
448 с.
76. Пашкова В.Г. Биология и кормление кроликов [Текст]/ В.Г. Пашкова,
С.Я. Михайленко // Сборник статей. – 2003. – С. 145-149.

ВКР

Лист 121/132

77. Передельдик Н.Ш. Кормление пушных зверей [Текст] / Н.Ш.
Передельдик, Л.В. Милованов, А.Т. Ерин. –2-е изд. перераб. и доп. – М.: Колос,
1981. – 335 с.
78. Романов Г.А. Цеолиты [Текст] / Г.А. Романов // Комбикормовая
промышленность. – 1992. – №6. – С. 27- 29.
79. Lebas F. Nutrition with a special emphasis on feed ingredients utilization
reflections on rabbit. In: World Rabbit Congress, 7-10 September, Puebla, Mexico,
Colegio de Postgraduados for WRSA, 2006. – p.423-426.
80. De Blas C., García J., Carabano R. Role of fibre in rabbit diets. // A rev. Ann.
Zootech. – 1999. - 48, p.3-13.
81. Лактионов К.С. Переваримость клетчатки у кроликов / К.С. Лактионов,
В.В. Барышев // Тезисы докладов Всероссийской научной конференции. – Орел,
1997. – С. 22-24.
82. Лактионов К.С. Особенности переваривания клетчатки у кроликов в
зависимости от возраста и условий кормления [Текст] / К.С. Лактионов //
Материалы Всероссийской научно-практической конференции. – Орел. – 2002. –
С. 60-65.
83. Лактионов К.С. Симбионтное пищеварение у кроликов и пути
увеличения использования углеводов кормов [Текст] : дисс. на соиск. уч. степени
доктора биолог. наук : 03.00.13/ К.С. Лактионов. – Белгород. – 2009. – 302 с.
84. Колмацкий В.И. Эффективное кролиководство [Текст] / В.И.
Колмацкий [и др.]. – Ростов н/Д.: Феникс, 2014. – 238 с.
85.

Голубев М.И. Переваримость питательных веществ в организме

молодняка кроликов при различных уровнях сырой клетчатки в комбикорме
[Текст] /М.И. Голубев, Ю.В. Позняковский // Научный вестник Львовского
национального университета вет. медицины. – 2015. –Т. 17. – №3. – С. 144-148.

ВКР

Лист 122/132

86. Калугин Ю. Грубые корма как добавка к гранулированным смесям для
кроликов [Текст] / Ю. Калугин // Кролиководство. – 2005. – №3. – С. 14-15.
87. Lebas F. 2004. Reflections on rabbit nutrition with a special emphasis on
feed ingredients utilization // 8th World Rabbit Congress Puebla Mexico. - WRSA Ed.
Invited paper, p. 686-736.
88. ГОСТ 27996-88 – 1988 Корма растительные. Методы определения
цинка. [Текст] – М.: ИПК Издательство стандартов, 2002. – 8 с.
89. Мотовилов К.Я. Экспертиза кормов и кормовых добавок: учеб.- справ.
пособие [Текст] / К.Я. Мотовилов, А.П. Булатов, В.М. Позняковский, Н.Н.
Ланцева, И.Н. Миколайчик. – Новосибирск: Сиб. унив. изд-во, 2004. – 303 с.
90. Петухова Е.А. Зоотехнический анализ кормов [Текст] / Е.А. Петухова,
Р.Ф. Бессарабова, Л.Д. Хамнева, О.А. Антонова. – М.: Агропроиздат. – 1989. –
239 с.
91. Алексеева Е.А. Молочность крольчих [Текст] / Е.А. Алексеева. //
Аграрная наука на рубеже веков: материалы всеросс. науч.-практич. конф. /
Краснояр. гос. аграр. ун-т. – Красноярск, 2005. – С. 326-327.
92. Орымбаева А.Х. Влияние кормления на организм молодняка кролика
[Текст] /А.Х. Орымбаева // Молодой ученый. – 2015. –№ 9. – С. 379-382.
93. Орловский В.И. Рост и развитие кроликов. рожденных в разные сезоны
года [Текст] : автореферат дисс. на соискание уч. степени канд. биолог. наук /
В.И. Орловский. – Казань. – 1966. – 22 с.
94. Рулева Т.А. Минеральные добавки и витамины для кроликов [Текст] /
Т.А. Рулева, Н.Ю. Сарбатова //Актуальные проблемы современной науки. –
2016. – №3(88). – С. 209-210.
95. Василиади Г.К. Пути восполнения дефицита кальция в организме
животного [Текст] /Г.К. Василиади, Т.М. Бутаев, З.Т. Дзаногова // Аграрная
Россия. – 2013. – №8. –С. 27-28.

ВКР

Лист 123/132

96. Харламов К.В. Анализ рекомендаций по минеральному питанию
кроликов [Текст] / К.В. Харламов, Н.Е. Куликов, К.И. Андарало //
Международный Научный Институт «Educatio». – 2015. – С. 18-21.
97. Крохина В.А. Комбикорма, кормовые добавки и ЗЦМ для животных
(состав и применение) [Текст]: Справочник / В.А. Крохина [и др.] – М.:
Агропромиздат, 1990. – 304 с.
98. Колмацкий В.И. Индустриализация как вектор развития российского
кролиководства. [Электронный ресурс] – Электрон. дан. // Труды Кубанского
государственного аграрного университета. – 2013. – №44. – С. 173-174. – Режим
доступа: http: //e/lanbook.com/journal/issue/290572 – Загл. с экрана.
99. Дамянова Н.В. Практические советы по кролиководству [Текст] / Н.В.
Дамянова, А.С. Деребанов, П.Х. Джамбазов. – М.: Земиздат, София, 1985. – 135
с.
100.

Кокарев

В.А.

Оптимизация

минерального

питания

сельскохозяйственных животных [Текст] / В.А. Кокарев [и др.] // Зоотехния. –
2004. – №7. – С. 12-16.
101. Бугай И.С. Нетрадиционные компоненты комбикормов [Текст] / И.С.
Бугай, С.И. Кононенко // Известия Горского ГАУ. – Владикавказ. – 2012. – №49.
– Ч. 1-2. – С. 137-139.
102. Балакирев Н.А. Кролиководство: учебник для студентов высших
учебных заведений [Текст] / Е.А. Тинаева, Н.И. Тинаев, Н.Н. Шумилина; под ред.
Н.А. Балакирева. – М.: КолосС, 2006. – 232 с.
103. Ландес Штерн-Лес. Кролики [Текст]: Справочник – пособие по
разведению и выращиванию / Штерн-Лес Ландес. – Харьков: Клуб семейного
досуга, 2014. – 144 с.
104. Лапин Ю.А. Кролики. Описание, разведение, уход [Текст] / Ю.А.
Лапин. – М.: Эксмо, 2013. – 320 с.

ВКР

Лист 124/132

105. Георгиевский В.И. Минеральное питание животных / В.И.
Георгиевский, Б.Н. Анненков, В.Т. Самохин. - М.: Колос, 1979. - 471 с.
106. Голубев В.Н. Пищевые и биологически активные добавки / В.Н.
Голубев, Л.В. Чичева-Филатова, Т.В. Шленская. – М.: Академия, 2003. – 208 с.
107.

Демченко

П.В.

Биологические

закономерности

повышения

продуктивности животных / П.В. Демченко. – М.: Колос, 1972. – 295 с.
108. Фаритов Т.А. Корма и кормовые добавки для животных / Т.А.
Фаритов. – СПб.: Лань, 2010. - 304 с.
109. Федюкович Н.И. Фармакология / Н.И. Федюкович - М.: Феникс, 2007.
- 698 с.
110. Хазова О.А. Аминокислоты / О.А. Хазова. - М.: Предтеча, 2010. – 64
c.
111. Азимов Г.И. Анатомия и физиология сельскохозяйственных
животных / Г.И. Азимов, В.И. Бойко, А.П Елисеев. - М.: Колос, 1978. - 415 с.
112. Кальницкий Б.Д. Минеральные вещества в кормлении животных / Б.Д.
Кальницкий. - М.: Агропромиздат, 1985. – 207 с.
113. Martínez-Alvarez O. Protein hydrolysates from animal processing
byproducts as a source of bioactive molecules with interest in animal feeding / O.
Martínez-Alvarez, S. Chamorro, A. Brenes // Food Research International. – 2015.
Vol. 73. – P. 204-212.
114. Wilson R.P. Amino acids and proteins / R.P. Wilson // In Fish Nutrition,
Second Edition, J. E. Halver, ed. New York: Academic Press. 1989. - 111-151 р.
115. Толкунова Н.Н. Современные белковые препараты: научные основы
производства, способы их введения в пищевые системы / Н.Н. Толкунова, В.В.
Прянишников, А.А. Жучков. – Орёл: ФГБОУ ВПО «Госуниверситет – УНПК»,
2014. – 88 с.

ВКР

Лист 125/132

116. Берестов В.А. Применение белковых гидролизатов в ветеринарии /
В.А. Берестов, К.К. Мовсум-Заде, И.А. Иопдимитров – М.: Колос, 1978. - 207 с.
117. Максимюк Н.Н. О преимуществах ферментативного способа
получения белковых гидролизатов / Н. Н. Максимюк, Ю. В. Марьяновская //
Фундаментальные исследования. – 2009. - № 1. – C. 34-35.
118. Кальницкая О.И. Применение белковых гидролизатов для создания
функциональных кормов / О.И. Кальницкая, Е.А. Карелина, Е.А. Чубарова //
Проблемы ветеринарной санитарии, гигиены и экологии. - 2012. - № 1 (7). – С.
30.
119. Мовсум-Заде К.К. Гидролизаты белка в ветеринарии / К.К. МовсумЗаде, В.А. Берестов. – Петрозаводск: Карелия, 1989. – 155 с.
120. Yongqing H. Protein hydrolysates in animal nutrition: Industrial
production, bioactive peptides, and functional significance / H. Yongqing, W.
Zhenlong, D. Zhaolai // Journal of Animal Science and Biotechnology. – 2017. - № 8.
– P. 1-13.
121. Мысик А.Т. Современное состояние производства и потребления
продукции животноводства в мире /А.Т. Мысик // Зоотехния. - 2008. - № 1. — С.
41-44.
122. McCalla J. Protein Hydrolysates. Peptides in Animal Nutrition / J. McCalla,
T. Waugh, E. Lohry - Sioux City, USA, 2010. – 190 p.
123. Волкова О.А. Морфологический состав и биологическая ценность
мяса кроликов / О.А. Волкова, А.Т. Инербаева, К.Я. Мотовилов // Переработка
с.-х. продукции. – 2009. - № 8. – С. 97-101.
124. Dalle Zotte A. Perception of rabbit meat quality and major factors
influencing the rabbit carcass and meat quality / A. Dalle Zotte // Livestock Production
Science. – 2006. - № 75. – P. 11-32.

ВКР

Лист 126/132

125. Бондаренко С.П. Содержание кроликов мясо-шкурковых пород / С.П.
Бондаренко. – М.:АСТ, 2009. – 223 с.
126. Ефремов А.П. Акселерационная и традиционные технологии в
кролиководстве / А.П. Ефремов, В.А. Сервуля. – Омск: Тираж, 2010. – 299 с.
127. Павловский П.Е. Биохимия мяса / П.Е. Павловский, В.В. Пальмин. –
М.: Пищевая промышленность, 1975. – 344 с.
128. Тинаев Н.И. Продукция кролиководства / Н.И. Тинаев. - М.:
Росагропромиздат, 1988. – 96 с.
129. Shaobo L. Shotgun proteomic analysis of protein profile changes in female
rabbit meat: the effect of breed and age / L. Shaobo, H. Zhifei, H. Ying // Italian Journal
of Animal Science. – 2019. – Vol. 18, № 1. – P. 1335-1344.
130. Bivolarski B. Amino acid content and biological value of rabbit meat
proteins, depending on weaning age / B. Bivolarski, E. Vachkova, S. Ribarsk //
Bulgarian Journal of Veterinary Medicine. – 2011. - № 14 (2). – P. 94 – 102.
131. Nasr M.A.F. Growth performance, carcass characteristics, meat quality and
muscle amino-acid profile of different rabbits breeds and their crosses / M.A.F. Nasr,
T. Abd-Elhamid, M.A. Hussein // Meat Science. – 2017. – Vol. 134. – P. 150-157.
132. Pla M. A comparison of the carcass traits and meat quality of conventionally
and organically produced rabbits / M. Pla // Livestock Science. – 2008. – Vol. 115. –
P. 1-12.
133. Помытко В.Н. Производство мяса кроликов / В.Н. Помытко, Н.С.
Зусман. – М.: Колос, 1971. - 128 с.
134. Бутко М.П. Руководство по ветеринарно-санитарной экспертизе и
гигиене производства мяса и мясных продуктов / М.П. Бутко, Ю.Г. Костенко. –
М.: РИФ Антиква, 1994. - 609 с.
135. Павленко О. Микроэлементы для животных и птицы / О. Павленко //
Комбикорма. - 2007. - № 6.- С. 15.

ВКР

Лист 127/132

136. D.S. Avila, Encyclopedia of Food and Health, (2016), pp. 637–640.
137. E.R. Orent, E.V. Mccollum, Effects of deprivation of manganese in the rat,
J. Biol. Chem. 92 (3) (1931) 651–678.
138. S.A. Devrim, A. Taylan, O. Bulent, The effects of lower supplementation
levels of organically complexed minerals (zinc, copper and manganese) versus
inorganic forms on hematological and biochemical parameters in broilers, Kafkas
Univ. Vet. Fak. Derg. 16 (4) (2010) 553–559.
139. J.L. Aschner, M. Aschner, Nutritional aspects of manganese homeostasis,
Mol. Aspects Med. 26 (4-5) (2005) 0–362.
140. H.S. Wilgus, The role of manganese and certain other trace elements in the
prevention of perosis[J], J. Nutr. 14 (1937) 155–167.
141. L.G. Strause, J. Hegenauer, P. Saltman, et al., Effects of long- term dietary
manganese and copper deficiency on rat skeleton, J. Nutrition 116 (1986) 135–141.
142. R.M. Leach Jr., A.M. Muenster, Studies on the role on manganese in bone
formation. I. Effect upon the mucopolysacchride content of chick bone, J. Nutrition 78
(1962) 51–56.
143. R.H. Grummer, O.G. Bentley, P.H. Phillips, et al., The role of manganese
in growth, reproduction, and lactation of swine[J], J. Anim. Sci. 9 (2) (1950) 170–175.
144. A.J. Svajgr, E.R. Peo, P.E. Vipperman, Effects of dietary levels of
manganese and magnesium on performance of growing-finishing swine raised in
confinement and on pasture.[J], J. Anim. Sci. 29 (3) (1969) 439.
145. J. Couper, On the effects of black oxide manganese when inhaled into the
lungs, Br. Ann. Med. Pharm. Vital Stat. Gen. Sci. 1 (1837) 41–42.
146. J. Freeland-Graves, C. Llanes, Models to study manganese deficiency, in:
D.J. Klimis-Tavantzis (Ed.), Manganese in Health and Disease, CRC Press, Boca
Raton, FL, 1994, pp. 115–120.

ВКР

Лист 128/132

147. C.L. Keen, J.L. Ensunsa, M.H. Watson, D.L. Baly, S.M. Donovan, M.H.
Monaco, M.S. Clegg, Nutritional aspects of manganese from experimental studies,
Neurotoxicology 20 (1999) 213–223.
148. A. Dalle Zotte, Perception of rabbit meat quality and major factors
influencing the rabbit carcass and meat quality, Livest. Prod. Sci. 75 (2002) 11–32.
149. S. Combes, Valeur nutritionnelle de la viande de lapin, INRA Production
Animales 17 (2004) 373–383.
150. A. Dalle Zotte, Avantage ditétiques. Le lapin doit apprivoiser le
consommateur, Viandes Produits Carnés 23 (2004) 1–7.
151. P. Hernández, F. Gondret, Rabbit meat quality, in: L. Maerterns, P. Coudert
(Eds.), Recent Advances in Rabbit Science. ILVO, Melle, Belgium, 2006, pp. 269–
290.
152. B. Carlos de, W. Julian, Nutrition of the Rabbit, second ed., CAB
international, 2010, p. 129.
153. J.W. Li, F.C. Li, Effects of dietary electrolyte balance on growth
performance, nitrogen metabolism and some blood biochemical parameters of growing
rabbits, Asian-Australasian J. Anim. Sci. 26 (12) (2013) 1726–1731.
154. Y.C. Zhang, F.C. Li, Effect of dietary methionine on growth performance
and insulin-like growth Factor-I (IGF-I) mRNA expression of growing meat rabbits, J.
Animal Physiol. Animal Nutrition 94 (6) (2010) 803–809.
155. NRC, Nutrient Requirements of Rabbits: 1977, National Academies Press,
1977.
156. AOAC, Official Methods of Analysis. Association of Official Analytical
Chemists, Inc, Arlington, 2003, p. 1298.
157. A. Blasco, J. Ouhayoun, G. Masoero, Harmonization of criteria and
terminology in rabbit meat research, World Rabbit Sci 1 (1993) 3–10.

ВКР

Лист 129/132

158. AOAC, Instructions for inserting, Official Methods of Analysis of AOAC
International, AOAC international, 2002.
159. Y.Y. Zhang, F.C. Li, The effect of dietary selenium levels on the growth
performance, antioxidant capacity and glutathione peroxidase 1 (GSHPx1) mRNA
expression in growing meat rabbits, Anim. Feed Sci. Technol. 169 (2011) 259–264.
160. C.Y. Fu, F.C. Li, Cloning, molecular characterization, and spatial and
developmental expression analysis of GPR41 and GPR43 genes in New Zealand
rabbits, Animal 11 (2017) 1798–1806.
161. C. Fu, L. Liu, F. Li, Acetate alters the process of lipid metabolism in rabbits,
Animal 12 (2018) 1895–1902.
162. L. Liu, F.C. Li, Dietary addition of garliF.C. Straw improved the intestinal
barrier in rabbits, J. Anim. Sci. 97 (2019) 4248–4255.
163. L. Liu, F.C. Li, Dietary addition of Artemisia argyi reduces diarrhea and
modulates the gut immune function without affecting growth performances of rabbits
after weaning, J. Anim. Sci. 97 (2019) 1693–1700.
164. H.T. Du, F.C. Li, The effects of dietary α-linolenic acid on growth
performance, meat quality, fatty acid composition, and liver relative enzyme mRNA
expression of growing meat rabbits, J. Anim. Feed Sci. 22 (2) (2013) 122–129.
165. Lei Liu, F.C. Li, Acetate affects the process of lipid metabolism in rabbit
liver, skeletal muscle and adipose tissue, Animals 9 (10) (2019) 799.
166. Z.Y. Wu, F.C. Li, Hair follicle development and related gene and protein
expression of skins in Rex rabbits during the first 8 weeks of life, Asian-Australasian
J. Animal Sci. 32 (4) (2019) 477–484.
167. Lei Liu, F.C. Li, Dietary niacin supplementation suppressed hepatic lipid
accumulation in rabbit, Asian-Australasian J. Animal Sci. 29 (12) (2016) 1748–1755.
168. SAS, SAS Institute Inc. SAS/STAT user’s guide: Version 8. 0, SAS
Institute, Inc, Cary NC, 1999.

ВКР

Лист 130/132

169. H.H. Zhang, N. Zhou, T.T. Zhang, Effects of different dietary manganese
levels on growth performance and N balance of growing mink (Neovision Vision),
Biol. Trace Elem. Res. 160 (2) (2014) 206–211.
170. K. Bao, K. Wang, X. Wang, T. Zhang, Effects of dietary manganese
supplementation on nutrient digestibility and production performance in male sika deer
(Cervus Nippon), Anim. Sci. J. 88 (3) (2017).
171. H.W. Gao, Effects of dietary zinc, copper, manganese and selenium on
performance and biochemical indexes of growing rex rabbits, Chinese J. Veterinary
Med. 25 (5) (2005) 530–533.
172. P.R. Henry, C.B.B. Ammerman, R.D. Miles, Influence of virginiamycin
and dietary manganese on performance, manganese utilization, and intestinal tract
weight of broilers, Poult. Sci. 65 (2) (1986) 321.
173. J.R. Black, C.B. Ammerman, P.R. Henry, Effects of high dietary
manganese as manganese oxide or manganese carbonate in sheep, J. Anim. Sci. 60
(1985) 861–866.
174. M. Ivan, M. Hidiroglou, Effect of dietary manganese on growth and
manganese metabolism in sheep, J. Dairy Sci. 63 (385) (1980).
175. K.M. Erikson, T. Syversen, J.L. Aschner, M. Aschner, Interactions between
excessive manganese exposure and dietary iron-deficiency in neurodegeneration,
Environ. Toxicol. Pharmacol. 19 (2005) 415–421.
176. X.G. Wang, G.Y. Li, Effect of nutrient matter digestibility and nitrogen
metabolism in female mink fed different organism chelating manganese level during
gestation perion, China Animal Husbandry & Vet. Med. 39 (2012) 106–109.
177. Y. Sun, Y.Y. Cong, H.W. Deng, Effect of dietary manganese levels on
blood parameters related to protein metabolism in Liaoning cashmere goats,
Heilongjiang Animal Sci. Vet. Med. 5 (2012) 69–71.

ВКР

Лист 131/132

178. Q.J. Yang, Effects of manganese deficiency on lipid metabolism in rats fed
a high cholesterol diet, Modern Prev. Med. 3 (2001) 349–350.
179. G.D. Rosa, Regulation of superoxide dismutase activity by dietary
manganese, J. Nutr. 110 (4) (1980) 795–804.
180. L. Lu, C. Ji, X.G. Luo, B. Liu, S.X. Yu, The effect of supplemental
manganese in broiler diets on abdominal fat deposition and meat quality, Anim. Feed
Sci. Technol. 129 (2006) 9–59.
181. L.R. Legleiter, J.W. Spears, K.E. Lloyd, Influence of dietary manganese on
performance, lipid metabolism, and carcass composition of growing and finishing
steers, J. Anim. Sci. 83 (10) (2005) 2434–2439.
182. J.K. Apple, W.J. Roberts, et al., Effect of supplemental manganese on
performance and carcass characteristics of growing-finishing swine, J. Anim. Sci. 82
(11) (2004) 3267–3276.
183. W.S. Simonet, D.L. Lacey, C.R. Dunstan, et al., Osteoprotegerin: a novel
secreted protein involved in the regulation of bone density, Cell 89 (1997) 309–319.
184. L.M. Childs, E.P. Paschalis, L. Xing, et al., In vivo RANK signaling
blockade using the receptor activator of NF-κB: fc effectively prevents and a meliorates
wear debrisinduced osteolysis via osteoclast depletion without inhibiting osteogenesis,
J. Bone Miner. Res. 17 (2) (2002) 192–199.
185. E.F. Eriksen, K. Brixen, P. Charles, New markers of bone metabolism:
clinical use in mineral bone disease, Eur. J. Endocrinol. 132 (1995) 251–263.
186. Правила ветеринарно-санитарного осмотра убойных животных и
ветеринарно-санитарной экспертизы мяса и мясных продуктов // Агропромиздат.
- 1988. – 62 с.
187. Берестов В.А. Клиническая биохимия пушных зверей / В.А. Берестов.
– Петрозаводск: Карелия, 2005. – 159 с.

ВКР

Лист 132/132

188. Кондрахин И.П. Методы ветеринарной клинической лабораторной
диагностики / И.П. Кондрахин, А.В. Архипов. – М.: КолосС, 2004. – 520 с.
189. Жеребцов Н.А. Биохимия / Н.А. Жеребцов, Т.Н. Попова, В.Г.
Артюхов. – Воронеж: Воронеж. гос. ун-тет, 2002. - 696 с.
190. Белова С.М. Справочник по качеству продуктов животноводства /
С.М. Белова, А.Т. Мысик - М.: Агропромиздат, 1986. - 239 с.
191. Гараева С.Н. Аминокислоты в живом организме / С.Н. Гараева, Г.В.
Редкозубова, Г.В. Постолати. – Кишинев, 2009. – 552 с.